大鼠实验的排除标准

大鼠乙醇毒效应检测指标在检测大鼠乙醇毒效应时，通常会关注以下几个主要的指标：1.生理指标：观察大鼠的呼吸频率、心率以及血压等生理指标。

乙醇摄入可能导致这些指标的改变，如呼吸急促、心率不规律或血压波动等。

2.行为指标：通过观察大鼠的日常行为，如饮食、睡眠、运动等，可以评估乙醇对大鼠行为的影响。

乙醇摄入可能导致大鼠的行为改变，如食欲减退、活动减少等。

3.血液生化指标：检测大鼠血液中的生化指标，如血糖、肝功能（如谷丙转氨酶、谷草转氨酶等）、肾功能（如尿素氮、肌酐等）等。

乙醇摄入可能影响这些指标的数值，反映肝肾功能的受损情况。

4.组织病理学检查：对大鼠的重要器官（如肝、肾、脑等）进行组织病理学检查，以观察乙醇对器官结构的影响。

这种检查可以揭示乙醇引起的微观结构变化。

5.基因表达分析：利用基因表达谱芯片技术，检测大鼠在乙醇处理后的基因表达情况。

这有助于了解乙醇对大鼠基因表达的影响，进一步揭示乙醇毒性的分子机制。

6.代谢产物分析：检测大鼠体内乙醇及其代谢产物的含量，如乙醛、乙酸等。

这些代谢产物的含量可以反映大鼠对乙醇的代谢情况，从而评估乙醇的毒性作用。

7.免疫功能评估：评估大鼠的免疫功能，如抗体生成、淋巴细胞活性等。

乙醇摄入可能影响免疫系统的功能，导致免疫力下降。

8.生化指标检测：通过生化分析方法检测大鼠体内的其他相关生化指标，如脂肪酶、淀粉酶、碱性磷酸酶等。

这些指标可以反映大鼠的生理状态，如肝肾功能状况、消化系统功能等。

9.血液流变学分析：检测大鼠的血液流变学参数，如全血黏度、血浆黏度、红细胞变形能力等。

这些参数可以反映大鼠的血液流动性和循环系统状况，可能与乙醇对心血管系统的毒性作用有关。

10.器官功能评估：对大鼠的各个器官功能进行评估，如肝肾功能、心脏功能等。

这可以通过一系列的生理生化指标和病理学检查来实现。

综合以上各项指标的检测结果，可以对大鼠的乙醇毒效应进行全面评估和分析。

需要注意的是，在进行实验设计和实际操作时，应严格遵守动物实验的相关伦理和法律规定，确保实验过程的规范性和科学性。

新事物识别实验（Novel Object Recognition Test，NORT）是一种常用于评估动物（尤其是啮齿类动物如大鼠和小鼠）学习和记忆能力的行为学实验。

该实验基于动物对新奇事物的天然好奇心和探索行为。

以下是进行新事物识别实验时可能需要遵循的一些排除标准：
健康状况：任何显示疾病迹象或异常行为的动物都应被排除。

例如，体重过轻或过重、毛发光泽异常、行动不便等。

先前的经验：如果动物在实验前已经接触过可能的“新事物”，则这些动物可能不适合参与实验，因为它们不会对“新事物”表现出预期的好奇心。

焦虑或过度活跃：一些动物可能表现出高度的焦虑或过度活跃，这可能会影响它们对新事物的探索。

这些动物可能需要被排除或单独分析。

感官缺陷：视觉、嗅觉或其他感官缺陷可能会影响动物对新事物的识别和探索。

因此，有感官缺陷的动物通常会被排除。

年龄：年龄过大或过小的动物可能不适合参与实验，因为它们的认知能力和探索行为可能与成年动物不同。

怀孕或哺乳期：怀孕或哺乳期的动物可能会有不同的行为模式，因此通常会被排除。

药物治疗或遗传操作：近期接受过药物治疗或遗传操作的动物可能会影响实验结果，需要根据具体情况考虑是否排除。

社交因素：在某些情况下，动物的社交状态（如独居或群居）可能会影响其在新事物识别实验中的表现。

学习障碍：已知有学习障碍的动物应被排除，因为它们可能无法正常完成新事物识别任务。

请注意，具体的排除标准可能会根据实验的具体目标、设计和条件而有所不同。

在进行实验之前，最好详细规划并确定合适的排除标准。

实验动物的选择原则及健康状态判断一、实验动物的选择原则在医学研究中首先要从研究目的和实验要求来选择实验动物,其次要考虑是否容易获得、是否经济及容易饲养等因素.实验动物通常应该具备个体间的均一性、遗传性能的稳定性和比较容易获得这三个基本要求。

