糖尿病动物模型
- 格式:doc
- 大小:44.50 KB
- 文档页数:5
糖尿病动物模型研究进展王瑶:贵州中医药大学第一附属医院通讯作者:秦学维:贵州中医药大学第一附属医院摘要:糖尿病是全球高发的慢性病,可引起多种并发症,糖尿病动物模型对于我们研究其发病机制、病程及治疗具有重要意义。
T1DM以及T2DM是最常见的糖尿病类型,本文主要对这两种类型的糖尿病动物模型进行综述,以期为糖尿病动物模型的制作提供更多的参考。
关键词:糖尿病,糖尿病并发症,动物模型Abstract: Diabetes is a chronic disease with high incidence in the world, which can cause a variety of complications. Animal models of diabetes are of great significance for us to study its pathogenesis, course and treatment. T1DM and T2DM are the most common types of diabetes. This article mainly reviews these two types of diabetes animal models in order to provide more references for the production of diabetes animal models.Key words: diabetes, diabetes complications, animal models糖尿病的患病率和病死率逐年增加,在我国是继心血管疾病和肿瘤之后位列第三位的多发病和慢性非传染性疾病[1]。
美国糖尿病协会2022年糖尿病指南将糖尿病分为四个大的类型(T1DM、 T2DM、由于其他原因导致的特定类型的糖尿病、妊娠期糖尿病(GDM))。
然而T1DM以及T2DM仍是最常见的糖尿病类型。
目录目录I型糖尿病模型建立 (1)链脲佐菌素 (4)四氧嘧啶 (5)II型糖尿病模型建立 (6)建模方法 (6)胰岛素抵抗动物模型 (7)参考文献 (8)糖尿病动物模型建立摘要:本文通过收集相关文献总结糖尿病模型的建立方法。
关键词:糖尿病模型,鼠前言:在生物医学研究的进展过程中常常依赖于使用动物模型作为实验假说和临床假说两者的试验基础,主要有以下几个优点:1.避免了在人身上进行试验所带来的风险,包括伦理学上的相关问题2.可以严格控制实验条件,增强实验材料的可比性4.可以简化实验操作和样品收集。
从实用性出发,本文重点介绍大鼠诱发性糖尿病模型的建立。
科技前沿:日本东京大学的研究人员在新研究中发现一种名为AdipoRon化合物,它能够减轻吃高脂肪食物的小鼠和遗传性肥胖小鼠的胰岛素抗性和葡萄糖耐受不良[8]。
中科院:发现了2型糖尿病重要的早期生物标记物[9],也有学者认为可以用果蝇制作人体糖尿病模型,不过相关报道较少[11], 乌克坦(Yucatan)[14]小型猪(亦称墨西哥无毛猪)也是糖尿病研究中一个很好的动物模型,只需一次静脉注射水合阿脲(alloxan monohydrate)200 mg/kg体重,就可以产生典型的急性糖尿病。
其临床体征包括高血糖、剧渴、多尿和酮尿等。
[12]灵长类动物猕猴,主要用于病因学、遗传学、神经系统、细胞生化及药物鉴定等方面研究,这样的动物模型,研究人类糖尿病会更接近自然,结果也比较理想,但因价格昂贵,难以得到,国内较少使用。
[13]Ⅰ型糖尿病模型建立1.1手术切除胰腺手术切除胰腺后,动物缺乏胰岛素而出现高血糖。
全部切除胰腺,可制成无胰性糖尿病动物模型,需补充外源性胰酶。
全部切除胰腺,除可引起高血糖外,并可致酮症酸中毒和死亡,故一般主张切除75%~90%的胰。
1.2病毒诱导胸心肌炎病毒D变异体和M变异体均致糖尿病肾病的作用,对其敏感的的动物品系有DBA及DBA/2小鼠,其作用机制与其感染动物后破坏胰岛β细胞有关。
第1篇一、实验背景糖尿病是一种常见的慢性代谢性疾病,其特征是血糖水平持续高于正常值。
为了研究糖尿病的发病机制、评估治疗效果以及开发新的治疗方法,动物模型实验在糖尿病研究中扮演着重要角色。
小鼠作为常见的实验动物,其血糖评定实验是研究糖尿病的基础。
二、实验目的1. 建立稳定的小鼠糖尿病模型。
2. 评估不同治疗方法对小鼠血糖的影响。
3. 探讨糖尿病的发病机制。
三、实验材料1. 实验动物:雄性C57BL/6小鼠,体重18-22g。
2. 试剂与仪器:链脲佐菌素(STZ)、胰岛素、葡萄糖、血糖测定仪、胰岛素注射器等。
四、实验方法1. 糖尿病模型的建立:- 将小鼠随机分为对照组、模型组、胰岛素治疗组、桑叶提取液治疗组。
