6-BA和GA3对山葵种子萌发的影响

不同温度、不同GA3浓度处理对枇杷种子萌发及幼苗生长的
影响
王贵元;王琴
【期刊名称】《天津农业科学》
【年(卷),期】2015(021)001
【摘要】为探讨促进枇杷种子萌发的条件,以枇杷种子为试材,分别在不同温度(15,20,25,30,35℃)和同一温度(25℃)不同GA3浓度(50,100,200,400 mg·L-1)下进行处理,观察不同处理对枇杷种子萌发的影响,计算各处理的发芽率、发芽势和幼苗活力指数等指标.结果表明,15～30℃下随着温度的升高,种子萌发速度呈上升趋势,最适温度为25℃左右,35℃下种子不萌发;GA3处理均可促进枇杷种子的萌发速度、整齐度,以400 mg· L-1浓度处理效果最好.
【总页数】4页(P110-113)
【作者】王贵元;王琴
【作者单位】长江大学园艺园林学院,湖北荆州434025;湖北省荆州市荆州区农业局,湖北荆州434025;长江大学园艺园林学院,湖北荆州434025
【正文语种】中文
【中图分类】S667.3
【相关文献】
1.不同浓度6-BA和GA3处理对枇杷实生苗生长的影响 [J], 王贵元;李冰
2.GA3对不同年份烟草种子萌发和幼苗生长的影响 [J], 谭晰;朱列书
3.不同温度、GA3和NaCl处理对狭叶薰衣草种子萌发的影响 [J], 梁文华;史宝胜;刘嘉翔;杨建伟
4.不同温度处理对堇叶碎米荠种子萌发和幼苗生长的影响研究 [J], 李瑜
5.不同温度处理对苋菜种子萌发和幼苗生长的影响 [J], 黄倩茹;张爱冬;查丁石;吴雪霞;孔令娟;李建勇
因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

不同浓度6—BA包衣芹菜种子对萌发效果的影响作者：吴锋高国训王武台刘惠静林建华郝建全李海燕陈立升王洲来源：《天津农业科学》2015年第08期摘要：以天津科润蔬菜所芹菜品种‘优文图斯’种子为材料，应用不同浓度的6-BA包衣，调查分析种子发芽率、发芽势、发芽指数、活力指数，研究包衣对种子萌发的影响。

结果表明，在种子基本芽率较高的情况下，单一6-BA 包衣芹菜种子对发芽率没有影响，在一定浓度范围内6-BA 包衣处理芹菜种子对发芽势、发芽指数、活力指数有促进作用，包衣处理芹菜种子6-BA 浓度为250 mg·L-1时发芽势、发芽指数、活力指数最高。

关键词：赤霉素；包衣；芹菜；种子；萌发效果中图分类号：S636.3 文献标识码：A DOI 编码：10.3969/j.issn.1006-6500.2015.08.034芹菜（Apium graveolens L.）是伞形科（Umbelliferae）芹属（Apium）中的栽培种，喜冷凉，适宜温和气候的二年生草本植物 [1]。

据《中国农业统计资料》报道，我国2008年芹菜栽培面积达57.33万hm2[2]，已成为我国七大重点蔬菜种类之一，随着芹菜栽培面积的扩大，良种的需求量随之增长，然而生产上播种用的芹菜种子其外皮革质化且含挥发油，透水性差，种子小，千粒质量仅有0.41 g [3]，发芽十分缓慢且不整齐，这给生产带来了不利影响。

种子包衣技术是我国20世纪九十年代广泛推广的一项植物保护技术，它具有综合防治、低毒高效、省种省药、保护环境、投入产出比高的特点，主要应用在小麦、玉米、水稻、棉花、大豆、油菜、花生、某些蔬菜等作物上[4]，据报道，使用种衣剂的粮食作物一般增产10%～20% [5]。

本试验根据前人的研究结果和芹菜种子发芽特征特性，选择不同浓度的6-BA 包衣处理芹菜种子，研究不同浓度6-BA包衣芹菜种子对萌发效果的影响，为芹菜专用型种衣剂的开发研究提供基础。

