淀粉提取和测定实验
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实验粮食中淀粉含量的测定一、实验目的掌握粮食中淀粉含量测定的原理、试剂、仪器设备及操作要点。
二、实验原理试样经除去脂肪及可溶性糖类后,其中淀粉用淀粉酶水解成二糖,再用盐酸水解成具有还原性的单糖,最后按还原糖测定,并折算成淀粉含量。
三、实验试剂1.淀粉酶溶液:称取α-淀粉酶0.5g,加100mL水溶解,加入数滴甲苯或三氯甲烷,防止长霉。
2.碘溶液:称取3.6g碘化钾溶于20mL水中,加入1.3g碘,溶解后加水稀释至100mL。
3.85%乙醇。
4.6mol/L盐酸:取盐酸50mL加水至100mL。
5.200g/L氢氧化钠溶液。
6.甲基红指示液:称取0.1g甲基红用95%乙醇溶液定容至100mL。
7.乙醚。
8.蒸馏水。
四、仪器设备1、粉碎磨:40目筛。
2、天平:分度值0.01g。
3、锥形瓶:250mL。
4、回流冷凝装置:与250mL锥形瓶匹配。
5、容量瓶:250mL。
6、抽滤装置。
7、恒温水浴锅。
五、操作步骤待测样品,用粉碎磨粉碎至全部通过40目筛,充分混合,保存备用。
试样水分含量的测定:105℃烘干至恒重,计算。
1、称取试样约2~5g(精确至0.01g),置于放有滤纸的漏斗内,先用50mL 乙醚分5次洗涤去除脂肪,再用约100mL乙醇洗涤除去可溶性糖类,将残留物移入250mL烧杯,并用50mL水洗滤纸及漏斗,洗液并入烧杯内。
2、将烧杯置于沸水浴加热15min,使淀粉糊化。
3、将糊化的试样,放置冷却至60℃以下,加20mL α-淀粉酶溶液,在恒温水浴锅中55~60℃保温水解1h,并经常搅拌。
4、取酶解液1滴加1滴碘溶液,应不显蓝色,否则再加热糊化并加适量酶溶液,继续保温,直至加碘不显蓝色为止。
5、将酶解液加热至沸,冷却后移入250mL容量瓶加水定容至刻度,混匀,过滤,弃去初滤液。
6、取50mL滤液,置于250mL锥形瓶中,加5mL盐酸,装上回流冷凝管,在沸水浴中回流1h。
冷却后加2滴甲基红指示液,用氢氧化钠溶液中和至中性,溶液转入100mL容量瓶,洗涤锥形瓶,洗液并入100mL容量瓶中,加水定容至刻度,混匀备用。
增大字体淀粉的测定方法(2)二、酸水解法1.原理样品经除去脂肪及可溶性糖类后,其中淀粉用酸水解成具有还原性的单糖,然后按还原糖测定,折算成淀粉。
2.适用范围本法适用于含淀粉的食物3.仪器(1)水浴锅。
(2)高速组织捣碎机:1200 rpm。
(3)皂化装置并附250 ml锥形瓶。
4.试剂除特殊说明外,实验用水为蒸馏水,试剂为分析纯。
(1)乙醚。
(2)85%乙醇溶液。
(3)6mol/L盐酸溶液。
(4)10mol/L氢氧化钠溶液。
(5) 2.5mol/L氢氧化钠溶液。
(6)甲基红指示液:0.2 %乙醇溶液。
(7)精密pH试纸。
(8)20 % 乙酸铅溶液,(9)10 % 硫酸钠溶液。
(10)其余试剂同还原糖的测定。
5.操作方法5.1样品处理5.1.1粮食、豆类、糕点、饼干等较干燥的样品:称取2.0~5.0 g磨碎过40目筛的样品,置于放有慢速滤纸的漏斗中,用30 ml乙醚分三次洗去样品中脂肪,弃去乙醚。
再用150 ml 85 %乙醇溶液分数次洗涤残渣,除去可溶性糖类物质。
并滤干乙醇溶液,以100 ml水洗涤漏斗中残渣并转移至250ml锥形瓶中,加入30 ml 6 mol/L盐酸,接好冷凝管,置沸水浴中回流2 h。
回流完毕后,立即置流水中冷却。
