云南某农村猪戊型肝炎病毒分子流行病学调查

云南省部分地区猪感染BVDV 流行病学调查夏九鲜1,2,郑旺华3,王磊1,亐开兴4,尹革芬1,毕峻龙1∗㊀(1.云南农业大学,云南昆明650201;2.昆明市西山区动物防疫检疫服务中心,云南昆明650100;3.云南省普文公路动物防疫监督检查站,云南景洪666100;4.楚雄师范学院,云南楚雄675000)摘要㊀为了解云南省部分地区猪感染牛病毒性腹泻病毒(BVDV )的情况,对来自散养户和规模猪场的211份不同年龄段粪便样品进行RT -PCR 分子生物学鉴定㊂结果显示,散养户和规模猪场的BVDV 阳性率分别为16.67%和5.83%,哺乳仔猪㊁断奶仔猪㊁育肥猪和种母猪样品阳性率分别为7.58%㊁20.83%㊁11.76%和0,总阳性率为11.37%,表明云南省普遍存在猪感染BVDV 情况㊂该研究结果为多种家畜混养情况下的BVDV 防控提供了理论依据,今后应当提高BVDV 与猪瘟病毒(CSFV )二者混合感染检测及其防控的意识㊂关键词㊀猪;牛病毒性腹泻病毒;感染;调查中图分类号㊀S 858.28㊀㊀文献标识码㊀A㊀㊀文章编号㊀0517-6611(2023)19-0092-03doi :10.3969/j.issn.0517-6611.2023.19.019㊀㊀㊀㊀㊀开放科学(资源服务)标识码(OSID):Epidemiological Investigation on BVDV Infection in Pigs in Some Areas of Yunnan ProvinceXIA Jiu-xian 1,2,ZHENG Wang-hua 3,WANG Lei 1et al㊀(1.Yunnan Agricultural University,Kunming,Yunnan 650201;2.Animal Epi-demic Prevention and Quarantine Service Center of Xishan District,Kunming,Yunnan 650100;3.Puwen Highway Animal Epidemic Preven-tion Supervision Station of Yunnan Province,Jinghong,Yunnan 666100)Abstract ㊀In order to understand the infection of pigs with BVDV in some areas of Yunnan Province,211fecal samples of pigs at different a-ges from scattered-fed households and large-scale farms were identified by RT-PCR.The results showed that the BVDV positive rate of fecal samples of pigs in scattered-fed households and large-scale farms were 16.67%and 5.83%respectively,and the positive rates of BVDV in suckling piglets,weaning piglets,fattening pigs and breeding sows were 7.58%,20.83%,11.76%and 0respectively,with a total positive rate of 11.37%.These results showed that pig herds were commonly infected with BVDV in Yunnan Province,which provided the theoretical basis for BVDV prevention and control in the mixed