- 模型组:用STZ溶液(50mg/kg体重)一次性腹腔注射,建立糖尿病模型。
- 对照组:给予等量生理盐水腹腔注射。
- 胰岛素治疗组:模型建立后,给予胰岛素(0.5U/kg体重)腹腔注射,每日一次,连续7天。
- 桑叶提取液治疗组:模型建立后,给予桑叶提取液(50mg/kg体重)灌胃,每日一次,连续7天。
2. 血糖测定:- 实验开始前及实验期间,分别测定各组小鼠的空腹血糖。
- 在实验结束时,对所有小鼠进行麻醉,断头处死,采集血液,测定血糖浓度。
3. 病理学检查:- 对小鼠的肝脏、肾脏、胰腺进行病理学检查。
五、实验结果1. 血糖测定结果:- 模型组小鼠血糖水平显著高于对照组(P<0.05)。
- 胰岛素治疗组及桑叶提取液治疗组小鼠血糖水平较模型组显著降低(P<0.05)。
2. 病理学检查结果:- 模型组小鼠肝脏、肾脏、胰腺存在不同程度的病理学改变,如脂肪变性、炎症等。
- 胰岛素治疗组及桑叶提取液治疗组小鼠病理学改变较模型组明显减轻。
六、实验结论1. STZ诱导的小鼠糖尿病模型建立成功。
2. 胰岛素和桑叶提取液对糖尿病小鼠具有降低血糖的作用。
3. 胰岛素和桑叶提取液可能通过改善胰岛功能、调节血糖稳态等途径减轻糖尿病小鼠的病理学改变。
Ⅱ型糖尿病动物模型研究进展摘要: 糖尿病是以高血糖为主要标志的内分泌代谢性疾病,是严重威胁人类健康的主要慢性病之一,而Ⅱ型糖尿病占糖尿病总数的90%~95%左右。
建立合适的Ⅱ型糖尿病动物模型是阐明其发病机制的前提条件。
因此,该文综述了目前国内外糖尿病研究中常用的动物模型,对发展新型Ⅱ型糖尿病动物模型的研究提供参考价值。
关键词:Ⅱ型糖尿病;动物模型;模型构建Research Progress about the Construction of TypeⅡ Diabetic Animal ModelLIU Shu—Yun(Lab of Transplant Engineering and Immunology West China Hospital,Sichuan University 2013224070006)Abstract: Diabetes mellitus,the endocrine and metabolic diseases,is characterized by hyperglycemia. It is one of the most prevalent chronic diseases that threat to human health,and type 2 diabetes accounted for 90% -95% of the total diabetes. The animal model of type 2 diabetes provide the important precondition to many scholars in study of the pathogenesis and mechanism of diabetes.Therefore,this article reviews a number of animal models of T2DM commonly used according to the articles that have been published both inside country and abroad,which will provide reference for the development of type II diabetic animal models.Key Words:Type Ⅱ Diabetes Mellitus, Animal model,Model construction糖尿病( Diabetes mellitus,DM) 是以高血糖为主要标志的内分泌代谢性慢性疾病,其严重威胁着人类健康。
糖尿病(diabetes mellitus ,DM)已成为严重危害人类健康的公共卫生问题,DM及其并发症不仅严重影响糖尿病患者的生活质量,同时也是致残、致死的重要原因。
因此,建立合适的糖尿病动物模型,阐明DM及其并发症的发病机制就显得尤为重要。
目前,DM动物模型制备方法主要有:①手术切除胰腺;②化学药物诱导;③自发性糖尿病动物模型;④转基因动物等。
【切除胰腺的DM模型】常采用狗、猫和大鼠等造模,全部或大部分切除实验动物的胰腺,但保存胰十二指肠动脉吻合弓。
如果连续两天血糖值超过11.1mmol/L或行葡萄糖耐量试验120min时的血糖值仍未恢复到注射前水平则认为DM造模成功。
其机制是全部或大部分切除胰腺后,β细胞缺如而产生永久性DM。
