红掌组织培养研究
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红掌的组织培养技术作者:宋朝辉胡亦民来源:《现代园艺》2010年第11期红掌(Anthurium andraeanum)又名花烛、安组花,是当今世界著名的切花和盆栽花卉之一。
但红掌的传统繁殖方式为分株繁殖,繁殖系数低、速度慢,不能满足日益增长的市场需求。
组织培养是解决红掌快繁的有效途径,现将该技术介绍如下:1 外植体的选择与处理目前,用于红掌组培的外植体材料很多,顶芽、茎段、叶片、叶柄等均可获得再生植株,其中叶片尤其是带主脉的嫩叶是较理想的外植体。
外植体要选自生长旺盛、无病虫害的健壮植株,使用前需进行消毒处理,常规消毒方法是:用清水冲洗掉外植体表面灰尘,用沾有洗洁精的软毛刷轻轻刷洗材料表面,再用自来水冲洗15分钟。
用75%乙醇表面消毒30秒,转入1g/L的升汞溶液中处理8~10分钟,用灭菌水冲洗5~6次,再用锋利手术刀迅速把叶片切成0.5cm×1.0cm小块,叶柄切成1~2cm小段,接入已准备好的培养基中。
对于红掌叶片来说,这种消毒方法较好,污染率低于30%。
2 基本培养基的选择组织培养是通过外源营养成分和激素等条件来调控外植体细胞的生长状态,从而诱导萌发,产生较多有效的丛生苗,其目的是否实现,取决于培养基成分和添加激素的种类和浓度。
红掌组织培养所采用的基本培养基包括MS、1/2MS、N6、B5、KC和Nitsch等,其中1/2MS培养基对红掌愈伤组织诱导效果最好。
不同添加物对红掌愈伤组织诱导效率也有影响,与葡萄糖相比,蔗糖和食用白砂糖更有利于愈伤组织的诱导。
红掌的组织培养一般采用蔗糖作为适宜碳源。
培养基中每L加入30g蔗糖,5g琼脂,121℃高温灭菌25分钟。
3 外源激素的选择生长调节物质是培养基中不可缺少的关键物质,其用量很少,但对外植体愈伤组织的诱导和器官分化起着重要的调节作用,其中以生长素类和细胞分裂素最为常用。
目前常使用的外源主要激素是生长素类(如IAA、2,4-D和NAA)和细胞分裂素类(如BA、ZT、KT)。
荷兰切花红掌‘爱维特粉’组培技术研究黄晶(南京鹂岛现代农业发展有限公司,江苏南京210000)摘要:以荷兰切花品种‘爱维特粉’红掌为材料,研究不同的培养基对‘爱维特粉’红掌的愈伤组织诱导、不定芽诱导及诱导生根的影响。
结果表明,叶柄是最适宜切花品种‘爱维特粉’红掌诱导产生愈伤组织的外植体,而适宜的愈伤组织诱导培养基为1/2MS +0.5mg/L 噻苯隆(TDZ )+30g/L 蔗糖;不定芽诱导培养基为MS+0.5mg/L 吡效隆(CPPU )+25g/L 蔗糖,生根培养基为1/2MS+0.2mg/L IBA+30g/L 蔗糖。
关键词:切花红掌;愈伤组织诱导;不定芽诱导;生根振荡消毒30s ,再用无菌水冲洗掉外植体上酒精,反复3次以上,接着用0.1%次氯酸溶液浸泡,振荡消毒5min ,注意不要损伤叶片,最后用无菌水冲洗掉外植体上消毒液,反复5次以上[4]。
1.2.2诱导愈伤组织。
将消毒完全后的带叶柄的叶片和气生根用无菌纸擦干水分,先将叶片去除边缘和破损的部分,选取靠近叶脉处的叶片,切成1cm 2的小块,将叶柄和气生根去除两端,选取中间部位,切成1cm 的小段,分别接种在4种诱导愈伤组织培养基上[4]:①1/2MS+0.05mg/L TDZ ;②1/2MS+0.1mg/L TDZ ;③1/2MS+0.5mg/L TDZ ;④1/2MS+1.0mg/L TDZ 。
共4组处理,叶片处理的标记为A 1~A 4,叶柄处理的记为B 1~B 4,气生根处理的标记为C 1~C 4。
每个培养瓶里接种5个样本,每组接种10瓶,先暗处理30d ,温度23℃,然后再光照培养30d ,温度23℃,14h/d 光照,光照强度1000~2000Lux ,重复3次。
60d 后统计愈伤组织诱导情况时,计算愈伤组织诱导率[5]。
污染率(%)=污染个数/接种个数×100;褐化率(%)=褐化个数/接种个数×100;诱导率(%)=诱导出愈伤组织个数/接种个数×1001.2.3不定芽诱导。