GA3、ABA和6-BA对大豆根系生长的影响李欣欣;廖红;赵静【摘要】[Objective]This experiment was conducted to explore effects of different concentrations of GA3 , ABA, and 6-BA on soybean root growth , which could provide a theoretical basis for a further con-trol of soybean root architecture through phytohormone .[Method]The seedlings of soybean cultivar“HN89” were treated with 0.05, 0.50, 1.00, and 5.00μmol· L-1 gibberellin (GA3), abscisic acid ( ABA) and cytokinin (6-BA) respectively for 4 days, then root morphological parameters were quanti-fied and analyzed .[Result and conclusion]The results showed that 0.05μmol· L-1 GA3 promoted the total root length of soybeans , but increasing GA 3 concentration would constrain primary root and lateral root growth, which decreased the total root length .GA3 decreased average root diameters , hence resulting in fine roots.0.05 μmol· L-1 ABA did not affect the soybean root growth , while increasing ABA con-centration higher than 0.5μmol· L-1 inhibited primary root and lateral root growth , decreasing the total root length , and slightly increasing average root diameters .6-BA significantly constrained the soybean root growth and development , for instance , it inhibited primary root elongation , lateral rooting , and the total root length , but it promoted average root diameter , resulting in thick roots .These results indicated that different phytohormones or similar phytohormone with different concentrations can control soybean root architecture by controlling primary roots and lateral roots growth indifferent ways .%【目的】研究不同浓度赤霉素（GA3）、脱落酸（ABA）和细胞分裂素（6-BA）对大豆根系生长的影响，为进一步利用激素调控大豆根系构型提供理论依据．【方法】以大豆品种“HN89”为材料，分别用浓度为0.05、0.50、1.00和5.00μmol· L-1的GA3、ABA和6-BA处理大豆幼苗4 d，利用根系分析软件定量分析根系形态参数的变化．【结果和结论】0.05μmol · L-1 GA3处理可使大豆总根长增加，但随着处理浓度的增加，主根、侧根生长和总根长会受到抑制，GA3处理显著降低了根系平均直径，根变得纤细；0.05μmol· L-1 ABA处理不影响大豆根系生长，当ABA处理浓度大于0.5μmol · L-1后，显著抑制了主根生长和侧根数，从而降低了根系总根长，但对根平均直径影响较小；4种浓度的6-BA处理均显著抑制大豆根系生长发育，主根长、侧根数和总根长都显著降低，但提高了根平均直径，根变粗．