【化学药物诱发的DM模型】采用链脲佐菌素腹腔注射或四氧嘧啶静脉注射可诱发DM,常用动物有小鼠、大鼠、家兔和狗。
链脲佐菌素(streptozotocin STZ)的参考剂量为50~150mg/kg;四氧嘧啶(alloxan)的参考剂量为60~110mg/kg。
STZ是一种含亚硝基的化合物,进入体内可通过以下机制特异性地破坏胰岛β细胞:①STZ直接破坏胰岛β细胞:主要见于注射大剂量STZ后。
STZ注射后可引起β细胞内辅酶I(NAD)的浓度下降,NAD依赖性能量和蛋白质代谢停止,导致β细胞死亡。
②通过诱导一氧化氮(NO)的合成,破坏胰岛β细胞;③STZ激活自身免疫过程,进一步导致β细胞的损害:小剂量注射STZ可破坏少量胰岛β细胞,死亡的胰岛β细胞可作为抗原被巨噬细胞吞噬,产生TH1刺激因子,使TH1细胞系占优势而产生IL-2及IFN-γ,在胰岛局部促使炎性细胞浸润,并活化释放IL-1、TNF-α、IFN-γ、NO 和H2O2等物质杀伤细胞。
死亡细胞又可作为自身抗原,再次递呈给抗原递呈细胞进行处理,释放细胞因子,放大细胞损伤效应,最终诱发DM[1]。
四氧嘧啶进入体内后能迅速被胰岛β细胞摄取,影响细胞膜的通透性和细胞内ATP的产生,抑制葡萄糖介导的胰岛素分泌。
高脂高糖饮食联合STZ诱导C57Bl6J品系小鼠构建糖尿病肾病模型的研究一、概述糖尿病肾病(Diabetic Nephropathy,DN)是糖尿病最常见的慢性并发症之一,严重危害着患者的健康和生活质量。
构建稳定且可靠的糖尿病肾病动物模型,对于深入研究其发病机理、病理变化以及探索新的治疗策略具有至关重要的意义。
本研究旨在探索高脂高糖饮食联合链脲佐菌素(STZ)诱导C57Bl6J品系小鼠构建糖尿病肾病模型的可行性及效果。
C57Bl6J小鼠作为一种常用的实验动物,具有遗传背景清晰、生理特性稳定等优点,因此被广泛应用于糖尿病及相关并发症的研究中。
高脂高糖饮食是诱导糖尿病发生的重要环境因素,能够模拟人类不良饮食习惯导致的糖尿病发生过程。
而STZ作为一种常用的化学诱导剂,能够选择性破坏胰岛细胞,导致胰岛素分泌不足,进而引发糖尿病。
通过高脂高糖饮食联合STZ诱导的方法,我们可以模拟人类糖尿病肾病的发病过程,观察小鼠的体重变化、血糖水平、口服葡萄糖耐量、尿蛋白排泄以及肾脏病理改变等指标,从而全面评估模型的稳定性和可靠性。
我们还可以进一步探索该模型在糖尿病肾病发病机理研究、药物筛选及疗效评价等方面的应用价值。
本研究不仅有助于深化我们对糖尿病肾病发病机理的认识,还将为开发新的治疗方法和药物提供重要的实验依据。
通过不断优化和完善动物模型构建方法,我们有望为糖尿病肾病的研究和治疗带来新的突破和进展。
1. 糖尿病肾病的流行病学与危害糖尿病肾病作为糖尿病的严重慢性并发症,其流行病学特征与危害不容忽视。
在全球范围内,随着糖尿病患病率的逐年上升,糖尿病肾病的发生率也呈显著增长趋势。
无论是1型糖尿病还是2型糖尿病患者,都面临着发生糖尿病肾病的风险。
约30的1型糖尿病患者和20至50的2型糖尿病患者最终可能发展为糖尿病肾病。
糖尿病肾病的发病过程往往较为隐匿,早期临床症状不明显,这使得许多患者错过了最佳的治疗时机。
多数患者在患糖尿病五年后可能出现运动后微量白蛋白尿,而十年至十五年后可能出现持续性的微量白蛋白尿。
研究胆固醇影响大鼠脂肪代谢的机制。
方法:以添加1%胆固醇的AIN76 合成饲料喂食Wistar 大鼠4 w,对照组不添加胆固醇。
分别测血清甘油三酯(TG)、总胆固醇(TC)、磷脂(PL)、高密度脂蛋白(HDL-C)、血糖、游离脂肪酸(NEFA)浓度;测肝脏TG、TC、PL 浓度以及苹果酸酶(ME)、葡萄糖6 磷酸脱氢酶(G6PDH)、脂肪酸合成酶(FAS)、磷脂酸磷酸酶(PAP)和肉毒碱棕榈酰转移酶(CPT)活性、酰基辅酶A-胆固醇酰基转移酶(ACAT)、胆固醇7a-羟化酶(CYP7A)和羟甲基戊二酸单酰辅酶A 还原酶(HMG-CoA reductase)mRNA。
结果:胆固醇显著增加大鼠血液TC 和非HDL-C 浓度、降低HDL-C 和TG 浓度,使肝脏TC 和TG 浓度分别提高了20 和4 倍。
胆固醇组大鼠肝脏ME 活性降低40%、G6PDH 活性降低70%、FAS 活性降低50%,PAP 活性降低15%,CPT的活性降低25%,肝脏FAS 的mRNA 量降低35%,CPT1 和CPT2 的mRNA 量分别降低30%和50%。
HMG-CoA 还原酶mRNA 量降低25%, 而CYP7A 和ACAT mRNA 量分别增加了6.5 和1.6 倍。
结论:高胆固醇饮食引起肝脏TG 蓄积,但并不增加肝脏TG 合成相关酶的活性和基因表达。