天津农业科学 in Agricultural Sciences ・植物生理与生物技术 噻苯隆(TDZ)在红掌组织培养中的应用 王勇t,任淼 ,杨元 (1.天津市园林花卉示范中心,天津300112;2.天津市花苗木服务中心,天津300191)
摘要:研究了噻苯隆(TDZ)在红掌外植体诱导及增殖继代过程中的作用。结果表明,在外植体诱导阶段,添加0.1 mg・L 的 TDZ,可以缩短诱导时间,提高诱导率。TDZ浓度大于0.1 mg・L 会导致愈伤组织和分化芽的畸形发展,而且会影响红掌组培 苗移栽之后的长势。在愈伤增殖阶段,TDZ的使用没有明显的促进作用。 关键词:噻苯隆;红掌;组培苗 中圈分类号:¥682.3 文献标识码:A DOI编码:10.3969 ̄.issn.1006-6500.2013.09.004
Application of Thidiazuron on Tissue Culture In Anthurium andraeanum WANG Yong1。REN Miao2,YANG Yuan (1.Tianjin Garden Howem Demonstration Centre,Tianjin 300112,China;2.Tianjin Howem Nursery Stock Services Centre,Tianjin 300191,China) Abstract:Thidiazuron(TDZ)application on tissue culture at the stage of explant induction and proliferation in A nthurium (1ndraeanum was studied.The results showed that thidiazuron(TDZ)could sho ̄en the time of induce callus formation and raise induction efficiency at the stage of explant induction with the concentration of 0.1 mg・L—TDZ added.It would lead to callus and buds abnormM development when TDZ concentration>0.1 mg・L~.In addition.it also affected growing luxuriantly after the seedlings transplanted.However,there was no distinct acceleration when thidiazuron(TDZ)using at the stage of callus proliferation. Key words:thidiazuron(TDZ);A nthurium andraeanum;in vitro seedling
江苏农业科学2009年第2期一67一红掌组织培养研究束晓春,彭峰,李乃伟,何树兰,夏冰(江苏省中国科学院植物研究所,江苏南京210014)
摘要:采用叶柄为外植体,对红掌盆栽品种A^∞m组织培养的方法进行了研究,结果表明:(1)在春季和秋冬季分别进行初代培养时,诱导培养基中的激素水平不同,春季适宜的激素组合为6一BA1.O—1.5mg/L+2,4一D0.15—0.2mg/L,秋冬季适宜的激素处理为6一BAI.O—1.5Ing/L+2,4一DO.4一O.5Ing/L,秋冬季适宜的诱导培养基中2,
4一D水平比春季的高。(2)愈伤诱导培养的最佳基本培养基和蔗糖浓度分另lJ为1/2Ms和30∥L;光照是该品种红掌愈伤发生的必要条件。(3)外植体取材季节对红掌愈伤组织的分化增殖和试管苗的生根无明显的影响;适宜的愈伤分化和不定芽增殖配方为Ms+6一BAO.5mg/L+IBAo.1mg/L,适宜的生根配方为Ms+mA1.0Ⅱ∥L。
关键词:红掌;组织培养;取材季节;初代培养;分化培养;生根培养中图分类号:s682.390.36文献标志码:A文章编号:1002一1302f2009)02一∞67—02
