SOP-FF-9-045-C 非无菌产品微生物限度检查:控制菌检查法标准操作规程
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非无菌制剂微生物限度检查操作标准程序起草人日期年月日执行日期2015年12月01日审核人日期年月日颁发部门质保部批准人日期年月日分发部门质保部()生产部()采供部()销售部()设备部()物资部()销售部()行政部()财务部()变更记载:修订号执行日期00 2012年06月01日01 2014年05月01日02 2015年12月01日1. 目的:建立非无菌药品微生物限度检查检验标准操作规程,规范检验操作,确保检验结果准确。
2. 适用范围:适用于本公司所有采用非无菌药品微生物限度检查法测定的供试品。
3. 责任者:QC检验员、QC经理。
4. 正文:4.1 非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法4.1.1 简述微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合规定的微生物限度标准时,应按下述规定进行检验,包括样品的取样量和结果的判断等。
除另有规定外,本法不适用于活菌制剂的检查。
本检查法可采用替代的微生物检查法,包括自动检测方法,但必须证明替代方法等效于药典规定的检查方法。
微生物计数试验应在受控洁净环境下的局部洁净度不低于B 级的单向流空气区域内进行。
检验全过程必须严格遵守无菌操作,防止再污染,防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
单向流空气区域、工作台面及环境应定期进行监测。
如供试品有抗菌活性,应尽可能去除或中和。
供试品检查时, 若使用了中和剂或灭活剂,应确认其有效性及对微生物无毒性。
供试液制备时如果使用了表面活性剂,应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂或灭活剂的相容性。
4.1.2 计数方法计数方法包括平皿法、薄膜过滤法和最可能数法(Most-Probable-NumberMethod,简称MPN 法)。
MPN 法用于微生物计数时精确度较差,但对于某些微生物污染量很小的供试品,MPN 法可能是更适合的方法。
供试品检查时, 应根据供试品理化特性和微生物限度标准等因素选择计数方法,所选的方法必须具备检测充足样品量的能力,以保证所获得的试验结果能够判断供试品是否符合规定。
范围成品、辅料、内包装袋及纯化水的检验。
责任微生物限度检验人员内容本检验操作规程依据中国药典2015年版四部《通则1105 非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法》和《通则1106 非无菌产品微生物限度检查:控制菌检查法》进行检查。
微生物计数法一、计数方法1、微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。
2、计数方法本法包括平皿法、薄膜过滤法。
3、计数培养基适用性检查和供试品计数方法适用性检查供试品微生物计数中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验,以确定采用的方法适合于该产品的微生物计数。
4、菌种及菌液的制备试验用菌株的传代次数不得超过5代(从菌种保藏中心获得的干燥菌种为第0袋),并采用适宜的菌种保藏技术进行保藏。
计数培养基适用性检查和计数方法适用性试验。
菌液制备按规定培养各试验菌株。
取金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、白色念珠菌的新鲜培养物,用无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液;取黑曲霉的新鲜培养物加入3-5ml含%(ml/ml)聚山梨酯80的无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或%无菌氯化钠溶液,将孢子洗脱。
采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管中,用含%(ml/ml)聚山梨酯80的无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的黑曲霉孢子悬液。
菌液制备后若在室温下放置,应在2小时内使用;若保存在2-8℃,可在24小时内使用。
黑曲霉孢子悬液可保存在2-8℃,在验证过的贮存期内使用。
阴性对照为确认试验条件是否符合要求,应进行对照试验,阴性对照试验应无菌生长。
培养基适用性检查按照表规定,接种不大于100cfu的菌液至胰酪大豆胨液体培养基或胰酪大豆胨琼脂培养基平板或沙氏葡萄糖琼脂培养基平板,置规定的条件下培养。
每一试验菌株平行制备2管或2个平皿。
同时用相应的对照培养基替代被检培养基进行上述试验。