链脲佐菌素( strep tozotocin, STZ)2. 1对肾上腺素所致小鼠高血糖模型的影响取雄性小鼠60只,体重为19~22 g,随机分为正常组,模型组,阳性药达美康组,苦瓜总皂苷高、中、低剂量共6组,苦瓜总皂苷分别灌服苦瓜总皂苷混悬液(400, 200, 100 mg·kg- 1 ) ,用015%羧甲基纤维素钠(CMC)配成质量浓度为20, 10, 5 mg·mL - 1 ,灌胃体积为0102 mL ·g - 1 ,达美康混悬液( 015% CMC液, 80 mg·kg- 1 , 4 mg·mL - 1 , 012 mL·g- 1 ) ,模型组和空白组灌服同体积的015%CMC液。
链脲佐菌素(Streptozocin,STZ )诱发糖尿病动物模型的原理:STZ对一定种属动物的胰岛β细胞有选择性破坏作用,能诱发许多动物产生糖尿病,一般采用大鼠和小鼠制造动物模型。
国外有学者报道选用雄性大鼠制造模型的成模率明显高于雌性大鼠。
1型糖尿病与2型糖尿病动物模型的制备与STZ注射的剂量有关系:大剂量注射时,由于直接引起胰岛β细胞的广泛破坏,可造成1型糖尿病模型;而注射较少量STZ时,由于只是破坏一部分胰岛β细胞的功能,造成外周组织对胰岛素不敏感,同时给予高热量饲料喂养,两者结合便诱导出病理、生理改变都接近于人类2型糖尿病的动物模型。
造膜前的喂养:Ⅰ型糖尿病模型成模比较快,通常大鼠在普通饲料适应性喂养2周后即可开始造模。
Ⅱ型糖尿病模型:高脂饮食诱导加小剂量STZ。
造模前喂以高脂(高糖)饲料,诱发出胰岛素抵抗。
高脂(高糖)饲料:高脂(高糖)饲料成分:其中含10蔗糖,10猪油,5胆固醇。
由基础鼠饲料加蔗糖、炼猪油和蛋黄按比搭配制作高脂高糖饲料:其比例为猪油18 ,蔗糖20 ,蛋黄3 ,基础饲料59 。
预实验的重要性:很重要。
实验时STZ的给药量应参照预实验的结果,尽量不要盲目按照文献上或他人的给药量来直接使用,鼠均重和空腹(低糖状态)抗药力、禁食时长、注射选时、以及之前饲养过程、测糖选时等都不相同,通过预实验来确定符合自己实验鼠的给药计量,才是最科学的。
常用给药剂量:Ⅰ型糖尿病模型:大鼠剂量为70~65mg/KgⅡ型糖尿病模型:高糖高脂喂养1~2 个月的大鼠,STZ 剂量在25~40mg/Kg 。
或参考文献(鼠均重不同,本剂量以200克均重为例)。
配置STZ液:柠檬酸缓冲液的配制:柠檬酸(FW:210.14) 2.1g加入双蒸水100mL中配成A液;柠檬酸钠(FW:294.10)2.94g加入双蒸水100mL中配成B液。
用时将A、B液按一定比例混合(1:1.32也有按1:1的),PH计测定ph值,调节ph=4.2-4.5,即是所需配置STZ的柠檬酸缓冲液。
糖尿病的动物模型摘要:综述糖尿病动物模型研究进展,并对目前科研中常用的糖尿病动物模型制备方法、机制进行综述,并简略评价其优缺点。
目前国内外糖尿病动物模型的制备方法很多,各有其特点,大体可以分为实验性糖尿病动物模型、自发性糖尿病模型等。
其研究的不断进展,为深入探讨糖尿病病因、病机及其药物治疗提供了借鉴。
关键词:糖尿病动物模型自发性目前国内为研究人类糖尿病的预防与治疗,通过多种方法获得糖尿病的模型动物,自Minkowshi 等用切除狗胰腺的方法建立糖尿病动物模型已经有多年的历史,目前糖尿病动物模型通常分诱发性和自发性2类,主要用于药物筛选、病理改变等方面研究[1]。
1.实验性糖尿病动物模型1.1利用化学物致胰岛细胞损伤1.1.1 四氧嘧啶:能选择性破坏多种属动物的胰岛β细胞,引起实验性糖尿病。
将四氧嘧啶用生理盐水新鲜配制成浓度为1%~3%溶液,实验大鼠空腹12 h尾静脉1次注射40 mg·kg-1,血糖值可出现3个时限变化,注射后2~4 h为初期高血糖相,约6 h左右为低血糖,12 h后出现持续高血糖伴多饮、多尿等,并且血糖达16.7 mmol·L-1以上,稳定2周后可作为成功模型,造模最初成功率约85%;最终成功率约60%[2]。
1.1.2 链尿佐菌素:链尿佐菌素是一种药效强大的烷化剂,能干扰葡萄糖的转运,影响葡萄糖激酶的功能,诱导DNA双链的断裂[3]。
1.2病毒感染:利用脑心肌炎病毒(EMC—M)病毒及柯萨奇病毒接种小鼠可以引起β细胞脱颗粒而致糖尿病。
为1型糖尿病原型。
但此模型成功率低,目前较少采用。
1.3 注射激素诱发糖尿病:给动物注射糖皮质激素、生长激素、甲状腺素、胰高血糖素等拮抗胰岛素的作用,可制备内分泌性糖尿病动物模型[4]。
糖皮质激素和胰高血糖素促进糖原异生,抑制外周组织葡萄糖的利用即降低胰岛素的效能;生长激素使外周组织利用葡萄糖发生障碍,对胰岛素敏感性降低,刺激β细胞过度分泌,终致衰竭产生糖尿病。
浙江中西医结合杂志2021年第31卷第8期ZJITCWM(Vol.31No.82021)窑论著窑
