肺炎克雷伯菌 ESBL
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文章编号:1007-4287(2013)01-0133-02产ESBLs肺炎克雷伯菌aac(6′)-Ⅰb-cr基因及耐药性检测丁秋蕾1,杨小娜1,梅志琴3,赵建宏2,时东彦2(1.石家庄市中心医院医务部,河北石家庄050011;2.河北医科大学第二医院检验科,河北石家庄050000;3.石家庄市传染病医院检验科河北石家庄050012) 2006年初,美国学者Robicsek等[1]发现了不仅对氨基糖苷类药物有修饰作用,而且对喹诺酮类药物也有修饰作用的新氨基糖苷类修饰酶aac(6′)-Ⅰb-Cr基因。
为了了解肺炎克雷伯菌中aac(6′)-Ⅰb-Cr型基因存在情况,我们从108株肺炎克雷伯菌(K.penumoiniae)中,筛选出了43株产ES-BLs菌株,对其进行了aac(6′)-Ⅰb-Cr基因的检测和药物敏感性测定,现报告如下。
1.材料与方法1.1 菌株来源 108株产ESBLs肺炎克雷伯菌来自河北医科大学第二医院保存的菌株,菌株采用法国梅里埃的API20E鉴定条进行鉴定。
1.2 药敏纸片 所用药敏纸片亚胺培南(IMP)和美罗培南(MER)为英国Oxoid公司产品;氨苄西林(AM)、阿莫西林/克拉维酸(AMC)、哌拉西林/他唑巴坦(TZP)、头孢唑啉(CZ)、头孢呋辛(CXM)、头孢曲松(CRO)、头孢他啶(CAZ)、头孢他啶-克拉维酸(CDO2)、头孢噻肟(CTX)、头孢噻肟-克拉维酸(CDO3)、头孢吡肟(FEP)、头孢哌酮/舒巴坦(CFS)、阿米卡星(AMK)、庆大霉素(GEN)、诺氟沙星(NOR)、环丙沙星(CIP)、左氧氟沙星(LEV)、头孢西丁(FOX)、复方新诺明(SXT)均为北京天坛公司产品。
1.3 药敏培养基及试剂 M-H琼脂培养基为英国Oxoid公司产品,PCR相关试剂由大连宝生物工程有限公司提供,API20E鉴定条由法国生物梅里埃公司生产。
1.4 药敏试验及ESBLs酶的检测 药敏试验采用K-B法,产ESBLs菌株检测采用头孢他啶和头孢他啶-克拉维酸、头孢噻肟和头孢噻肟-克拉维酸纸片做确证试验,按临床实验室结果判断[2]。
儿童多重耐药肺炎克雷伯菌败血症危险因素及治疗预后分析谢锦金;谢建宁【期刊名称】《中国医药科学》【年(卷),期】2014(000)003【摘要】Objective To investigate the risk factors, treatment and clinical outcomes for multidrug resistant(MDR) klebsiella pneumoniae bloodstream infections (KP-BSIs)in children. Methods The Clinical data of 37 children with MDR KP-BSIs were retrospectively analyzed. Results Premature birth, twins, low birth weight,history of invasive procedures,neutropenia and perinatal asphyxia were risk factors for MDR KP-BSIs in children.multi-drug resistance was 94.9%;empirical application of carbapenems vinyl drugs cure rate was 62.5%, four cases ofdeath,strains producing ESBLs were detected. Conclusion MDR of KP-BSIs was serious,and the detection rate of ESBLs-producing was high,to long-term trends in the dynamic monitoring, Screening for the presence of multi-drug resistant positive persons,rational use of antibiotics was essential.%目的:探讨儿童多重耐药肺炎克雷伯菌败血症的危险因素、治疗方法以及临床预后。
esbls的名词解释ESBLs(extended-spectrum beta-lactamases)是一种β-内酰胺酶,它能够水解一类广谱β-内酰胺类抗生素,包括第三代头孢菌素和氟喹诺酮类药物。