待样品水解冷却后,加入2滴甲基红指示剂,先以40 %氢氧化钠溶液调至黄色,再以6 mol/L盐酸校正至水解液刚变红色为宜。
若水解液颜色较深,可用精密pH试纸测试,使样品水解液的pH约为7。
然后加20 ml 20 %乙酸铅溶液,摇匀,放置10 min。
再加20 ml 10 %硫酸钠溶液,以除去过量的铅。
摇匀后将全部溶液及残渣转入500 ml容量瓶中,用水洗涤锥形瓶,洗液合并于容量瓶中,加水稀释至刻度。
过滤,弃去初滤液2 0 ml,滤液供测定用。
5.1.2蔬菜、水果、各种粮豆含水熟食制品:按1:1加水在组织捣碎机种捣成匀浆(蔬菜、水果需先洗净、凉干,取可食部分)。
称取5~10 g匀浆(液体样品可直接量取),于250 ml锥形瓶中,加30 ml乙醚振摇提取(除去样品中脂肪),用滤液过滤去除乙醚,再用30 ml乙醚淋洗两次,弃去乙醚。
碘量法测定淀粉含量实验报告实验六:碘-淀粉比色法测淀粉含量一、实验原理对于淀粉含量较少的植株样品,也可采用碘–淀粉比色法。
淀粉在加热情况下能溶于硝酸钙溶液中,当碘化钾和硝酸钙共存时,碘能以碘–淀粉蓝色化合物沉淀全部淀粉。
将此沉淀溶于碱液,并在酸性条件下与碘作用形成蓝色溶液进行比色。
二、试剂1.0%硝酸钙溶液。
2.0.5%碘液:称5.00g结晶碘和10.00g 碘化钾,放入研钵混合干研,然后加10mL蒸馏水研至全部碘溶解,将溶液全部转入1000mL容量瓶定容后,贮于磨口试剂瓶。
3.5%含碘硝酸钙溶液:取10mL 0%的硝酸钙溶液,加入160mL水再加入3mL 0.5%的碘液混匀,现用现配。
4.标准淀粉溶液:称取纯淀粉50mg于研钵中,加3mL 0%硝酸钙溶液,研细并转移到100mL的三角瓶中,用15mL 0%的硝酸钙溶液冲洗研钵,无损地收集于三角瓶中。
将三角瓶置于沸水浴中煮沸5min,冷却后全部转入50mL容量瓶中并定容。
此液为1mg/mL的淀粉标准液。
5.0.1mol/L NaOH。
6.0.1mol/L HCl。
三、材料与方法绘制标准曲线取标准淀粉溶液:取7支管,编号,按下表顺序加入各试剂,混匀静置15min后离心,其他操作同样品测定步骤,显色后在590nm波长下测定光密度。
以光密度为横坐标,淀粉含量为纵坐标绘制标准曲线。
管号 1 2 3 4 5 6 7 标准淀粉溶液(ml) 0 0.5 1.0 2.0 3.0 4.0 5.0 0%硝酸钙溶液(ml) 5.0 4..0 2.0 1.0 0 0.5%碘液(ml) 2 每管淀粉含量(mg) 0 0.5 1.0 2.0 3.0 4.0 5.0 称取1~3g叶片,剪碎放入研钵,加5mL 0%的硝酸钙溶液,研磨成糊状移入100mL的三角瓶中,用10mL 0%的硝酸钙冲洗研钵,无损地收集于三角瓶中,瓶口盖上小漏斗,在沸水浴上煮沸3~5min(叶片含淀粉少的3min,含淀粉多的5min),使样品中淀粉转变为胶体溶液。
化学化工与生命科学系《食品分析》实验设计实验题目:小麦中淀粉的测定姓名:***学号:***专业:***指导老师:***2012年1月1日一、实验名称:小麦中淀粉的测定二、实验原理:1.淀粉具有旋光性,在一定条件下旋光度的大小与淀粉的浓度成正比。
用氯化钙溶液提取淀粉,使之与其他成分分离用氯化锡沉淀提取液中的蛋白质后,测定旋光度,即可计算出淀粉含量。
计算公式如下:淀粉含量=m ×203×100×L α×100(%) 式中:α—旋光度读数,(º);L —观测管长度,dm ;m —样品质量,g ;203—淀粉比旋光度,(º)。
2.氯化钙溶液作为淀粉的提取剂,是因为钙能与淀粉分子上的羟基形成络合物,使淀粉与水有较高的亲和力而易溶于水中。
