原代细胞培养实验汇总

细胞的原代培养实验报告一、实验目的细胞原代培养是指从机体取出细胞、组织或器官后，通过机械或酶学方法分散成单个细胞，在体外进行培养的过程。

本次实验的目的是掌握细胞原代培养的基本技术和方法，观察细胞在体外的生长和形态变化，为进一步的细胞生物学研究奠定基础。

二、实验原理细胞原代培养的关键在于保持细胞的活性和完整性，同时提供适宜的生长环境。

通常采用酶消化法或组织块培养法来获取单细胞或细胞团。

在培养过程中，细胞需要充足的营养物质、适宜的温度、pH 值和气体环境，以促进细胞的生长和分裂。

三、实验材料1、实验动物：新生小鼠2、试剂和培养基：DMEM 培养基、胎牛血清、胰蛋白酶、EDTA、青霉素链霉素溶液、PBS 缓冲液等3、实验器材：超净工作台、CO₂培养箱、倒置显微镜、离心机、移液器、培养瓶、培养皿、手术器械等四、实验步骤1、取材处死新生小鼠，用 75%酒精消毒其腹部皮肤。

用手术剪剪开腹部皮肤和肌肉，取出肝脏组织，置于预冷的 PBS缓冲液中。

2、组织处理将肝脏组织转移至培养皿中，用 PBS 缓冲液冲洗 2-3 次，去除血液和杂质。

用眼科剪将组织剪成 1-2mm³的小块。

3、酶消化将组织小块转移至离心管中，加入适量的胰蛋白酶EDTA 溶液，置于 37℃水浴中消化 15-20 分钟，期间每隔 5 分钟轻轻振荡一次。

消化结束后，加入等量的含血清的培养基终止消化，用移液器轻轻吹打制成细胞悬液。

4、细胞过滤将细胞悬液通过 200 目滤网过滤，去除未消化的组织块和细胞团。

5、细胞计数和接种吸取少量细胞悬液，加入台盼蓝染液，在显微镜下计数活细胞数。

根据细胞计数结果，将细胞以适当的密度接种于培养瓶或培养皿中，置于 CO₂培养箱中培养。

6、培养和观察培养 24 小时后，在倒置显微镜下观察细胞的贴壁情况。

每隔 2-3 天更换一次培养基，观察细胞的生长和形态变化。

五、实验结果1、细胞贴壁情况培养 24 小时后，大部分细胞已贴壁，呈圆形或多边形，贴壁细胞周围有光晕。

细胞生物学实验报告实验三细胞原代培养1引言1.1 实验目的1. 理解细胞原代培养原理。

2. 了解细胞原代培养的应用。

3. 独立进行鼠胚和鸡胚细胞原代培养操作。

4. 巩固无菌操作技术。

1.2 实验原理细胞原代培养：原代培养组织直接从机体获取后，通过组织块长出单层细胞或者用酶消化或机械方法将组织分散成单个细胞开始培养，严格意义上的原代培养指在首次传代前的培养，但通常把第一代至第十代以内的培养细胞统称为原代细胞培养。

2实验仪器、试剂及操作步骤2.1 实验仪器超净工作台、倒置相差显微镜、CO2培养箱、酒精灯、酒精棉球、酒精喷壶、试管架、滴管筒（头）、废液缸、手术小直剪刀、眼科直镊子、眼科弯镊子、玻璃平皿、培养瓶等2.2 实验试剂DMEM培养基、D-Hanks缓冲液、血清、抗生素、胰蛋白酶消化液等2.3 实验材料动物：9至12日龄的鸡胚、15日龄的鼠胚2.4 实验步骤A.鸡胚成纤维细胞的原代培养1.实验室和超净工作台消毒，紫外照射20Min左右。