feeding of several kinds of livestock,the awareness of detection,prevention and control of mixed infection of BVDV and CSFV should be improved.Key words ㊀Pig;BVDV;Infection;Investigation基金项目㊀云南省技术创新人才培养对象项目(202105AD160036);云南省重大科技专项(202102AE090007);高校科技创新团队支持计划项目(IRTSTYN );楚雄师范学院博士启动项目(BSQD2101)㊂作者简介㊀夏九鲜(1969 ),女,云南昆明人,高级兽医师,从事动物疫病防控工作㊂∗通信作者,高级兽医师,从事畜牧兽医技术推广工作㊂收稿日期㊀2022-03-30㊀㊀牛病毒性腹泻病毒(bovine viral diarrhea virus,BVDV)属于黄病毒科瘟病毒属,与猪瘟病毒(classical swine fever virus,CFSV)等病毒存在一定的同源性,且具有结构的相关性和抗原的相关性[1]㊂依据猪体免疫攻毒㊁琼脂扩散㊁中和试验以及免疫荧光试验结果可知,牛病毒性腹泻病毒与猪瘟病毒之间有较强的免疫学关系,2种病毒可溶性抗原相同的概率非常高[2]㊂由于BVDV 感染猪后出现的临床症状与非典型性猪瘟的症状极为相似,加之临床上猪瘟病毒感染出现典型症状的概率较小,在检测猪瘟病毒的过程中时常将BVDV 感染误判为猪瘟病毒感染[3-4]㊂猪被BVDV 感染后,体内会形成与猪瘟病毒交叉的中和抗体,导致血清学诊断结果出现错误,从而会影响对BVDV 的有效诊断和及时控制;同时,猪感染BVDV 后成为一种潜在的传染源,能传染周边的牛和羊,从而造成严重的经济损失[5-6]㊂BVDV 在多种动物之间相互传播还可能会引起该病毒的不断循环和漂移,从而威胁人类健康[7]㊂此外,猪体内BVDV 抗体能够抑制猪瘟病毒,猪感染BVDV 后会对猪瘟疫苗的免疫造成影响,导致猪瘟疫苗的效果变差,成为猪瘟防控工作中的不利因素㊂许多持续性感染处于免疫耐受状态,猪体内不一定产生抗体,处于长期带毒㊁排毒状态,从而造成BVDV 的扩散和传播[3,7]㊂前期笔者所在科研团队已完成云南省一些地区牛感染BVDV 的流行病学调查和毒株分离[8-9],但对猪感染BVDV 的流行病学调查尚未开展㊂笔者利用RT -PCR 检测方法对云南省部分地区猪群开展BVDV 流行病学调查,以期为云南省猪瘟的防控提供参考依据㊂1㊀材料与方法1.1㊀材料1.1.1㊀样品来源㊂自2020年云南省部分地区不同规模养殖场各生长阶段猪群采集211份粪便样品,其中108份来自散养户,103份来自规模猪场㊂各生长阶段猪群粪便样品详见表1㊂1.1.2㊀引物合成㊂用于扩增BVDV 的特异性引物由云南农业大学传染病实验室设计并提供,由昆明硕擎生物科技有限公司合成,TYF 1为5ᶄ-GAGTACRGGGTAGTCGTCA -3ᶄ,TYR 1为5ᶄ-TCCATGTGCCATGTACAGCAGA -3ᶄ,产物预期扩增片段大小220bp㊂1.2㊀方法1.2.1㊀样品处理㊂将采集粪样浸入0.9%生理盐水中,用力摇晃使粪便与生理盐水混合,于4ħ下过夜后将液体转移到新的无RNAase 离心管中;4ħ3000r /min 下离心10min,将上清液吸到新的无RNAase 离心管中;去除粪便残渣,用于核酸提取㊂1.2.2㊀RNA 提取㊂于2mL 离心管中加入300μL 处理好的粪便样品,加入800μL RNAiso Plus(TRIzol),上下反复颠倒,使RNAiso Plus(TRIzol)与样品混匀,4ħ下静置10min;10min 后再加入160μL 氯仿溶液,上下反复颠倒15s 使两㊀㊀㊀安徽农业科学,J.Anhui Agric.Sci.2023,51(19):92-94相彻底混匀,4ħ静置10min,12000r /min 离心15min;小心吸取上层无色溶液约500μL 