红掌(A眦,I删啪口n西∞o,l啪)为天南星科花烛属多年生附生常绿草本植物,原产于中南美洲哥伦比亚西南部,佛焰花序,其佛焰花苞硕大肥厚具蜡质色泽,有红、粉、白、绿、双色等,色泽鲜艳,造形奇特,应用范围广,经济价值高,是目前全球发展快、需求量较大的高档花卉品种。红掌可用种子和分株繁殖,但种子繁殖要经人工授粉才能获得种子,耗费人力,且进入开花期时间较长,种子宜随采随播.保存时间过长会影响其发芽率;而分株繁殖系数较低,很难满足规模化生产的需求。运用组织培养与快速繁殖技术能够快速、大量生产整齐一致的优质种苗。目前,组织培养是我国红掌快速繁殖和商业化生产的唯一途径。前人关于红掌组培的研究未见涉及外植体取材季节对组培条件的影响¨“J,本研究通过大量试验探索出了红掌组织培养中愈伤诱导、愈伤分化和不定芽增殖以及试管苗生根的适宜培养基配方和适宜的培养条件,着重探讨了不同外植体取材季节对红掌组培条件的影响,为红掌快速繁殖提供技术支持和参考依据。l材料与方法1.1材料及消毒方法取中山植物园温室红掌盆栽品种Arizo吣的幼嫩叶柄(叶片尚未展开),用棉球蘸水擦净表面,置中性洗涤剂中振荡15Inin,自来水冲洗30IIlin,转入超净台里操作,75%酒精浸泡108,无菌水冲洗1次,再用O.1%升汞振荡9rIlin,无菌水冲洗5—6次。无菌吸水纸吸干,切除两端与消毒液接触的伤口,然后将叶柄切成约1.5cm长的小段作为接种用的外植体。1.2愈伤诱导试验1.2.1春季试验春季试验在3月初取材进行初代培养。(1)分别选取l/4MS、l/2MS、3/4MS、MS4种基本培养基(均含6一BA1.Omg/L,2,4一D0.2Ing/L,蔗糖30g/L)作为愈收稿日期:2008一12—30作者简介:束晓春(1982一).女.江苏淮安人.研究实习员.主要从事园林植物组织培养方面的研究。1'el:(025)84347lll;E.一rnail:iBl—be@163.伽。伤诱导培养基,筛选出合适基本培养基。(2)在1/2Ms培养基中(6一BA1.0—ng/L,蔗糖30g/L),分别添加5种浓度的
2,4一D(0、O.1、O.15、0.2、O.25m吕/L)作为愈伤诱导培养基,
筛选出合适的2.4一D浓度范围。(3)在l/2Ms培养基中(2,4一DO.2I哕L,蔗糖30∥L)分另Ⅱ添加5种浓度的6一BA
(0、0.5、1.O、1.5、2.Oll影L)作为愈伤诱导培养基,筛选出合适的6一BA浓度范围。(4)在l/2Ms培养基中(6一BA1.O
mg/L,2,4一D0.2mg/L)分别添加3种浓度的蔗糖(20、30、40g/L),筛选出合适的蔗糖浓度。(5)以l/2Ms(6一BA1.Omg/L.2。4一DO.2mg/L,蔗糖30g/L)作为愈伤诱导培养基,分别进行光培养和暗培养.筛选出合适的光照条件。上述试验中,每种处理接种20瓶,每瓶接种一个外植体。各培养基均含琼脂6.5g/L,pH值5.6。培养条件为温度(25±1)℃。,圯培养条件为光照12h/d,光强3000
b【。
1.2.2秋冬季试验秋冬季试验在10月中旬取材进行初代培养。取同样材料的幼嫩叶柄为外植体.接种入添加不同浓度的6一BA和2,4一D在l/2Ms培养基(含蔗糖30g/L。pH值5.6)上进行单因素试验.以探索适宜的激索范围,试验采用光培养。培养的光照和温度条件与春季试验相同。当采用与春季试验相同的激素梯度水平时.未能成功诱导出愈伤组织。提高2,4一D浓度梯度水平后获得了愈伤组织。具体方法如下:(1)在l/2Ms培养基中(含蔗糖30∥L;6一BA1.O
ll∥L,pH值5.6)分别添加五种浓度的2,4一D(O.25、0.3、
O.4、0.5、o.6mg/L).作为愈伤诱导培养基,筛选出合适的2,4一D浓度范围。(2)在l/2MS培养基中(含蔗糖30吕/L,2,4一D0.4叫L,pH值5.6)分别添加五种浓度的6一BA(O、
O.5、1.O、1.5、2.0m∥L)作为愈伤诱导培养基,筛选出合适的
6一BA浓度范围。上述试验中,每个处理接种20瓶,每瓶接种1个外植体。各培养基均含琼脂6.5g/L,pH值5.6。培养条件为光照12
h/d,光强3000lx,温度(25±1)℃。