三、实验仪器与试剂:1.仪器 旋光仪、烧杯、玻璃棒、捣碎机、电子天平2.试剂 小麦、氯化钙溶液、氯化锡溶液、小麦四、实验步骤:1.用电子天平称取小麦10g ,用捣碎机磨成粉;2.将小麦粉置于烧杯中,加入适量蒸馏水搅拌;3.将小麦溶液中加入一定量的氯化钙溶液,充分搅拌;4.再在上述溶液中加入一定量的氯化锡溶液,充分搅拌,以沉淀蛋白质,避免蛋白质对淀粉测定的干扰5.上述溶液过滤,用旋光仪测溶液旋光度。
6.记录实验数据,收拾实验器材。
五、实验结果利用公式: 淀粉=m×203×100×L α×100(%) 式中: α—旋光度读数,(º);L —观测管长度,dm ;m —样品质量,g ;203—淀粉比旋光度,(º)。
六、说明与注意事项1.本法适用于不同来源的淀粉,具有重现性好、操作简便、快速等特点。
由于淀粉的比旋光度大,直链淀粉和支链淀粉的比旋光度又很接近,因此本法对于可溶性糖类含量不高的谷物样品具有较高的准确度。
2.蛋白质也具有旋光性,为消除其干扰,本法加入氯化锡溶液,以沉淀蛋白质。
实验四 玉米粉中淀粉含量的测定(旋光计法)二、实验原理淀粉具有旋光性,在一定条件下旋光度的大小与淀粉的浓度成正比。
用氯化钙溶液提取淀粉,使之与其他成分分离,用氯化锡沉淀提取液中的蛋白质后,测定旋光度,即可计算出淀粉含量。
四、操作方法1.把样品研磨并通过40目以上的标准筛,称取2g 样品,置于250ml 烧杯中。
2.加水10m1,搅拌使样品湿润,加入70ml 氯化钙溶液,盖上表面皿,在5min 内加热至沸并继续加热15min 。
加热时随时搅拌以防样品附在烧杯壁上。
如泡沫过多可加1~2滴辛醇消泡。
3.迅速冷却后,移入l00ml 容量瓶中,用氯化钙溶液洗涤烧杯上附着的样品,洗液并入容量瓶中。
4.加5mI 氯化锡镕液,用氯化钙溶液定容到刻度,混匀,过滤,弃去初滤液,收集滤液装入旋光管中,并于旋光计中测定样品溶液旋光度。
五、计算 100m 203L 100(%)⨯⨯⨯⨯=α淀粉式中:α——旋光度读数,度;L ——观测管长度,dm ;M ——样品质量,g203——淀粉的比旋光度,度六、说明1.氯化钙溶液可以作为淀粉的提取剂,是因为钙能与淀粉分子上的羧基形成络合物,使淀粉与水有较高的亲合力而易溶于水中。
2.淀粉溶液加热后,必须迅速冷却,以防止淀粉老化,形成高度晶化的不溶性淀粉分子微束。
3.氯化锡溶液的作用是沉淀蛋白质,因为蛋白质也具有旋光性(左旋性)。
蛋白质含量较高的样品,如高蛋白营养米粉,用旋光法测定时结果偏低,误差较大。
思考题:1.样品加盐酸处理时,煮沸时间少于或多于15分钟会对测定结果产生什么影响? 答:因为淀粉水解成葡萄糖才有旋光,控制加热时间是为了水解完全保证测定的准确性。
若煮沸时间少于15min ,淀粉可能水解不完全;如果煮沸时间多于15min ,会发生副反应,产生糊精,也会影响实验结果。
2.为什么过滤时要弃取初始滤液15mL ?答:一是因为本小组在用滤纸做漏斗时未用蒸馏水先弄湿滤纸,直接倒需要过滤的浑浊液,因此会有部分未通过滤纸,直接从滤纸与漏斗的缝隙处流入烧杯;二是为了在滤纸表面形成滤饼层,此样液固体含量较高,适合使用滤饼层过滤,通常,过滤开始阶段得到的是浑浊液,对实验结果会有影响,所以要舍弃前15ml 。
面粉中淀粉含量的测定(实验)引言淀粉是一种重要的碳水化合物,在食品行业中起着重要作用。
面粉是许多食物的基本成分之一,因此了解面粉中淀粉的含量对于食品加工和控制质量至关重要。
本实验旨在通过一种简单的方法来测定面粉中淀粉的含量。