置于新的1.5mL 无RNAase 离心管中,加入等量异丙醇,4ħ静置10min,12000r /min 离心10min,使RNA 沉淀于离心管底部;小心倒去上清液,向离心管内加入1mL 75%乙醇清洗,7500r /min 离心5min;倒去上清液,轻甩后用吸水纸吸干离心管壁的液体,每管加入20μL DEPC 水溶解RNA,瞬时离心,取5μL RNA 加样到1.5%琼脂糖凝胶(含0.2%EB)孔中,150V 电泳15min,在凝胶成像系统上观察提取RNA 的完整性,并使用核酸定量仪定量RNA 浓度㊂表1㊀不同规模猪场各生长阶段猪粪便样品Table 1㊀Feces samples of pigs in different growth stages from different scale of pig farms单位:份养殖规模Raising scale生长阶段Growth stages哺乳仔猪Suckling piglets断奶仔猪Weaning piglets育肥猪Fattening pigs种母猪Breeding sows总计Total散养户Scattered-fed households36371520108规模猪场Large-scale farms30351919103总计Total667234392111.2.3㊀RNA 反转录㊂反转录体系2ˑES Reaction Mix(含10ˑRT Buffer,dNTPs)5.0μL;EasyScriptTM RT /RI EmzymeMix(含RNase Inhibitor,反转录酶)0.5μL;下游引物1.0μL;模板RNA 3.5μL;总反应体系10.0μL㊂反转录程序:42ħ30min;85ħ5min㊂1.2.4㊀BVDV 检测㊂以反转录cDNA 为模板,进行PCR 扩增㊂PCR 反应体系(25.0μL)如下:2ˑTransHiFi Ⅱ12.5μL㊁ddH 2O 10.5μL㊁上游引物0.5μL㊁下游引物0.5μL㊁cDNA1.0μL㊂PCR 扩增程序如下:94ħ5min;94ħ30s,60ħ30s,72ħ30s,循环35次;72ħ5min;于4ħ下暂存㊂取10μL PCR 扩增产物进行1.5%琼脂糖凝胶(含0.2%EB)电泳15min 后,置于凝胶成像系统下观察并拍照㊂2㊀结果与分析2.1㊀BVDV 检测㊀通过BVDV 特异性引物进行PCR 扩增,对211份粪便样品进行检测和鉴定,所获PCR 产物电泳结果与预期目的片段大小(220bp)相符,确定部分粪便样品BVDV 检测呈阳性(图1),其中24份样品BVDV 检测呈阳性,阳性率为11.37%(24/211)㊂注:1.阴性对照;2~6.部分样品BVDV 电泳鉴定结果;M.DNA Marker 1000㊂Note:1.Negative control;2-6.BVDV electrophoresis identification ofpartial samples;M.DNA Marker 1000.图1㊀BVDV 核酸检测电泳结果Fig.1㊀The electrophoresis results of BVDV detection2.2㊀不同规模猪场BVDV 感染情况㊀由表2可知,从散养户采集108份粪便样品,从规模猪场采集103份粪便样品㊂通过对PCR 产物进行鉴定与统计发现,散养户猪粪便感染BVDV 的阳性率为16.67%(18/108);规模猪场猪粪便感染BVDV 的阳性率为5.83%(6/103),表明BVDV 感染在猪场普遍存在㊂表2㊀不同规模猪场的BVDV 感染情况Table 2㊀BVDV infection of samples in different raising scales of pigfarms养殖规模Raising scale样品总数Total number of samples 份阳性样品数Positive numberof samples份阳性率Positiverateʊ%散养户Scattered-fed