油田水中硫酸盐还原菌的快速检测

硫酸盐还原菌的测定
1 将KBC-SRB测试瓶排成一组，依次编上序号。

2 用无菌注射器取1ml代表性水样，注入1号瓶内稀释，充分振摇，待用。

3另一只无菌注射器从1号瓶内抽取1ml经充分振摇后的水样注入2号瓶内稀释充分振摇，待用。

4再用一只无菌注射器从2号瓶内抽取1ml经充分振摇后的水样注入3号瓶内稀释充分振摇，待用。

5依次类推稀释直到最后一瓶为止，待用。

6 将上述所有稀释过的测试瓶放入恒温培养箱——现场采样温度±3℃中培养。

培养七天。

阳性反应特征，瓶中微黄色液体变黑或生成黑色沉淀。

收稿日期:2008-09-09作者简介:王丹(1983-),女(汉族),辽宁盖州人,硕士研究生,E -m ail w angdan0417@yaho o com cn ;游松(1963-),男(汉族),辽宁沈阳人,教授,博士,主要从事天然产物生物学与药学研究,T el .024-********,E -m ail y ousong206@y ahoo com cn 。

文章编号:1006-2858(2009)06-0502-05硫酸盐还原菌的培养及检测方法的研究进展王 丹,贾 贞,游 松(沈阳药科大学生命科学与生物制药学院,辽宁沈阳110016)摘要:目的综述硫酸盐还原菌的培养及其检测方法的研究进展。

方法在查阅国内外文献的基础上,以其中的26篇文献为依据,对硫酸盐还原菌的培养及检测方法进行分析和归纳。

结果与结论由于硫酸盐还原菌自身的特点,尤其在制药等行业废水治理方面的优势,硫酸盐还原菌的研究已引起人们的广泛关注。

通过综述硫酸盐还原菌的培养方法及其检测技术,为该菌的进一步研究打下了基础。

关键词:硫酸盐还原菌;培养;检测;废水处理中图分类号:Q 81 文献标志码:A硫酸盐还原菌(su lfate -reduc i n g bacteria ,SRB)是一类形态、营养多样化,利用硫酸盐作为有机物异化作用的电子受体的严格厌氧菌。