具体要求如下：1．尽量选用功能、代谢、结构及其他方面与人类相似的实验动物医学研究的最终目的是要解决人类疾病的预防和治疗问题。

因此，应尽量选择那些在功能、代谢、结构诸方面与人类相似的实验动物做实验,利用其与人类某些相近的特征,通过实验观察对人类疾病的过程进行推断和探索。

一般来说，动物的进化阶段愈高，功能、代谢、结构愈复杂，也就愈接近人类。

如灵长类动物是最近似人类的实验动物。

2．选用标准化的实验动物标准化实验动物指遗传背景明确、饲养环境与动物体内的微生物得到控制、符合一定标准的实验动物.只有选用标准化实验动物，而且实验过程也在标准环境中饲养的动物，在实验中才能排除因动物杂交、遗传上的不均质及环境条件的变化所引起的个体反应不一致,排除因动物携带细菌、病毒、寄生虫和潜在疾病的影响，才能便于分析实验结果，减少实验误差，提高科学性和准确性，把所获得的结果与同类研究进行比较、交流，并得到承认.在实验研究中应避免使用随意交配繁殖的动物，根据研究目的选择用遗传学的方法培育出来的近交系、突变系、系统杂交或封闭群动物。

同时应对实验动物进行微生物学控制,发展使用无菌动物、悉生动物或无特定病原体（SPF）动物。

3．选用解剖、生理特点符合实验目和要求的动物进行实验这是保证实验研究成功的关键。

各种实验动物具有某些解剖、生理特点和差别,如选择得恰当，将使实验的操作难度降低，实验容易成功.4．选用不同种系的动物的某些特殊反应，使适合于不同研究目的的需要不同种系实验动物对同一因素的反应虽然有相似的地方，但往往程度不一样，有些甚至还会出现特殊反应。

实验研究中常选用那些对实验因素最敏感的动物作为实验对象。

有助于维持血压健康水平功能检验方法1 动物实验1.1 实验原理以受试样品给予自发高血压大鼠动物模型或通过实验方法造成的高血压动物模型，观察受试样品对高血压动物模型的血压、心率等指标的影响，评价受试样品的降血压作用。

1.2 测定方法血压、心率的测定采用间接测压法，仪器的测压原理一般为尾脉搏法。

1.3 实验内容1.3.1 试验项目1.3.1.1 一般情况观察：体重，生长状况1.3.1.2 血压、心率1.3.2实验动物推荐用大鼠，首选自发高血压大鼠（SHR），SHR宜选用10-12周龄，体重180－220克，雌雄可以兼用，其次为肾血管型高血压大鼠。

每组8－12只。

正常动物选择Wistar、SD大鼠等。

1.3.3 剂量分组及受试样品给予时间实验设三个剂量组和一个阴性对照组，以人体推荐量的5倍为其中的一个剂量组，另设二个剂量组，同时设给予受试样品高剂量的正常动物组。

必要时设阳性对照组。

受试样品给予时间30天，必要时可延长至45天。

1.4 实验方法1.4.1 肾血管型高血压大鼠模型制备肾血管型高血压大鼠需手术制备，常用两肾一夹型。

术中选用内径为0.20-0.25mm的银夹，放置于左肾动脉尽量靠近主动脉处。

30天后，选用血压≥21.3kPa（160mmHg）且较稳定者，也可根据情况选用血压较术前升高4KPa者。

1.4.2 血压、心率测定的具体方法实验前一周对受试动物进行多次血压测量，使其适应测压环境。

依据测压仪器的要求进行动物清醒、安静状态下的血压、心率的测定。

实验开始后每周测压1-2次。

停止给予受试样品之后，一般继续观察直至血压恢复至对照组水平或继续观察7－14天。

1.4.3正常动物选健康成年动物按1.4.2测定血压、心率。

1.5 数据处理和结果判定：血压测定为计量资料，采用方差分析，但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验，方差齐，计算F值，F值<F0.05，结论：各组均数间差异无显著性；F值≥F0.05，P≤0.05，用多个实验组和一个对照组间均数的两两比较方法进行统计；对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换，待满足正态或方差齐要求后，用转换后的数据进行统计；若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的，改用秩和检验进行统计。

动物实验的一般规则一、依据实验目的要求，如病毒LD50、LD100、ID50等、细菌毒力测定、免疫效力试验、免疫血清制备等，选择不同种类、品系及不同饲养管理条件下的实验动物式实验用动物。