households1081816.67规模猪场Large-scale farms10365.83总计Total2112411.372.3㊀不同生长阶段猪BVDV 感染情况㊀由表3可知,66份哺乳仔猪粪便样品中检出阳性样品5份,阳性率为7.58%(5/66);72份断奶仔猪粪便样品中检出阳性样品15份,阳性率为20.83%(15/72);34份育肥猪粪便样品中检出阳性样品4份,阳性率为11.76%(4/34);39份种母猪粪便样品中未检出阳性样品,阳性率为0(0/39)㊂由此可见,不同生长阶段猪感染BVDV 的情况不一样,种母猪样品未检出BVDV 阳性,这可能是由于样品数量偏少所致㊂表3㊀不同生长阶段猪群的BVDV 感染情况Table 3㊀BVDV infection of pig herds in different growth stages生长阶段Growth stages样品总数Total number of samples份阳性样品数Positive number of samples份阳性率Positive rateʊ%哺乳仔猪Suckling piglets6657.58断奶仔猪Weaning piglets721520.83育肥猪Fattening pigs34411.76种母猪Breeding sows 3900总计Total2112411.373㊀讨论BVDV 感染在牛群中极为普遍[10],并能通过粪便排泄向外排毒,成为持续的传染源,从而感染多种家畜[11-14]㊂王新平等[12-13]通过双夹心ELISA 方法检测出BVDV 在牛㊁羊㊁鹿群中的感染率分别为16.5%~89.0%㊁14.6%~83.3%和19.6%~44.4%,后来从内蒙古哲盟疑似猪瘟病料中首次检出BVDV㊂3951卷19期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀夏九鲜等㊀云南省部分地区猪感染BVDV 流行病学调查从不同养殖规模来看,散养户送检样品中BVDV阳性检出率高于规模化养殖场,很可能是由于散养户生物安全意识淡薄,养殖过程中存在多种动物混养;同时,该病感染后很少出现明显的临床症状,带毒猪作为传染源难以被发现并淘汰,导致该病的持续传播[14]㊂该研究首次对云南省猪感染BVDV进行流行病学调查,发现散养户与规模猪场的BVDV 阳性率分别为16.67%和5.83%,与孙泉云等[11]对我国猪源BVDV的研究报道相一致,在猪舍条件简陋㊁生物安全性低㊁防疫理念差的散养户猪群中BVDV感染情况最严重,因而我国广大农村养猪业者应该引起足够重视,并减少多种牲畜的混喂混养㊂从不同生长阶段的猪粪便样品检测结果来看,不同生长阶段的猪感染BVDV的程度不一样㊂聂兆晶[15]对山东省BVDV流行情况的调查发现母猪和仔猪血清中BVDV抗体阳性率分别为45.3%和32.5%,猪场阳性率达88.5%(23/ 26);母猪和断奶仔猪中BVDV的阳性率远高于其他日龄的猪㊂该研究中哺乳仔猪㊁断奶仔猪㊁育肥猪及种母猪BVDV 的阳性率分别为7.58%㊁20.83%㊁11.76%和0,其中断奶仔猪阳性率较高,而检测的种母猪未感染BVDV㊂戴爱玲等[16]对福建龙岩规模化猪场猪感染BVDV流行情况进行调查时发现BVDV感染率为28.6%,猪场BVDV阳性率高达94.4%,种猪猪瘟免疫应注意防范BVDV污染㊂此外,猪被BVDV感染后,体内会形成与猪瘟病毒交叉的中和抗体,导致血清学诊断结果出现错误,最终会影响对BVDV的有效诊断与及时控制[5];同时,猪感染BVDV后生产力大大降低,并成为一种潜在的传染源,能传染附近的牛群和羊群,从而造成严重的经济损失[6]㊂因此,在检验检测中应考虑BVDV与CSFV混合感染情况,减少误诊误判㊂在肉牛㊁牦牛养殖中,BVDV感染普遍存在㊂高双娣等[17]研究发现西北和西南五省(区)黄牛的BVDV阳性率为46.15%,牦牛的BVDV阳性率为30.08%;孟庆森等[18]从不同省份采集451份样品,血清的BVDV中和抗体阳