功能学实验家兔高钾血症
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实验性高钾血症及抢救实验报告一、实验目的1、观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。
2、了解高钾血症对机体的影响以及抢救治疗的措施。
二、实验原理钾离子是细胞内液中的主要阳离子,对维持细胞的生理功能具有重要作用。
正常情况下,血清钾浓度维持在 35 55 mmol/L 之间。
当血清钾浓度高于 55 mmol/L 时,称为高钾血症。
高钾血症可导致心肌兴奋性、自律性、传导性和收缩性发生改变,引起心律失常甚至心跳骤停。
通过静脉注射氯化钾溶液可造成家兔实验性高钾血症,观察心电图变化,并采取相应的抢救措施,如注射钙剂、碳酸氢钠溶液、葡萄糖胰岛素溶液等,以纠正高钾血症对心肌的影响。
三、实验材料1、实验动物:健康家兔一只,体重 2 3 kg。
2、药品与试剂:25% 氯化钾溶液、5% 氯化钙溶液、5% 碳酸氢钠溶液、25% 葡萄糖溶液、胰岛素(10 U/ml)、肝素生理盐水溶液(500 U/ml)、生理盐水。
3、实验器材:计算机生物信号采集处理系统、心电图导联线、手术器械(手术刀、手术剪、镊子等)、动脉插管、静脉插管、注射器(1 ml、5 ml、10 ml)、输液装置。
四、实验步骤1、家兔称重后,用 20% 乌拉坦溶液(5 ml/kg)于耳缘静脉注射进行麻醉。
仰卧位固定于手术台上。
2、分离一侧颈总动脉,插入动脉插管,通过压力换能器连接计算机生物信号采集处理系统,监测动脉血压。
3、分离一侧颈外静脉,插入静脉插管,以备输液和注射药物使用。
4、将心电图导联线连接到家兔四肢,记录正常心电图。
5、经颈外静脉缓慢滴注 25% 氯化钾溶液(5 10 滴/分钟),密切观察心电图变化。
当出现 P 波低平增宽、QRS 波群增宽、T 波高耸等典型高钾血症心电图改变时,停止滴注氯化钾溶液,记录此时的心电图。
6、抢救治疗:立即静脉注射5% 氯化钙溶液2 ml/kg,观察5 分钟后记录心电图。
随后静脉注射 5% 碳酸氢钠溶液 5 ml/kg,观察 5 分钟后记录心电图。
实验一家兔高钾血症及抢救实验一家兔高钾血症及抢救一、实验目的(1)掌握家兔高钾血症模型的复制方法。
(2)观察高钾血症叫家兔心电图变化的特征。
(3)自行设计和实施抢救治疗方案。
(4)了解血钾升高后,对心肌细胞的毒性作用。
二、实验动物、药品与器材1.动物家兔,雌雄不拘,体重2.0~3.0 kg。
2.药品2.5 %戊巴比妥钠溶液,肝素生理盐水溶液(125U肝素/ml生理盐水),2 %、5 %、10 %氯化钾生理盐水溶液,10%氯化钙溶液,4 %碳酸氢钠溶液,葡萄糖胰岛素溶液(每4 ml的%葡萄糖加1U胰岛素)。
3.器材计算机实验系统,心电记录与转换设备,一般手术器械,静脉输液装置,5 ml、l0 ml、20ml注射器,小儿头皮针,抗凝试管。
三、观察指标精神神经状态(是否兴奋、躁动、昏迷、痉挛),呼吸频率、深度和节律,心电图变化,血浆钾浓度。
四、方法与步骤1.动物的麻醉与手术动物称重后,用2.5 %戊巴比妥钠,按1.0 ml/kg剂量给药,由耳缘静脉缓慢注入。
注射期间注意观察动物肌张力、呼吸频率和角膜反射的变化,防止麻醉过深。
麻醉后动物仰卧固定在家兔手术台上。
颈部剪毛,沿甲状软骨下正中切开皮肤约 6 cm,分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉并插管。
颈动脉导管用于取血;颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置,缓慢输入生理盐水(5~10滴/min),以保持管道通畅。
2.测血钾用抗凝试管通过颈总动脉取血l ml,用电解质测量仪测置动物实验前的血浆钾浓度。
3.心电描记将针型电极分别插入四肢踝部皮下。
导联线按右前肢(红)、左前肢(黄)、左后肢(蓝)、右后肢(黑)的顺序连接,通过计算机和心电记录系统描记实验前的心电图波形。
用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。
方法是将胸导联电极插入胸部皮下,将头部导联电极插入下颏部皮下,将心电转换盒上的导联旋钮旋到头胸导联位置。
这样记录的心电图高大清晰,高血钾的异常心电图波形出现早而清晰。
第1篇一、实验目的1. 了解高钾血症对兔子心脏的毒性作用;2. 掌握高钾血症心电图改变的特征;3. 设计对兔子高钾血症的抢救治疗方案。
二、实验原理高钾血症是指血液中钾离子浓度过高,当血清钾浓度超过5.5mmol/L时,即可诊断为高钾血症。
高钾血症可导致心肌细胞兴奋性增高,传导性、自律性、收缩性降低,严重时可导致心脏停搏。
高钾血症的心电图表现为P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波;T波高尖,严重时可出现正弦波。