被检固体培养基上的菌落平均数与对照培养基上的菌落平均数的比值应在范围内,且菌落形态大小应与对照培养基上的菌落一致。
SOP-FF-9-045-C非无菌产品微生物限度检查:控制菌检查法标准操作规程SOP-FF-9-045-C 控制菌检查法标准操作规程第 1 页共 5 页题目:控制菌检查法标准操作规程编码:SOP-FF-9-045-C 起草:日期:审核:日期:批准:日期:生效日期:颁发部门:质管部分发部门:检验室依据:《中国药典》2015年版四部通则1106 第145页目的:建立控制菌检查法的标准操作规程。
范围:适用于药品中控制菌的检查。
职责:检验室主任、检验者对本规程的实施负责。
规程:1.简介控制菌检查法系用于在规定的试验条件下,检査供试品中是否存在特定的微生物。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合相应的微生物限度标准时,应按下列规定进行检验,包括样品取样量和结果判断等。
供试品检出控制菌或其他致病菌时,按一次检出结果为准,不再复试。
供试液制备及实验环境要求同“非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法(通则1105)”。
如果供试品具有抗菌活性,应尽可能去除或中和。
供试品检查时,若使用了中和剂或灭活剂,应确认有效性及对微生物无毒性。
供试液制备时如果使用了表面活性剂,应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂或灭活剂的相容性。
2.培养基适用性检查和控制菌检查方法适用性试验供试品控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的控制菌检查方法应进行方法适用性试验,以确认所采用的方法适合于该产品的控制菌检查。
若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时,控制菌检查方法应重新进行适用性试验。
2.1 菌种及菌液制备2.1.1 菌种试验用菌株的传代次数不得超过5代(从菌种保藏中心获得的干燥菌种。
微生物限度检查-控制菌检查法标准操作规程1 目的明确微生物限度检查-控制菌检查法的过程,保证产品质量。
2 适用范围检查非无菌制剂及其原、辅料等是否存在特定的微生物(如:铜绿假单胞菌、金黄色葡萄球菌), 从而判断是否符合相应的微生物限度标准。
3 定义无。
4 职责与权限检验员:按本标准判定产品质量并出具报告。
负责人:监督执行情况,审批最终结果。
5 内容及流程5.1 实验说明5.1.1 TSB为“胰酪大豆胨液体培养基”。
5.1.2 所用材料及用具(待检品、菌株除外)应经过灭菌处理;检验全过程必须严格遵守无菌操作,防止再污染,防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
5.1.3 供试品检出控制菌或其他致病菌时,按一次检出结果为准,不再复试。
5.2 检验量从一批中随机抽取不少于2个最小包装的供试品,混合后,从中抽取10g或10mL。
5.3 实验材料与用具5.3.1 混合后的待检品(供试品)、TSB培养基(9mL/管)、pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液;5.3.2 铜绿假单胞菌实验用材料:铜绿假单胞菌菌悬液(≤100cfu/mL)、溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基、1%二盐酸N,N-二甲基对苯二胺试液(即用即配);5.3.3 金黄色葡萄球菌实验用材料:金黄色葡萄球菌菌悬液(≤100cfu/mL)、甘露醇氯化钠琼脂培养基;5.3.4 用具:培养皿、接种环、洁净滤纸片、无菌玻棒。
5.4 供试液制备5.4.1 取供试品和pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液以1:10稀释成供试液。
5.4.2 必要时,用统一稀释液将供试液进一步10倍系列稀释;也可用混合的供试品原液作为供试液。
5.5 增菌培养5.5.1 供试品组:取1mL供试液,接种至9mL的TSB中,混匀,共接种2管。
5.5.2 阳性对照:取1mL菌液,与供试液同法操作,接种至9mL的TSB中,混匀,接种1管。
5.5.3 阴性对照:取1mL pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液,与供试液同法操作,接种至9mL 的TSB中,混匀,接种1管。
1. 目的:建立微生物限度检查法标准操作规程2. 范围:适用于原辅料及成品的微生物限度检查。
3. 责任人:QC负责实施,QC主管负责监督。
4. 程序:4.1 检验依据《中华人民共和国药典》2005年版一部附录P704.2 检验规程4.2.1 微生物限度检查法总则4.2.1.1微生物限度检查法系指检查非规定灭菌制剂及其原、辅料受到微生物污染程度的方法。