性率为25.6%~91.1%,总阳性率为78.5%;研究表明,青海㊁西藏牦牛群BVDV的阳性率在27%以上[19-20]㊂笔者前期研究表明云南省4州(市)10县(市)BVDV的抗体阳性率为0~60%,整体抗体阳性率为16.45%,各地区之间阳性率差异较大[9],但对云南省猪感染BVDV的流行病学调查尚属首次,今后应当结合多种家畜腹泻发生率来综合考虑BVDV防控㊂近年来,我国在猪瘟防控上收效甚微,很可能是由于BVDV流行所致㊂猪群因免疫被BVDV污染的猪瘟疫苗而感染,感染BVDV后又会影响猪瘟疫苗的免疫效果,因此在猪瘟防控过程中猪瘟疫苗BVDV的污染状况和猪群感染BVDV情况不容忽视,今后应当加强BVDV和CSFV的相关基础研究㊂在流行病学调查中充分结合多种家畜混养区的BVDV流行和混合感染情况,做出流调的全面分析与防控[7,18,21-22],为今后云南省猪群BVDV和猪瘟的防控奠定理论依据㊂参考文献[1]高艳春.猪感染牛病毒性腹泻病毒的研究进展[J].当代畜禽养殖业, 2018(8):8.[2]徐国栋.国内猪源牛病毒性腹泻血清学调查汇总[J].中国动物保健, 2016,18(12):1-2.[3]王宇婷,常敬伟,李超,等.猪混合感染牛病毒性腹泻病毒㊁猪瘟病毒㊁蓝耳病病毒和大肠杆菌的诊断[J].现代畜牧兽医,2016(11):33-36. [4]郑吾星.猪感染牛病毒性腹泻病毒的诊断[J].当代畜禽养殖业,2016(8):6.[5]李娇,谢金文,王文秀,等.猪瘟疫苗中牛病毒性腹泻病毒污染现状及鉴别检测方法研究进展[J].养猪,2018(4):102-104.[6]谢嗣青.牛病毒性腹泻的危害及防治[J].畜牧兽医科技信息,2019(8):86-87.[7]邱美珍,杨俊,杜丽飞,等.猪群中牛病毒性腹泻病毒所致的类似猪瘟及检测方法[J].湖南畜牧兽医,2015(2):4-6.[8]普浩宇,亐开兴,杨贵伟,等.牛病毒性腹泻病毒基因2型云南株的分离与鉴定[J].中国兽医学报,2021,41(10):1922-1929.[9]王丽屏,金显栋,毕峻龙,等.云南省牛病毒性腹泻 黏膜病血清流行病学调查[J].中国牛业科学,2021,47(1):19-22.[10]李佑民,刘振润,武银莲.牛病毒性腹泻一粘膜病病毒株(长春184)的分离与鉴定[J].兽医大学学报,1983,3(2):113-120.[11]孙泉云,陈琦,夏炉明.猪感染牛病毒性腹泻病毒的研究进展[J].国外畜牧学(猪与禽),2011,31(5):89-90.[12]王新平,任文陟,朱维正,等.双抗体夹心ELISA检测牛病毒性腹泻病毒的研究[J].中国兽医学报,1995,15(3):246-249.[13]王新平,涂长春,李红卫,等.从疑似猪瘟病料中检出牛病毒性腹泻病毒[J].中国兽医学报,1996,16(4):341-345.[14]王新平,周绪斌.猪感染牛病毒性腹泻病毒的研究进展[J].动物医学进展,1998,19(1):1-4.[15]聂兆晶.山东省猪感染BVDV调查及BVDV E2基因的序列分析[D].泰安:山东农业大学,2011.[16]戴爱玲,魏春华,黄思琼,等.福建龙岩规模化猪场BVDV感染的血清学调查[J].龙岩学院学报,2013,31(2):50-53.[17]高双娣,邱昌庆,周继章,等.西北和西南五省(区)部分地区黄牛牦牛牛病毒性腹泻/粘膜病血清学监测[J].中国兽医科技,1999,29(7):17 -18.[18]孟庆森,季烨,张学成,等.2018年我国部分地区牛病毒性腹泻病毒感染情况调查[J].中国奶牛,2019(2):22-24.[19]陈新诺,肖敏,阮文强,等.川藏地区牦牛牛病毒性腹泻病毒分子流行病学调查及分离鉴定[J].畜牧兽医学报,2018,49(3):606-613. 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Experimental research | 试验研究区几个大型屠宰场和养殖场，采集血液样品，共计307份。