实验原理淀粉是由葡萄糖分子组成的多糖,可以在水中形成胶状物质。
在本实验中,我们将利用碘与淀粉的反应来测定面粉中淀粉的含量。
碘会与淀粉结合形成蓝色或紫色的复合物,在测定过程中可以通过颜色的变化来确定面粉中淀粉的含量。
实验步骤1. 准备工作:- 将所需材料准备齐全,包括面粉样品、碘液、碘化钾溶液和色谱纸。
- 清洁和仪器,确保无杂质干扰。
2. 样品处理:- 将适量的面粉样品称取到中,加入适量的水,搅拌均匀。
- 将搅拌好的面粉糊状物置于过滤纸上,进行滤液处理。
3. 碘液滴定:- 将滤液滴入碘液中,注意搅拌均匀。
- 观察滴入碘液后的颜色变化,直到出现蓝色或紫色。
4. 阳性对照:- 使用已知浓度的淀粉溶液进行阳性对照实验。
- 重复上述步骤,观察滴入碘液后的颜色变化。
5. 数据处理:- 根据颜色的深浅对比,可初步判断面粉样品中淀粉的含量。
结论通过以上实验方法,可以初步测定面粉中淀粉的含量。
颜色变化越深,表示淀粉含量越高。
但由于本实验仅是基于颜色的主观判断,准确度有限。
对于更准确的淀粉含量测定,建议使用更精确的分析方法,如高效液相色谱法或红外光谱法。
参考文献- [1] 周XX, 张XX. 面粉中淀粉含量的测定方法[J]. 食品科学与技术, 20XX, XX(X): XX-XX.- [2] XXX标准委员会. XXXXX: XXXX[S]. 北京: 中国标准出版社, 20XX.。
淀粉的国标测定方法X1= ??????????(A1-A2)×0.9???????????????×100?? (1)m1×?V1?×?V3?×1000V2 100X 2=??????????(A3-A4)×0.9???????????????×?100?……………(?1?)m2×?50? ×?V2?×1000250 100式中: X2--样品中淀粉的含量,%;A3--测定用样品中还原糖的含量。
mg;A4--试剂空白中还原糖的含量,mg;m2--称取样品质量,g;V2--测定用样品处理液的体积,ml。
500--样品液总体积,ml;0.9--还原糖(以葡萄糖计)换算成淀粉的换算系数;(注:酸水解能分解部分半纤维素,形成具有还原力的单糖,如木糖、阿拉伯糖等,可影响分析结果。
为了比较正确地测定食物中淀粉含量,建议采用淀粉酶糖化淀粉,除去不可溶性的残渣后,再用酸水解使之成为葡萄糖,然后测定其含量,最后换算成淀粉。
三、可消化淀粉和抗性淀粉的测定方法(酶-直接法)1.原理样品先在37℃下经α-淀粉酶水解,使可消化淀粉转化成葡萄糖,用80%乙醇提取,未水解的抗性淀粉部分经沸水浴凝胶化后,在淀粉葡萄糖苷酶转化成葡萄糖,用葡萄糖氧化酶法分别测定葡萄糖含量,再换算成可消化淀粉和抗性淀粉含量。
2.适用范围参考Englyst和Champ的方法。
适用于所有含淀粉食物的测定。
3.仪器(1)恒温水浴箱(2)温箱(3)分光光度计4.试剂除特殊说明外,实验用水为蒸馏水,试剂为分析纯。
(1) 0.1mol/L乙酸缓冲液(pH 5.0):称取14.28 g 乙酸钠(CH3COONa·3H2O)溶于水中,加入2.7ml 冰乙酸,并调节pH 5.0,用水定容至1 L。
(2)酶溶液:分别称取4gα-淀粉酶溶液(α-amylase,Sigma公司)、1g淀粉葡萄糖苷酶溶液(amyloglucosidase,Sigma 公司)和0.3g转换酶(invertase,Sigma公司)溶液于研钵中,用 0.1mol/L 乙酸缓冲液研磨制成匀浆,并调节体积为100ml。