2.穿好实验服，进无菌室前穿鞋套、洗手。

3.关闭紫外灯，开日光灯和开风机，超净工作台台面应整洁，用75%酒精擦双手消毒，擦拭台面。

4.在D-Hanks缓冲液中按1：100的比例加入双抗。

5.取9-12日龄鸡胚，用照蛋器照检，画出气室边界和胎位。

将鸡胚置于鸡卵架上，用酒精棉球擦拭蛋壳。

6.用镊子在鸡蛋气室位置敲一道划痕，然后用镊子小心去除气室部位的蛋壳。

7.换用洁净的无菌镊子揭开膜，取出鸡胚至灭菌的培养皿中，用D-Hanks缓冲液冲洗鸡胚。

8.用眼科剪去除鸡胚的头部、四肢以及内脏，然后用D-Hanks缓冲液充分洗涤躯干。

9.将躯干置于小平皿盖中，用D-Hanks缓冲液至少洗涤3次，充分弃除红细胞。

10.用无菌眼科小剪刀将鸡胚躯干剪成1mm3的碎块。

在胚胎组织块中加入1mL的胎牛血清，用滴管吸取组织块接种到培养瓶内。

在培养瓶中放置10-15个组织块。

11.在培养瓶的另一侧面加入完全培养基，注意不要冲到组织块。

原代细胞培养实验报告实验名称：原代细胞培养实验实验目的：1.掌握原代细胞培养的基本技术和方法；2.观察和记录原代细胞在体外培养过程中的生长和变化；3.学习和探究细胞培养对细胞形态、功能和特性的影响。

实验材料和方法：1.实验材料：原代细胞，培养基，培养皿，培养瓶，培养箱等；2.实验方法：a.准备工作：消毒实验区域，准备适宜的培养条件；b.培养器皿预处理：将培养皿和培养瓶加热至高温，使其表面杀菌；c.细胞移植：用适量的培养基将原代细胞移植至培养皿或培养瓶中；d.细胞培养：将细胞培养在恒温恒湿的培养箱中，定期观察和记录细胞的生长情况；e.细胞传代：当细胞达到一定密度时，用消化液将细胞从原培养皿中剥离，并转移到新的培养皿中，促进细胞的继续生长和繁殖。

