β-胡萝卜素的生物学作用及其机理
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β-胡萝卜素和番茄红素的提取、分离与测定[摘要]β—胡萝卜素是一种抗氧化剂,具有解毒作用,是维护人体健康不可缺少的营养素。
番茄红素(Lycopene)是类胡萝卜素的一种,对防治癌症、提高免疫力、延缓衰老有特效,有植物黄金之称,被誉为“21世纪保健品的新宠”。
因此,提取、分离、鉴定这些活性成分成为研究和开发这些天然生物资源的重要环节。
本实验用常规天然有机化合物的提取方法获得β-胡萝卜素和番茄红素样品,再用柱色谱法将其分离,用薄层色谱检测分离效果,最后用分光光度法分别对其鉴定。
[关键词]β-胡萝卜素、番茄红素、提取、分离、测定实验基本原理β-胡萝卜素和番茄红素分子中的碳骨架是由8个异戊二烯单位连接而成的,它们是四萜类化合物。
它们的分子中都有一个较长的π-π共轭体系,能吸收不同波长的可见光,因而,它们都呈现一定的绿色,β-胡萝卜素是黄色物质,番茄红素是红色物质,所以,又把它们叫做多烯色素。
β-胡萝卜素和番茄红素的结构式分别如下:(番茄红素)(β-胡萝卜素)胡萝卜素是最早发现的一种多烯色素。
后来,又发现了许多在结构上与胡萝卜素类似的色素,于是就把这类物质叫做胡萝卜素类化合物,或者叫做类胡萝卜素。
这类化合物大都难溶于水,易溶于弱极性或非极性的有机溶剂,因此又把这类化合物叫做脂溶性色素。
胡萝卜素广泛存在于植物的叶、花、果实中,尤以胡萝卜中含量最高。
胡萝卜素有α、β、γ三种异构体,在生物体中以β-异构体含量最多,生理活性最强。
在动物体中,胡萝卜素在酶的作用下可转化为维生素A,因此,胡萝卜素又被叫做维生素A原。
胡萝卜素在人和高等动物体内就有重要的生理功能,是人和高等动物生存不可缺少的营养物质。
番茄红素是胡萝卜素的开链异构体。
番茄红素在成熟的红色植物果实如番茄、西瓜、胡萝卜、草莓、柑橘等中含量丰富,其中含量最高的是番茄。
由于番茄红素不具有维生素A原活性,因此长期以来不被人们所重视。
但近年来研究表明,番茄红素是一种优越的天然色素和生物抗氧化剂,具有极强的清除自由基的能力,它可以预防前列腺癌、乳腺癌和消化道(结肠、直肠与胃)癌的发生,在预防心血管疾病、动脉硬化等各种与衰老有关的疾病及增强机体免疫力方面具有重要作用。
β-胡萝卜素的提取分离研究β-胡萝卜素的提取摘要:β-胡萝卜素是安全的、无毒的天然色素,在生物食品等领域均有展应用。
β-胡萝卜素的提取工艺众多,工艺各有特点。
简要介绍了溶剂提取法提取胡萝卜素,柱色谱分离β-胡萝卜素,薄层色谱法检验分离效果的方法。
学习柱色谱法、薄层色谱法的原理及其方法。
掌握从胡萝卜中分离提纯β-胡萝卜素的原理和方法。
学会用色谱法从胡萝卜中提取胡萝卜素并鉴定之。
关键词:β-胡萝卜素提取分离引言:胡萝卜是传统蔬菜和食用天然胡萝卜素的重要来源。
β-胡萝卜素是500多种类胡萝卜素的一种。
是橘黄色脂溶性化合物,它是一种重要的食用天然色素和营养强化剂,易溶于许多有机溶剂,如:乙酸乙酯、氯仿。
几乎不溶于丙二醇、甘油、酸和碱‘不溶于水。
β-胡萝卜素是一种非常安全的、无任何毒副作用的营养元素,具有解毒作用。
是维护人体健康不可缺少的营养素。
在抗癌、预防心血管疾病、白内障及抗氧化方面有显著的功能,可预防因老化引起的多种退化性疾病。
另外,β-胡萝卜素在食品工业中的应用也日益广泛。
胡萝卜中含有丰富的胡萝卜素,是β-胡萝卜素含量最高的蔬菜之一。
本文以胡萝卜为原料,采用色谱分离的方法研究了胡萝卜素的提取。
正文1.1胡萝卜中的成分每100克胡萝卜中,约含蛋白质0.6克,脂肪0.3克,糖7.6~8.3克,铁0.6毫克,维生素A(胡萝卜素)1.35~17.25毫克,维生素B1 0.02~0.04毫克,维生素B2 0.04~0.05毫克,维生素C12毫克,热量150.7千焦,另含果胶、淀粉、无机盐和多种氨基酸。