1895年首先由Be ij e rinck 发现,1903年De l d en 发表了有关海水中耐盐菌种的报道。

1925年E lion 发现了一种嗜热的SRB [1]。

SRB 生长能力顽强,生存环境广泛,是引起钢铁、金属等材料腐蚀的重要原因之一。

据估计,在美国,油井的腐蚀77%以上由SRB 造成[2]。

然而,由于SRB 可将硫酸盐异化还原生成硫化氢,硫化氢又能与废水中的许多重金属生成沉淀,使得SRB 在废水处理方面表现出很大的优越性和可行性[3-4]。

制药等行业排出的废水属于高硫酸盐有机废水,利用SRB 可有效去除废水中的硫酸盐,SRB 法得到了越来越多的重视。

油田回注水中硫酸盐还原原核生物的快速检测和群落结构分析第27卷第5期2006年5月环境科学ENVlR0NMENTALSClENCEV o1.27.No.5May,2006油田回注水中硫酸盐还原原核生物的快速检测和群落结构分析曾景海,吴晓磊,赵桂芳,钱易(清华大学环境科学与工程系环境模拟与污染控制国家重点实验室,北京100084) 摘要:利用荧光原位杂交(Fluorescenceinsituhybridization,FISH)技术,采用荧光标记的rRNA探针及其组合对胜利油田胜利采油厂回注水中硫酸盐还原原核生物(Sulfatereducingprokaryotes,SRPs,包括硫酸盐还原细菌和硫酸盐还原古菌)进行检测,分析了该回注水中SRPs群落结构.结果表明:SRPs在胜利油田回注水中具有极高的种群多样性,广泛分布于4个细菌门和1个古菌门;总数可达2.86x10个/mL,占回注水中总微生物细胞的20%左右;其中优势菌属为脱硫弧菌属(Desulfovibrio)和脱硫肠状菌属(Desulfotornaculum),分别占回注水微生物总细胞数的8.71%(±4.45%),和l2.15%(±3,90%).Desulfobacterales和Syntroph0bacterales这2个目中的SRPs,Therrnodesulfobacteriales以及Thermodesulfovibro属的SRPs分别占样品微生物总量的7.59%(±2,92%),3.57%(±1.39%)和2.32%(±0.80%)除此之外,也检测到了占微生物总量4.29%(±1.75%)的Archamglobus属的SRPs,证明了古菌类SRPs是回注水中一个不容忽视的硫酸盐还原微生物种群.FISH法能够快速,准确地检测回注水中SRPs数量,解析SRPs群落结构.关键词:荧光原位杂交;硫酸盐还原原核生物;基因探针;群落结构;绝迹稀释法中图分类号:X172文献标识码:A文章编号:02503301(2006)05—0972—05 DetectionofSRPsinInjectionWaterofShenUoilFieldbyFISHZENGJing—hal,WUXiao—lei,ZHAOGuifang,QIANYi (ESPCStateKeyJointLaboratory,DepartmentofEnvironmentalScienceandEngineering, TsinghuaUniversity,Beijing100084,China)Abstract:Fluorescenceinsituhybridization(FISH)withl6SrRNA—targetedoligonucleotideprobeswasappliedforanalyzingthe structureofsulfatereducingprokaryotes(SRPs)communityininjectionwaterofShengliOil Field.Eightprobesandtheirvarious combinationswereusedtodetectSRPsinthewater.ResultsshowedSRPsdetectedinthewate rwerediverse,whichfollowedin4bacterialphylaand1archaealphylum.TotalamountofSRPswas2.86xl0eells/mL.accountin gfor20%oftotalcellsofmicroorganismsinthewateroftheOilField.DesultbvibrioandDesultomaculumcellswerea bout8.71%(±4.45%)and12.15%(±3.90%)ofthetotalmicrobialcellsrespectively,beingdominantinthewater.Therelativeamo untsofSRPsbelongingtoDesulfobacteralesandSyntr0ph0bacterales,Therrnodesulfi~bacteriales,andThermodesu ly'bvibrotototalmicrobialcellsinthewaterwere7.59%(± 2.92%),3.57%(± 1.39%)and2.32%(±0.80%)respectively.Inaddition,SRPsbelongingtoArchaeoglobus werealsodetectedwiththeamountof4.29%(±1,75'}6)oftotalmicrobialcells,whichtellsthatarchealSRPsarealsovery importantsulfatereducingmicroorganismsintheinjectionwaterof0ilfield. Keywords:FISH;sulfatereducingprokaryotes(SRPs);geneprobes;microbialcommunity; maximumprobablenumber在细菌界和古菌界都有微生物能够进行硫酸盐还原反应,通称为硫酸盐还原原核生物(Sulfate—reducingprokaryotes,SRPs),包括硫酸盐还原菌(SRB)和硫酸盐还原古菌¨-2J.SRPs在油田回注水中的存在具有很多危害,所以我国石油,天然气工业执行的注水水质11项指标中有4项直接与硫酸盐还原微生物有关.目前检测SRPs的标准方法是利用培养的绝迹稀释法,具有培养法本身的不足:①无法培养所有的微生物_3J,包括回注水中所有的SRPs;②SRPs有130多种,涵盖了4个细菌¨(Proteobacteria,Nitrospirae,Thermodesulfobacteria, Firmicutes)和1个古菌门(Euryarchaeota)J,绝迹稀释法无法对这些SRPs的种类进行分别,所以无法解析回注水中SRPs的群落结构;③绝迹稀释法通常耗时2周…,无法及时反馈生产实际情况.