常用的实验（用）动物包括小白鼠、大白鼠、豚鼠、绵羊、山羊、小香猪、他猪八戒、家兔、鸡、鸭、鹅等十几种。

其中部分动物又有自然繁殖、近交系等、SPF 与非SPF等区分。

二、依据动物骒病原体的敏感性或骒接种物的应答性不同，确定选用动物的年龄、性别，特别是使用动物的数量。

四、不同实验研究类型所要求的动物数量不相同，现简述如下：（一）现况研究（Cross-sectional study）的一般样本大小可用下列公式计算：S．E．=PQ/NS．E．=标准误，P=某病的现患率或感染率，Q=1-P，N为样本大小。

根据上述公式，可得到下列简便公式。

1、若容许误差d=0.10P,95%可信水平t=2样本的感染率P与总体感染P之间有差异d。

P-p=+（-）d=+（-）txS.E,S.E.=d/t.0.05水平,自由度为无限大时,t值约为2.P.Q P.Q t（2）PQN=————=——————=——————(S.E.)（2）(d/t)（2）d（2）令d=0.1P2（）PQ 4PQ QN=————————=————————=400X——（0.1P）() 0.02P() P2、若容许误差d=0.15P,则QN=178X——P3、若容许误差d=0.20P,则N=100XQ/P4、抽样调查肿瘤或其它发病率很低的疾病时，样本大小可参考Poisson分布期望可信限表。

（二）病例对照研究（case-control study），又称回顾性研究（retrospective studies），研究样本大小可按下列分式计算。

N=————————————Ka与Kb分别为a与b时正态分位数。

可以队表中查得。

P1和P2分别为估计对照组与病例组有暴露史的比例。

Q1=1-P1，Q2=1-P2P=（P1+P2）/2，Q=1-P另，病例的暴露史可用下列公式估计：P2=（ORXP1）/（1-P1+ORXP1）OR为比值比。

动物试验规范根据实验动物微生物控制标准，可将实验动物分为四级：一级普通动物（CV），系指微生物不受特殊控制的一般动物。

要求排除人兽共患病的病原体和积少数的实验动物烈性传染病的病原体。

为防止传染病，在实验动物饲养和繁殖时，要采取一定的措施，应保证其用于测试的结果具有反应的重现性（即无论不同的操作人员，在不同的时间，用同一品系的动物按规定的实验规程所做的实验，都能获得几乎相同的结果）。

二级清洁动物（CL），要求排除人兽共患病及动物主要传染病的病原体。

三级无特殊病原体动物（SPF），要求到二级外，还要排除一些规定的病原体。

其除菌与灭菌的方法，可使用高效空气过滤器除菌法、紫外线灭菌法、三甘醇蒸气喷雾法及氯化锂水溶液喷雾法。

四级无菌动物（GF）或悉生动物（GN）。

无菌动物要求不带有任何用现有方法可检出的微生物。

悉生动物要求在无菌动物体上植入一种或数种已知的微生物。

在病理学检查上，四类实验动物也有不同的病理检查标准。

一级外观健康，主要器官不应有病灶。

二级除一级指标外，显微镜检查无二级微生物病原的病变。

三级无特殊病原体动物。

无二、三级微生物病原的病变。

四级不含二、三级微生物病原的病变，脾、淋巴结是无菌动物组织学结构。

综合上述，对不同级别的实验动物在动物房设计上和管理上则有不同的要求。

无菌、已知菌以及无特殊病原体动物都需要在无菌或尽可能无菌的环境里饲养，这种环境，目前国际上通用称为屏障环境，即用一道屏障把动物与周围污染的环境隔开，就如胎鼠在母鼠子宫内一样。