各类品种中尤以深橘红色胡萝卜素含量最高,各种胡萝卜所含能量在79.5千焦~1339.8千焦之间。
胡萝卜是一种质脆味美、营养丰富的家常蔬菜,素有“小人参”之称。
胡萝卜富含糖类、脂肪、挥发油、胡萝卜素、维生素A、维生素B1、维生素B2、花青素、钙、铁等人体所需的营养成分。
1.2 β-胡萝卜素的性质分子式,其分子式为 C40H56,紫红或暗红色的结晶性粉末。
β-carotene的结构β-胡萝卜素是一种脂溶性的有机分子,也称为维生素A的前体,是一种强效的抗氧化剂。
β-胡萝卜素有着特定的化学结构,由两个相同的分子组成,每个分子由40个碳原子和56个氢原子组成。
由于碳原子的排列方式和化学键的构成,β-胡萝卜素具有如此强大的抗氧化性质。
β-胡萝卜素的分子式为C40H56,分子量为536.88。
该分子具有两个不对称的末端,由两条长链组成,每个链上有一个末端环。
每个分子都呈现出8个无机共面芳香环,其中每个分子都有11个双键,其中有一个共轭三重键。
这种双键的存在导致了分子中大量的π电子,使其具有强大的抗氧化性质。
β-胡萝卜素的分子结构中存在着优化结构和共振结构。
优化结构是指具有最低能量的分子构型,而共振结构是指在优化结构周围存在的其他各种构型。
β-胡萝卜素的π电子可以形成共振结构,从而使其更加稳定和够得更好的抵御自由基的入侵。
β-胡萝卜素的空间结构具有倾斜的维度。
分子链有一定的扭曲度,每个末端环上的氢原子也比其他环的氢原子稍低。
分子的整体形状是扁平的而不是球形的。
这样的结构使得β-胡萝卜素非常稳定,从而能够抵御许多自由基的攻击。
β-胡萝卜素的化学性质非常稳定,不易受到氧化或光照的影响,这使得β-胡萝卜素成为一种受欢迎的抗氧化剂。
β-胡萝卜素可以在大量生物体中发现。
它是许多植物的重要成分,如胡萝卜、甜菜根、红椒等等。
人们通常通过食用这些植物来摄取足够的β-胡萝卜素。
此外,β-胡萝卜素还可以被制成营养补充剂,供那些需要增加抗氧化能力的人们食用。
总的来说,β-胡萝卜素的结构非常独特,具有不同于其他有机化合物的抗氧化性质。
随着科学技术的进步,文献表明β-胡萝卜素的结构和性质有很大的研究价值,这将促进人们对β-胡萝卜素的更深入的理解和利用。
中华人民共和国国家标准饲料添加剂β-胡萝卜素粉编制说明中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所国家饲料质量监督检验中心(北京)中华人民共和国国家标准饲料添加剂β-胡萝卜素粉编制说明一、标准制定背景及任务来源根据全国饲料工业标准化技术委员会制修订国家标准计划,由中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所[国家饲料质量监督检验中心(北京)]、浙江省兽药饲料监察所、广州立达尔生物科技股份有限公司承担国标“饲料添加剂β-胡萝卜素粉”的修订,项目计划编号为20112184-Q-469。
β-胡萝卜素是广泛存在于绿色、黄色蔬菜和水果中的天然类胡萝卜素。
β-胡萝卜素可通过化学合成、植物提取和微生物发酵3种方法生产,根据生产方式不同分为化学合成β-胡萝卜素和天然β-胡萝卜素两大类。
类胡萝卜素按其结构分为两种,由C和H组成的为胡萝卜素类,由C、H和O组成的为叶黄素类。
β-胡萝卜素由4个异戊二烯双键首尾相连而成,属四萜类化合物,在分子的两端各有1个β-紫萝酮环,中心断裂可产生2个维生素A分子,有多个双键且双键之间共轭。
分子具有长的共轭双键生色团,因而具有光吸收的性质,使其显黄色。
β-胡萝卜素主要有全反式,9-顺式,13-顺式及15-顺式4种形式。
分子式:C40H56,分子量:536.88,熔点:184℃,可溶于丙酮、氯仿、石油醚、苯和植物油,不溶于水、丙二醇和甘油,难溶于甲醇和乙醇。