检查项目包括细菌数、霉菌数、酵母菌数及控制菌的检查。
4.2.1.2微生物限度检查应在环境洁净度10000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内进行。
检验全过程必须严格遵守无菌操作,防止再污染。
4.2.1.3供试品检查时,如果使用了表面活性剂、中和剂或灭活剂,应证明其有效性及对微生物的生长和存活无影响。
4.2.1.4除另有规定外,本检查法中细菌培养温度为30~35℃,霉菌、酵母菌培养温度为23℃~28℃,控制菌培养温度为35~37℃。
4.2.1.5检验结果以1g、1ml、10g、10ml或10cm2为单位报告。
4.2.2 供试品的检验量:检验量即一次试验所用的供试品量(g、ml或cm2)。
除另有规定外,一般供试品检验量为10g 或10ml ;中药膜剂为50cm2,贵重药品、微量包装药品检验量可以酌减。
要求检查沙门菌的供试品,其检验量应增加10g或10ml。
检验时,应从2 个以上最小包装单位中抽取供试品,大蜜丸还不得少于4 丸,膜剂还不得少于4片。
一般应随机抽取不少于检验用量(2个以上最小包装单位)的3倍量。
4.2.3供试液的制备按供试品的理化特性与生物学特性可采取适宜的方法制备供试液。
供试液制备若需用水浴加温时,温度不应超过45℃。
供试液从制备至加入检验用培养基,不得超过1小时。
4.2.3.1液体供试品取供试品10ml,加PH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液至100ml,混匀,作为1:10的供试液。
油剂可加适量无菌聚山梨酯80使供试品分散均匀。
水溶性液体制剂也可用混合的供试品原液作为供试液。
洗剂、合剂、锭剂的检查法洗剂有关洗剂的质量要求:除另有规定外,以水或稀为溶剂的洗剂普通应检查PH值,含乙醇的洗剂应检查乙醇量。
除符合各品种项下规定外,洗剂还应检查装量和微生物限度。
(一) 装量检查 1. 简述本法适用于洗剂的装量检查。
本项检查的目的在于保证用药剂量的精确。
2. 操作办法根据最低装量检查法(通则0942容量法)项下举行操作。
3. 注重事项所用的刻度量筒应清洁、干燥,并经定期校准合格;其最大容量应与供试品的标示装量全都,或不超过标示量的2倍。
4. 结果与判定 (1) 每个容器内容物的装量与平均装量,按最低装量检查法(容量法)的规定,每个容器的装量不少于允许的最低装量;且平均装量不少于标示装量,判为符合规定。
(2) 如有1个容器装量不符合规定,则另取5个(50ml以上取3个)复试。
复试结果所有符合规定,仍可判为符合规定。
(3) 平均装量与每个容器装量(按标示装量计算出百分率),取三位有效数字举行结果推断。
5. 记录与计算同最低装量检查法(容量法)。
(二) 微生物限度除另有规定外,洗剂照非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法(通则1105)和控制菌检查(通则1106)及非无菌药品微生物限度标准(通则1107)检查,应符合规定。
合剂有关合剂的质量要求:应澄清,在储藏期间不得有发霉、酸败、异物、变色、产愤怒体或其他变质现象,允许有少量摇之易散的沉淀。
除普通应检查相对密度、pH值等检查项目外,还应检查装量和微生物限度。
(一) 装量检查 1. 简述本法适用于单剂量灌装和多剂量灌装合剂的装量检查,目的在于保证用药剂量的精确。
2. 操作办法 (1) 单剂量灌装的合剂:取供试品5支,当心开启以免溅出,将内容物分离倒入经标化干燥的量入式量筒内,在室温下检视,读出每支的装量(精确至装量的1%)。
(2) 多剂量灌装的合剂:根据最低装量检查法(通则0942容量法)项下举行操作。
取供试品5个(标示装量为50ml以上取3个),开启时注重避开损失,将内容物转移至预经标化的干燥量入式量筒中(量具的大小应使待测体积起码占第1页共2页。
2020版药典非无菌产品微生物限度检查:控制菌检查法控制菌检查法系用于在规定的试验条件下,检查供试品中是否存在特定的微生物。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合相应的微生物限度标准时,应按下列规定进行检验,包括样品取样量和结果判断等。
供试品检出控制菌或其他致病菌时,按一次检出结果为准,不再复试。
供试液制备及实验环境要求同“非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法(通则1105)”。
如果供试品具有抗菌活性,应尽可能去除或中和。
供试品检查时,若使用了中和剂或灭活剂,应确认有效性及对微生物无毒性。
供试液制备时如果使用了表面活性剂,应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂或灭活剂的相容性。