置于37 ℃温箱1 h，3 000 r/min室温离心10 min，取上清，置于--20℃冰箱中冻存待检，样品采集情况见表1。

表1 血清样本采集情况采样地区血清份数仔猪公猪育肥猪母猪合计楚雄地区7317129883071.1.2 仪器材料1.5 mL离心管、高速离心机、低温冰箱、移液枪、恒温培养箱、洗板机（BioTekElx50TM）、酶标仪（BioTekElx800TM），由云南农业大学动物医学实验教学中心提供。

1.1.3 检测试剂盒检测过程中，应用到的方法是酶联免疫法，试剂盒是在北京万泰生物药业股份有限公司购买的猪戊型肝炎病毒IgG抗体诊断试剂盒。

1.2 试验方法将试剂盒平衡至室温约30 min。

选择50 mL浓缩洗涤液（20×），通过蒸馏水进行稀释，使其变为1 000 mL，以备后续使用。

通过微孔板按照顺序进行样品编号，设置3个阴性对照孔、2个阳性对照孔、1个空白对照孔，其中，空白对照空中无需添加酶标试剂与样品。

所有孔中加入100 μL样品稀释液，随后将待检样品及10 μL 的隐性对照与阳性对照，通过轻微振荡后，使其混合均匀。

封板后，将其放置于温度为37 ℃的环境中，半小时后，将封板膜去掉，利用洗板机进行洗涤，通常要洗5遍，最后一次应尽量减少其中水分。

除空白孔外，所有对照孔均应加入100 μL的酶标二抗。

同样，通过封板膜进行封板处理，将其放置在37 ℃环境中，放置半小时后，将封板膜揭掉，用洗板机进行5遍洗涤，尽量将其中水分排干。

将显色剂A、B放如各孔中，加入量均为50 μL，并振荡均匀，放置于37 ℃避光环境下，显色15 min。

将50 μL终止液加入到每个孔洞中，摇晃均匀，通过450 nm/630 nm酶标仪双波长，进行各孔A值测定。

1.3 结果判定阴性对照孔A值不可超过0.1，若通过实际测量发现存在A值超过0.1的孔，应将该孔舍弃，如果大于0.1的孔超过1个，应重复实验。

2021年第38卷第3期我国部分地区禽戊型肝炎病毒分子流行病学分析张　翔1，林婷婷2，刘丰波1，宋姗姗1，李　彬1，栾栋祖1，王群义1，刘　平1，刘红祥1，马　冬1，任衍倍1，刘　东1，3（1. 青岛易邦生物工程有限公司，山东青岛　266000；2. 青岛农业大学动物医学院，山东青岛　266109；3. 动物基因工程疫苗国家重点实验室，山东青岛　266000）摘　要：为了解我国鸡群中禽戊型肝炎病毒（avain hepatitis E virus，aHEV）的分子变异情况，对2018年从山东、河南、河北、辽宁、吉林、黑龙江、陕西、山西、江苏等地疑似aHEV感染鸡群中采集的679份肝脏、脾脏病料样品进行RT-PCR检测，从中选取PCR阳性产物，对其ORF1基因进行序列测定与遗传进化分析。

结果显示：从病料中检出阳性样品37份，阳性检出率为5.45%；选取的15个试验毒株之间的ORF1基因同源性为90.1%~100%，与目前报道的4种基因型同源性均小于90%，其中与基因1型的澳大利亚株和韩国株同源性为85.5%~89.0%，与基因2型的美国原型株和美国无毒株同源性为85.5%~88.2%，与基因3型的欧洲株和中国株同源性为86.3%~89.7%，与基因4型的匈牙利株和中国台湾株同源性为86.4%~88.5%。

ORF1基因进化树分析发现，所分离的aHEV均属于戊型肝炎B种，不在目前所划分的基因型分支上，形成独立的基因分支，不属于已报道的4个基因型。

结果表明，目前在我国流行的aHEV是一种新基因型病毒，这为我国aHEV分子流行病学分析提供了补充和依据。

关键词：禽戊型肝炎病毒；分子流行病学；ORF1基因；同源性中图分类号：S852.65 文献标识码：A 文章编号：1005-944X（2021）03-0001-04DOI：10.3969/j.issn.1005-944X.2021.03.001Molecular Epidemiological Analysis on Avian Hepatitis E Virus in Some Regions of China Zhang Xiang1，Lin Tingting2，Liu Fengbo1，Song Shanshan1，Li Bin1，Luan Dongzu1，Wang Qunyi1，Liu Ping1，Liu Hongxiang1，Ma Dong1，Ren Yanbei1，Liu Dong1，3（1. Qingdao Yibang Biological Engineering Co.，Ltd.，Qingdao，Shandong　266000，China；2. College of Veterinary Medicine，Qingdao Agricultural University，Qingdao，Shandong　266109，China；3. State Key Laboratory of Genetically Engineered Veterinary Vaccines，Qingdao，Shandong　266000，China）Abstract：In order to investigate the variation status of avian hepatitis E virus（aHEV）in chicken in China，679 lesion samples of livers and spleens collected from the chicken suspected of being infected with aHEV in Shandong，Henan，Hebei，Liaoning，Jilin，Heilongjiang，Shaanxi，Shanxi，and Jiangsu provinces in 2018 were tested by RT-PCR，from which，positive samples were selected，and their ORF1 genes were sequenced and analyzed for genetic evolution. The results showed that 37 positive samples were detected out with the positive rate of 5.45%；the homology of ORF1 genes among 15 selected strains ranged from 90.1% to 100%，and the homology with the four genotypes previously reported was lower than 90%，specifically，that with genotype 1（Australian and the Korean strains）收稿日期：2020-10-13　修回日期：2020-11-09基金项目：2019年中央引导地方科技发展专项通信作者：刘　东。