淀粉的国标测定方法 IMB standardization office【IMB 5AB- IMBK 08- IMB 2C】淀粉的国标测定方法X1= (A1-A2)××100 (1)m1×V1×V3×1000V2 100X 2=(A3-A4)××100 (1)m2×50×V2×1000250 100式中: X2--样品中淀粉的含量,%;A3--测定用样品中还原糖的含量。
mg;A4--试剂空白中还原糖的含量,mg;m2--称取样品质量,g;V2--测定用样品处理液的体积,ml。
500--样品液总体积,ml;还原糖(以葡萄糖计)换算成淀粉的换算系数;(注:酸水解能分解部分半纤维素,形成具有还原力的单糖,如木糖、阿拉伯糖等,可影响分析结果。
为了比较正确地测定食物中淀粉含量,建议采用淀粉酶糖化淀粉,除去不可溶性的残渣后,再用酸水解使之成为葡萄糖,然后测定其含量,最后换算成淀粉。
三、可消化淀粉和抗性淀粉的测定方法(酶-直接法)1.原理样品先在37℃下经α-淀粉酶水解,使可消化淀粉转化成葡萄糖,用80%乙醇提取,未水解的抗性淀粉部分经沸水浴凝胶化后,在淀粉葡萄糖苷酶转化成葡萄糖,用葡萄糖氧化酶法分别测定葡萄糖含量,再换算成可消化淀粉和抗性淀粉含量。
2.适用范围参考Englyst和Champ的方法。
适用于所有含淀粉食物的测定。
3.仪器(1)恒温水浴箱(2)温箱(3)分光光度计4.试剂除特殊说明外,实验用水为蒸馏水,试剂为分析纯。
(1) L乙酸缓冲液(pH ):称取 g 乙酸钠(CH3COONa·3H2O)溶于水中,加入冰乙酸,并调节pH ,用水定容至1 L。
(2)酶溶液:分别称取4gα-淀粉酶溶液(α-amylase,Sigma公司)、1g淀粉葡萄糖苷酶溶液(amyloglucosidase,Sigma 公司)和转换酶(invertase,Sigma公司)溶液于研钵中,用 L乙酸缓冲液研磨制成匀浆,并调节体积为100ml。
淀粉的测定方法(1)测定食物中淀粉的方法有酶水解法、酸水解法、可消化淀粉与抗性淀粉的测定方法(酶-直接法)一、酶水解法1、原理样品经除去脂肪及可溶性糖类后,其中淀粉用淀粉酶水解成双糖,再用盐酸将双糖水解成单糖,最后按还原糖测定,并折算成淀粉。
2、适用范围GB5009、9-85,适用于所有含淀粉的食物。
3、仪器(1) 回流冷凝器(2) 水浴锅4、试剂除特殊说明外,实验用水为蒸馏水,试剂为分析纯。
(1) 乙醚(2) 0、5 % 淀粉酶溶液:称取淀粉酶(Sigma公司, E、C3.2.1、1)0、5 g,加100 ml水溶解,加入数滴甲苯或三氯甲烷,防止长霉,贮于冰箱中。
(注:配成溶液的淀粉酶破坏很快,最好邻用现配。
)(3) 碘溶液:称取3、6 g碘化钾溶于20 ml水中,加入1、3 g碘,溶解后加水稀释至100 ml。
(4) 85 %乙醇。
(5) 其余试剂同《蔗糖测定方法》5、操作方法5、1 样品处理称取2~5 g样品,置于放有折叠滤纸的漏斗内,先用50 ml乙醚分5次洗除脂肪(注:如果脂肪含量少,此步骤可免),再用约100 ml 85 %乙醇洗去可溶性糖类(注:此步骤目的就是去除可溶性糖),将残留物移入250 ml烧杯内,并用50 ml水洗滤纸及漏斗,洗液并入烧杯内,将烧杯置沸水浴上加热15 min,使淀粉糊化,放冷至60 ℃以下,加20 ml淀粉酶溶液,再55~60 ℃保温1 h,并时时搅拌(注:温度过高,淀粉酶的活性破坏)。
然后取1滴此液加1滴碘溶液,应不现兰色,若显兰色,再加热糊化并加20 ml淀粉酶溶液,继续保温,直至加碘不显兰色为止。
加热至沸,冷后移入250 ml容量瓶中,并加水至刻度,混匀,过滤。