ESBLs产生的细菌株对常用的抗生素产生了耐药性,给医疗工作带来了巨大的挑战。
ESBLs最早于1980年在德国被发现,随后在世界范围内广泛传播。
ESBLs一旦广泛传播,会导致细菌菌株之间的传播迅速,而这些细菌菌株也变得对药物治疗具有高度抗药性。
目前已经发现的ESBLs大约有400个亚型,其中有些亚型已经迅速蔓延,并且表现出多重耐药性。
ESBLs主要存在于革兰阴性菌中,如大肠埃希菌和肺炎克雷伯杆菌等,这些细菌经常导致呼吸道、泌尿道、血液感染等疾病。
ESBLs基因主要位于细菌染色体或质粒中,通过水平基因转移方式在不同细菌中传播。
这导致了不同医疗环境内的ESBLs感染病例不断增加,加重了公共卫生问题。
ESBLs的耐药机制主要是由于它在细菌细胞内产生一种酶,能够破坏抗生素的β-内酰胺的分子结构,使其失去药效。
这种酶的活性较强,能够迅速破坏第三代头孢菌素的结构,从而使细菌对这些药物产生耐药性。
此外,ESBLs还能够导致细菌菌株产生多重耐药性,包括对其他类抗生素的抗药性。
ESBLs的出现给临床治疗带来了挑战。
由于ESBLs产生的耐药性,导致了一些常用的抗生素对感染的疗效下降。
临床医生不得不转向更为强效的抗生素,如碳青霉烯类,但这些药物往往带来更高的毒副作用和费用。
同时,ESBLs的传播和高度耐药性也给医疗环境中的卫生安全带来了风险,容易导致院内感染,特别是在免疫功能较弱的患者群体中。
为了有效控制ESBLs的传播和治疗,一系列的措施被提出。
首先,加强细菌菌株的监测和细菌学实验,在感染控制和感染源追踪上进行精准的管理。
其次,合理使用和规范使用抗生素,减少滥用和过量使用,以降低抗生素产生抗性菌株的风险。
此外,科学开展抗菌药物研发,寻找新的治疗手段和药物,以提高对ESBLs 感染的有效治疗。
泛耐药肺炎克雷伯菌多部位感染的抗感染治疗摘要目的探讨泛耐药肺炎克雷伯菌引起多部位感染的有效治疗。
方法本文阐述了临床药师对1例多部位泛耐药肺炎克雷伯菌患者的药学监护过程。
临床药师参考泛耐药革兰氏阴性菌的治疗方案结合药敏试验提出适宜的治疗意见。
结果当不能使用替加环素时,米诺环素联用美罗培南和复方磺胺甲噁唑片成功治疗多部位肺炎克雷伯菌感染。
结论临床药师参与临床药物治疗,有利于提高临床治疗水平。
关键词:泛耐药肺炎克雷伯菌;多部位感染;药学监护肺炎克雷伯菌(K. Pneumoniae, KPN)为革兰氏阴性菌,属于肠杆菌科克雷伯菌属,为兼性厌氧菌,约占医院革兰阴性菌感染20%以上[1],是引起呼吸道感染、尿路感染的常见菌种,偶尔可致血流感染。
全国细菌耐药监测显示,肺炎克雷伯菌的 ESBLs 检出率为 54.5%[2]。
我院最近发现多例同时产ESBLs 和KPC的肺炎克雷伯菌,现将1例泛耐药KPN 导致多部位感染的病例进行分析,以探讨有效的抗感染方案。
1 病例资料患者男性,65岁,已婚。
主因“意识不清13小时余”入院。
患者自2015年10月长期卧床,留置尿管。
2016.1.20尿道口开始出现脓性分泌物,伴恶臭,尿量逐渐减少,尿管中可见黑色絮状物。
1.28 患者21:20被家属发现两眼发直,呼之不应,呼吸动度大,伴右上肢抽动,遂至我院就诊。
以“肺部感染、泌尿系感染”收入ICU。
既往高血压病史10余年;脑梗塞病史3年,遗留右侧肢体活动不利及言语不利;右侧腹股沟疝气病史2年余。
1.28白细胞计数13.89×109/L,中性粒细胞百分比93.4%;C-反应蛋白148mg/L;降钙素原(PCT)150.64ng/ml;动脉血气(FiO20.29):PO276.4mmHg,PCO222.1mmHg,pH7.419,BE-9.6mmol/L,HCO3-14.1mmol/L,cLac10.8mmol/L,PO2(A-a)e108.5mmHg;胸片:左下肺炎,左侧胸膜增厚可能性大。
1266 临床肺科杂志2013年7月 第18卷第7期 新生儿科分离的产ESBL肺炎克雷伯菌基因分型研究 刘晓莺 马靖华 【摘要】 目的分析新生儿科分离的产ESBL肺炎克雷伯菌基因分型。方法选取本院新生儿科重症监护室产ESBL肺 炎克雷伯菌感染患儿52例,分离菌株,行细菌DNA提取和PCR扩增检测,分析产ESBL肺炎克雷伯菌的基因分型。结果52株 病菌中,单基因型23株、2个以上基因型29株。TEM型l3株、SHV型20株、CTX.M型4o株、GES型7株、PER型3株。ESBL 为阳性菌株36株,ESBL为阴性菌株16株,产ESBL肺炎克雷伯菌的阳性率为69.2%。结论新生儿科广泛存在产ESBL肺炎 克雷伯菌,其中CTX—M型居多。细菌DNA提取和PCR扩增检测是产ESBL肺炎克雷伯菌基因分型的有效方法。 【关键词】新生儿科;产ESBL肺炎克雷伯菌;基因分型