这种环境从控制微生物的角度分为隔离系统、屏障系统、半屏障系统、开放系统和层流架系统等五大类。

A隔离系统是在带有操作手套的容器中饲养动物的系统，用于饲养无菌动物和栖生动物。

内部保持按微生物要求的100级的洁净度，但其设置的房间及操作人员不必按无菌室考虑。

B屏障系统把10000~100000级左右的无菌洁净室作为饲养室，主要用于无特殊病原体动物的长期饲养和繁殖。

入室施行严格管理，如淋浴、换贴身衣服等。

入组标准和排除标准的区别在医学研究和临床试验中，入组标准和排除标准是非常重要的概念。

它们用于确定研究对象的选择范围，以确保研究结果的准确性和可靠性。

入组标准和排除标准的区别对于研究设计和结果的解释都具有重要意义。

首先，入组标准是指符合某项研究的条件，可以被纳入研究对象的特定范围。

这些标准通常是根据研究目的和假设来确定的，包括年龄、性别、疾病严重程度、症状等方面的要求。

例如，某项药物临床试验的入组标准可能要求参与者年龄在18岁到65岁之间，患有特定类型的疾病，并且病情处于一定的严重程度。

与入组标准相对应的是排除标准，它是指不符合某项研究条件的个体，应当被排除在研究对象之外。

排除标准的设定同样是基于研究目的和假设，旨在排除可能影响研究结果的因素。

例如，某项心脏病药物研究可能会排除那些有严重肝功能损伤的患者，因为这可能会影响药物的代谢和排泄。

入组标准和排除标准的区别在于，前者是确定研究对象的条件，而后者是排除不符合条件的个体。

它们共同作用于研究对象的选择过程，确保研究结果的可靠性和推广性。

在研究设计阶段，研究者需要仔细考虑和确定入组标准和排除标准，以确保研究的科学性和有效性。

另外，入组标准和排除标准的设定也需要考虑到研究对象的安全和伦理问题。

研究者需要权衡研究的科学目的和个体的权益，确保研究过程中不会对参与者造成不必要的风险和伤害。

因此，在确定入组标准和排除标准时，研究者需要参考相关的伦理准则和法律法规，确保研究的合法性和道德性。

总之，入组标准和排除标准在医学研究和临床试验中具有重要作用，它们是确定研究对象的条件和范围，确保研究结果的准确性和可靠性。

研究者需要在研究设计阶段仔细考虑和确定入组标准和排除标准，同时需要兼顾研究的科学目的和个体的权益，确保研究过程的安全和伦理性。

解热实验1)脂多糖LPS腹腔致热法：1.sD大鼠，雄性，体重1 8 0～22 09，大鼠每日测量体温(肛温)2次，连续3日，做适应性训练。

实验前12h禁食不禁水。

实验前连续测定两次体温，间隔30min，取两次体温的平均值记为基础体温(T。

)。

将单次体温超过38℃或2次温差超过0．5℃的大鼠剔除。

将符合要求的大鼠称取重量后随机分为5组，每组 10只，即正常对照组、模型对照组、大青龙汤组，有效部位组方低剂量组、有效部位组方高剂量组。

正常对照组及模型对照组灌胃给予蒸馏水，其他各组灌胃给药。

给药后1h正常对照组腹腔注射氯化钠注射液，其他各组腹腔注射LPS(20ug/kg)造模，诱发动物发热。

造模后1h开始测体温(Ti)，连续监测7h，间隔时间1h。

计算△T(△T=Ti-TO)，以时间为横坐标，△T为纵坐标，绘制体温变化(A T-Time)曲线。

数据用均数±标准差(x±S)表示，多组间比较采用t检验，以SPSS l 7．0统计软件处理。

表1某汤药效部位组方对内毒素致大鼠发热的影响组别T1 T2 T3 T4正常组模型组汤剂高剂量组汤剂低剂量组解热部位组方高剂量组解热部位组方低剂量组2.ip LPS(20 II g／kg)复制大鼠发热模型，筛选出48只合格发热模型大鼠，雌雄各半，随机分成5组，各组ig给药，试验药物低、中、高剂量组分别为14mg／kg相当于生药I．0279／kg)，28mg／kg(相当于生药2．0549／kg)，56mg／kg(相当于生药4．1089／kg)：阳性对照组为阿司匹林200mg／kg，空白对照组为生理盐水。

在发热高峰3h后，立即眼眶后静脉取血，每EP管加7．5％EDTA-Na(乙二胺四乙酸二钠)(每ml全血201且1)，抑肽酶(每ml全血500单位)，轻缓混匀后迅速离心，3500r／min，20min，取上清，一20℃冰箱保存待测。

采血后立即断头取全脑，放入生理盐水中，去除脑膜和血块，冰上操作分离下丘脑(视角叉与灰结节之间)，迅速置于液氮中20min，取150mg下丘脑组织用生理盐水1：9比例制备成1096的组织匀浆液，2000r／min，离心，lOmin，取上清，于一20℃冰箱保存待测。

前列腺炎急性毒性实验试验目的：急性毒性试验是在24小时内给药1次或2次（间隔6-8小时），观察动物接受过量的受试药物所产生的急性中毒反应，为多次反复给药的毒性试验设计剂量、分析毒性作用的主要靶器官、分析人体过量时可能出现的毒性反应、I期临床的剂量选择和观察指标的设计提供参考信息等。