化学性质不稳定,易在光照和加热时发生氧化反应。
由于β-胡萝卜素的分子结构相当于2个分子的维生素A,当动物机体需要维生素A 时,可及时转化为维生素A,当体内VA的量足够满足体内代谢需要时,β-胡萝卜素会在体内储存起来,发挥其作用,因此,除了具备维生素A的作用外,还能消除动物体内有毒的氧自由基,提高动物自身免疫力,促进动物生长,提高生产性能,特别对母畜、禽繁殖性能有明显的效果;β-胡萝卜素呈天然的黄色或橘黄色,也是一种有效的着色剂。
随着饲料工业化水平的提高,饲料添加剂的生产工艺和要求日趋完善,通过对国家标准(GB/T19370-2003)《饲料添加剂1%β-胡萝卜素》的修订,与现行饲料工业相关基础标准、法律法规相一致,能更好的服务于饲料工业的发展,对保护饲料生产使用者的合法权益,保障饲料和养殖产品质量安全具有重要意义。
螺旋藻β-胡萝卜素的提取及生物活性研究进展
房明
【期刊名称】《河北农业科技》
【年(卷),期】2012(000)001
【摘要】螺旋藻中含有丰富的β一胡萝卜素,而β一胡萝卜素具有多种生物活性,有着重要的开发利用价值。
本文综述了β一胡萝卜紊生物活性的研究进展,简要
介绍了螺旋藻β一胡萝卜已知生物活性的研究现状和发展前景。
同时列举并对比
了一些常用的β一胡萝卜紊提取方法。
【总页数】2页(P70-71)
【作者】房明
【作者单位】北京林业大学生物科学与技术学院,100010/食品加工与安全专业【正文语种】中文
【中图分类】S482.39
【相关文献】
1.螺旋藻干粉中β-胡萝卜素提取工艺研究 [J], 王海英;杜为民;李雯;李路宁;岳洋
2.螺旋藻β1胡萝卜素的提取及生物活性研究进展 [J], 房明
3.螺旋藻突变株MS-3β-胡萝卜素提取的研究 [J], 赵萌萌;王卫卫;侯小娟
4.从螺旋藻中提取β—胡萝卜素的研究 [J], 李红;龙荣枢
5.钝顶螺旋藻多糖的提取工艺及其生物活性 [J], 张亚旗;卢珍华;黄世英;李桂玲;李
健
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普通烟草β-胡萝卜素羟化酶2基因克隆与生物信息学分析雷波;丁福章;赵会纳;卢坤;蔡凯;潘文杰【摘要】β-胡萝卜素羟化酶(beta-carotene hydroxylase,BCH)是植物类胡萝卜素合成代谢中的关键限速酶,为获得烟草β-胡萝卜素羟化酶2(NtBCH 2)基因序列,采用同源克隆法从烟草中分离 NtBCH 2的基因组 DNA 序列,基因登录号为 JX101477。
结果表明:1)同源克隆法从烟草中克隆出 NtBCH 2基因,Nt-BCH 2基因组 DNA 全长2131bp,cDNA 为1083 bp,含7个外显子和6个内含子。
2)NtBCH2蛋白有309个氨基酸,分子量为34.79 kD,具有7个糖基化位点,11个磷酸化位点,4个跨膜域。
3)系统发育树与BLAST 分析表明,NtBCH 2是番茄的 SlBCH 和辣椒 CaBCH 2的同源基因;GENEVESTIGATOR 数据库芯片结果表明,NtBCH 2在幼嫩的茎和子叶中表达量最高。
%Beta-carotene hydroxylase is a key rate-limiting enzyme in plant metabolism of carotenoid biosynthesis.By using homologus cloning method, a BCH (NtBCH 2)gene was isolated from common tobacco K326,and the gene accession number is JX101477.Full-length of genomic DNA and cDNA is 2131 