Genotype study of ESBL producing KlebsieHa pneumoniae in neonatal isolation L1U Xiao—yin,MA Jing—hua clin一 al Zaboratorr the First HospitaZ of Yulin。Yulin.Shanx 718000.China 【Abstract】0bjective To analyze the genotype of ESBL producing Klebsiella pneumoniae in neonatal isolation.Methods 52 patients with ESBL producing Klebsiella pneumoniae infection in ICU neonatal isolation were selected in our hospita1.The strains were iso— lated to give DNA extraction and PCR amplification.The genotypes of ESBL producing Klebsiella pneumoniae were analyzed.Results In the 52 strains of bacteria,23 strains were single genotype,and 29 strains were more than 2 genotypes.There were 13 strains of TEM genotype,20 strains of SHV genotype,40 strains of CTX—M genotype,7 strains of GES genotype,and 3 strains of PER genotype.The positive strains of ESBL were 36 strains.and the negative strains of ESBL were 16 strains.The positive rate was 69.2%.Conclusion ESBL producing Klebsiella pneumoniae exists widely in the newborn department of pediatrics,and the most common genptype is CTX・M. DNA extraction and PCR amplification fire effective methods to detect the genotypes of ESBL producing Klebsiella pneumoniae. 【Key words】newborn department of pediatrics;ESBL producing Klebsiella pneumoniae;genotype
克雷伯菌属检验标准操作规程1. 概述克雷伯菌属包括肺炎克雷伯菌、产酸克雷伯菌、鼻硬结克雷伯菌和鼻臭克雷伯菌4个种。
临床以肺炎克雷伯菌最为常见。
2. 标本类型血液、尿液、痰、脑脊液、穿刺液、脓液等标本。
3. 鉴定3.1形态与染色革兰阴性粗短杆菌。
3.2培养特性在血琼脂平板上35℃培养18~24小时,呈灰白色、不溶血的菌落。
在麦康凯琼脂平板上形成大而隆起、黏液样、易融合的、粉红色菌落,用接种环挑取呈丝状粘连。
3.3生化反应氧化酶试验阴性,发酵葡萄糖、乳糖、蔗糖等多种糖类,TSI为A/A,IMViC - - + + ,硝酸盐还原、脲酶和赖氨酸脱羧酶试验阳性,动力、H2S、鸟氨酸脱羧酶和精氨酸双水解酶试验均为阴性。
3.4鉴定要点3.4.1菌属特征琼脂平板上菌落较大、隆起、黏液样、用接种环挑取呈丝状粘连,发酵葡萄糖等多种糖类,IMViC - - + + ,脲酶和赖氨酸脱羧酶试验阳性,动力试验阴性。
3.4.2 克雷伯菌属的种间鉴别见下表克雷伯菌属种间鉴别的关键性试验(阳性%)菌名吲哚VP 枸橼酸盐脲酶赖氨酸丙二酸盐乳糖肺炎克雷伯菌0 98 98 95 98 93 98产酸克雷伯菌99 95 95 90 99 98 100鼻硬结克雷伯菌0 0 0 0 0 95 0鼻臭克雷伯菌0 0 30 10 40 3 30克雷伯菌属检验标准操作规程3.5 操作步骤3.5.1 氧化酶试验参见《氧化酶试验标准操作规程》。
3.5.2 鉴定从麦康凯琼脂平板上挑取可疑菌落,用微生物鉴定仪或传统生化反进行细菌鉴定。