研究结果说明，不同激素类物质及同一激素的不同浓度对大豆根系的主根、侧根生长有着不同的调控模式．【期刊名称】《华南农业大学学报》【年(卷),期】2014(000)003【总页数】6页(P35-40)【关键词】大豆;GA3;ABA;6-BA;根系;生长发育【作者】李欣欣;廖红;赵静【作者单位】亚热带农业生物资源保护与利用国家重点实验室/华南农业大学资源环境学院，广东广州510642;亚热带农业生物资源保护与利用国家重点实验室/华南农业大学资源环境学院，广东广州510642;亚热带农业生物资源保护与利用国家重点实验室/华南农业大学资源环境学院，广东广州510642【正文语种】中文【中图分类】S565.1根系是植物的固着器官，在吸收土壤水分和养分、合成和贮藏营养物质等方面起着重要的作用，同时它可以感知外界各种刺激从而调控植物的生长发育［1］.根系生长发育受到诸多内外因素的影响，而激素的调控作用是其中的重要部分.在传统的五大类植物激素中，赤霉素(GA3)、脱落酸(ABA)和细胞分裂素(6-BA)对根系的生长发育具有重要作用.GA3调控主根发育.拟南芥GA3缺失突变体gal-3主根变短，外施GA3处理时，能使突变体主根长恢复到野生型的状态［2］.GA3能够调控拟南芥根系分生区长短.Ubeda-Tomás等［3］通过GA3合成抑制剂及遗传手段研究发现，利用多效唑抑制野生型拟南芥内源 GA3生物合成，导致根系分生区缩短.0.2 mg·L-1的GA3是棉花幼苗发育的最适浓度，促进了棉花的主根伸长生长，并增加了侧根数［4］.GA3能促进植物不定根生长.研究表明适当浓度的GA3处理促进了甘蔗试管苗根原基的形成和伸长，增加了根长和根数量，从而显著提高了试管苗的生根率和存活率［5］.外源ABA会抑制拟南芥侧根发育.拟南芥在含有外源ABA的培养基培养9 d后没有形成侧根，ABA抑制侧根发育不依赖于生长素的调控途径［6］.Chen等［7］发现外施10 μmol·L-1ABA导致水稻种子根膨胀、根毛形成和侧根原基突起进而调节水稻根系生长发育.ABA可抑制主根静止中心细胞分裂.Zhang等［8］利用ABA抑制剂-氟啶酮处理拟南芥，发现静止中心细胞分裂加速，此外，ABA会抑制拟南芥主根分生区细胞及干细胞的分化.魏金凤等［9］综述了ABA调节植物根系补偿生长的机制，指出ABA对根系生长发育的调节，可在干旱缺水条件下使根吸收尽可能多的水分以供地上部水分的需要;干旱缺水条件下ABA对根系生长发育的正向调节将促进作物旱后复水的补偿生长.6-BA在控制细胞的分裂、分化以及在植株的整个发育过程中都发挥着重要功能.6-BA可抑制主根伸长，阻碍侧根原基的起始和组织并直接影响侧根建成细胞而抑制侧根发育［10］.已有研究表明，6-BA抑制侧根的发生是抑制了起始细胞的第1次垂周分裂［11］.Aloni等［12］发现6-BA通过由淀粉粒影响的根冠特异信号而非静止中心或根分生区来控制根系的向地性反应.大豆富含蛋白质、脂肪、维生素和各种矿物质，营养价值高，是我国主要粮食作物之一.有关植物激素调控拟南芥和水稻根系生长发育已有较深入的研究，但对大豆根系生长发育的影响鲜见报道.本研究探讨了GA2、ABA和6-BA对大豆根系生长的影响，这对今后进一步研究激素调控大豆根系构型、指导大豆生产、丰富大豆根系研究方面具有重要的现实意义.1.1 供试材料和培养液供试植物为大豆Glycine max L.Merrill磷高效品种“HN89”.本试验采用1/2 Hoagland营养液的改良配方，其成分［c/(μmol· L-1)］为 KH2PO4250、KNO31 500、Ca(NO3)2·4 H2O 1 200、NH4NO3400、(NH4)2SO4300、K2SO4300、MgSO4·7H2O 500、MgCl225、NaB4O7·10H2O 2.5、MnSO4·H2O 1.5、ZnSO4·7H2O 1.5、CuSO4·5H2O 0.5、(NH4)6Mo7O24·4H2O 0.16和Fe-Na-EDTA 40.