培养基适用性检查和控制菌检查方法适用性试验供试品控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的控制菌检查方法应进行方法适用性试验,以确认所釆用的方法适合于该产品的控制菌检查。
若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时,控制菌检查方法应重新进行适用性试验。
菌种及菌液制备菌种试验用菌株的传代次数不得超过5代(从菌种保藏中心获得的干燥菌种为第0代),并采用适宜的菌种保藏技术进行保存,以保证试验菌株的生物学特性。
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)〔CMCC(B)26 003〕铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)〔CMCC(B)10 104〕大肠埃希菌(Escherichia coli)〔CMCC(B)44 102〕乙型副伤寒沙门菌(Salmonella paratyphi B)〔CMCC(B)50 094〕白色念珠菌(Candida albicans)〔CMCC(B)98 001〕生孢梭菌(Clostridium sporogenes)〔CMCC(B)64 941〕菌液制备将金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、大肠埃希菌、沙门菌分别接种于胰酪大豆胨液体培养基中或胰酪大豆胨琼脂培养基上,30~35℃培养18~24小时;将白色念珠菌接种于沙氏葡萄糖琼脂培养基上或沙氏葡萄糖液体培养基中,20~25℃培养2~3天;将生孢梭菌接种于梭菌增菌培养基中置厌氧条件下30~35℃培养24~48小时或接种于硫乙醇酸盐流体培养基中30~35℃培养18~24小时。
标准操作规程目的:建立一个药品微生物限度检验标准操作规程。
范围:适用于本企业生产的所有品种,本企业所有洁净生产区域,QC微生物限度检查室,洁净工作室等。
责任者:QC主任、化验员。
规程:本规程引至《中国药典》2000年版。
1. 概述:微生物限度检查系指非规定灭菌制剂及其原辅料受到微生物污染程度的一种检查方法,包括染菌量及控制菌的检查。
我公司QC设无菌操作室,用于微生物限度检查。
无菌操作室的管理及使用制度见本文附录一。
2. 抽样:供试品应按批号随即抽样,一般抽样量为检验用量(2个以上最小包装单位)的3倍。
抽样时,凡发现有异常可疑的样品,应缺陷选用疑问的样品,但因机构损伤明显破裂的包装不得作为样品,凡已能从药品、瓶口(外盖内侧及瓶口周围)外观看出长螨、长霉、虫蛀及变质的药品,可直接判为不合格,无需要再抽样检验。
3. 供试品的保存:供试品在检验之前,应保存在阴凉干燥处,以防供试品中的污染菌因保藏条件所引起致死、损伤或繁殖。
供试品在检验之前,应该保持原有包装状态,严禁开启,包装已开启的样品不得作为供试品。
4. 检查:4.1. 使用设备:电热恒温培养箱、电热恒温水温箱、试管、刻度吸管、量筒、三角瓶、培养皿、试管架、注射器、针头、注射器盒、研钵、75%酒精棉球、紫外灯(365nm波长)。
4.2. 检查的全过程应严格遵守无菌操作,严防再污染。
使用设备、仪器、人员及无菌操作室常用的消毒、灭菌方法见本文附录二。
除另有规定外,供试品制备成供试液后,均在均匀状态取样。
制成供试液后,应该在60分钟内注皿操作完毕。
4.3. 培养:除另有规定外,本检查法中细菌培养温度为30-35℃,霉菌、酵母菌培养温度为25-28℃,控制菌培养温度为36±1℃,检验结果的报告以1g、1ml或10cm2为单位。
4.4. 复检4.4.1. 菌数测定不合格者应复检,控制菌检查以一次检出为准,不再复试,但应保留检出菌株一个月备查。
4.4.2. 以复试项下不合格项目为准,作单项复试。
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编码:SOP-FF-9-045-C 起草:日期:
审核:日期:批准:日期:
生效日期:颁发部门:质管部
分发部门:检验室
依据:《中国药典》2015年版四部通则1106 第145页
目的:建立控制菌检查法的标准操作规程。
范围:适用于药品中控制菌的检查。
职责:检验室主任、检验者对本规程的实施负责。
规程:
1.简介
控制菌检查法系用于在规定的试验条件下,检査供试品中是否存在特定的微生物。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合相应的微生物限度标准时,应按下列规定进行检验,包括样品取样量和结果判断等。
供试品检出控制菌或其他致病菌时,按一次检出结果为准,不再复试。
供试液制备及实验环境要求同“非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法(通则1105)”。
如果供试品具有抗菌活性,应尽可能去除或中和。
供试品检查时,若使用了中和剂或灭活剂,应确认有效性及对微生物无毒性。