4. 药敏参见《抗菌药物敏感试验标准操作规程》及CLSI最新版本文件。
5.质量控制见《质量管理程序》。
6. 检验结果解释与分析6.16.检验结果解释与分析肺炎克雷伯菌可产生ESBLs,据国内文献报道产酶率在30%以上,产酶株对青霉索、头孢菌素类及单酰胺类抗生素均产生耐药。
如果检出产ESBLs肺炎克雷伯菌,即使体外药敏试验对青霉素类、头孢菌素类或氨曲南敏感,也应报告该菌对所有青霉素类、头孢菌素类或氨曲南耐药。
探讨下呼吸道肺炎克雷伯菌ESBLs的检测及耐药性分析吴巍摘要】目的研究下呼吸道肺炎克雷伯菌ESBLs的检测和耐药性。
方法选择收集在2014年4月到2016年1月的120例经细菌鉴定和药敏实验分析确定的肺炎克雷伯菌标本作为本研究的研究对象,采用仪器法和双纸片协同对ESBLs进行检验。
结果重症监护病房的肺炎克雷伯菌检出率为15.36%,感染科检出率为8.02%,其感染部位主要是以患者的呼吸道为主,占38.6%。
本研究120株肺炎克雷伯菌标本共检测出ESBL阳性40株,阳性率为33.33%。
结论 ESBLs是肺炎克雷伯菌对β-内酰胺类抗生素的耐药机制,而且产酶的耐药率高于非产酶菌株,对于ESBLs的检测十分重要,需要在临床上予以强化。
【关键词】呼吸道肺炎;克雷伯菌;ESBLs检测[Abstract] Objective To study the detection and drug resistance of Klebsiella pneumoniae ESBLs in the lower respiratory tract. Methods collected in April 2014 to 120 cases in January 2016 by the bacteria identification and susceptibility testing analysis of Klebsiella pneumoniae were used as the research objects, using the instrument method and double disk synergy test on ESBLs. Results the detection rate of Klebsiella pneumoniae in intensive care unit was 15.36%, the infection rate was8.02%, the infection site was mainly in patients with respiratory tract, accounting for 38.6%. In this study, 120 strains of Klebsiella pneumoniae were detected. The positive rate of ESBL was 40, andthe positive rate was 33.33%. Conclusion ESBLs is the resistance mechanism of Klebsiella pneumoniae to beta[Key words] respiratory pneumonia; Klebsiella pneumoniae; ESBLs detectionESBL就是超光谱β-内酰胺酶,其是介导格兰阴性杆菌对于β-内酰胺类抗生素耐药的一个主要机制[1]。
肺炎克雷伯菌是医院感染常见的条件致病菌。
临床肺炎克雷伯菌对第三代头孢菌素及单环β-内酰胺类抗生素敏感性降低,主要原因是产超广谱β-内酰胺酶。
A类超广谱β-内酰胺酶(Extend-Spectrum β-Lactamases,ESBLs)在克雷伯菌、大肠杆菌为代表的肠杆菌科细胞中最为多见,包括TEM型、SHV型、non-TEM、non-SHV型三类,CTX-M-ESBLs是non-TEM、non-SHV型的重要代表。
本文对多重耐药的肺炎克雷伯菌临床株KP9941产超广谱β-内酰胺酶的耐药机制进行研究。
材料与方法一、材料(一)菌株1.测试菌株KP9941是1999年自我院一患者痰标本中分离获得。
菌株鉴定采用AP120E(BioMerieux,Marcy L‘Etoile,France)系统。
2.参考菌株ATCC25922,本实验室保存。
E.coli J53-2(SHV-1),Wu,S.W.博士惠赠,E.coli J53-2(TEM-4),沈定霞教授惠赠,E.coli J53-2(SHV-3),,王睿教授惠赠。