响水县2013—2017年戊型肝炎流行病学分析摘要】目的：探讨响水县戊型肝炎流行病学特征，旨在为戊型肝炎提供有效的防控措施。

方法：对响水县2013—2017年间戊型肝炎的疫情资料进行回顾性分析。

结果：2013—2017年间，响水县累积戊型肝炎共83例， 2014年发病占比为28.92%最高，随后呈现逐渐降低趋势。

男女比为3.37:1，差异具有统计学意义（P ＜0.05）。

发病年龄在32～84岁之间，以40～84岁之间（92.77%）发病人数最多，随着患者年龄增加发病率呈现逐年上升趋势，两组组间发病率差异具有统计学意义（P＜0.05）。

职业分布主要为农民（87.95%），戊型肝炎全年均有发病，其中以2～4月发病率（32.53%）最高。

结论：加强戊型肝炎监测防治工作，进一步推广戊肝疫苗接种，保护易感人群，避免疫情的暴发。

【关键词】响水县；戊型肝炎；流行病学【中图分类号】R18 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752（2018）35-0353-01一般情况下，戊型肝炎主要经水源进行传播，同时也可经日常生活接触及食物传播，甚至可经血液传播。

根据相关的研究资料表明，戊型肝炎传染性最强的阶段为疾病的潜伏期末期及急性期早期，该病在我国的传播呈现为散发性[1]。

近年来响水县在肝炎的防治措施上取得了一定成效，发病率较低，且无暴发疫情。

基于此，本文对响水县2013—2017年间戊型肝炎的疫情资料进行回顾性分析，旨在为戊型肝炎提供有效的防控措施。

现对研究内容进行如下报告。

1.资料与方法1.1 一般资料江苏省盐城市响水县位于江淮平原东部，盐城、淮安、连云港三市交汇处，东临黄海，北至灌河，南到中山河，西接灌南、涟水两县，面积1378平方公里。

县域地势四面环水，县境属大陆性季风气候区，四季分明，温和湿润，年平均气温14℃左右，年均降水1000毫米左右。

响水县共辖12个乡镇、3个园区、2个省属农（盐）场，总人口62.39万人。

9638卷第4猪群保健H E A L T H猪戊型肝炎是一种由戊型肝病毒引起的急性、暴发性、病毒性肝炎，主要由胃和消化道感染传播。

近几年来，猪戊型肝炎在各国的发病率都呈上升趋势，有报告称人类食用感染戊型肝炎的猪肉会感染戊型肝炎，可见猪戊型肝炎与人们的生命密切相关，因此更需要树立科学养殖的理念，养殖者应该对猪戊型肝炎有一定的认识，做好预防工作，从而降低病毒传染的可能性，为人们的健康生命做好良好铺垫。

猪戊型肝炎研究进展伍玉洁，杨小芹，尹 苗，吴 倩，陈希文 *（绵阳师范学院 四川生猪重大疾病监测与防控工程研究中心，四川 绵阳 621000）摘 要：我国为猪戊肝发病率比较高的地区之一，曾发生戊型肝炎的多次爆发或大面积的流行，并可传播给人类，与人的生活密切相关，回顾猪戊肝炎病毒结构特征研究，流行方式、临床症状及病理变化等，为猪戊型肝炎未来的诊断提供参照。

文章收集国内外文献资料查询酶联免疫吸附试验（ELISA ）、免疫电子显微镜（IEM ）、免疫荧光实验（IFA ）、荧光定量 RT-PCR 法对防治猪戊型肝炎进行研究，对其作了分析、比较和汇总。