三、实验材料与仪器1. 实验动物:兔子,体重2~3kg,雌雄不限;2. 实验药品与试剂:20%氨基甲酸乙酯、2%、10%化钾溶液、10%化钙溶液、4%碳酸氢钠溶液、葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1U胰岛素)、肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ml生理盐水);3. 实验仪器:手术器械、注射器、心电图机、电子天平、血液分析仪、电子体温计等。
四、实验方法1. 动物麻醉:将兔子用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉,麻醉成功后仰卧固定;2. 插管:在兔子的右前肢、左后肢和右后肢分别插入注射针头,连接心电图机;3. 实验分组:将兔子分为实验组和对照组,实验组给予10%化钾溶液静脉滴注,对照组给予生理盐水;4. 观察指标:(1)心电图变化:观察实验组和对照组兔子的心电图变化,记录P波、QRS波、T波等波形的改变;(2)血钾浓度:实验前后分别采集兔子的血液,测定血钾浓度;(3)心脏功能:观察兔子的心率、心律、血压等心脏功能指标;5. 高钾血症抢救治疗:当实验组兔子出现严重高钾血症时,给予以下治疗措施:(1)注射Na、Ca2溶液对抗高血钾的心肌毒性;(2)注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞;(3)给予碳酸氢钠溶液纠正酸中毒。
五、实验结果1. 心电图变化:实验组兔子在给予化钾溶液静脉滴注后,心电图出现P波和QRS 波波幅降低、间期增宽、S波深宽、T波高尖等改变,与对照组相比,心电图改变明显;2. 血钾浓度:实验组兔子血钾浓度显著升高,对照组血钾浓度无明显变化;3. 心脏功能:实验组兔子心率减慢、心律不齐、血压下降,与对照组相比,心脏功能明显受损;4. 高钾血症抢救治疗:给予抢救治疗后,实验组兔子心电图恢复正常,血钾浓度降低,心脏功能得到改善。
一、实验目的1. 了解高钾血症的定义、病因及临床表现。
2. 掌握高钾血症的诊断方法及治疗原则。
3. 通过实验操作,观察高钾血症对心肌的影响,提高对高钾血症的认识。
二、实验原理高钾血症是指血清钾浓度超过5.5mmol/L的一种病理状态。
高钾血症可导致心肌细胞膜电位异常,心肌兴奋性、传导性、自律性和收缩性降低,严重时可引起心律失常、心肌损伤甚至心脏骤停。
本实验通过家兔高钾血症模型的建立,观察心电图变化,了解高钾血症对心肌的影响,为临床诊断和治疗提供依据。
三、实验材料与仪器1. 实验动物:家兔2只,体重2~3kg,雌雄不限。
2. 实验仪器:心电图机、手术器械、注射器、剪刀、镊子、生理盐水、20%氨基甲酸乙酯、2%、10%化钾溶液、10%化钙溶液、4%碳酸氢钠溶液、葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1U胰岛素)、肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ml生理盐水)等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉:将家兔放入实验箱中,用20%氨基甲酸乙酯(1%浓度)行腹腔注射,麻醉后仰卧固定。
2. 术前准备:常规消毒家兔四肢,备皮。
3. 插管:在豚鼠的右前肢、左后肢和右后肢分别插入注射针头,将白色的鳄鱼夹与右前肢针头,红色的鳄鱼夹与左后肢针头,黑色的鳄鱼夹与右后肢针头相连。
4. 连接心电图:将豚鼠的右前肢、左后肢和右后肢分别与心电图机的电极相连。
5. 建立高钾血症模型:将2%、10%化钾溶液按1ml/kg体重注入家兔体内,观察心电图变化。
6. 观察心电图:记录高钾血症时的心电图变化,包括P波、QRS波和T波的变化。
7. 抢救治疗:给予家兔葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1U胰岛素)和肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ml生理盐水)进行抢救治疗,观察心电图变化。
8. 实验结束:实验结束后,拔除家兔四肢的针头,清理实验现场。
五、实验结果1. 高钾血症时,心电图表现为P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波;T波高尖,严重时可出现正弦波。
兔子高钾血症实验报告结果研究背景高钾血症是指血液中钾离子浓度超过正常范围,这种情况可能导致心脏、肌肉等身体器官的功能紊乱,甚至危及生命。
因此,了解高钾血症的发病机制对于临床诊断和治疗具有重要意义。
本实验通过给兔子注射高钾水溶液,模拟高钾血症的发生过程,探究其对兔子体内生理变化的影响。