摘要目的观察电针对糖尿病神经痛大鼠背根神经节磷酸化p38丝裂原活化蛋白激酶(p-p38MAPK)表达的影响。方法将20只健康雄性SD大鼠按随机数字表法分为空白组6只,造模组
14只,造模组大鼠采用单次腹腔注射链脲佐菌素(65mg/kg)建立糖尿病神经痛模型,造模成功的12
只大鼠按随机数字表法分为模型组和电针组,每组6只;电针组于2周后介入电针,取双侧足三里和昆仑穴,每天1次,每次30min,干预1周。空白组、模型组大鼠予以同电针组相同的固定。采用动态足底触觉仪检测大鼠造模前、造模后1、2、3周机械痛阈,采用免疫荧光法检测大鼠腰4至腰6背根神经节中p-p38MAPK阳性细胞表达。结果与空白组比较,造模后1周模型组和电针组大鼠机械痛阈[(31.06依0.66)g、(32.51依0.84)g比(31.04依1.63)g,P跃0.05]无显著性差异,造模后2、3周模型组大鼠机械痛阈[(25.20依1.03)g比(31.17依0.68)g,(18.29依2.01)g比(31.92依0.95)g,P均约0.05]均显著降低;与模型组比较,造模后3周电针组大鼠机械痛阈[(26.91依2.81)g比(18.29依2.01)g,P约0.05]显著升高。与空白组比较,模型组大鼠L4-L6背根神经节上的p-p38MAPK阳性细胞个数[(37.76依0.38)个比(21.49依1.57)个、(35.63依1.84)个比(22.49依2.66)个、(33.95依1.34)个比(21.79依1.09)个,P
均约0.05]表达显著升高;与模型组比较,电针组大鼠腰4至腰6背根神经节上的p-p38MAPK阳性细胞个数[(26.69依1.35)个比(37.76依0.38)个、(23.54依3.22)个比(35.63依1.84)个、(26.38依2.65)个比(33.95依1.34)个,P均约0.05]表达显著降低。结论电针对糖尿病神经痛模型大鼠有良好的镇痛效果,其机制可能与抑制背根神经节神经元p-p38MAPK表达相关。关键词大鼠;糖尿病神经痛;电针;背根神经节;磷酸化p38丝裂原活化蛋白激酶
高糖高脂膳食联合递增剂量的STZ诱导非人灵长类动物糖尿病模型本模型的实验动物、诱导技术和评价指标如下:实验动物:普通级食蟹猴,中老年(大约10-20岁),体重8kg以上,雄性食蟹猴,外观正常。
诱导技术:采用递增剂量的脲链佐菌素(STZ)+高糖高脂饲养喂养+后期辅助夜间光照结合的方式诱导成模。
模型评价指标:分阶段检测个体的体重、BMI、血糖、尿糖、血生化、糖耐量、血胰岛素水平,明确糖尿病发病进程中各指标的变化关系,筛选出量化指标。
诊断标准:(参照国际认可的WHO1999年标准):包括: a.有糖尿病典型症状(多尿、多饮及体质量减轻)同时随机血糖≥11.1mmol/L;b.FPG(空腹血糖)(禁食8小时以上))≥7.0mmol/ L;c.OGTT(口服糖耐量试验)2h血糖≥11.1mmol/L,符合上述任一种情况,并经改日复查证实或存在明确症状者可诊断为糖尿病。
糖尿病前期具有进展至糖尿病和患心血管疾病(CVD)的危险,其诊断标准为:a.FPG受损(IFG):FPG6.1~<7.0mmol/L、OGTT2h血糖<7.8mmol/L;b.糖耐量减低(IGT):FPG<7.0mmol/L;OGTT2h血糖7.8~11.0mmol/L。
1范围本标准规定了模型诱导的要求、实验方法以及评价指标。
本标准适用于评定非人灵长类糖尿病动物模型。
2规范性引用文件3要求3.1实验动物:普通级食蟹猴,中老年(大约10-20岁),体重8kg以上,雄性食蟹猴,外观正常。
3.2诱导技术:递增剂量的脲链佐菌素(STZ)+高糖高脂饲养喂养+后期辅助夜间光照。
4试验方法STZ配制:STZ购自Sigma公司(Lot#WXBC8740V)。
分别快速称取每只猴用量的STZ 粉末,分别用柠檬酸缓冲液(在配制后30分钟内注射完毕。
称取及配制时注意避光。
STZ 给药方式pH 4.2-4.5)5ml 溶解。
现配现用,:静脉注射,每周一次。
剂量按照2mg/kg 、4mg/kg 、6mg/kg 、8mg/kg 、10mg/kg 递增,至10mg/kg 时视血糖情况继续按该剂量给药或者增加至20mg/kg 。
dbdb小鼠的实验室应用dbdb小鼠是一种具有肥胖和糖尿病特征的动物模型,其在实验室中被广泛用于研究糖尿病和肥胖相关的病理生理机制,以及评估药物和治疗方法的效果。
本文将介绍dbdb小鼠在实验室中的应用。
在实验室中,dbdb小鼠被用于研究糖尿病和肥胖的病理生理机制,以及药物和治疗方法的效果。
这些研究通常涉及对小鼠的饮食、体重、血糖、胰岛素水平等指标的监测和调控。
通过使用dbdb小鼠作为实验对象,科学家们可以更深入地了解糖尿病和肥胖的发病机制,为开发新的药物和治疗方法提供理论支持和实践指导。