bp and 1 083 bp with 7 exons and 6 introns.The encoded NtBCH2 protein is a 309-aa polypeptide with a calculated molecular weight (Mw)of 34.79 kDa.Bioinfomatic analysis results showed that NtBCH2 possessed four transmembrane domains, seven potential glycosylation and 11 phosphorylation sites. Phylogenetic and BLAST analysis indicated that NtBCH 2 is the orthologous gene of SlBCH and CaBCH. Microarray results in GENEVESTIGATOR database revealed that NtBCH2 was expressed at the highest level in stem andcotyledon.【期刊名称】《贵州农业科学》【年(卷),期】2015(000)002【总页数】5页(P24-28)【关键词】烟草;β-胡萝卜素羟化酶2基因;香气;克隆【作者】雷波;丁福章;赵会纳;卢坤;蔡凯;潘文杰【作者单位】贵州省烟草科学研究院,贵州贵阳,550081;贵州省烟草科学研究院,贵州贵阳,550081;贵州省烟草科学研究院,贵州贵阳,550081;西南大学农学与生物科技学院,重庆北碚 400715;贵州省烟草科学研究院,贵州贵阳,550081;贵州省烟草科学研究院,贵州贵阳,550081【正文语种】中文【中图分类】S572类胡萝卜素(carotenoids)是指胡萝卜素和叶黄素两大类色素的总称,能保护叶绿素免受强光导致的光氧化破坏,是光合作用和反应中心复合体不可缺少的结构成分。
动物营养学报2018ꎬ30(8):2931 ̄2937ChineseJournalofAnimalNutrition㊀doi:10.3969/j.issn.1006 ̄267x.2018.08.008β-胡萝卜素的生物学作用及其机理李㊀超1ꎬ2㊀贾炳玉1ꎬ2㊀高㊀民2∗㊀宋利文2㊀胡红莲2(1.内蒙古农业大学动物科学学院ꎬ呼和浩特010018ꎻ2.内蒙古自治区农牧业科学院动物营养与饲料研究所ꎬ呼和浩特010031)摘㊀要:β-胡萝卜素是哺乳动物体组织中含量最丰富的类胡萝卜素ꎬ是维生素A的重要前体物ꎮβ-胡萝卜素及其代谢产物是组织代谢中的关键调节信号因子ꎬ因而在哺乳动物(包括人)机体中发挥了许多有益作用ꎮ本文概述了β-胡萝卜素对动物生产性能㊁免疫功能和繁殖性能等方面的作用及其机理ꎮ关键词:β-胡萝卜素ꎻ生产性能ꎻ免疫功能ꎻ繁殖性能中图分类号:S811.5㊀㊀㊀㊀文献标识码:A㊀㊀㊀㊀文章编号:1006 ̄267X(2018)08 ̄2931 ̄07收稿日期:2018-01-12基金项目:现代农业(奶牛)产业技术体系建设专项资金(CARS ̄36)ꎻ2016年度内蒙古自治区 草原英才 工程青年创新人才培养计划项目作者简介:李㊀超(1990 )ꎬ女ꎬ黑龙江哈尔滨人ꎬ硕士研究生ꎬ研究方向为动物营养与饲料ꎮE ̄mail:lichao806668945@126.com∗通信作者:高㊀民ꎬ研究员ꎬ硕士生导师ꎬE ̄mail:gmyh1588@126.com㊀㊀β-胡萝卜素是人类饮食和组织中含量最丰富的维生素A原类胡萝卜素ꎮβ-胡萝卜素及其代谢产物是组织代谢中的关键调节信号因子ꎬ在包括人类在内的哺乳动物中发挥了许多有益功能ꎮ尽管β-胡萝卜素被认为是维生素A的一种安全形式ꎬ但由于其高度受控的肠吸收机制ꎬ至少在特定情况下其有害作用是由于摄入量不当引起的ꎮ本文概述了β-胡萝卜素的代谢情况ꎬ明确区分了其可能对动物健康产生的有益或有害影响ꎬ从而为不同动物的β-胡萝卜素可摄入的适宜剂量提供理论依据ꎮ1㊀β-胡萝卜素的结构和特性㊀㊀自然界中类胡萝卜素(carotenoids)种类繁多ꎬ根据其化学结构的不同可分为胡萝卜素和叶黄素[1]ꎮ胡萝卜素(如β-胡萝卜素㊁α-胡萝卜素和β-隐黄质)是分子的一端或两端为线性或具有环状烃的非氧化类胡萝卜素ꎬ叶黄素(如玉米黄质㊁内消旋玉米黄质㊁虾青素和角黄素)是胡萝卜素的氧化衍生物[2]ꎮ在胡萝卜中发现了β-胡萝卜素ꎬ同时发现了其3种异构体(α㊁β㊁γ)ꎬ其中β-胡萝卜素活性最强ꎬ且在自然界中普遍存在[3]ꎮ㊀㊀β-胡萝卜素和维生素A之间的联系是由VonEuler等[4]确立ꎬ并进一步证明结晶胡萝卜素具有维生素A活性ꎻMoore[5]进一步研究表明β-胡萝卜素可在大鼠体内转化为维生素Aꎮ根据类胡萝卜素本身是否具有维生素A前体作用ꎬ将其分为维生素A原和非维生素A原ꎮ维生素A原及其在酶切和非酶裂解后的代谢物(类维生素A)能产生维生素Aꎬβ-胡萝卜素是自然界中含量最丰富的维生素A前体[6]ꎮβ-胡萝卜素是含有40个碳原子㊁分子结构两端有15个共轭双键和2个β-紫罗兰酮环的短直链分子ꎬ这种结构特性使β-胡萝卜素本质上具有高疏水性和非极性ꎮ在动物体内ꎬ与非极性类胡萝卜素相比ꎬ极性类胡萝卜素似乎更容易被吸收[7]ꎮ总的来说ꎬ类胡萝卜素都具有高度疏水性特性ꎮ2㊀β-胡萝卜素在动物体内的吸收㊁转运㊁代谢和沉积2.1㊀β-胡萝卜素在动物肠道内的吸收㊀㊀β-胡萝卜素在消化道内的动力学参数大多来㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报30卷源于非反刍动物的研究结果ꎮ由于动物体内的β-胡萝卜素是与脂质一起运输的ꎬ因此其在小肠中的转运和吸收受饲粮中油脂种类和含量的影响非常大ꎮβ-胡萝卜素的非极性特性决定了其在转运过程中位于消化道微粒核中ꎬ从乳状液中转移到乳糜微粒中的效率为12%~18%[8]ꎮ当β-胡萝卜素摄入量较高或者油脂摄入量较低时ꎬβ-胡萝卜素在小肠中由乳状液转运到乳糜微粒的过程是限速的ꎮ小肠主要负责吸收脂质㊁脂溶性维生素及β-胡萝卜素ꎬ以及随后将其递送至外周组织ꎮ研究表明ꎬ即使人肠道大量表达的β-胡萝卜素15ꎬ15ᶄ加氧酶(CMOⅠ或BCMO1或BCO1)ꎬ在肠道中也不会将摄入的β-胡萝卜素完全肠转化为维生素Aꎬ实际摄入的β-胡萝卜素中17%~45%以完整的未切割形式释放到外周循环中[9]ꎮ研究显示ꎬCMOⅠ基因中多种多态性相关的CMOⅠ可变酶可能是导致某些个体分解β-胡萝卜素效率较低的原因[10]ꎮ研究也表明ꎬ小鼠和其他啮齿类动物的肠道能更高效地摄取β-胡萝卜素ꎬ只有在超生理量摄入时ꎬ才可以在其循环中检测到该维生素A原类胡萝卜素[11]ꎮ其他动物模型如蒙古沙鼠㊁家蚕和反刍动物小牛等也可吸收完整形式的β-胡萝卜素ꎬ并且维生素A前体物在血清和组织中的分布与人体类似ꎮ目前ꎬ对反刍动物吸收和转运β-胡萝卜素的机制还不是很清楚ꎬ但是反刍动物可作为研究类胡萝卜素转运的良好模型ꎮ由于反刍动物瘤胃微生物对脂肪在进入十二指肠前有修改和重新合成作用ꎬ因此比非反刍动物要复杂的多ꎬ叶黄素在瘤胃尚未发育的小牛血清中的出现要比β-胡萝卜素早[12]ꎮ2.2㊀β-胡萝卜素在动物血清中的转运㊀㊀目前已确定ꎬ由于β-胡萝卜素(包括其他类胡萝卜素)的高亲脂性和非极性ꎬ其转运与循环中的各种脂蛋白密切相关ꎬ其可能进入各种脂蛋白颗粒如乳糜微粒及其残留物[极低密度脂蛋白(VLDL)㊁中间密度脂蛋白(IDL)和低密度脂蛋白(LDL)]的疏水核心以及其他脂质如胆固醇酯和视黄酯中[13]ꎬ这些脂蛋白促进β-胡萝卜素从肠屏障转移到身体的各种组织以及其跨组织转运ꎮ不同动物转运β-胡萝卜素的脂蛋白种类不同ꎬ研究表明高