与绝迹稀释法相比,荧光原位杂交技术(Fluorescenceinsituhybridization,FISH)不依赖对微生物的培养,而以微生物rRNA中高度保守,物种特异性的片段序列作为鉴别微生物的标志;设计合成荧光探针,通过探针与微生物rRNA目标特异性收稿日期:2005—04—26;修订日期:2005I)7)6基金项目:国家自然科学基金项目(30300008)作者简介:曾景海(198l～),男,硕士研究生,主要研究方向为环境生物技术,E—mail:********************.accn*通讯联系人,Email:xiaoleiWtl(tl-/tsinghuacduCrl5期环境科学973片段进行的杂交反应,使探针和荧光标记留在目标微生物细胞内;激发荧光信号,对目标微生物进行观察和计数,从而直观,准确地得到目标微生物的存在,数量和空间分布等信息,并由此解析微生物群落结构和生物多样性l.FISH的优势使其成为了环境微生物学中的重要技术手段,在分析海水沉积物, 水体,土壤和根系表面_5oj等自然环境,以及反应体系[11,挖]中的微生物群落等方面得到了广泛的应用.国外利用FISH技术检测SRPs进行了相当多的工作[_14],但利用FISH法分析油田回注水中SRPs群落结构方面的工作则鲜见报道.本研究运用FISH技术对胜利油田回注水中的SRPs进行全面检测,分析其群落结构和优势菌群; 定量分析SRPs的数量,并与绝迹稀释法进行比较, 探索利用FISH方法检测油田回注水中SRPs的可行性.1材料与方法1.1探针设计根据目前已知的所有SRPs的16SrDNA序列和16SrRNA的二级结构,利用ARB系统分析,筛选了8组核酸片段序列(如表1),合成基因探针.这8组探针可以检测已知134种SRPs中的124种,分别属于Desulfovibrionales,Desulfobacterales, Syntrophobacterales,Clostridiales,Nitrospirales, Thermodesulfobacteriales,Archaeoglobales目中的Desulfov_brionaceae,Desulfomicrobiaceae.Desulfo halobiaceae,Desulfonatronumaceae,Desulfobacter aceae,Desulfobulbaceae,Nitrospiraceae,Syntrop一上海基康生物工程公司合成),合成检测SRPs的基因探针.1.2试验方法1.2.1荧光原位杂交(FISH)法2003—10—24,采取胜利油田胜利采油厂1号综合站的回注水作为研究用回注水样品.对回注水样品进行分级离心和0.22gm滤膜过滤,浓缩样品中的微生物细胞;以报道的方法Ll._…,利用多聚甲醛对样品中微生物进行固定,并利用100%乙醇对微生物细胞进行处理,将处理后的样品于一20℃保存(不超过3周);移取固定处理后的样品1L,均匀分布在FISH技术标准载波片的圆形储样孑L中,室温过夜风干;通过多级乙醇脱水,利用选定探针在最适温度和盐浓度下,与微生物l6SrRNA进行最优化杂交反应一定的时间;利用清洗液在清洗温度下,对样品清洗20min;然后利用DAPI对所有微生物DNA进行染色;用荧光显微镜对样品进行观察,在蓝光激发下,荧光素6一FAM发出绿色的荧光,而在紫外激发下,DAPI发出蓝色的荧光,所以荧光显微镜视野中带绿色荧光的细胞是目标SRPs细胞,而带蓝色荧光的细胞为总体微生物细胞(包括SRPs),对这些微生物细胞进行计数,可以分析目标SRPs的种群大小以及在样品微生物总量中所占的比例.1.2.2绝迹稀释法参考中华人民共和国石油天然气行业标准(SY/T0532—93),利用三管法,对水样进行逐级稀释(10_.～10),将各稀释度的水样1mL加入试管中,然后灌满加硫酸亚铁铵培养基,放入37℃恒温培养箱中培养14～21d,观察是否生成黑色沉淀并hobacteraceae,Peptococcaceae,Thermodesul一伴有硫化氢气味,判断SRPs的生长,并计算SRPsfobacteriaceae和Archaeoglobaceae科.利用6一FAM的数量,荧光素对这8种基因探针片段的5端进行标记(由1.3实验步骤表1实验采用的168rRNA探针Table116SrRNAprobesapplied1.3.1组合探针最优杂交条件的确定改变甲酰铵浓度,杂交温度和杂交时间,对样品中SRPs进行F1SH分析,观察样品中SRPs的荧光强度以及数量,确定各种情况下组合探针的最优杂974环境科学27卷交条件为:杂交温度44℃,清洗温度46℃,甲酰胺浓度30%,杂交时间2.5h.1.3.2回注水中SRPs群落结构分析利用8种探针分别进行FISH反应,分析这些探针相对应的SRPs在回注水中的存在;对样品中SRPs细胞(带有6FAM绿色荧光的细胞)和总体微生物细胞(带DAPI蓝色荧光细胞)计数,计算样品目标SRPs对微生物总量的相对数量,以及目标SRPs的种群大小;根据回注水中存在的SRPs种类和种群大小,分析回注水中SRPs的群落结构.1.3.3注水中SRPs多样性分析根据SRPs的种类和种群大小,计算物种丰度(Richness),物种均匀度(Evenness),Shannon指数和Simpson指数,初步分析回注水中SPRs群落的生物多样性.物种丰度(Richness):S=SRPs种类数Shannon指数:H:一∑Pilog2Simpmn指数:D=1一>:P;其中:表示各种SRPs的相对数量.I』物种均度(Evenness):E=几max其中:Hlog2S1.3.4组合探针对回注水中SRPs的检测将8种探针进行2种,3种和8种组合,在优化的实验条件下进行杂交,计算各种组合探针所能检测的SRPs的数量,分析组合探针对SRPs的覆盖程度,研究利用组合探针检测回注水样品中所有SRPs的可能性,探索以FISH方法检测油田回注水中SRPs的可能性.2结果与讨论2.1胜利油田回注水中SRPs群落结构和生物多样性利用8种探针分别对回注水进行检测,结果表明在胜利油田胜利采油厂1号综合站的回注水中各种SRPs都普遍存在,广泛分布于4个细菌门(Proteobacteria,Thermodesulfobacteria,Firmicutes, Nitrospirae)和1个古菌门(Euryarchaeota)(图1).