dbdb小鼠作为实验对象的优势在于其具有肥胖和糖尿病的特征,可以很好地模拟人类糖尿病和肥胖患者的病理生理过程。
同时,dbdb小鼠的基因型和表现型相对稳定,可以保证实验结果的可比性和可重复性。
由于dbdb小鼠是成倍肥胖,可以在较短时间内观察到明显的实验效果,从而提高实验的效率。
使用dbdb小鼠进行实验的方法包括但不限于以下几种:给药实验、基因敲除或过表达、饮食干预等。
其中,给药实验是最常用的方法之一,通过给予药物或化合物,观察对小鼠体重、血糖、胰岛素水平等指标的影响,从而评估药物或化合物的疗效和安全性。
基因敲除或过表达方法则通过改变小鼠的基因型,研究基因对糖尿病和肥胖的影响。
饮食干预则通过控制小鼠的饮食成分和摄入量,研究饮食习惯对糖尿病和肥胖的影响。
通过使用dbdb小鼠进行的实验,科学家们发现了很多糖尿病和肥胖相关的病理生理机制和治疗靶点。
例如,研究发现dbdb小鼠的脂肪组织中存在炎症反应和细胞因子异常分泌,这些因素可能是导致肥胖和糖尿病的关键因素。
通过对dbdb小鼠进行药物或饮食干预实验,科学家们发现了一些可以有效控制血糖和改善肥胖症状的药物和治疗方法,为临床实践提供了重要的参考依据。
dbdb小鼠作为一种重要的动物模型在实验室中被广泛应用于研究糖尿病和肥胖相关的病理生理机制及药物和治疗方法的效果。
通过这些研究,科学家们可以更深入地了解糖尿病和肥胖的发病机制,为开发新的药物和治疗方法提供理论支持和实践指导。
糖尿病研究模型糖尿病是一种常见的慢性疾病,影响着全球数亿人的健康和生活质量。
对于医学研究人员来说,糖尿病是一个重要的研究领域,需要不断探索和发现新的治疗方法。
在这篇文章中,我们将介绍一种糖尿病研究模型,该模型旨在帮助研究人员更好地理解糖尿病的病理生理机制,并评估新的治疗策略。
该糖尿病研究模型基于人类基因编辑技术和小鼠模型。
研究人员使用CRISPR-Cas9基因编辑技术,在小鼠基因组中引入与人类糖尿病相关的基因突变。
这些突变基因可以模拟人类糖尿病的病理生理特征,包括胰岛素分泌不足、胰岛素抵抗和炎症等。
通过这种模型,研究人员可以研究这些因素之间的相互作用,以及它们对糖尿病发病和进展的影响。
该糖尿病研究模型的一个重要优势是它能够提供可比较的数据。
由于该模型使用基因编辑技术,可以在不同的小鼠品系中引入相同的基因突变,这使得研究人员可以比较不同品系小鼠之间的表型差异。
这种比较可以帮助研究人员更好地理解糖尿病的异质性,并为未来的治疗提供更多的思路。
除了用于研究糖尿病的病理生理机制外,该糖尿病研究模型还可以用于评估新的治疗策略。
研究人员可以使用该模型来测试各种药物对糖尿病的治疗效果,并观察不同药物之间的相互作用。
这些数据可以帮助研究人员更好地了解各种药物的作用机制,并为未来的临床试验提供更多的依据。
该糖尿病研究模型是一种有用的工具,可以帮助研究人员更好地理解糖尿病的病理生理机制,并评估新的治疗策略。
随着基因编辑技术的不断发展,我们相信这种模型将在未来的糖尿病研究中发挥越来越重要的作用。
糖尿病是一种常见的代谢性疾病,全球范围内患病率不断上升。
为了深入探讨糖尿病的发病机制、研究其治疗方法,科学家们纷纷利用动物模型来模拟人类糖尿病。
本文将介绍常见的糖尿病动物模型、近年来的研究进展以及未来可能的研究方向。
自发糖尿病模型是指动物在自然条件下自发出现的糖尿病。
例如,BB/Wor糖尿病易感大鼠是一种常见的自发糖尿病动物模型,具有血糖波动大、并发症多等特点,被广泛应用于糖尿病并发症、药物筛选等方面的研究。
糖尿病动物模型一.【关键词】糖尿病动物模型目前公认糖尿病不是唯一病因的疾病,而是复合病因的综合征,与遗传、自身免疫及环境因素有关糖尿病是由多种病因引起以慢性高血糖为特征的代谢紊乱。
糖尿病的病因尚未被完全阐明。
近年来,由于糖尿病的发病率上升,防治糖尿病已成为科学工作者的一个重要课题。
故合适的糖尿病模型是人类研究糖尿病的重要手段。
糖尿病分为:Ⅰ型糖尿病、Ⅱ型糖尿病和其它特异性糖尿病。
Ⅰ型糖尿病即胰岛β细胞破坏约占糖尿病的10%以下,常导致胰岛素绝对性缺乏,以往称为胰岛素依赖型糖尿病、青年发病型糖尿病,本型病因及发病是由于胰岛β细胞受到细胞介导性自身免疫性破坏。
Ⅱ型糖尿病由于胰岛素抵抗并胰岛素分泌不足所致约占糖尿病的90%以上,以往称为非胰岛素依赖型糖尿病、成年发病型糖尿病,常伴有明显的遗传因素,但遗传机制尚未阐明。
其它特异性糖尿病包括,β细胞功能的基因缺陷、胰岛素作用的基因缺陷、胰腺外分泌疾病、内分泌疾病、药物或化敏学制剂所致的糖尿病、感染、非常见型免疫介导性糖尿病以及有时并发糖尿病的其它遗传综合症。
下面我将按照糖尿病的分型,介绍相应的糖尿病动物模型。
二、Ⅰ型糖尿病动物模型的建立(一)手术方法(胰腺切除法)是最早的糖尿病动物模型复制方法。
