细菌重测序
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细菌de novo ,是基于高通量测序数据,对细菌基因组进行从头组装的方法。
基于组装结果,我们可以预测细菌基因组中所包含的基因,并通过功能数据库比对获得基因的功能信息。
根据不同组装精细程度的需求,我们提供细菌框架图、细菌精细图和细菌完成图三种策略,为您提供全面的细菌de novo解决方案。
技术参数参考文献[1] Liu F, Hu Y, Wang Q, et al . Comparative genomic analysis of Mycobacterium tuberculosis clinical isolates [J]. BMC genomics, 2014, 15(1): 469.[2] Salipante S J, Roach D J, Kitzman J O, et al . Large-scale genomic sequencing of extraintestinal pathogenic Escherichia coli strains [J]. Genome research,2014: gr. 180190.114.案例解析[案例一] 结核分枝杆菌临床分离株的比较基因组学分析[1]结核分枝杆菌(Mycobacterium tuberculosis)是引起结核病的病原菌,特别是多重耐药和泛耐药结核分枝杆菌菌株的出现对结核病的防治产生了挑战。
本文通过对7 株抗性范围不同的临床菌株进行了全基因组测序,并与其他7 株来源不同的菌株进行了比较。
通过对抗性数据库注释发现了39 处耐药相关的变异,包括14 处先前报道过的位点以及25处新的位点,并发现了主要抗原变异来源PE-PPE-PGRS 基因的16 处InDel。
通过对SNP、InDel 及CRISPR结构的查找和注释发现,多重耐药菌株和泛耐药菌株间在基因组水平上并没有显著的差异,表明临床结核分枝杆菌的耐药性进化过程是十分复杂而多变的。
细菌基因组测序方法
细菌基因组测序方法主要有以下几种:
1. 整体基因组测序(Whole Genome Sequencing,WGS):将
细菌的整个基因组进行测序,并通过比对参考基因组或组装建立一个完整的基因组序列。
2. 目标区域测序(Targeted Sequencing,TS):针对特定基因、基因组区域或有意义的变异位点进行测序。
3. 细胞单体测序(Single-cell Sequencing,SCS):将细胞单
体进行测序,通过技术手段将单个细胞的DNA扩增到足够浓
度后进行测序。
4. 转录组测序(RNA Sequencing,RNA-Seq):将细菌转录产物测序,包括mRNA、ncRNA等,可以了解细菌的转录水平
和转录后调控。
5. 甲基化测序(Methylation Sequencing,Methyl-Seq):对细
菌基因组进行甲基化修饰位点的检测以获得表观遗传信息。
6. 大肠杆菌的测序方法还包括平滑野百合花青素基因组测序(PacBio)和人工合成DNA 和4D核磁共振测序。
细菌鉴定测序-概述说明以及解释1.引言1.1 概述细菌鉴定是一项关键的实验室技术,它能够帮助科学家们确定细菌的物种、种群和亚种信息。
通过细菌鉴定,我们可以了解到细菌的特性、生活习性以及与人类健康和环境的关系。
在过去的几十年中,细菌鉴定技术得到了快速的发展和进步,其中细菌鉴定测序技术的突破尤为显著。
细菌鉴定测序是利用DNA测序技术对细菌的基因组进行分析和比对,以确定细菌的物种和相关信息。
相比传统的细菌鉴定方法,如形态学观察或生化检测,测序技术的优势在于其高度准确性、高通量和高效率。
它能够迅速鉴定大量的细菌样本,并且对不同物种之间的差异性进行全面的分析。
目前,常用的细菌鉴定测序方法主要包括16S rRNA测序和全基因组测序两种。