供试液制备时如果使用了表面活性剂,应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂或灭活剂的相容性。
2.培养基适用性检查和控制菌检查方法适用性试验
供试品控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的控制菌检查方法应进行方法适用性试验,以确认所采用的方法适合于该产品的控制菌检查。
若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时,控制菌检查方法应重新进行适用性试验。
2.1 菌种及菌液制备
2.1.1 菌种试验用菌株的传代次数不得超过5代(从菌种保藏中心获得的干燥菌种
SOP-FF-9-045-C 控制菌检查法标准操作规程第 2 页共 5 页为第0代),并采用适宜的菌种保藏技术进行保存,以保证试验菌株的生物学特性。
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)[CMCC(B)26 003]
铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)[CMCC(B)10 104]
大肠埃希菌(Escherichia coli)[CCMCC(B)44 102]
乙型副伤寒沙门菌(Salmonella paratyphi B)[CCMCC(B)50 094〕
白色念珠菌 Candida albicans)[ CCMCC(F)98 001]
生孢梭菌(Clostridium sporogenes) [CMCC(B)64 941]
2.1.2 菌液制备将金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、大肠埃希菌、沙门菌分别接种于胰酪大豆胨液体培养基中或在胰酪大豆胨琼脂培养基上,30~35℃培养18~24小时;将白色念珠菌接种于沙氏葡萄糖琼脂培养基上或沙氏葡萄糖液体培养基中,20~25℃培养2~3天;将生孢梭菌接种于梭菌增菌培养基中臵厌氧条件下30~35℃培养18~24小时或接种于硫乙醇酸盐流体培养基中30~35℃培养18~24小时。
上述培养物用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液。
菌液制备后若在高温下放臵,应在2小时内使用;若保藏在2~8℃,可在24小时内使用。
生孢梭菌孢子悬液可替代新鲜的菌悬液,孢子悬液可保存在2~8℃,在验证过的贮存期内使用。
2.1.3 阴性对照
为确认试验条件是否符合要求,应进行阴性对照试验,阴性对照试验应无菌生长。
如阴性对照有菌生长,应进行偏差调查。
2.1.4 培养基适用性检查
控制菌检查用的成品培养基、由脱水培养基或按处方配制的培养基均应进行培养基的适用性检查。
控制菌检查用培养基的适用性检查项目包括促生长能力、抑制能力及指示特性的检查。
各培养基的检查项目及所用的菌株见表1。
2.1.5 液体培养基促生长能力检查分别接种不大于100cfu的试验菌(表1)于被检培养基和对照培养基中,在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养,与对照培养基管比较,被检培养基管试验菌应生长良好。
2.1.6 固体培养基促生长能力检查用涂布法分别接种不大于100cfu的试验菌(表1)于被检培养基和对照培养基平板上,在相应控制菌检査规定的培养温度及不大于规定的
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最短培养时间下培养,被检培养基与对照培养基上生长的菌落大小、形态特征应一致。
2.1.7 培养基抑制能力检查接种不少于100cfu的试验菌(表1)于被检培养基和对照培养基中,在相应控制菌检查规定的培养温度及不小于规定的最长培养时间下培养,试验菌应不得生长。
2.1.8 培养基指示特性检查用涂布法分别接种不大于100cfu的试验菌(表1)于被检培养基和对照培养基平板上,在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养,被检培养基上试验菌生长的菌落大小、形态特征、指示剂反应情况等应与对照培养基一致。
2.1.9 控制菌检查方法适用性试验
2.1.9.1 供试液制备按下列“供试品检查”中的规定制备供试液。
2.1.9.2 试验菌根据各品种项下微生物限度标准中规定检查的控制菌选择相应试验菌株,确认耐胆盐革兰阴性菌检查方法时,采用大肠埃希菌和铜绿假单胞菌为试验菌。
2.1.9.3 适用性试验按控制菌检查法取规定量供试液及不大于100cfu的试验菌接入规定的培养基中;采用薄膜过滤法时,取规定量供试液,过滤,冲洗,在最后一次冲洗液中加入试验菌,过滤后,注入规定的培养基或取出滤膜接入规定的培养基中。
依相应的控制菌检查方法,在规定的温度和最短时间下培养,应能检出所加试验菌相应的反应特征。