实验结果与分析：在进行原代细胞培养实验的过程中，我们发现原代细胞在培养基中可以维持一定的形态和生物活性。

经过一段时间的培养，细胞开始出现贴壁生长，并形成单层密集的细胞群。

这时，细胞的数量明显增加，可见其细胞分裂和增殖的效果。

细胞形态也逐渐变得规整，细胞质较为丰满，细胞核染色质着色精细。

随着培养的时间推移，细胞的代谢活动逐渐增强，细胞数量持续增加。

细胞形态和功能逐渐分化，并出现特定的细胞类型，如心肌细胞、肝细胞等。

这表明原代细胞在体外培养的过程中，依然能够保持其特定的细胞类型和功能特性。

然而，我们也发现在长时间的培养过程中，细胞的生长速度逐渐放缓，甚至停滞。

细胞形态也开始出现变异和退化，如细胞形状异常、质量变差等。

这可能是由于细胞的老化和突变导致，同时也与培养条件和传代的次数有关。

结论：通过本次实验，我们成功地进行了原代细胞的培养，并观察到了细胞在体外培养过程中的生长和变化。

我们发现原代细胞能够在适宜的培养条件下，维持其形态和功能的稳定性，并且能够分化成特定的细胞类型。

然而，在长时间的培养过程中，细胞的生长速度逐渐放缓，而细胞的形态也逐渐出现变异和退化。

因此，在进行原代细胞培养时，需要合理控制培养条件和适时进行细胞传代，以保持细胞的生长和特性。

细胞生物学实验报告细胞原代培养姓名：学号：班级：专业：同组成员：一、实验原理细胞培养是生物学和医学研究中最常用的手段之一，可分为原代培养和传代培养两种。

原代培养是直接从生物体获取组织或器官的一部分进行培养。

由于培养的细胞刚刚从活体组织分离出来，故更接近于生物体内的生活状态。

这一方法可为研究生物体细胞的生长、代谢、繁殖提供有力的手段。

同时也为以后传代培养创造条件。

原代培养的方法：1、组织块法在平皿中用弯头剪把组织尽量剪碎，每个组织块小于1mm3大小。

用Hanks 液洗涤2—3次，自然沉淀。

用吸管吸去上清液。

将组织块贴于培养瓶进行培养。

2、酶消化法将1mm3大小的组织块放入1个三角瓶内加入10—30ml的%的胰蛋白酶。

370C磁棒搅拌消化20－30分钟。

然后终止消化。

用几层无菌纱布过滤。

取过滤液，离心800rpm 5—10分钟收集细胞。

弃上清，加入带有双抗的培养基，放入培养瓶培养。

取材注意事项：取材要注意新鲜和保鲜。

取材应严格无菌。

取材和原代细胞制作时，要用锋利的器械，如手术刀或剃须刀片切碎组织，尽可能减少对细胞的机械损伤。

要仔细去除所取材料上的血液（血块）、脂肪、坏死组织及结缔组织，切碎组织时应避免组织干燥，可在含少量培养液的器皿中进行。

取材应注意组织类型、分化程度、年龄等，一般来讲，胚胎组织较成熟个体组织容易培养，分化低的较分化高的组织容易生长，肿瘤组织较正常组织容易培养。

二、实验目的1、理解细胞原代培养原理2、熟悉细胞原代培养方法与过程3、了解细胞原代培养的应用4、独立进行细胞原代培养操作三、实验材料手术小直剪刀、眼科直镊子、眼科弯镊子、玻璃平皿、培养瓶、试管、移液管、巴斯德吸管、废液缸、75%酒精棉球、酒精灯。

动物：9-12日龄的鸡胚蛋四、实验步骤1、购买9-12日龄鸡胚蛋。

放入孵化箱中孵养待用。

2、取鸡胚蛋一枚放入超净工作台中，用酒精棉球擦拭鸡蛋壳后，气室处擦拭两遍，用镊子小心去除气室部分的蛋壳。

原代肝细胞培养原代肝细胞培养1．实验材料灌流液：NaCl、KCl、NaH2PO4.2H2O、Na2HPO4.H2O、NaHCO3、HEPES、EDTA、Glucose （国药或阿拉丁）。

消化液：Collagenase IV（Yeasen，翊圣生物，产品货号：40510ES60，100 mg ，279￥）、CaCl2。

Percoll：Percoll（GE Healthcare，17-0891-02）我买的是分装的100ml，450￥的17-0891-01-1。

麻醉剂：10%水合氯醛。

实验器材：200目细胞筛、20ml 注射器、头皮针、手术剪3把、手术镊3把（实验前灭菌），细胞培养皿2个，离心机，实验前备冰盒及水浴锅，鼠板及大头针（实验前酒精及紫外消毒）。

2. 实验前准备1) 灌流液Perfusion SolutionNaCl KCl NaH2PO4.2H2O Na2HPO4.H2O NaHCO3 HEPES EDTA Glucose离子）。

用前37℃温育。

每只老鼠消耗15ml灌流液。

2）消化液100× CaCl2：560mg CaCl2，加入10 ml PBS/ ddH2O，分装-20℃保存。

10× CollagenaseIV：100 mgCollagenaseIV粉末溶于20 mlDMEM（无血清），0.22 uM滤膜过滤除菌，每管1.5ml分装。

消化液：13.5 mlDMEM（无血清）加入150 μl100× CaCl2（终浓度5 mM），再加入1.5 ml10× CollagenaseIV（终浓度0.5 mg/ml），于37℃温育。

每只老鼠消耗15ml消化液。

3）40%Percollg/L 8.0 0.4 0.078 0.151 0.35 2.380 0.19 0.9调节pH 7.2-7.4，配好后过滤除菌。

（不能高压灭菌，其中含葡萄糖及HCO3-16.2 ml 100%percoll原液，加入1.8 ml10×PBS，再加入27ml 1×PBS，得45 ml。

细胞生物学实验报告原代细胞培养1.实验目的：了解原理代细胞培养的基本方法，初步掌握无菌操作的方法。

2.实验用品：（1）仪器及器材：显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、手术剪、解剖盘、胶头滴管、微量移液管、培养皿、离心机、注射器、L型针头（2）实验药品：蒸馏水、75%酒精溶液、PBS溶液、细胞培养液（3）实验材料：小鼠3.实验原理：（1）动物细胞培养：从动物体内取出体细胞，在体外模拟体内环境在无菌、适宜温度和一定的营养条件下，使之生存、生长、繁殖，并维持其结构和功能的方法。

原代细胞培养：直接从体内获取细胞组织或器官进行体外培养至第一次传代培养为止。

细胞培养至一定程度后，需再做培养。

及培养的细胞分散后，从一个容器以一定比例转移到另一容器扩大培养。

代数：传代培养累计次数（2）细胞培养的条件①气体条件：有一定的O）（小于空气中浓度）和CO2（5%）②无菌环境：培养用品应高温灭菌，培养液应无菌处理，操作应在超净工作台无菌操作。