16S rRNA测序是一种常用的DNA测序技术,通过分析细菌的16S rRNA基因序列来确定其物种和亲缘关系。
全基因组测序则是对细菌的整个基因组进行测序和分析,从而获得更加全面和详细的细菌信息。
细菌鉴定测序技术在许多领域都得到了广泛的应用,包括医学、农业、环境科学等。
在医学领域,细菌鉴定测序可以帮助医生准确诊断细菌感染病例,指导治疗和药物选择。
在农业领域,细菌鉴定测序可以帮助农民和科研人员了解农作物病害的病原菌,从而采取相应的防治措施。
在环境科学领域,细菌鉴定测序可以帮助我们了解细菌在自然环境中的分布和功能,从而指导环境保护和污染治理工作。
随着测序技术的不断发展和突破,细菌鉴定测序技术也将呈现出更加广阔的应用前景。
未来我们可以预见,细菌鉴定测序技术将在医学诊断、食品安全、环境监测等领域发挥更大的作用。
同时,随着测序技术的成本不断降低和分析方法的不断改进,细菌鉴定测序技术将变得更加便捷、高效和经济。
综上所述,细菌鉴定测序技术在现代生物学和医学领域具有重要的意义和应用价值。
随着技术的不断进步,我们相信细菌鉴定测序技术将进一步推动细菌学研究的发展,并为人类的健康和环境保护作出更大的贡献。
细菌重测序注释全流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。
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“Iontorrent微生物(细菌)全基因组重测序文库构建实验方案”清晨的阳光透过实验室的窗户,洒在略显拥挤的操作台上,我的思绪开始像电流一样流转,10年的方案写作经验让我对每一个细节都了如指掌。
就让我们一起探索这个关于Iontorrent微生物(细菌)全基因组重测序文库构建的实验方案吧。
我们要明确实验的目的:通过Iontorrent平台,对微生物(细菌)进行全基因组重测序,以获取更准确、更全面的基因组信息。
那么,就是具体的步骤了。
一、实验材料与仪器1.材料:微生物(细菌)样本、DNA提取试剂盒、磁珠、PCR试剂、测序试剂盒等。
2.仪器:Iontorrent测序仪、离心机、PCR仪、磁珠分离器、凝胶成像仪等。
二、实验步骤1.样本处理:将微生物(细菌)样本进行适当的预处理,如离心、洗涤等,确保样品的纯净度。
2.DNA提取:使用DNA提取试剂盒,按照说明书操作,提取微生物(细菌)的基因组DNA。
3.DNA定量:利用纳米滴技术或紫外可见分光光度计,对提取的DNA进行定量,以确保DNA的浓度和纯度。
4.DNA片段化:将提取的DNA进行片段化处理,使其成为适合测序的片段大小。
5.文库构建:将片段化的DNA与测序适配器连接,通过PCR扩增,构建测序文库。
6.文库质检:利用凝胶成像仪,对构建的文库进行质检,确保文库的质量。
7.测序:将质检合格的文库上机测序,使用Iontorrent测序仪进行测序。
8.数据分析:将测序得到的原始数据进行质控、比对、组装等分析,得到微生物(细菌)的全基因组序列。
9.结果验证:对测序结果进行验证,如通过PCR、一代测序等方法,确保测序结果的准确性。
三、注意事项1.实验过程中,要注意无菌操作,避免样本污染。
2.操作过程中,要严格按照说明书进行,确保实验的准确性。
3.测序数据的质量控制和分析是关键步骤,要密切关注每个环节,确保结果的可靠性。
4.实验过程中,要随时记录实验数据和操作过程,以便后续的数据整理和分析。
细菌鉴定测序全文共四篇示例,供读者参考第一篇示例:细菌鉴定测序是一种通过测序细菌基因组DNA序列来确定细菌种类和特征的技术。
随着生物技术的发展和普及,细菌鉴定测序在医学、农业、环保等领域的应用越来越广泛,为研究人员提供了一种快速、准确的方法来识别细菌并了解其特性。
细菌是一类微生物,它们存在于地球上的各个环境中,包括土壤、水体、空气等。
细菌在生态系统中起着重要的作用,有些细菌对环境有益,有些则可能对人类和动植物造成危害。
正确鉴定细菌种类对于环境保护、疾病预防和治疗等方面具有重要意义。