(注:此时淀粉已水解成双糖,过滤可去除残渣与纤维素)弃去初滤液,取50 ml滤液,置于250 ml锥形瓶中,加5 ml 6 mol/L盐酸,装上回流冷凝器,在沸水浴中回流1 h,冷后加2滴甲基红指示剂,用5mol/L氢氧化钠溶液中与至中性,溶液转入100 ml容量瓶中,洗涤锥形瓶,洗液并入100 ml容量瓶中,加水至刻度,混匀备用。
第1篇一、实验目的1. 掌握山药淀粉的提取方法;2. 了解山药淀粉的纯化过程;3. 分析山药淀粉的物理化学性质。
二、实验原理山药淀粉是一种天然高分子碳水化合物,主要由直链淀粉和支链淀粉组成。
本实验采用酸碱法提取山药淀粉,通过酸碱处理破坏山药细胞壁,使淀粉颗粒释放出来,然后通过离心、洗涤、干燥等步骤纯化淀粉。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:山药、无水乙醇、氢氧化钠、盐酸、蒸馏水、硫酸铵、碘液、氯化钠等。
2. 实验仪器:电子天平、离心机、电热恒温水浴锅、烧杯、漏斗、布氏漏斗、烘箱、显微镜等。
四、实验步骤1. 山药淀粉提取(1)将新鲜山药洗净,去皮,切成小块。
(2)将山药块放入烧杯中,加入适量的蒸馏水,煮沸10分钟。
(3)加入适量的氢氧化钠溶液,使pH值达到10左右。
(4)煮沸10分钟后,加入适量的盐酸溶液,使pH值调整至4.5左右。
(5)煮沸10分钟,取出山药块,用蒸馏水冲洗干净。
(6)将山药块放入离心机中,以3000r/min离心10分钟,收集上清液。
2. 山药淀粉纯化(1)将上清液用漏斗过滤,去除杂质。
(2)将滤液用布氏漏斗过滤,去除固体杂质。
(3)将滤液加入适量的硫酸铵,使沉淀形成。
(4)用离心机以3000r/min离心10分钟,收集沉淀。
(5)将沉淀用蒸馏水洗涤3次,去除杂质。
(6)将洗涤后的沉淀放入烘箱中,以60℃烘干至恒重。
3. 山药淀粉性质分析(1)观察山药淀粉的形态,用显微镜拍摄。
(2)用碘液检测山药淀粉的溶解度。
(3)用氯化钠溶液检测山药淀粉的溶解度。
五、实验结果与分析1. 山药淀粉的形态通过显微镜观察,山药淀粉呈圆形或椭圆形,大小不一,表面光滑。
2. 山药淀粉的溶解度(1)碘液检测:山药淀粉在碘液中呈蓝色,表明其具有良好的溶解度。
(2)氯化钠溶液检测:山药淀粉在氯化钠溶液中溶解度较高,表明其具有良好的溶解性。
六、实验结论1. 通过酸碱法提取山药淀粉,能够有效提取山药中的淀粉。
2. 通过离心、洗涤、干燥等步骤,可以纯化山药淀粉,获得较高的纯度。
一实验目的
本实验的目的在于掌握淀粉酶的提取及活性的测定方法。
二实验原理
植物中的淀粉酶能将贮藏的淀粉水解为麦芽糖。
淀粉酶几乎存在于所有植物中有α-淀粉酶及β-淀粉酶,其活性因植物生长发育时期不同而有所变化,其中以禾谷类种子萌发时淀粉酶活性最强。
α-淀粉酶和β-淀粉酶都各有其一定的特性,如β-淀粉酶不耐热,在高温下容易钝化,而α-淀粉酶不耐酸,在pH3.6以下容易发生钝化。
通常酶提取液中同时存在两种淀粉酶,测定时,可以根据他们的特性分别加以处理,钝化其中之一,即可以测出另一种酶的活性。
将提取液加热到70℃维持15分钟以钝化β-淀粉酶,便可测定α-淀粉酶的活性。
或者将提取液用pH3.6的醋酸在0℃加以处理,钝化α-淀粉酶,以测出β-淀粉酶的活性。
淀粉酶水解淀粉生成的麦芽糖,可用3,5-二硝基水杨酸试剂测定。
由于麦芽糖能将后者还原成3-氨基-5-硝基水杨酸的显色基团,在一定范围内其颜色的深浅与糖的浓度成正比,故可以求出麦芽谈到含量。
以麦芽糖的毫克数表示淀粉酶活性大小。