③最适温度：36～37℃为最适温度，30～37℃细胞可进行代谢，4℃细胞可存活数天。

④渗透压：一般为260～320mmol/l （人血浆一般为290mmol/l）⑤营养条件：含细胞生长必须的有机物，氨基酸、维生素、无机盐、辅助物等。

培养基中不含生长因子，因此，必须在培养基中加入小牛血清。

⑥最适pH：7.0～7.4（中和细胞代谢废物与酸性气体环境）（3）贴壁生长与不贴壁生长①贴壁生长：来自于实体组织的细胞多贴壁生长。

贴壁生长的细胞进行传代培养更换培养皿时有以下步骤：首先，应轻晃培养皿并弃去上清液（去除死细胞），再用胰蛋白酶处理（细胞成片收缩，变圆），倾斜培养皿，用滴管吸去多余酶液，然后用滴管吸取PBS溶液吹打细胞并离心，最后，加入新的培养液，按比例分入培养皿中。

②不贴壁生长：造血细胞、癌细胞等。

半量换液法：吸取1/2培养液到新的培养皿中，再离心，取下层细胞，分入多个培养皿中。

4.实验步骤：（1）用断头法处死小鼠，置于解剖盘中。

细胞原代培养方法1. 胰酶消化法(1) 器材：将孕鼠或新生小鼠拉颈椎致死，置75%酒精泡2—3秒钟(时间不能过长、以免酒精从口和肛门浸入体内)再用碘酒消毒腹部，取胎鼠带入超净台内(或将新生小鼠在超净台内)解剖取肝脏，置平皿中。

(2) 用Hank’s液洗涤三次，并剔除脂肪，结缔组织，血液等杂物。

130(3) 用手术剪将肝脏剪成小块(1mm2)，再用Hank’s液洗三次，转移至小青霉素瓶中。

(4) 视组织块量加入5—6倍的0.25%胰酶液，37℃中消化20—40分钟，每隔5分钟振荡一次，或用吸管吹打一次，使细胞分离。

(5) 加入3—5ml培养液以终止胰酶消化作用(或加入胰酶抑制剂)。

(6) 静置5—10分钟，使未分散的组织块下沉，取悬液加入到离心管中。

(7) 1000rpm，离心10分钟，弃上清液。

(8) 加入Hank’s液5ml，冲散细胞，再离心一次，弃上清液。

(9) 加入培养液l—2 ml(视细胞量)，血球计数板计数。

(10) 将细胞调整到5×105/ml左右，转移至25ml细胞培养瓶中，37℃下培养。

上述消化分离的方法是最基本的方法，在该方法的基础上，可进一步分离不同细胞。

细胞分离的方法各实验室不同，所采用的消化酶也不相同(如胶原酶，透明质酶等)。

2. 组织块直接培养法自上方法第3步后，将组织块转移到培养瓶，贴附与瓶底面。

翻转瓶底朝上，将培养液加至瓶中，培养液勿接触组织块。

入37℃静置3—5小时，轻轻翻转培养瓶，使组织浸入培养液中(勿使组织漂起)，37℃继续培养。

3. 贴壁细胞传代方法(1) 吸光培养瓶中的培养液。

(2) 加入1-2 mL 0.25%的胰蛋白酶液(以消化液能覆盖整个瓶底为准)静置2-10min(显微镜下动态监测) 。

(3) 吸去胰蛋白酶液，加入培养液。

(4) 吸取瓶内培养液，反复吹打瓶壁细胞，形成细胞悬液。

(5) 吸取细胞悬液，接种于新的培养瓶内。

(6) 加适量新鲜培养液于新培养瓶内。

一、实验目的1. 掌握原代细胞培养的基本原理和操作步骤。

2. 学习细胞传代培养的方法和注意事项。

3. 观察细胞在不同培养条件下的生长状态，为后续实验提供基础细胞。

二、实验原理原代细胞培养是指从生物体内取出组织或细胞，经过消化、分离等步骤，在无菌条件下将其培养在适宜的培养基中，使其生长、繁殖的过程。

原代细胞培养是细胞生物学、分子生物学、药理学等领域研究的重要技术手段。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：小鼠肝脏组织、胰蛋白酶、EDTA、DMEM培养基、胎牛血清、青霉素、链霉素、无菌水、细胞培养瓶、培养皿、移液器、显微镜、离心机等。