传统的细菌鉴定方法包括形态学观察、生理生化试验和免疫学方法等,这些方法需要较长时间并且有一定的局限性。
而细菌鉴定测序技术则通过对细菌的DNA序列进行测序和分析,可以准确地确定细菌的种类和特征,同时还可以帮助研究人员深入了解细菌的生物学特性。
细菌鉴定测序的步骤主要包括DNA提取、测序反应、数据分析和结果解读等。
首先是DNA提取,通过将细菌培养物中的DNA提取出来,然后进行PCR扩增等处理来准备测序样本。
接着是测序反应,将DNA样本进行测序反应,得到细菌DNA的序列信息。
数据分析是整个过程中最关键的一步,通过对测序数据进行比对和分析,确定细菌的种类和特征。
最后是结果解读,根据数据分析的结果和相关数据库信息来判断细菌的鉴定结果。
细菌鉴定测序技术有许多优点,首先是快速性和准确性。
相比传统的鉴定方法,测序技术可以在较短的时间内完成细菌鉴定,而且结果更加可靠和准确。
其次是高通量性,测序技术可以同时对多个样本进行测序,大大提高了工作效率。
测序技术还可以帮助研究人员发现新的细菌种类和基因功能,对于科学研究具有重要的推动作用。
在医学领域,细菌鉴定测序技术被广泛应用于致病菌的鉴定和药物治疗方面。
通过对病原菌进行测序鉴定,可以为临床医生提供更准确的诊断结果和治疗方案,从而有效地控制传染病的传播。
在农业领域,细菌鉴定测序技术可以帮助农民鉴定土壤中的有益细菌,并设计出更加科学的农业生产方式。
Ion torrent微生物(细菌)全基因组重测序文库构建实验方案微生物(细菌)全基因组重测序文库构建实验方案一、重测序原理全基因组重测序是对已知基因组序列的物种进行不同个体的基因组测序,并在此基础上对个体或群体进行差异性分析。
二、技术路线培养至对数期的单一菌落↓基因组DNA提取细菌DNA(纯化)↓超声波打断 DNA片段化↓ 文库构建↓Ion OneTouch 乳液PCR、ES↓Ion PGM、Ion Proton 上机测序↓生物信息学分析DNA片段化↓ 末端修复↓纯化接头连接、缺口修复↓纯化文库片段筛选(E-Gel 法)↓ 文库片段扩增↓纯化 Agilent Test、Qubit定量↓ Ion OneTouch System 重测序三、实验方案 1.细菌总DNA的提取液氮速冻、干冰保存的细菌菌液:若本实验室可以提供该细菌生长的条件,则对菌液进行活化,培养至对数期时,对该细菌进行DNA提取;若本实验室不能提供该细菌的生长条件,则应要求客户提供尽可能多的样本,以保证需要的DNA量。
细菌DNA采用试剂盒提取法(如TianGen细菌基因组提取试剂盒)。
取对数生长期的菌液,按照细菌DNA提取试剂盒操作步骤进行操作。
提取完成后,对基因组DNA进行纯度和浓度的检测。
通过测定OD260/280,范围在1.8-2.0之间则DNA较纯,使用Qubit对提取的DNA进行定量,确定提取的DNA浓度达到文库构建的量。
2.DNA片段化采用Covaris System超声波打断仪(Covaris M220),将待测DNA打断步骤:1)对待打断的DNA进行定量,将含量控制在100ng或者1μg2)打开Covaris M220安全盖,将Covaris AFA-grade Water充入水浴容器内,至液面到最高刻度线(约15mL),软件界面显示为绿色3)将待打断DNA装入Ep LoBind管中,其中DNA为100ng或1μg,加入Low TE至总体积为50mL4)将稀释的DNA转移至旋钮盖的Covaris管中(200bp规格),转移过程中不能将气泡带入,完成后旋紧盖子5)选择Ion_Torrent_200bp_50μL_ScrewCap_microTube,将对应的小管放入卡口,关上安全盖,点击软件界面“RUN”6)打断结束后,将混合液转移至一支新的1.5mL离心管中3.