2.1.9.4 结果判断上述试验若检出试验菌,按此供试液制备法和控制菌检查方法进行供试品检查;若未检出试验菌,应消除供试品的抑菌活性[见非无菌产品微生物检查:微生物计数法(通则1105)中的“抗菌活性的去除或灭活”],并重新进行方法适用性试验。
如果经过试验确证供试品对试验菌的抗菌作用无法消除,可认为受抑制的微生物不易存在于该供试品中,选择抑菌成分消除相对彻底的方法进行供试品的检查。
供试品检查供试品的控制菌检查应按经方法适用性试验确认的方法进行。
3.供试品检查
供试品的控制菌检查应按经方法适用性试验确认的方法进行。
3.1 阳性对照试验阳性对照试验方法同供试品的控制菌检查,对照菌的加量应不大于100cfu。
阳性对照试验应检出相应的控制菌。
3.2 阴性对照试验以稀释剂代替供试液照相应控制菌检查法检查,阴性对照试验应无菌生长。
如果阴性对照有菌生长,应进行偏差调查。
3.3 大肠埃希菌(Escherichia coli)
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3.3.1 供试液制备和增菌培养取供试品,照“非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法”制成1:10供试液。
取相当于1g或1ml供试品的供试液,接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的胰酪大豆胨液体培养基中,混匀,30~35℃培养18~24小时。
3.3.2 选择和分离培养取上述培养物1ml接种至100ml麦康凯液体培养基中,42~44℃培养24~48小时。
取麦康凯液体培养基划线接种于麦康凯琼脂培养基平板上,30~35℃培养18~72小时。
3.3.3 结果判断若麦康凯琼脂培养基平板上有菌落生长,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为大肠埃希菌;若麦康凯琼脂培养基平板上没有菌落生长,或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性,判供试品未检出大肠埃希菌。
3.4 铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)
3.4.1 供试液的制备和增菌培养取供试品,照“非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法”制成1:10供试液。
取相当于1g或1ml供试品的供试液,接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的胰酪大豆胨液体培养基中,混匀,30~35℃培养18~24小时。
3.4.2 选择和分离培养取上述培养物划线接种于溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基平板上,30~35℃培养18~72小时。
取上述平板上生长的菌落进行氧化酶试验,或采用其他适宜方法进一步鉴定。
3.4.3 氧化酶试验将洁净滤纸片臵于平皿内,用无菌玻棒取上述平板上生长的菌落涂于滤纸片上,滴加新配制的1%二盐酸N,N-二甲基对苯二胺试液,在30秒内若培养物呈粉红色并逐渐变为紫红色为氧化酶试验阳性,否则为阴性。
3.4.4 结果判断若溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基平板上有菌落生长,且氧化酶试验阳性,应进一步进行适宜的鉴定试验,确证是否为铜绿假单胞菌。
如果平板上没有菌落生长,或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性,或氧化酶试验阴性,判供试品未检出铜绿假单胞菌
3.5 金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)
3.5.1 供试液制备和增菌培养取供试品,照“非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法”制成1:10供试液。
取相当于1g或1ml供试品的供试液,接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的胰酪大豆胨液体培养基中,混匀。
30~35℃培养18~24小时。
3.5.2 选择和分离培养取上述培养物划线接种于甘露醇氯化钠琼脂培养基平板上,30~35℃培养18~72小时。
SOP-FF-9-045-C 控制菌检查法标准操作规程第 5 页共 5 页
3.5.3 结果判断若甘露醇氯化钠琼脂培养基平板上有黄色菌落或外周有黄色环的白色菌落生长,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为金黄色葡萄球菌;若平板上没有与上述形态特征相符或疑似的菌落生长,或虽有相符或疑似的菌落生长但鉴定结果为阴性,判供试品未检出金黄色葡萄球菌。