(二)药敏纸片奥格门丁(阿莫西林+克拉维酸,AMC,20μg/10μg),头孢他定(CAZ,30μg),头孢噻肟(CTX,30μg),头孢曲松(CRO,30μg),亚胺培南(IPM,10μg)等为Oxoid公司产品。
氨曲南(ATM,30μg),Bristol-Myers Squibb公司产品。
环丙沙星(CIP,5μg),庆大霉素(Gm,10μg)纸片购自北京药物生物制品检定所。
(三)工具酶与DNA分子量参照物PCR缓冲液、dNTPs、Taq DNA聚合酶购自Takara生物工程公司。
限制内切酶NheI(G‘CTAGC)购自美国MBI公司。
DNA分子量参照物DL-2000购自Takara生物工程公司。
(四)PCR纯化试剂盒:Wizard PCR Preps DNA Purification System(Promega)二、方法(一)琼脂纸片扩散法(Kirby-Bauer,K-B法)药物敏感试验应用K-B法测定临床菌株KP9941对抗菌药物的敏感性,药敏实验培养基为Mueller-Hinton琼脂培养基(M-H,OXOID公司)。
药敏判定标准遵照美国临床实验室标准化委员会(NCCLS)规定执行。
(二)双纸片协同试验(DDST)挑取单个新鲜菌落,置于灭菌生理盐水中混匀,用麦氏比浊管比浊至0.5×108,无菌棉签将待测菌液均匀涂布在厚度约为4mm的M-H琼脂上。
在平皿中央放置AMC纸片,四周放置四种三代头孢菌素纸片,三代头孢菌素纸片与AMC纸片中心距离约为25mm。
温箱35℃孵育16~18小时后读取结果。
如果三代头孢菌素纸片邻近AMC纸片侧的抑菌环增大(≥5mm),视为产ESBLs阳性菌株。
(三)细菌总DNA提取参照Pitout JDD方法提取细菌总DNA。
取2μl提取物作为PCR模板。
(四)PCR扩增根据GenBank和EMBL公布的blaTEM DNA、blaSHV DNA和blaCTX-M-DNA序列分别设计合成3对特异性引物 TP1,TP2;SP1,SP2;M1,M2(上海生工生物工程有限公司合成),分别扩增349bp、1014bp、551bp长的片段。
TP1:5‘CAGCGAATTCAGTTCTGCTATGTGG3‘,TP2:5‘ATTGCTGCAGGCATCGTGGT3‘。
SP1:5‘CGCCGGGTTATTCTTATTTGTCGC3‘,SP2:5‘TCTTTCCGATGCCGCCGCCAGTCA3‘。
M1:5‘CGCTTTGCGATGTGCAG3‘,M2:5‘ACCGCGATATCGTTGGT3‘。
3对引物分别经GeneBank B1AST软件进行同源性分析,与GeneBank核酸数据库中非目的序列无同源性。
PCR反应体系(50μl):10×Taq酶缓冲液5μl,引物各100pmol,4×dNTPs 100μmol/L模板NA 2μl,Taq酶2.5U。
PCR扩增blaTEM DNA即预变性94℃ 5分钟。
变性94℃ 45秒,复性55℃ 45秒,延伸72℃ 60秒,共30循环。
最后,72℃延伸5分钟,PCR扩增blaSHV DNA复性55℃,PCR扩增blaCTX-M-ESBLs复性52℃。
PCR产物在10%的琼脂糖凝胶上电泳,在波长254nm的紫外灯下检测扩增结果。
大肠埃希菌ATCC25922作为阴性对照,E.coli J53-2(TEM-4)和E.coli J53-2(SHV-3)的细菌总DNA分别作为blaTEM DNA、blaSHV DNA的阳性对照。
(五)PCR-RFLP(限制性片段长度多态性)PCR产物纯化参照Wizard PCR Preps DNA Purification System使用说明进行。
限制内切酶NheI(G‘ CTAGC)对blaSHV DNA扩增产物1014bp片段进行酶切反应。
反应体系20μl:取blaSHV DNA PCR产物10μl,10×RE Buffer Y+/T ANqo TM(含BSA)2μl,限制内切酶NheI 1μl(10U/μl),ddH2O7μl37℃孵育2小时。
酶切产物在1.0%的琼脂糖凝胶电泳上分析。
E.coli J53-2(SHV-1)及E.coli J53-2(SHV-3)的PCR产物分别作为酶切反应阴性对照和阳性对照。
(六)DNA序列分析:采用ABI PRISM 377型DNA测序仪进行DNA序列分析。
四色荧光末端标记,双脱氧法测定DNA序列,正向及反向各测一次。
结果一、K-B法检测临床分离株表型发现KP9941对头孢他定中度敏感,对头孢噻肟,头孢曲松,氨曲南,环丙沙星,庆大霉素等耐药,仅对亚胺培南敏感。
大肠埃希菌ATCC25922的各抗生素抑菌圈直径均在质控范围内。
二、DDST试验检测临床分离株KP9941发现头孢他定,头孢噻肟,头孢曲松,氨曲南与奥格门丁纸片协同现象均阳性。