1890年,Mehring和Minkowski报道,在切除狗胰腺后,出现多尿、多饮、多食和严重的糖尿现象。
一般选用较大的实验动物,如狗和家兔等,其次用大鼠。
全部切除胰腺,可制成无胰性糖尿病动物模型,需补充外源性胰酶。
全部切除胰腺,除可引起高血糖外,并可致酮症酸中毒和死亡,故一般主张切除75%~90%的胰。
(二)化学药物特异性破坏胰岛β细胞四氧嘧啶诱发糖尿病模型1[造模原理.]四氧嘧啶(alloxan)四氧嘧啶产生超氧自由基而破坏β细胞,导致胰岛素合成减少,胰岛素缺乏。
其作用可能与干扰锌的代谢有关。
豚鼠具有抗药性。
四氧嘧啶引起的血糖反应分三个时相,开始血糖升高,持续约2h,继而因β细胞残存的胰岛素释放引起低血糖约6h,12h后开始持久的高血糖。
2【实验动物】成年小鼠,成年大鼠,小型猪,家兔,均以雄性为佳。
3【主要试剂】四氧嘧啶,用注射用水或生理盐水新鲜配制成1%~3%4【造模评价】用四氧嘧啶诱发的糖尿病模型类似人类Ⅰ型糖尿病,方法简单,成模率高,但是具有刺激胰岛素分泌的药物及胰岛素增敏作用的药物在此模型无降低血糖作用,造模死亡率较高,同时也致肝、肾组织中毒性损害,部分动物高血糖自然缓解。
链脲佐菌素诱发大小鼠动物模型1[造模原理]链脲佐菌素(streptozotocin,SZT)链脲佐菌素能够选择性损伤胰岛β细胞,引起实验性糖尿病。
给猴、狗、大鼠和小鼠等注射链脲佐菌素后,血糖水平的改变也可分为三个时相:①早期高血糖相,持续约1~2小时,乃此药抑制胰岛释放所致;②低血糖相,持续约6~10小时,可能是由于胰岛β细胞破坏,大量胰岛素释放,是血糖显著降低;③24小时后出现稳定的高血糖相即糖尿病阶段,此时大部分胰岛β细胞已呈现不同程度的损伤和破坏。
与四氧嘧啶糖尿病不同,链脲佐菌素引起的糖尿病高血糖反应及酮症均较缓和。
【模型评价】1.SZT诱发的糖尿病动物模型类似人类Ⅰ型糖尿病,STZ对一定种属胰岛β细胞选择性的破坏,可使许多动物产生糖尿病。
由于其对组织毒性较小,动物存活率高,是目前国内外应用最多的糖尿病动物模型(三)其他动物模型(一)病毒诱导方法柯萨奇病毒(Coxsackie virus)多感染儿童,主要经肠道传播,引发胰腺炎,导致淋巴细胞浸润,β细胞坏死,可使新生的小白鼠、田鼠等致病,对成年鼠不致病。
选用DBA2雌性小鼠,皮下接种脑炎、心肌炎病毒M型变异株,4~7d后出现明显的高血糖,伴有血中及胰腺中胰岛素含量降低。
其高血糖为特发性,伴有明显低胰岛素血症。
在某些小鼠中可自然缓解,但糖耐量异常及高血糖在恢复期中仍将存在。
【造模评价】操作不便,成模率不高但时间短(二)自发性Ⅰ型糖尿病动物模型自发性动物模型(spontaneous diabetes animal model)是动物自然发生的疾病,与人类某种疾病有相似之处,或通过遗传育种培养而保留下来的疾病动物。
1.NOD小鼠(nonobese diabetes mouse)是JCL -ICR品系小鼠衍生的CTS(白内障易感亚系)糖尿病小鼠近亲杂交而来,其发病多突然,表现明显多饮、多尿、消瘦,血糖显著升高,不用胰岛素治疗,动物存活不了一个月,通常死于酮血症。
NOD小鼠是自发性自身免疫I型糖尿病的一个很好的模型,是由T -细胞(包括CD4和CD8细胞)介导的,其发展受控于一系列T细胞的调节。
β细胞损伤继发于自身免疫过程,引起低胰岛素血症。
免疫调节剂,可溶性白介秦1受体,可溶性TNF受体p55,高果糖饮食等可预防NOD小鼠糖尿病发作。
NOD小鼠的糖尿病发病率与性别有关,雌性鼠发病率显著高于雄性鼠且发病早。
2.BB糖尿病大鼠是从Wistar大鼠中筛选出来的一种自发性,遗传性C型糖尿病动物模型。
其发病和自身免疫性毁坏胰腺β细胞引发胰腺炎及胰岛素缺乏有关。
大鼠糖尿病发作是突然的,大约在60~120日龄时发病,数天后,糖尿病动物出现严重的高血糖,低胰岛素和酮血症。
免疫抑制剂,将新生鼠胸腺切除等可预防糖尿病的发生,说明自身免疫参与发病。
由于BB鼠能模拟人类Ⅰ型糖尿病的自然发病、病程发展和转归,且没有外来因素的参与和干扰,是一种十分理想的Ⅰ型糖尿病动物模型。
3【造模评价】自发性糖尿病多数需从国外引进,价格昂贵,饲养和繁殖条件要求高,目前国内较少使用(三)转基因Ⅰ型糖尿病模型动物研究者按照自己的意愿,借助于实验手段来控制实验动物的特定基因组分及其表达等,而使动物表现特有的遗传性状,此称之为转基因技术,运用此技术干预的动物称为转基因动物。
已运用基因转移技术证实动物发生Ⅰ型糖尿病与MHC基因异常、病毒感染、T细胞介导胰岛β细胞损伤等有关。
关于Ⅰ型糖尿病的转基因动物模型已有报道【造模评价】操作繁琐,且基因表达不通一。