1.2.3重复试验在第二、三、四年,分别在春季(3月初)和秋冬季(10月中旬)进行了愈伤诱导的重复试验。共得到4组重复数据。
万方数据~68一江苏农业科学2009年第2期1.3愈伤分化和不定芽增殖试验选取生长良好且状态一至的愈伤组织.切成同样大小直径0.5cm左右的的小块.接种至添加不同激素的分化和增殖培养基中。每个处理接种8瓶,每瓶接种一块愈伤。培养基配方如下:MS+6一BA1.OⅡIg/L+2,4一DO.1lng/L;MS+6
一BA1.O瑚lg/L+IBA0.1皿Ig/L;MS+6一BA0.5埘Ig/L+2.4
一DO.1mg/L;MS+6一BAO.5mg/L+IBA0.1Ⅱlg/L。
春季和秋冬季初代培养所获得的愈伤,均采用上述四种配方进行愈伤分化和不定芽增殖试验,各培养基中均含蔗糖30g/L、琼脂6.5g/L,pH值5.6。培养条件为光照12
h/d,光
强3000lx,温度(25±1)℃。
在第二、三、四年。分别对春季和秋冬季初代培养所得的愈伤组织进行了愈伤分化和不定芽增殖的重复试验,共得到4组重复数据。1.4生根试验将高度1.5cm以上已分化出完整茎叶的不定芽切下,转接到不同的生根培养基上。每个处理接种2D瓶,每瓶接种2株试管苗。培养基配方如下:l/2Ms+IBAO.5Ⅱ∥L;l/2Ms
+IBA1.O硼吗/L;MS+lBA0.5珊lg/L;MS+IBA1.Orn∥L。
春季和秋冬季取材的外植体所获试管苗的生根试验,均采用上述四种配方,各培养基中均含蔗糖30g/L,琼脂6.5g/L,pH值5.6。培养条件为光照12h/d、光强3000l】【、温度(25±1)℃。在第二、三、四年,分别对春季和秋冬季取材的外植体所得的试管苗进行了生根的重复试验,共得到4组重复数据。
2结果与分析2.1愈伤组织的诱导试验分别选择在春季(3月初)和秋冬季(10月中旬)进行。在第二、三、四年,分别在春季(3月初)和秋冬季(10月中旬)进行了愈伤诱导的重复试验。共得到4组重复数据。结果见表l、表2、表3。在春季试验中,通过单因素试验探索出了适宜的基本培养基、蔗糖浓度、光照和激素水平,经邓肯氏多重极差测验分析,以1/2MS为基本培养基的愈伤发生率最高;30g/L的蔗糖浓度效果最好;光照是该品种红掌愈伤发生的必要条件,黑暗条件下的愈伤发生率为0;最佳激素处理为6一BA1.O一1.5nlg/L+2,4一D0.15—0.2mg/L。光照条件下,在上述培养基上培养的叶柄外植体,接种lO—14d后开始膨大,在形态学下端切口处开始形成黄绿色的愈伤组织,愈伤状态致密,表面呈现沙粒状。在秋冬季(10月中旬)取同样的外植体,在与春季试验所得的最佳基本培养基l/2Ms、蔗糖和光照条件下进行了激素种类和梯度水平的单因素试验,采用与春季试验相同的激素梯度水平时,未能诱导出愈伤。在提高了2,4一D的浓度梯度水平之后,成功获得了愈伤组织,最佳的激素处理为6一BA1.O—1.5IIlg/L+2,4一D0.4一O.5n|g/L。最终得出春季适宜的诱导培养基是l/2Ms+6一BA1.O—1.5mg/L+2,4一DO.15—0.2mg/L;秋冬季适宜的诱导培养基是I/2Ms+6一BA1.0一1.5皿Ig/L+2,4一DO.4一O.5mg/L。表l春季试验中不同的激素处理对叙伤诱导的影响注:平均数经邓肯氏多重撅差测验.同一列数字后的大写和小写字母分别表示在O.0l%和O.05%水平上的差异显著性。襄2春季试验中不同的基本培养基、蔗糖和光照处理对廒伤诱导的影晌注:平均数经邓肯氏多重极差测验,同一列数字后的大写和小写字母分别表示在o.Ol%和0.05%水平上的差异显著性。
寰3秋冬季试验中不同的激素处理对愈伤诱导的影响
注:平均数经邓肯氏多重极差测验,同一列数字后的大写和小写字母分别表示在O.01%和0.晒%水平上的差异显著性。
2.2愈伤组织的分化和不定芽增殖在培养基(Ms+6一BAO.5II拶7L+IBAO.1Hlg/L)上愈伤组织分化效果最好,20d后形成具有完整茎叶的健康小植株。把这些基部带有愈伤组织块的植株切割分离。接种到新的相同培养基上,则会从基部的愈伤组织上不断发生不(下转第69页)
万方数据