末端修复及接头连接 3.1 末端修复使用Ion Plus Fragment Kit进行,以100ng DNA量为例,各组分使用前瞬时离心2s 步骤:1)加入核酸酶free水至装有DNA片段的1.5mL离心管中,至总体积为79μL 2)向体系中加入20μL 5×末端修复buffer,1μL末端修复酶,总体积为100μL 3)室温放置20min3.2 片段纯化片段纯化使用Agencourt AMpure XP Kit进行步骤:1)加入180μL Agencourt AMpure XP Reagent beads于经过末端修复的1.5mL离心管中,充分混匀,室温放置5min2)瞬时离心后,将离心管放置于磁力架(如DynaMag-2磁力架)3min,至溶液澄清,小心去除上清,离心管保持放置在磁力架上3)离心管放置于磁力架上不移动,配置新的500μL 70%乙醇,加入,30s后,盖上盖子颠倒混匀2次,使磁珠悬浮,放回磁力架至溶液澄清后,小心除去上清 4)重复第三步5)用20μL墙头小心吸去多余的液体6)将离心管留在磁力架上,室温风干不超过5min7)取下离心管,加入25μL Low TE缓冲液,盖上盖子,上下颠倒混匀5次,旋窝震荡10s,充分混合8)瞬时离心后,将离心管放于磁力架上至少1min,溶液澄清后,将上清移入一支新的1.5mL EP管中(不可吸到磁珠) 9)纯化的DNA片段用于下一步的接头连接4.接头连接、缺口修复和纯化片段两端的接头分别为barcode接头和P1接头 4.1 接头连接在0.2mL体系中加入(以100ngDNA为例)DNA 25μL10×Ligase Buffer 10μL Ion P1 Adaptor 2μL Ion XpressBarc ode X+ 2μL dNTP Mix 2μL Nuclease-free water49μL DNA Ligase 2μL Nick pair polymerase 8μL Total 100μL将体系配置好后,放入PCR仪按照下面的温度进行1个循环扩增25℃ 15min72℃ 5min 4℃ hold 循环×1立即转移至一个新的1.5mL离心管中 4.2 纯化片段纯化使用Agencourt AMpure XP Kit进行步骤:1)加入140μL Agencourt AMpure XP Reagent beads于经过末端修复的1.5mL离心管中,充分混匀,室温放置5min2)瞬时离心后,将离心管放置于磁力架(如DynaMag-2磁力架)3min,至溶液澄清,小心去除上清,离心管保持放置在磁力架上3)离心管放置于磁力架上不移动,配置新的500μL 70%乙醇,加入,30s后,盖上盖子颠倒混匀2次,使磁珠悬浮,放回磁力架至溶液澄清后,小心除去上清 4)重复第三步5)瞬时离心,用20μL墙头小心吸去多余的液体 6)将离心管留在磁力架上,室温风干不超过5min7)取下离心管,加入20μL Low TE缓冲液,盖上盖子,上下颠倒混匀5次,旋窝震荡10s,充分混合8)瞬时离心后,将离心管放于磁力架上至少1min,溶液澄清后,将上清移入一支新的1.5mL EP管中(不可吸到磁珠)5.文库片段筛选方案1E-Gel Agarose System采用E-Gel SizeSelect 2% Agarose Gel,在E-Gel电泳、成像系统中按照操作说明进行。
菌株基因组全序列测序及其多样性分析引言随着现代生命科学技术的不断发展,基因组学在生物学研究中越来越重要。
其中,菌株基因组测序技术是一种重要手段,可以帮助我们深入了解菌株的生长、发育和适应环境的机制。
本文将重点介绍菌株基因组全序列测序技术及其在多样性分析中的应用。
术语解释在探讨菌株基因组全序列测序技术及其多样性分析应用之前,我们先了解一些术语的定义:1.基因组(genome):指一个生物体所有基因组成的遗传信息的总和。
2.基因(gene):指DNA序列中一段可以编码蛋白质或非编码RNA的区域。
3.序列(sequence):指DNA或RNA的一连串碱基的排列顺序。
4.全序列(whole genome sequencing):指对一个生物体的所有基因组进行测序。
5.测序(sequencing):指将DNA或RNA样本进行分离、扩增、纯化、切割、测序等一系列步骤,最终得到一连串碱基的排列顺序的过程。
6.多样性(diversity):指同一物种或同一系统中个体之间在形态、遗传、生理、生态等方面的差异。
基因组全序列测序技术菌株基因组全序列测序技术是指对一个菌株的所有基因组进行测序。
具体的测序方法有很多种,包括Sanger测序、454测序、Illumina测序、Ion Torrent测序、PacBio测序等。
选择何种方法进行测序,需要根据实际情况而定。
例如,Sanger测序虽然可以对单个DNA分子进行分析,但是速度相对较慢、成本较高,适合测序较小的区域;而Illumina测序虽然速度较快、成本较低,但是对特定的GC含量和重复序列存在局限性。
因此,实验者需要根据实验对象的大小、GC含量、复杂度和所需深度等,选择最适合的测序方法。
基因组全序列测序技术的应用1.挖掘独特基因通过对菌株基因组全序列测序,可以挖掘出该菌株独特的基因。
独特基因的存在,可能是某个生物体适应特定环境、对特定营养物的吸收、抵御重金属离子等环境压力所需。
细菌16SrDNA测序鉴定一、细菌总DNA提取二、16SrDNA的扩增1、以单菌落或菌悬液为模板的16SrDNA扩增体系25ul体系Buffer(含有Mg2+):2.5 uldNTP:2.5 ul:3,-primer:0.5ul5,-primer:0.5ul模板:1个单菌落(或1 ul在LB培养液中37℃,12h的菌悬液)吐温20:2ulTaq酶:0.3水:16.7(或15.7ul)细菌16S rDNA的通用引物为Pf-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG和Rf-TACCTTGTTACCACTT许敬亮博士论文66页:扩增采用通用的引物,其正向序列为:5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3',反向互补序列为: 5'-TTCAGCATTGTTCCAT-3'。
黄婷婷博士论文70页:5’端:5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'(Escherichia coli bases 8 to 27),3’端:5'-TACCTTGTTACGACTT-3'(Escherichia coli bases 1507 to 1492)。
2、以总DNA为模板的16SrDNA扩增体系25ul体系Buffer(含有Mg2+):2.5 ul (购买)dNTP:2.5 ul:3,-primer:0.5ul5,-primer:0.5ul模板:1 ulTaq酶:0.3(或0.2ul)双蒸水:17.7(或17.8ul)3、PCR反应条件94℃,5min;95℃,变性30s;50℃~52℃(可根据扩增情况进行适当调节),退火30s;72℃,延伸1min;30个循环;72℃,延伸15min;10℃(or4℃),保温10min(or nh)。
4、检测扩增效果取1~3 ul扩增产物,适量load buffer,以DL2000为Marker,上0.75%琼脂糖凝胶跑电泳(电压挑低些80~100,胶长些,利于各扩增产物分离及回收切胶)注:扩增条件摸索时每个模板只扩1管即可三、16SrDNA的回收扩增出的每一管16SrDNA经0.75%琼脂糖凝胶电泳检测后,将效果好的各管16SrDNA合并使达到60~100ul样量,100ul16SrDNA+10ul溴酚蓝跑电泳回收胶(电泳液需换成新鲜的,DL2000为Marker),EB染色后在紫外灯下切下16SrDNA 条带放入1.5ml离心管中(离心管事先称重),按DNA凝胶回收试剂盒操作说明回收16SrDNA,取回收16SrDNA 2ul(Dl2000为Marker)跑电泳观察浓度(亮度)与纯度(条带数与位置)。