脱硫弧菌属(Desulfovibrio)(对应于探针3)和脱硫肠状菌属(Desulfotomaculum)(对应于探针4和探针5)分别占样品中微生物总量的8.71%(±4.45%)和12.15%(±3.90%),是该回注水中的优势硫酸盐还原微生物,这一结果与前人利用培养方法所得到的研究相一致[15,].探针8检测的古探针1探针2探针3探针4擐针5探针6探针7探针8图1各探针所检测目标SRPs的相对含量Fig.1AmountofSRPscellsintheinjectionwaterfromShenlioilfield 菌界Euryarchaeota门Archaeoglobus属的SRPs,在该回注水中占微生物总量的的4,29%(±1.75%),证明了古菌界硫酸盐还原微生物在油田回注水中有的存在,并且占有相当大的比例,是一个不容忽视的硫酸盐还原微生物种群.对油田回注水中古菌类SRPs的检测工作,目前尚未见报导.另外,该回注水中,Desulfobacterales和Syntrophobacterales这2个目中的SRPs, Thermodesulfobacteriales中的SRPs,以及ThermodesulJbvibro属的SRPs分别占样品中微生物总量的7.59%(±2.92%),3.57%(±1.39%)和2.32%(±0.80%),最大种群的SRPs (DesulJbtomaculum)的种群大小约为最小种群(Thermodesulfovibro)的6倍,同时,8种探针检测的SRPs总数占回注水中微生物总量的38.62%(±15.21%),说明了回注水中SRPs是主要的微生物群落.不同SRPs细胞壁等组成成分,以及生活习性的差别,决定了它们对环境影响的不同反应,所以不同优势菌种组成的SRPs群落,对回注水处理工艺中的药剂将具有不同的敏感性,也就会影响各种药剂的杀菌效果+另一方面,不同SRPs新陈代谢所需萼的底物也不完全相同,对底物的控制也可以精细地指导SRPs控制工艺的开发和应用,因此,对回注水中SRPs群落结构的准确分析,有助于指导对杀菌剂的精确选用,以及SRPs控制工艺精细的调控. 利用FISH技术对回注水中SRPs群落解析,种群差异的确定是绝迹稀释法所无法完成+根据上述检测结果计算回注水中SRPs群落微,物多样性指数.Shannon指数:H=1.79;Simpson指数:D=0.81;物种均度(Evenness):E=0.92,可4208642舔求g删赫霉熹酬搭踊霉熹5期环境科学975以判断该回注水中SRPs具有较高的多样性和物种均度.2.2各种探针组合对SRPs的检测利用2种探针,3种探针和8种探针组合对回注水中SRPs进行检测的结果,及其与单探针检测结果比较如表2所示.表2组合探针检测的结果Table2DetectionofSRPsbycombinationsofprobes日A目标sR细胞占样品中相应单探针检测±日合探针目标sRPs细胞占样品中相应单探针检测总微生物细胞的比例/%结果之加和/%一总微生物细胞的比例/%结果之加和/% 5.3±1.29.8±1.68.5±().78.3±1.84.7±().710.4±1.1l0.1±1.96.1±(J.4l2.3±1.510.2士2.010.1±1.57.3±1.3l4.5±2.413.1±2.110.3±0.720.20±4.122.6273.43.536373_84.52342.3.52.3.62.452463.4.53.4.6从表2可以看出,含有探针3,4,5的各种组合能检测到较多的SRPs,而且探针3,4,5组合在一起所检测到的SRPs与8探针组合所检测到的值最为接近,也间接验证了探针3,4,5所对应的脱硫弧菌属(Desul[bvibrio)和脱硫肠状菌属(Desulfotomaculum)是回注水中的优势种群,所以对胜利油田回注水中SRPs进行快速检测时可以考虑利用3,4,5这3个探针的组合来进行.另一方面, 利用各种探针组合检测到的SRPs与相应的单探针检测结果的加和相近,差别都在偏差范围内,说明了组合探针检测SRPs的可重复性.但是单探针检测SRPs结果的加和偏差要大于组合探针检测结果的偏差,说明了利用组合探针对SRPs数量检测的优势.所以单探针能很好地解析回注水中SRPs群落组成,而组合探针则能较好地检测回注水中SRPs 的数量通过进一步优化FISH反应条件,减少检测偏差,可以考虑利用组合探针来对回注水中SRPs 总量进行快速,准确和直观地检测.2.3回注水中SRPs总数检测2.3.1绝迹稀释法检测结果利用绝迹稀释法,培养21d后,根据三管法最大可能菌数表,检测到水样中SRPs数量为9个/n1L.2.3.2FISH法,8种探针组合检测的结果利用8种探针的组合探针检测出SRPs细胞数占回注水中微生物总数的20.20%(±4.12%);利用荧光显微镜对样品所有视野进行全自动扫描,计算DAPI染色的微生物总细胞数;根据样品的体积, 计算单位体积样品中微生物总量;根据SRPs细胞占样品中微生物总量的比例,计算出水样中SRPs 含量为2.86×10个/mI.这个结果比绝迹稀释法测定结果高出4个数量级,证明了FISH技术能够检测出绝迹稀释法所无法培养SRPs.FISH技术则不受微生物可培养性的限制,能够更加准确地对SRPs进行检测,反应更加真实的情况.同FISH反应和检测需要的时间约为8～20h,远少于绝迹稀释法的14～21d,所以FISH对SRPs的检测可以更加及时和准确地了解生产中SRPs变化以及指导对SRPs控制措施的调控.3结论(1)FISH方法比绝迹稀释法能检测更多的SRPs:不仅基本上能对SRPs进行初步分类,解析SRPs的群落结构,还可定量检测水样中SRPs的数量.由于FISH法能是对SRPs细胞进行直接计数, 结果比绝迹稀释法利用的最大可能数准确;而且FISH方法检测样品所需时间约为8～20h,快于比绝迹稀释法的l4～21d,能更及时地对回注水中393528298O8423l●●●●●●●●●●●■●●●227555638765588±+一±±+一±±±+一±+±+一±+ 916903012567899●●■●●●●●●■●●●●●5753l2329745207;}}!