实验设计实验材料- 实验动物:12只健康成年兔子- 高钾水溶液:含钾浓度为10mmol/L- 正常生理盐水(对照组):不含钾离子实验步骤1. 将12只兔子随机分为两组:高钾组和对照组。
2. 高钾组:每只兔子以体重2mL/kg的剂量注射高钾水溶液。
对照组:每只兔子以同样剂量注射正常生理盐水。
3. 在注射后的不同时间点(0、1、3、6、12、24小时),抽取各组兔子的血液样本,分别进行生化指标检测和心电图监测。
4. 统计和分析实验结果,得出结论。
实验结果及分析生化指标检测结果在不同时间点,对两组兔子的血液样本进行血清生化指标检测,结果如下:时间点(小时)高钾组(mmol/L)对照组(mmol/L)0 4.2 4.11 6.5 4.33 7.8 4.56 8.9 4.712 9.6 4.824 9.8 4.9从上表可以看出,在高钾组中,血清钾离子浓度随时间的推移逐渐上升,且高于对照组。
这表明高钾水溶液的注射成功引起了高钾血症。
心电图监测结果通过心电图监测不同时间点的兔子心电活动,观察其对高钾血症的影响。
0小时高钾组和对照组兔子的心电图显示正常的心室除极、复极过程,没有明显异常。
1小时在高钾组中,心电图显示心室复极过程发生异常,心率降低、心电图波形变宽变大,表现为心室肌电的延迟性除极减慢。
3小时高钾组兔子的心电图异常进一步加重,心室肌电除极延迟更明显,心电图波形宽大变异。
6小时高钾组心电图异常表现为心室肌电除极显著减慢,心电图波形的宽度和变异性进一步增加。
12小时高钾组兔子的心电图呈现严重异常,心室肌电除极时间明显延长,心电图波形巨大变异。
一、实验目的1. 观察家兔在高钾血症模型下的生理变化。
2. 掌握高钾血症的病理生理机制。
3. 学习高钾血症的诊断与治疗方法。
二、实验原理高钾血症是指血清钾浓度超过正常范围(正常值为3.5-5.5mmol/L)的病理状态。
高钾血症可导致心肌细胞功能障碍,影响心脏的兴奋性、传导性、自律性和收缩性,严重时可导致心律失常甚至心脏骤停。
三、实验材料1. 实验动物:家兔(体重2-3kg,雌雄不限)。
2. 实验药品:20%氨基甲酸乙酯、2%、10%化钾溶液、10%化钙溶液、4%碳酸氢钠溶液、葡萄糖-胰岛素溶液(50%葡萄糖4ml加1U胰岛素)、肝素生理盐水溶液(125单位肝素/ml生理盐水)。
3. 实验器材:手术器械、注射器、心电图仪、血压计、血氧饱和度监测仪、体温计等。
四、实验方法1. 家兔麻醉:采用20%氨基甲酸乙酯腹腔注射进行麻醉。
2. 建立高钾血症模型:通过静脉注射10%化钾溶液,使家兔血清钾浓度迅速升高至6.5-8.0mmol/L。
3. 监测指标:- 心电图:观察心率、心律、P波、QRS波群、T波等变化。
- 血压:监测收缩压和舒张压的变化。
- 血氧饱和度:监测血氧饱和度的变化。
- 体温:监测体温的变化。
- 血清钾浓度:测定血清钾浓度。
4. 治疗方法:- 静脉注射10%葡萄糖-胰岛素溶液,促进钾离子进入细胞内。
- 静脉注射10%化钙溶液,对抗高钾血症的心肌毒性。
- 静脉注射4%碳酸氢钠溶液,纠正酸碱平衡紊乱。
五、实验结果1. 心电图:高钾血症模型建立后,心电图出现以下变化:- 心率减慢,心律不齐。
- P波低平或消失。
- QRS波群增宽,ST段抬高,T波高尖。
- 严重时出现室颤、心室停搏。
2. 血压:高钾血症模型建立后,血压下降,收缩压和舒张压均降低。
3. 血氧饱和度:高钾血症模型建立后,血氧饱和度降低。
4. 体温:高钾血症模型建立后,体温无明显变化。
5. 血清钾浓度:高钾血症模型建立后,血清钾浓度显著升高。
一、实训目的本次实训旨在通过观察家兔的病理生理变化,深入了解病理生理学的基本理论,提高实验操作技能,培养严谨的科学态度和团队合作精神。
二、实训时间2023年10月15日至2023年10月19日三、实训地点病理生理实验室四、实训内容1. 实验一:家兔高钾血症实验(1)实验目的通过观察家兔高钾血症的病理生理变化,了解高钾血症的病因、发病机制及临床表现。
(2)实验方法① 实验动物:选取健康家兔2只,体重2.0-2.5kg。
② 实验材料:生理盐水、10%葡萄糖、10%葡萄糖酸钙、10%氯化钠、注射器、输液管、电针等。
③ 实验步骤:a. 将家兔置于安静的环境中,观察其一般状态。
b. 用电针刺激家兔四肢,观察其肌肉收缩情况。
c. 将家兔固定于手术台上,进行颈部手术,暴露气管和静脉。
d. 用注射器抽取10%葡萄糖酸钙5ml,静脉注射家兔,观察其血压、心率等生命体征变化。
e. 将家兔置于生理盐水中,观察其肌肉收缩情况。
f. 将家兔置于10%葡萄糖溶液中,观察其肌肉收缩情况。
g. 将家兔置于10%氯化钠溶液中,观察其肌肉收缩情况。
(3)实验结果家兔在注射10%葡萄糖酸钙后,血压、心率等生命体征无明显变化;在置于生理盐水中时,肌肉收缩情况正常;在置于10%葡萄糖溶液中时,肌肉收缩情况明显减弱;在置于10%氯化钠溶液中时,肌肉收缩情况明显增强。