激素母液配制：称取GA3和6-BA(分析纯)各13.85和9.01 mg，分别用φ为95%的乙醇溶液和1 mol·L-1NaOH少许溶解后定容至40 mL配置成1 mmol·L-1母液待用.称取10.57 mg ABA直接定容至40 mL.试验中不同激素处理大豆幼苗的浓度分别为0.05、0.50、1.00和5.00 μmol·L-1，工作液按相应比例稀释.1.2 方法将粒大、饱满且均匀的大豆种子经φ为10% H2O2表面消毒1 min，无菌水漂洗10次，1/4上述大豆水培营养液(pH 5.8)催芽至露白后，用121℃ 20 min高压灭菌的催芽纸卷纸催芽.种子卷纸后，放入盛有大豆水培营养液的培养杯中，卷纸在培养杯中竖直，确保大豆胚根向下，保鲜膜将卷纸围起，起到固定和保湿功能.大豆暗培养2 d后见光培养1 d，此时幼苗没有侧根形成，并移植到分别加有GA3、ABA和6-BA培养杯中处理4 d，各激素浓度分别为0 (CK)、0.05、0.50、1.00和5.00 μmol·L-1.各处理有3个重复.试验在光照度为500 μmol·m-2·s-1，空气相对湿度为60%的大豆培养室中进行，白天温度26℃、光照13 h，晚上温度24℃、光照11 h.1.3 根系参数的分析用根系扫描仪(Epson1460XL，日本)对大豆植株根系进行扫描，根系总根长、主根长、根表面积和根直径采用根系分析软件Win Rhizo(Canada，Regent Instrument Inc.)进行定量分析.1.4 数据处理所有数据均用Microsoft Excel 2007进行平均数和标准误差计算，利用SAS(SAS Institute Inc.，Cary，NC，USA)统计软件进行单因素方差分析，Duncan’s多重比较.2.1 不同浓度GA3、ABA及6-BA对大豆生长发育的影响2.1.1 不同浓度GA3、ABA及6-BA对大豆根表型的影响从图1可以看出，不同浓度GA3、ABA和6-BA处理大豆幼苗4 d后其根系形态发生了明显改变.GA3处理的大豆根系变得纤细;0.05和0.50 μmol·L-1的GA3对大豆主根生长影响不明显，1.00和5.00 μmol·L-1的GA3则严重抑制了主根伸长;不同浓度的ABA对大豆幼苗主根出现不同程度的抑制作用，0.05 μmol·L-1的ABA抑制作用不明显，其他3种浓度的ABA明显抑制了主根生长.随着ABA浓度的增大，侧根伸长明显受到抑制，侧根数量有减少的趋势，侧根长缩短;4种不同浓度的6-BA处理明显抑制了大豆幼苗主根和侧根的生长，和对照比，主根长、侧根数和侧根长明显减少，5 μmol·L-1的6-BA处理的大豆根系几乎没有长出侧根.此外，6-BA处理使得大豆根尖弯曲生长，这表明6-BA可能调节大豆主根的向地性.2.1.2 不同浓度GA3、ABA及6-BA对大豆地上部表型的影响不同浓度GA3、ABA和6-BA处理大豆幼苗4 d后，植株地上部形态受到不同程度的影响，主要表现在对下胚轴和顶端真叶的生长方面(图2和图3).随着GA3处理浓度的增加，大豆下胚轴长度显著增加(P＜0.01)，相对于对照(CK)、0.05、0.50、1.00和5.00 μmol·L-1GA3处理的大豆幼苗，下胚轴长度分别增加了37.0%、56.4%、79.2%和93.1%;不同浓度的ABA和6-BA处理对大豆的下胚轴生长影响不大，各处理间差异不显著(图2).6-BA的处理明显抑制真叶的生长，对照植株的2片真叶能正常生长展开，但6-BA处理的植株真叶都受到严重抑制(图3).2.2 不同浓度GA3、ABA及6-BA对大豆根系形态参数的影响主根长、侧根数、总根长及根平均直径是评价根系生长发育的重要形态指标.