、啮齿类动物单次给药的毒性试验（一）试验条件1．动物品系：常用健康的小鼠、大鼠。

年龄一般为7-9周龄。

同批试验中，小鼠或大鼠的初始体重不应超过或低于所用动物平均体重的20%。

实验前至少驯养观察1周，记录动物的行为活动、饮食、体重及精神状况。

2．饲养管理：动物饲料应符合动物的营养标准。

配方及营养成分含量的检测报告；购买的饲料，应注明生产单位。

应写明动物饲养室内环境因素的控制情况。

3．受试药物：应注明受试药物的名称、批号、来源、纯度、保存条件及配制方（二）试验方法：由于受试药物的化学结构、活性成分的含量、药理、毒理学特点各异，毒性也不同，有的很难观察到毒性反应，实验者可根据受试药物的特点，由下列几种实验方法中选择一种进行急性毒性试验。

1．伴随测定半数致死量（LD50）的急性毒性试验方法。

2．最大耐受剂量（MTD）试验方法：最大耐受剂量，是引起动物出现明显的中毒反应而不产生死亡的剂量。

3．最大受试药物量试验方法：在合理的浓度及合理的容量条件下，用最大的剂量给予实验动物，观察动物的反应。

4．单次口服固定剂量方法（Fixed-dose procedure）。

选择5、50、500和2000mg/kg四个固定剂量。

实验动物首选大鼠，给药前禁食6-12小时，给受试药物后再禁食3-4小时。

如无资料证明雄性动物对受药试物更敏感，根据受试药物的有关资料，由上述四个剂量中选择一个作初始剂量，，可用500mg/kg作初始剂量进行预试，如无毒性反应，则用2000mg/kg进行预试，此剂量如无死亡发生即可结束预试。

如初始剂量出现严重的毒性反应，那就用下一个挡次的剂量进行预试，如该动物存活，就在此两个固定剂量之间选择一个中间剂量试验。

一般动物实验的纳入与排除标准
动物实验的纳入与排除标准主要基于实验动物的种质、遗传、微生物和寄生虫、饲料、环境设施的质量控制。

纳入标准通常包括：
1. 实验动物应符合国家和地区的法律法规，并获得相应的许可证。

2. 实验动物应符合实验动物等级标准，确保实验结果的可靠性。

3. 实验动物应来自健康的种群，且无特定病原体、悉生及无菌实验动物除外。

4. 实验动物应具备正确的生物学特性，如年龄、体重、性别等。

5. 实验动物应具备足够的数量，以满足实验的需要。

排除标准通常包括：
1. 实验动物存在严重的健康问题，如传染病、寄生虫感染等。

2. 实验动物存在不正常的生理指标，如血压、心率等。

3. 实验动物在实验前的观察期内的行为表现异常。

4. 实验动物在实验前的观察期内出现死亡或濒临死亡的。

5. 实验动物不符合纳入标准的其他条件。

以上信息仅供参考，具体标准可能会因实验的需求和目的而有所不同，建议查阅相关文献或咨询专业人士。

大鼠口径类别3判定依据
大鼠口径类别3判定依据是根据一系列标准和测试方法来确定大鼠的口径类别，并据此进行相应的分类和安置。

口径类别3主要用于食品和制药行业的动物实验中，以评估和判断特定物质对大鼠健康和安全的影响。

大鼠口径类别3的判定依据包括以下几个方面：
1. 体重和年龄：对于大鼠来说，体重和年龄是评估其生理状态和成熟程度的重
要指标。

通常，只有符合特定体重和年龄范围的大鼠才能被分为口径类别3。

2. 健康状况：大鼠的健康状况是判定口径类别的重要因素。

在实验前，大鼠需
要进行全面的体检和相关检测，以确保它们没有潜在的疾病或异常情况。

3. 遗传背景：大鼠的遗传背景也被考虑在口径类别3的判定中。

特定品系的大
鼠可能对某些物质具有更敏感的反应，因此在区分口径类别时会考虑这一因素。

4. 实验设计和目的：对于不同的实验设计和研究目的，口径类别3的标准和要
求可能会有所不同。

根据实验的需求和研究目标，进行相应的分类和安置。

综上所述，大鼠口径类别3的判定依据主要包括体重和年龄、健康状况、遗传
背景以及实验设计和目的。

通过准确评估这些因素，可以确保实验中使用的大鼠符合相应的口径类别，并为实验结果的准确性和可靠性提供保证。