2. 实验仪器：CO2培养箱、超净工作台、显微镜、离心机、移液器等。

四、实验方法1. 组织处理：将小鼠肝脏组织放入无菌培养皿中，用无菌手术剪将其剪成1mm³大小的组织块。

2. 消化：将组织块放入含有胰蛋白酶和EDTA的消化液中，在37℃水浴中消化5-10分钟。

3. 分离：将消化后的组织块转移到离心管中，加入适量DMEM培养基，用移液器吹打使其分散成单个细胞。

4. 细胞计数：取少量细胞悬液，用血球计数板进行细胞计数。

5. 细胞接种：将细胞悬液接种到培养瓶中，放入CO2培养箱中培养。

6. 细胞传代：待细胞生长至单层时，用胰蛋白酶消化细胞，按照1：2的比例进行传代培养。

7. 观察细胞生长状态：定期观察细胞生长状态，记录细胞数量、形态等变化。

五、实验结果1. 细胞计数：接种后24小时，细胞开始贴壁生长，48小时后细胞数量明显增加。

2. 细胞传代：传代培养过程中，细胞生长状态良好，细胞数量、形态等指标均符合要求。

3. 细胞生长状态：细胞呈多边形，排列整齐，细胞间隙较小，细胞核清晰可见。

六、实验讨论1. 原代细胞培养的成功关键在于无菌操作和适宜的培养条件。

在实验过程中，要严格按照无菌操作规程进行，确保细胞培养环境的无菌。

2. 细胞传代培养是维持细胞生长和繁殖的重要手段。

在传代过程中，要选择合适的消化时间，避免过度消化或消化不足。

细胞原代培养细胞生物学实验报告细胞原代培养实验报告一、实验目的本实验的主要目的是进行细胞原代培养，通过对细胞的体外生长和繁殖过程进行观察和研究，以了解细胞的生物学特性，探索细胞生长、分化和凋亡的机制，为细胞生物学、肿瘤学、药理学等领域的研究提供实验基础。

二、实验原理细胞原代培养是指将组织样本通过一定的消化和培养技术，获得并培养单细胞悬液的过程。

这些细胞可以在体外生长和繁殖，并保持一定的生物学特性。

通过细胞原代培养，我们可以对细胞的生长、分化和凋亡过程进行深入研究，了解细胞的生物学特性，探索疾病的发病机制和药物的作用机制。

三、实验步骤1.组织样本准备：选取适当的组织样本，用PBS洗涤并用剃毛刀除去表面脂肪和结缔组织，切成1-2mm3的小块。

2.消化：将组织块加入含有胰蛋白酶和EDTA的消化液中，在37℃下消化10-15分钟。

期间需轻轻摇动几次以促进细胞释放。

3.细胞悬液制备：消化完成后，将消化液过滤至100目筛网，用PBS洗涤并离心（1000rpm，5分钟）去除上清液。

加入适量培养基制成细胞悬液。

4.细胞培养：将细胞悬液接种到培养瓶中，加入适量培养基进行培养。

在培养期间需注意观察细胞的生长情况和更换培养基。

5.细胞传代：当细胞生长到一定密度时，可以进行传代。

用胰蛋白酶消化细胞并离心收集，加入适量培养基制成细胞悬液，按比例接种到新的培养瓶中。

6.实验记录：在整个实验过程中，需要对细胞的生长情况、形态学变化等进行详细记录。

同时，需要定期拍照记录细胞的生长情况。

7.结果分析：通过对细胞的生长情况、形态学变化等进行观察和分析，可以得出有关细胞生物学特性的结论。

四、实验结果及数据分析1.实验结果（请在此插入不同时间点的细胞生长照片）通过观察和记录细胞的生长情况，我们发现原代细胞在接种后的前几天内处于适应期，细胞数量增长较慢。

随后，细胞数量开始加速增长，并逐渐形成集落。

传代后，细胞的生长速度又逐渐减缓，但仍然保持稳定增长。