三.Ⅱ型糖尿病模型(一)小剂量SZT加高脂高糖饮食大鼠模型1.【造模原理】给大鼠注射小剂量SZT,造成胰岛B细胞轻度损伤,可使许多动物产生糖尿病。
在此基础上给动物喂饲高热量食物,引起动物肥胖,同时伴有高血脂、高胰岛素血症及胰岛素抵抗。
(二)高糖高脂饮食加小剂量SZT大鼠模型1.【造模原理】先给动物喂饲高糖高脂食物,诱发胰岛素抵抗,再腹腔注射小剂量SZT,造成胰岛B细胞轻度损伤,诱发胰岛素代偿性分泌异常,使动物产生高血糖。
2.【造模评价】本模型具有中度高血糖,高血脂,高血压,血胰岛素不低,胰岛素抵抗,成功率高等特点,是研究Ⅱ型糖尿病血管并发症的理想模型。
而且实验周期短,费用低。
(三)催肥所致Ⅱ型糖尿病动物模型给动物注射金硫葡萄糖或穿刺动物第三脑室底部可选择性破坏下丘脑腹内侧核的饱食中枢,使动物产生贪食和肥胖,继之高血糖、高胰岛素血症和胰岛素抵抗(IR)。
但大多数动物无高血糖,而且注射金硫葡萄糖的剂量要接近半数致死量,动物死亡率高,其形成率仅为30%。
(四)自发性Ⅱ型糖尿病动物模型1.KK小鼠是一种轻度肥胖型Ⅱ型糖尿病动物。
后与C57BL/6J小鼠杂交,并进行近亲繁殖,得Toronto(T-kk)小鼠。
将黄色肥胖基因(即Ay)转至KK小鼠,得KK-Ay鼠,与KK 小鼠相比,有明显的肥胖和糖尿病症状。
从5周龄起,血糖、血循环中的胰岛素水平以及HbA1c水平逐步升高。
β细胞有脱颗粒和糖原浸润,随后出现胰岛肥大和中心气泡。
肝脂肪化和脂肪组织增多。
脂肪组织的胰岛素敏感性降低比KK小鼠明显,且到16周龄时完全丧失。
肾脏病变发生早,发展迅速,肾小球基底膜增厚。
用KK-Ay鼠可评价抗糖尿病药物的胰腺外作用。
2.ob/ob小鼠Ⅱ型糖尿病动物模型,属常染色体隐性遗传。
纯合体动物表现为肥胖,高血糖及高胰岛素血症。
症状的轻重取决于遗传背景, ob/ob小鼠(obesemouse)与C57BL/KsJ交配的子代症状严重,而ob/ob与C57BL/6J交配的子代症状则较轻,后者是杂合体。
ob/ob小鼠leptin(ob基因产物)缺乏,引起肝脂肪生成和肝糖原异生,高血糖又刺激胰岛素分泌,引起胰岛素抵抗的恶性循环。
糖尿病ob/ob小鼠肝PPARγ2表达水平升高与胰岛素抵抗有关,可能作为一种补偿机制,试图保持胰岛素的敏感性。
3. db/db小鼠db/db小鼠(diabetes mouse)由C57BL/KsJ近亲交配株常染色体隐性遗传衍化而来,属Ⅱ型糖尿病模型。
动物在一个月时开始贪食及发胖,继而产生高血糖、高血胰岛素,胰高血糖素也升高。
一般在10个月内死亡。
糖尿病小鼠(C57BL/6Jdb/db)发生严重的糖尿病症状,类似C57BL/KsJ ob/ob小鼠,即早发的高胰岛素血症,体重下降和早死。
db/db小鼠与ob/ob小鼠不同,可发生明显的肾病。
4.NSY小鼠NSY(Nagoya- Shibata- Y asuda)小鼠是一近交系自发性糖尿病模型,是从远交JCL CR小鼠中选择糖耐量异常株培育而成的。
其糖尿病发生具有年龄依赖性。
24周龄时胰岛素分泌功能严重受损,48周的累积发病率雄性为98%,雌性为31%。
此鼠在任何年龄阶段都不表现严重肥胖和显著的高胰岛素血症,胰岛也无肿大或炎性变化。
胰岛β细胞分泌胰岛素功能受损和胰岛素抵抗可能是NSY小鼠发生NIDDM的机制,与人的NIDDM发病机理相似。
5. Zucker fa/fa大鼠是典型的高胰岛素血症肥胖模型。
隐性基因名称为fa,动物有轻度糖耐量异常,高胰岛素血症和外周胰岛素抵抗,无酮症表现,类似人的非胰岛素依赖型糖尿病,血糖正常或轻度升高。
用Zucker糖尿病肥胖大鼠证明胰岛素敏感性与IMCL(intramyo- cellular lipid)含量负相关。
6.黑线仓鼠(Cricetulusbarabensis)俗称中国地鼠(Chinesehamster),原为我国黄河以北一些省份的优势鼠种。
美国Meier和Y erganian将黑线仓鼠通过近亲繁殖获得近交系,具有自发性、遗传性糖尿病的特点。
这种动物模型为非肥胖型,以中轻度高血糖为特征,血清胰岛素表现多样,胰岛病变程度不一,类似于人类的Ⅱ型糖尿病。
7.GK大鼠(Goto-KakisakiWistarrat)GK大鼠也是一种自发的Ⅱ型糖尿病鼠种,其病理生理特点是:葡萄糖刺激的胰岛素分泌受损,β细胞数目减少,肝糖生成过多,肌肉和脂肪组织中度胰岛素抵抗。
8.【造模评价】自发性2型糖尿病动物多数肥胖,有明显的高胰岛素血症,类似2型糖尿病的特点。
这类动物来源较少,饲养和繁殖条件要求高,价格昂贵,限制了应用。
四、检测指标(一)一般性指标糖尿病时会导致动物摄食量、饮水量增加和血清葡萄糖、胆固醇、甘油三酯、游离脂肪酸、糖化血红蛋白、乳酸分泌增高,而血清胰岛素、红细胞胰岛素受体最大亲和力、糖耐量降低。