为猪戊型肝炎病毒提供了有效诊断方式以及防御措施。

对猪戊型肝炎仍需养殖者认真护理，一旦确诊为动物戊型肝炎，应立即对其进行隔离治疗。

关键词：猪；戊型肝炎；流行特点；诊断；防控Research progress of swine hepatitis EYujie Wu; Xiaoqin Yang; Miao Yin; Qian Wu; Xiwen Chen *(Sichuan Research Center for Major Pig Disease Surveillance and Control Engineering, Mianyang Normal University, Mianyang, Sichuan 621000, China)Abstract ：China, as one of the regions with high incidence rate of hepatitis E in pigs, has experienced outbreaks or large scale epidemic of hepatitis E many times, which can be transmitted to humans and is closely related to human life. The structure characteristics, epidemic pattern, clinical symptoms and pathological changes of swine hepatitis E virus are reviewed in order to provide reference for the future diagnosis of swine hepatitis E. The literatures at home and abroad were collected, and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), immunoelectron microscopy (IEM), immunofluorescence assay (IFA) and fluorescence quantitative RT-PCR were used to study the prevention and treatment of swine hepatitis E. It provided an effective diagnostic method and defensive measures for swine hepatitis E virus. In conclusion swine hepatitis E still needs to be carefully cared by the farmers. Once the animal hepatitis E is diagnosed, it should be isolated and treated immediately .Key word: Swine; Hepatitis E; Epidemic characteristics; Diagnosis; Prevention and control基金项目：阿坝州科技局项目（18YYJSYJ0015）。

猪戊型肝炎病毒分子生物学与流行病学研究进展郝宝成;兰喜;刑小勇;项海涛;胡永浩;柳纪省;梁剑平【期刊名称】《中国动物传染病学报》【年(卷),期】2010(18)5【摘要】戊型肝炎病毒(Hepatitis E virus,HEV)是20世纪80 年代发现的又一新型肝炎病毒,近年来对戊型肝炎病毒病原学、流行病学、实验室诊断、基因结构等方面研究取得了重大进展,本文就HEV的形态、基因分型、分子生物学特性、戊型肝炎(Hepatitis E,HE)的流行病学特点作一简要概述.【总页数】7页(P67-73)【作者】郝宝成;兰喜;刑小勇;项海涛;胡永浩;柳纪省;梁剑平【作者单位】中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所新兽药工程重点实验室,兰州,730050;中国农业科学院兰州兽医研究所,家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,农业部草食动物疫病重点开放实验室,兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所,家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,农业部草食动物疫病重点开放实验室,兰州,730046;甘肃农业大学动物医学院,兰州,730070;甘肃农业大学动物医学院,兰州,730070;甘肃农业大学动物医学院,兰州,730070;中国农业科学院兰州兽医研究所,家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,农业部草食动物疫病重点开放实验室,兰州,730046;甘肃农业大学动物医学院,兰州,730070;中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所新兽药工程重点实验室,兰州,730050;中国农业科学院兰州兽医研究所,家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,农业部草食动物疫病重点开放实验室,兰州,730046【正文语种】中文【中图分类】S858.282.659.6【相关文献】1.大理地区猪源甲型、乙型、戊型肝炎病毒血清流行病学调查 [J], 李丽娟;申元英;艾志琼;王涛;张文;李东;段彪2.云南某农村猪戊型肝炎病毒分子流行病学调查 [J], 黄芬;禹文海;马天武;井申荣;曾韦锟3.猪戊型肝炎病毒的流行病学调查 [J], 张亮权;梁焕斌;王衡;高李泽;王德刚;尤佳;张桂红4.猪圆环病毒2d型的分子生物学特征和流行病学研究进展 [J], 黄坤;王东亮;邹亚文;王乃东;董彦鹏;湛洋5.戊型肝炎病毒分子生物学、血清学、诊断方法及流行病学研究 [J], 庄辉;毕胜利;李凡;江永珍;朱万孚;刘崇柏;朱晓洁;朱永红;鲁凤民;曹学义因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。