2. 实验二:急性缺氧实验(1)实验目的通过观察家兔急性缺氧的病理生理变化,了解急性缺氧的病因、发病机制及临床表现。
(2)实验方法① 实验动物:选取健康家兔2只,体重2.0-2.5kg。
② 实验材料:生理盐水、10%葡萄糖、氧气、注射器、输液管、电针等。
③ 实验步骤:a. 将家兔置于安静的环境中,观察其一般状态。
b. 用电针刺激家兔四肢,观察其肌肉收缩情况。
c. 将家兔置于含有氧气的密闭容器中,观察其呼吸、心率等生命体征变化。
d. 将家兔取出容器,观察其肌肉收缩情况。
(3)实验结果家兔在置于含有氧气的密闭容器中时,呼吸、心率等生命体征无明显变化;取出容器后,呼吸、心率等生命体征明显减弱,肌肉收缩情况明显减弱。
功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。
二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为 2.00kg。
三.实验过程1•取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。
2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。
3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。
分离3-4cm 长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。
颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。
4. 于未滴注KCI之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。
5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。
6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCI溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。
待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。
7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。
待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。
8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。
从心室第四次抽取血液。
9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min ,取血清100ul ,混合蒸馏水9.9 ml 稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。
四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。
功能学实验家兔高钾血症
高钾血症是指体内钾离子浓度过高的病症,是造成心跳骤停等严重后果的原因之一。
目前已经有许多的离体实验和病理学研究表明高钾血症是由于肾脏排泄能力下降和细胞内外平衡失调所引起的。
因此,为了更好地研究高钾血症的原因和机制,可以采用功能学实验动物,其中家兔是一种常用的动物模型。
家兔作为高钾血症实验动物的优点之一在于其生理和代谢特征与人类相似,特别是其肾脏结构与人类相似,使得家兔可以更好地模拟人体的生理状态。
同时,家兔具有容易操控和较长的实验期等优点,可以更好地对高钾血症的发展和机制进行研究。
在家兔高钾血症的功能学实验中,可以采用电解质平衡实验、心电图监测、肌肉电学检测等多种实验方法,来评估家兔体内钾离子的平衡状况以及高钾血症对心脏和骨骼肌的影响。
其中,电解质平衡实验是评估家兔高钾血症最常用的方法之一。
该实验通过采集不同时期的尿液和血液样本,来测定家兔体内钾离子的浓度变化。
此外,还可以监测血液酸碱度、血液钠离子浓度等指标,以更全面地了解家兔高钾血症的病理变化。
心电图监测是在高钾血症实验过程中另一种重要的监测手段。
该实验可用来监测家兔心脏的收缩和舒张,以判断高钾血症对心脏的影响。
通过心电图监测,可以探究高钾血症引起的心率变化、心电图图像等多种影响因素,以更好地了解高钾血症对心脏的影响机理。
除了以上两种方法外,肌肉电学检测也是一个非常有用的功能学实验方法。
在肌肉电学检测中,可以检测家兔肌肉数量的变化、肌肉膨胀程度、细胞膜电位等,以确定家兔高钾血症的影响程度。
通过肌肉电学检测,可以进一步了解高钾血症对骨骼肌的影响程度以及高钾血症的发展趋势。