一l48●6269482O955●■●●●■●●-●●●■●O02l0O22l022+±+一+±+一十+±+一++±+一十89513443l485723●●●■●●■●●●●●●●■3533990O552474982420464807796254226427543866±+±+一±±+一±++一+一±±+一±67923358358960072096208642998523456345ill2223456456003矗976环境科学27卷SRPs检测,反应生产情况,指导生产实践(2)在胜利油田胜利采油厂1号综合站的回注水中,脱硫弧菌属(Desuljbvibrlo)和脱硫肠状菌属(Desulfotomaculum)是主要的SRPs,分别占样品中微生物总量的8.71%(±4.45%)和12.15%(±3.90%);而Thermodesulfovibro属的SRPs则相对较少,约占Desulfotomaculum数量的l/6.另外属于古菌界的硫酸盐还原微生物在回注水中占微生物总量的的4.29%(±1.75%),是一个不容忽视的硫酸盐还原微生物种群.(3)通过实验确立最优化的杂交条件,利用组合探针对回注水中SRPs进行检测的结果,与相应单探针检测结果的加和相近,差别都在标准偏差范围内,说明了组合探针检测SRPs的有效性和可重复性.从而可以考虑利用FISH来对回注水中SRPs进行快速,准确和直观地检测.参考文献:[1]王升坤,硫酸盐还原菌检测技术综述lJ].石油与天然气化工.1998,27:192～193.【21LoyA,LehnerA,LeeN,etalOligonucleotidemicroarrayf0r16SrRNAgene—baseddetectionofallrecognizedlineagesof sulfate-reducingprokaryotesintheenvironment[J],Appl EnvironMicrobio1..2002,68:5064～5081.[3]AmannRI,LudwigW,SchleiferKH.Phylogenetic identificationandinsitudetectionofindividualmicrobialcells withoutcultivation[J].Microbiolog.Rev.,1995,59(1):143～169[4]StoffelsM,LudwigW,SchleiferK—H.rRNAprobe—basedcell fishingofbacteria[J].EnvironMicrobio1.,1999,1(3):259～271[5]GlocknerFO,FuchsBM,AmannRI.Bactcri0plankt0n compositionsoflakesandoceans:afirstcomparisonbasedon fluorescenceinsituhybridization[J].App1.EnvironMicrobio1.1999,65:3721～3726[6]MotetA,GobelUB.Fluorescenceinsituhybridization[7][8][9][10][12][13]f14]【15][16](FISH)fordirectvisualizationofmicroorganisms【J]J. Microbio1.Method.,2000.41:85～112.AntoaenJ,Llobet—BrossaE,Rodr6guez—V aleraF,eta1. Fluorescenceinsituhybridizationanalysisoftheprokaryotic communityinhabitingcrystallizerponds[J].Environ.Microbio1.,l999,1(6):517～523.FriedrichU,V anLangenhoveH,AltendorfK.elal, Microbialcommunityandphysicochemicalanalysisofan industrialwastegasbiofilteranddesignof16srRNAtargeting oligonucleotideprobes[J].Environ.Microbio1.,2003,5(3):l83～206.BrossaEL,MoraRR,AmannRI.MicrobialcommunitycompositionofWaddenSeasedimentsasrevealedby fluorescenceinsituhybridization[J].App1.Environ. Microbiol.1998.64:2691～2696.SnaidrJ,AmannRI,HuberI,eta1.Phylogeneticanalysis andinsituidentificationofbacteriainactivatedsludge[J].App1.Environ.Microbio1..199763:2884--2896.WuXL,ConradR.FunctionalandstructuralresponseofaceIIul0se_degradingmethanogenicmicrobialcommunityto multipleaerationstressesattwodifferenttemperatures[J]. Environ.Microbio1.,200I.3(6):355～362WuXL,ChinKJ,StubnerS,eta1.Functionalpatternsand temperatureresponseofcellulose—fermentingmicrobialcultures containingdifferentmethanogenlccommunities[J].App1. Microbio1.Biotechnol+2001,56(2):212～219 KlelkemperJ,SchrothMH,SiglerWV.etalActivityand diversityofsulfate—reducingbacteriainapetroleum hydrocarboncontaminatedaquifer[J].App1.Environ. Microbiol,2002,68:I516—1523.OkabeS,ItohT,SatohH,etalAnalysesofSpatial distributionsofsulfate—reducingbacteriaandtheiractivityin aerobicwastewaterbiofilms【J]App1.EnvironMicrobio1., 1999.65:5107～5116.孔祥平,包木太,马代鑫,等油田水中细菌群落分析【J].油田化学,2003,2O(4):372～376黄建新,马艳玲,陈志昕.等.常庆油田金属管材的腐蚀性细菌类群研究[J].石油大学(自然科学版),2002,26(2):66～69.。