三实验材料
萌发的小麦、大麦或者豆类等(芽长1cm左右)
四实验仪器和试剂
1.仪器:
电子天平、研钵、100mL容量瓶(1个)、50mL量筒(1个)、刻度试管[25mL (9个)、10mL(1个)]、试管6支、移液管[1mL(2支)、2mL(2支)、10mL (2支)]、离心机、恒温水浴锅、7220型分光光度计
2.试剂:
1%淀粉溶液、0.4mol/LNaOH、
pH5.6的柠檬酸缓冲液:A、称取柠檬酸20.01g,溶解后稀释至1 000mL;B、称取柠檬酸钠29.41g,溶解后稀释至1 000mL;取A液13.70mL与B液26.30mL 混匀即是。
3,5-二硝基水杨酸:精确称取3,5-二硝基水杨酸1g溶于20mL1mol/LNaOH 中,加入50mL蒸馏水,在加入30g酒石酸钾钠,待溶解后用蒸馏水稀释至100mL,进入。
盖紧瓶盖,勿让CO
2
麦芽糖标准液:称取化学纯麦芽糖0.100g溶于少量蒸馏水中仔细移入100mL 容量瓶中,用蒸馏水稀释至刻度。
五操作步骤
1.酶液的提取:
称取萌发的水稻种子0.5g(芽长1cm左右,置于研钵中加石英砂研磨成匀浆,移入25mL刻度试管中,用水稀释至刻度,混匀后在温室下放置,每隔数分钟振荡一次,放置20分钟后离心,取上清液备用。
2.α-淀粉酶活性的测定:
(1)取三支试管,编号注明1支为对照管,2支为测试管。
(2)于每管中各加入酶提取液1mL,在70℃恒温水浴中(水文的变化不应该超过±0.5℃),准确加热15分钟,在此期间β-淀粉酶受热钝化,取出后迅速在自来水中冷却。
(3)在试管中各加入1mLpH5.6的柠檬酸缓冲液。
(4)向对照管中加入4mL0.4mol/LNaOH,摇动2-3分钟,静止2分钟,以钝化酶的活性,再加入1%淀粉2mL。
(5)将测定管置40℃(±0.5℃)恒温水浴中保温15分钟,再加入40℃下预热的1%淀粉溶液2mL,摇匀,立即放入40℃水浴中准确保温15min取出,迅速加入4mL0.4mol/LNaOH,以终止酶的活动,然后准备下一步糖的测定。
3.α-淀粉酶和β-淀粉酶总活性的测定:
取上述酶提取液1mL,放入刻度试管中,用蒸馏水稀释至10mL(稀释程度视酶活性的大小而定)。
混合均匀后,取3支试管,1支为对照管,2支为测定管,各加入稀释的酶液1mL、pH5.6的柠檬酸缓冲液1mL。
以上步骤重复α-淀粉酶测定的第(4)及(5)的操作,同样准备糖的测定。
4.麦芽糖的测定:
(1)标准曲线的制作:
取25mL刻度试管5个编写号分别加入麦芽糖标准液(1mg/mL)0.0、0.5、1.0、1.5、2.0mL,然后于各管加入蒸馏水使溶液为2mL,再各加3,5-二硝基水杨酸试剂2mL,置沸水中准确煮5分钟,取出冷却,用蒸馏水稀释至25mL,混匀。
用7220型分光光度计在520nm的波长下进行比色,记录光密度,以光密度为纵坐标,以麦芽糖含量为横坐标绘制标准曲线。
(2)样品的测定:
取以上各管中酶作用后的溶液及对照管中的溶液各1mL,分别加入25mL刻度管中,再加入1mL的水,3,5-二硝基水杨酸试剂2mL,混匀置沸水中准确煮5分钟,取出冷却,用蒸馏水稀释至25mL,混匀。
用7220型分光光度计在520nm 的波长下进行比色,记录吸光度,从麦芽糖标准曲线中计算出麦芽糖含量,用以表示酶的活性。
六结果计算
A: α-淀粉酶水解淀粉生成的麦芽糖量(mg)
: α-淀粉酶对照管中麦芽糖量(mg)
A
1
B: α+β-淀粉酶共同水解淀粉生成的麦芽糖量(mg)B1: α+β-淀粉酶的对照管中的麦芽糖量(mg)。