密度脂蛋白(HDL)是牛血液循环中β-胡萝卜素的主要载体物质[14]ꎮ㊀㊀总体而言ꎬ尽管不同脂蛋白转运不同维生素A原类胡萝卜素的顺序在物种上有显著差异ꎬ但β-胡萝卜素可以与循环中的各种脂蛋白结合运输ꎮ研究发现ꎬβ-胡萝卜素可以不同程度地进入所有类型的脂蛋白中ꎬ其中HDL约占82%ꎬLDL占12%ꎬVLDL占0.3%[15]ꎮ大鼠体内研究发现ꎬ血清中的β-胡萝卜素大多结合到体积较大的VLDL和LDL上[16]ꎮ裴凌鹏[17]研究发现ꎬ动物体内大部分类胡萝卜素如β-隐黄质主要分布于LDL和HDLꎻ而大约53%的黄体素和玉米黄质与HDL结合ꎬ31%存在于LDLꎬ约16%与VLDL结合ꎬβ-胡萝卜素的去向和最终代谢在很大程度上取决于β-胡萝卜素和脂蛋白的亲和力ꎮGugger等[18]体外研究β-胡萝卜素在细胞内细胞器间的转运机制ꎬ发现β-胡萝卜素在细胞内的转运不受细胞质中转运蛋白的调控ꎬ而可能受囊泡转运或膜结合蛋白等的调控ꎮ2.3㊀β-胡萝卜素在动物体内的代谢㊀㊀维生素A前体物分解后形成的视黄醛可以通过视黄醛脱氢酶的氧化作用生成全反式视黄酸ꎬ而全反式视黄酸为维生素A的生物活性形式ꎮ视黄酸不仅是转录调节因子ꎬ还可作为特定核受体㊁视黄酸受体(RAR)或类视黄醇X受体(RXR)的配体发挥作用ꎬ形成同源或异源二聚体以调节数百个靶基因的转录[19]ꎮ当组织中视黄酸的产量超过一定限度时ꎬ属于细胞色素P450家族的转录失活酶可对其进行氧化降解以产生更多极性化合物ꎬ如4羟基或4氧维甲酸[20](图1)ꎮ㊀㊀如图1所示ꎬCMOⅠ在β-胡萝卜素的15ꎬ15ᶄ双键上对称氧化裂解产生2个分子的视黄醛ꎻ视黄醛可以通过醛脱氢酶(ALDH1)或视黄醛脱氢酶(RALDH)氧化成视黄酸ꎻ通过细胞色素P45026家族酶(Cyp26)进一步将视黄酸氧化为更具极性的化合物ꎬ包括被认为是转录失活的4氧维甲酸ꎮ或者ꎬ来自中链脱氢酶/还原酶(MDR)家族的不同形式的醇脱氢酶(ADH)和来自短链脱氢酶/还原酶(SDR)家族的各种视黄醇脱氢酶(RDH)可将视黄醛还原为视黄醇ꎬ也可以通过视黄醇酰基转移酶(LRAT)将视黄醇进一步酯化成视黄酯ꎮ另外ꎬ阿朴胡萝卜素醛类可以由β-胡萝卜素产生ꎻ9ᶄꎬ10ᶄ双键的切割由β-胡萝卜素9ᶄꎬ10ᶄ加氧酶2(CMOⅡ或BCMO2或BCO2)催化并产生了β ̄apo ̄10ᶄ-胡萝卜素醛和β-紫罗兰酮ꎬ在其他双键处的不对称切割可以非酶促发生或可以23928期李㊀超等:β-胡萝卜素的生物学作用及其机理被酶催化ꎮ图1中列举了由β-胡萝卜素的不对称切割产生的一些潜在的阿朴胡萝卜素ꎬ虚线箭头表示阿朴胡萝卜素可最终转化为一个视黄醛分子ꎬ这种转换的机制尚未完全阐明ꎮ㊀㊀CMOⅠ:β-胡萝卜素15ꎬ15ᶄ加氧酶β ̄carotene ̄15ꎬ15ᶄ ̄oxygenaseꎻCMOⅡ:β-胡萝卜素9ᶄꎬ10ᶄ加氧酶β ̄carotene ̄9ᶄꎬ10ᶄ ̄oxygenaseꎻADH:醇脱氢酶alcoholdehydrogenaseꎻRDH:视黄醇脱氢酶retinoldehydrogenasesꎻREH:视黄醇酯化酶reti ̄nolesterificationꎻLRAT:视黄醇酰基转移酶retinolacyltransferaseꎻALDH1:醛脱氢酶1aldehydedehydrogenase1ꎻRALDH:视黄醛脱氢酶retinoicaldehydedehydrogenaseꎻCyp26:细胞色素P45026家族酶cytochromeP45026familyenzymeꎮ图1㊀β-胡萝卜素的代谢Fig.1㊀Metabolismofβ ̄carotene[2]㊀㊀在人和小鼠中ꎬβ-胡萝卜素裂解酶如CMOⅠ和CMOⅡ在各种成体组织中表达ꎬ包括肝和脂肪以及发育中的组织如胎盘㊁卵黄囊和胚胎等[21]ꎮ这些酶可以将β-胡萝卜素原位生物转化为维生素Aꎬ这表明β-胡萝卜素可以作为体内各个部位的类维生素A的本地来源ꎮCMOⅠ是具有强底物特异性的胞质酶ꎬ仅与类胡萝卜素(具有至少1个未取代的β-紫罗兰酮环)相互作用ꎬ是在成体组织中切割β-胡萝卜素生成维生素A的主要酶[22]ꎮ体外研究发现ꎬ通过CMOⅠ裂解β-胡萝卜素形成的视黄醛和视黄酸可能通过调节过氧化物酶体增殖物激活受体(PPARγ)和视黄酸受体(RAR)信号通路影响脂肪细胞中的脂质代谢[23]ꎮ然而ꎬCMOⅠ是否以类似的方式影响各种组织中的脂质代谢ꎬ以及这种作用是否与其分解β-胡萝卜素的能力无关仍然不清楚ꎮβ-胡萝卜素也可以被CMOⅡ不对称切割以产生β-紫罗兰酮环和阿朴胡萝卜素ꎬ最终转化为1个分子的视黄醛[2]ꎬ但转化的机制尚未完全阐明ꎮ2.4㊀β-胡萝卜素在动物体内的沉积㊀㊀在动物体内ꎬβ-胡萝卜素大多贮存于肝脏ꎬ少量沉积于脂肪组织㊁肾上腺和皮肤[16]ꎮ各种动物组织中β-胡萝卜素的分布和贮存位置差异很大ꎮShapiro等[24]给大鼠补饲β-胡萝卜素后ꎬ在肝脏中检测出β-胡萝卜素ꎬ脂肪组织中则没有检测出β-胡萝卜素ꎬ推断β-胡萝卜素并不是简单的储存于脂肪中ꎬ可能存在一种β-胡萝卜素结合蛋白ꎬ由于这种蛋白质的疏脂性降低了β-胡萝卜素在脂肪中的沉积ꎮ研究也发现ꎬ三黄鸡体内β-胡萝卜素主要沉积于小肠和肝脏[25]ꎬ但种母鸡腹脂中检测出的类胡萝卜素含量高于肝脏中含量ꎬ这可能是由于处于不同生长阶段的动物体内类胡萝卜素的分布不同ꎮ在生长发育期ꎬ类胡萝卜素主要分布于肝脏㊁脂肪组织㊁血液㊁皮肤及羽毛中ꎬ性成熟之后则逐渐转移到生殖器官中[26]ꎮ不同类胡萝卜素在不同种类动物体内的分布也显著不同ꎬβ-胡萝卜素在绵羊和山羊肝脏中含量较高ꎬ而叶黄素则在脂肪组织和血清中含量较高ꎻ在牛血清3392㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报30卷和脂肪组织中β-胡萝卜素的含量占主导地位ꎬ而且其脂肪组织中叶黄素含量也较高ꎬ但β-胡萝卜素在肝脏中则含量较低[27]ꎮ3㊀β-胡萝卜素的生物学功能3.1㊀β-胡萝卜素对动物生产性能的影响㊀㊀研究发现ꎬ奶牛饲粮中添加β-胡萝卜素可以提高牛奶品质和产量ꎮ热应激奶牛每天补充400mgβ-胡萝卜素牛奶产量增加了11%ꎬ补充300mgβ-胡萝卜素牛奶产量增加了6.4%ꎬ添加β-胡萝卜素对奶牛的产奶量和乳品质都有提高作用[28]ꎮ何文娟[29]在中国荷斯坦奶牛饲粮中添加β-胡萝卜素ꎬ结果发现在维生素A充足的情况下添加β-胡萝卜素对奶牛泌乳前期的产奶量㊁乳成分以及乳中体细胞数均无显著影响ꎬ但产后3个月产奶量有不同程度提高ꎮ夏耘等[30]在澳洲荷斯坦奶牛饲粮中添加90mg/dβ-胡萝卜素ꎬ结果发现ꎬ添加后第20天产奶量比对照组显著提高了11.03%ꎬ第40天产奶量比对照组显著提高了13.83%ꎬ添加β-胡萝卜素组的乳脂含量显著提高ꎮ孙胜祥[31]给每头奶牛饲粮中每天添加900mgβ-胡萝卜素ꎬ结果发现奶牛产奶量提高幅度最大ꎬ并能在一定时期内维持较高的泌乳水平ꎬ乳脂㊁乳蛋白㊁乳中干物质含量都有显著提高ꎮ武洪久等[32]发现ꎬ中国荷斯坦奶牛饲粮中添加不同浓度β-胡萝卜素后ꎬ产奶量㊁乳脂率㊁乳蛋白率显著高于对照组ꎮOliveira等[33]给奶牛每天添加1.2gβ-胡萝卜素ꎬ结果发现乳蛋白含量从2.90%提高到2.96%ꎬ乳脂乳蛋白比大于1.5的比率从22.6%降低到6.5%ꎮ马吉锋等[34]在奶牛基础饲粮中分别添加100㊁200和300mg/dβ-胡萝卜素后其产奶量比对照组分别提高了3.53%㊁9.06%和13.39%ꎮ㊀㊀β-胡萝卜素的着色作用对肉牛的肉品质有影响ꎮ沉积于脂肪组织中的β-胡萝卜素易使体脂肪变黄而降低牛肉的等级ꎬ因此肉牛育肥后期应减少饲粮中β-胡萝卜素的用量[35]ꎮ研究也表明饲喂低剂量维生素A和胡萝卜素有利于牛肉大理石花纹