油田硫酸盐还原菌快速定量检测方法
油田硫酸盐还原菌快速定量检测方法
摘要：现有油田废水中硫酸盐还原菌检测周期长、检测费用较高,本研究应用聚合酶链式反应(PCR)技术与倍比稀释法(MPN)相结合的DSR-MPN-PCR法,对硫酸盐还原菌进行快速定量检测.从废水中制备了直接用于PCR扩增的菌液,保证了定量准确性;建立以硫酸盐还原菌亚硫酸盐还原酶基因(Dsr)为靶位点的`通用探针DSR1F和DSR5R的反应体系和扩增条件.结果表明,该方法检测灵敏度明显比液体稀释培养法高2个数量级,真实地表征了废水中实际的SRB菌数量,整个操作过程需要3～4 h,检测结果非常稳定,降低了检测费用,可以在生产中应用.作者：魏利马放王继华赵立军 WEI Li MA Fang WANG Ji-hua ZHAO Li-jun 作者单位：哈尔滨工业大学市政环境工程学院,哈尔滨,150090 期刊：环境科学ISTICPKU Journal：CHINESE JOURNAL OF ENVIRONMENTAL SCIENCE 年，卷(期)：2007, 28(2) 分类号：X172 关键词：硫酸盐还原菌菌液制备定量检测异化型亚硫酸盐还原酶 DSR-MPN-PCR法。