三、PCR扩增blaTEM DNA、blaSHV DNA及blaCTX-M-ESBLs以TP1、TP2为引物扩增blaTEM β-内酰胺酶基因发现阳性对照株E.coli J53-2(TEM-4)出现349bp长的blaTEM DNA扩增片段,而KP9941菌株及阴性对照株大肠埃希菌ATCC25922未出现扩增条带。
以SP1、SP2为引物扩增blaSHV DNA,发现阳性对照株E.coli J53-2(SHV-1)、E.coli J53-2(SHV-3)和KP9941均出现1014bp长的扩增片段,而阴性对照株大肠埃希菌ATCC25922未出现扩增片段。
以M1、M2为引物扩增blaCTX-M-ESBLs发现KP9941出现551bp的扩增片段,而阴性对照株E.coli J53-2(TEM-4)和E.coli J53-2(SHV-3)未发现扩增条带。
四、PCR-RFLP检测blaSHV DNA G827A突变(即氨基酸G238S替代)blaSHV-1 DNA扩增片段1014bp中不含有NheI限制位点,而blaSHV-ESBLs在nt827发生G A突变(G827A即G238S),产生一个NheI(G‘CTAGC)限制位点,在NheI限制内切酶作用下1014bp片段被切成771bp和243bp,可检测blaSHV-ESBLs G827A的突变。
本实验用NheI进行酶切分析发现阳性对照株E.coli J53-2(SHV-3)酶切后出现771bp和243bp两个片段,阴性对照株E.coli J53-2(SHV-1)及KP9941均未被切开。
五、序列分析:对KP9941的blaSHV DNA 的PCR扩增片段进行序列分析发现与blaSHV-1 DNA高度同源,第238位氨基酸为甘氨酸,未发生突变,其它blaSHV-ESBLs突变位点如39、69、104、164、205、237、240、244、265、276均未见改变。
对KP9941的blaCTX-M-ESBLs的PCR扩增片段进行序列分析发现该序列中498bp片段与blaCTX-M-1同源性高达98%,共8个核苷酸改变,即A337G,T375C,G411A,T489G,T644G,T671C,T740A,G810C。
与blaCTX-M-12同源性高达99%,仅有1个核苷酸改变G810C(附图)。
氨基酸序列分析表明KP9941的CTX-M-ESBLs与CTX-M-12的同源性最高,达99%,仅有一个氨基酸改变,即A250P,第250位丙氨酸(A)被苯丙氨酸(P)替代。
该CTX-M-ESBLs与CTX-M-3氨基酸序列的同源性是98%,4个核苷酸不同引起2个氨基酸替代即N92S(N,门冬酰胺),和A250P。
与CTX-M-1氨基酸序列的同源性为97%,有4个氨基酸替代即N92S,D117N(D,门冬氨酸),S143A和A250P。
总之,KP9941的blaCTX-M-ESBLs与CTX-M亚组1(如CTX-M-1,CTX-M-3,CTX-M-12)同源性最高,达97%~99%,属于CTX-M亚组1。
与CTX-M亚组2(CTX-M-2,CTX-M-4,Toho-1等CTX-M亚组3(Toho-2,CTX-M-13等)和CTX-M亚组4(CTX-M-8)的同源性在68%~86%之间。
讨论自1983年德国首次报导分离出产ESBLs的克雷伯菌以来,ESBLs目前已发现100多种。
国内细菌耐药性监测,上海地区1988~1998年内肺炎克雷伯菌对头孢噻肟和头孢他定耐药的菌株从2%和13%上升为31%和33%。
世界发现的产ESBLs的肺炎克雷伯菌以SHV-ESBLs为主,亦有TEM-ESBLs等其它类型。
blaSHV-ESBLs是由相应的广谱酶基因blaSHV-1衍生而来,在国外报道的blaSHV-ESBLs中,绝大多数都有G238S位点的突变,该点对扩大β-内酰胺酶的活性区、增加酶与底物的亲和力、降低Km值都有重要意义。
本次对一株多重耐药的肺炎克雷伯菌KP9941进行三种ESBLs的研究,未发现存在TEM DNA,发现存在SHV DNA。
用PCR-RFLP方法分析KP9941的blaSHV DNA,未发现G238S位点的突变,blaSHV DNA的序列分析发现与blaSHV-1高度一致,并证实238位为甘氨酸。
其它blaSHV-ESBLs 突变位点如39、69、104、164、205、237和240位均未见改变。
SHV-ESBLs目前已发现近30种,我国曾报道过产SHV-2型ESBLs的聚团肠杆菌。
近年来,非TEM、非SHV型ESBLs 种类数量不断增加,包括CTX-M、PER,VEB等类型[3,8,13]。