的形成[12]ꎮ3.2㊀β-胡萝卜素对动物免疫功能的影响㊀㊀β-胡萝卜素可提高动物机体的体液免疫㊁细胞免疫和非特异性免疫功能ꎬ增强抗病力ꎬ饲粮中添加β-胡萝卜素可使血清溶菌酶活性增加ꎮChew等[36]发现β-胡萝卜素可刺激动物机体淋巴细胞的增殖ꎬ并增强细胞介导的体液免疫应答ꎬ对免疫反应起到了积极的影响ꎮ何文娟[29]在中国荷斯坦奶牛饲粮中添加β-胡萝卜素ꎬ发现降低了产后前3个月胎衣不下㊁子宫炎和乳房炎的发病率ꎮCucco等[37]研究发现ꎬ给禽类补充β-胡萝卜素能促进生长ꎬ提高机体免疫力ꎮ马思慧等[38]在小鼠饲粮中添加β-胡萝卜素ꎬ发现可缓解由环磷酰胺引起的免疫抑制作用ꎬ也可通过提高免疫抑制小鼠体内细胞因子和免疫球蛋白含量来增强小鼠的免疫功能ꎮ马吉峰等[34]研究表明ꎬ添加β-胡萝卜素组的牛奶中体细胞数均低于对照组ꎬ分别比对照组降低了18.54%㊁35.27%和46.10%ꎮNishijima等[39]给日本黑牛喂食干胡萝卜ꎬ发现可提高β-胡萝卜素缺乏牛初乳中IgA和IgG浓度ꎮ产犊前最后1周血清视黄醇浓度增加到100ng/mL时ꎬ泌乳早期乳房炎发病率减少了60%[40]ꎬ然而血清β-胡萝卜素浓度与胎衣不下或乳腺炎无关ꎮ大量的试验结果都证明添加β-胡萝卜素对动物免疫功能的发挥起积极作用ꎮ3.3㊀β-胡萝卜素对动物繁殖性能的影响㊀㊀饲粮β-胡萝卜素可能与繁殖性能有关ꎬ反刍动物卵巢尤其是黄体中β-胡萝卜素浓度较高ꎮ研究表明ꎬ缺乏β-胡萝卜素可能导致奶牛排卵延迟㊁黄体功能不全㊁卵巢囊肿的发病率增加[41]ꎮ目前ꎬ国内外学者就调整奶牛饲粮营养以改善生育率进行了大量研究ꎮ奶牛饲粮中补充β-胡萝卜素对繁殖性能的益处可能与β-胡萝卜素转化为维生素A有关ꎬ特别是在子宫和卵巢中[42]ꎮ血清β-胡萝卜素浓度与黄体细胞分泌孕激素有关ꎬ产后第一波期排卵的母牛ꎬ产前3周血清β-胡萝卜素平均浓度高于不排卵牛ꎻ围产前期添加β-胡萝卜素(500或2000mg/d)ꎬ产后第一波期排卵牛数量显著增加[43]ꎮ产后120d热应激牛补充400mgβ-胡萝卜素超过90dꎬ妊娠率有所提高[28]ꎮ美国和德国研究人员发现补充β-胡萝卜素可缩短初情日龄ꎬ提高怀孕率ꎬ促进子宫修复和排卵ꎬ降低卵巢囊肿发病率和早期胚胎死亡ꎮβ-胡萝卜素在繁殖上的重要作用在日本已被广泛研究ꎬ发现卵巢囊肿奶牛血清胡萝卜素浓度[(11ʃ2)μg/dL]比健康牛显著降低[(33ʃ4)μg/dL]ꎻ血清β-胡萝卜素浓度与日本黑牛超数排卵的胚胎质量相关ꎬ当血清β-胡萝卜素浓度高于43928期李㊀超等:β-胡萝卜素的生物学作用及其机理200μg/dL时ꎬ黄体和总可回收胚胎数量有增加趋势ꎬ并显著提高正常可移植胚胎的数量[44]ꎮ给其他动物添加β-胡萝卜素也可以提高繁殖力ꎬ研究发现ꎬ补充维生素A(4000IU/kg)和β-胡萝卜素(100mg/kg)可增加小母猪肾上腺和黄体中β-胡萝卜素含量[45]ꎮβ-胡萝卜素还可增强瘤胃功能ꎬ在体外条件下添加β-胡萝卜素ꎬ瘤胃细菌生长和纤维素消化能力显著提高[46]ꎮ4㊀小㊀结㊀㊀研究表明ꎬβ-胡萝卜素不仅以维生素A的前体物发挥作用ꎬ同时还作为抗氧化剂㊁抗癌剂等在机体中发挥作用ꎬ对动物的生产性能提高㊁繁殖性能增强㊁免疫功能提高都有不同程度的作用ꎮ同时关于动物β-胡萝卜素补充量的研究也逐年增多ꎬ但还不足以得出最佳的补充策略ꎬ仍需更多的研究来确定动物在不同生产阶段的β-胡萝卜素需要量ꎮ关于类胡萝卜素与维生素A之间的转化㊁转运㊁沉积和代谢也有了相对深入的研究ꎬ但对于β-胡萝卜素的抗氧化㊁抗癌等生物学作用还有待深入发掘ꎮ参考文献:[1]㊀王绍霞ꎬ唐小华ꎬ周永红ꎬ等.辣椒红色素提取工艺的研究[J].食品工业科技ꎬ2008ꎬ29(8):196-199. 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