对处理后大豆的根形态指标进行分析发现，0.05和0.50 μmol·L-1低浓度的GA3对主根长没有显著影响，但1.00和5.00 μmol·L-1的 GA3显著地抑制了主根长度(P＜0.01)，相对于对照主根长分别降低了19.4%和 17.3%.ABA处理抑制了大豆的主根长，0.50、1.00和5.00 μmol·L-1ABA显著抑制了植株主根长度(P＜0.01)，比对照分别下降了22.2%、24.5%和24.5%.虽然0.05 μmol·L-1的ABA处理下大豆主根长与对照比也降低了3.7%，但差异不显著.6-BA处理显著减少大豆植株的主根长，即使最低处理浓度0.05 μmol·L-1的6-BA也使大豆的主根长比对照降低了72.4%(图4a).外施GA3、ABA及6-BA可调控大豆侧根生长发育(图4b).高浓度的GA3抑制了侧根生长，侧根数减少，GA3处理浓度达到5.00 μmol·L-1时，可降低侧根数20.7%.同GA3的效果一样，0.05及0.50 μmol·L-1的ABA对侧根生长影响不大，但随着处理浓度的升高则抑制程度加剧.6-BA处理显著地抑制侧根发育，大豆侧根数随处理浓度的增加而显著降低(P＜0.01)，最低处理浓度0.05 μmol·L-1 6-BA就可使侧根数降低58%，5.00 μmol·L-1的6-BA几乎完全抑制大豆侧根发育.大豆的总根长受到外施GA3、ABA及6-BA的影响(图4c).与对照相比，尽管0.05 μmol·L-1低浓度的GA3处理促进了总根长度，随着处理浓度的加大，这种促进作用转为抑制作用，当浓度达到1.00和5.00 μmol·L-1时，总根长受到显著抑制;ABA的施用也抑制了总根长，尽管0.05 μmol·L-1的ABA处理浓度对大豆总根长没有影响，但随处理浓度的增加大豆总根长呈递减趋势，当处理浓度达到5.00 μmol·L-1ABA时，与对照相比，植株总根长降低了44.7%.6-BA严重的抑制了大豆的总根长，与对照相比，0.05、0.50、1.00和 5.00 μmol·L-1 6-BA显著抑制了植株总根长(P＜0.01)，使其分别下降了75.6%、83.9%、80.1%和90.4%. GA3、ABA和6-BA对大豆根系平均直径的影响不一样(图4d).GA3处理显著降低了大豆根平均直径(P＜0.01)，与试验中GA3处理的大豆主根和侧根根系变得纤细的表型相一致(图1).ABA处理则对根系的平均直径影响不大，尽管5.00 μmol·L-1的ABA处理会使根系变粗，但变幅并不大.6-BA则使大豆根系显著变粗，试验中4个处理浓度使得根平均直径增加了22.6%～40.4%.2.3 不同浓度GA3、ABA及6-BA对大豆生物量的影响从图5可以看出，不同浓度GA3、ABA和6-BA通过影响大豆根系及地上部生长进而影响了大豆整株生物量.与对照相比较，各浓度的GA3对大豆地下部影响不显著，低浓度的GA3对地上部干质量的影响不明显，而当GA3浓度达到1.00μmol·L-1以上时，增加了大豆地上部生物量，进而增加了整株的生物量.低浓度的ABA对大豆幼苗生物量影响不大，只有当ABA的浓度达到5.00 μmol·L-1时，地上部、地下部生物量都受到抑制，总生物量可降低为对照的85.6%.6-BA负调控了地上部和根系发育，抑制主根和侧根生长(图3和图4)，随着6-BA处理浓度的增加，抑制作用增强，根部与地上部生物量急剧下降，总生物量降至对照的65.5%～92.5%.根系是植物的营养器官，吸收土壤中的水分和养分，具有支持、贮存合成有机物的作用.已有研究证明：外源和内源激素都会影响根系生长发育.本文利用大豆为材料，分析比较了3种外源激素赤霉素(GA3)、脱落酸(ABA)和细胞分裂素(6-BA)对大豆根系生长发育的影响.GA3最显著的生理效应就是促进茎和主根的生长［13］，其作用与其促进细胞的伸长密切相关［14］.与此一致，本试验结果表明GA3处理能显著促进大豆下胚轴伸长，且随着处理浓度的增加下胚轴长度增加，进而株高也相应增加.GA3对根系生长的影响与地上部不同，不同试验表现出了不同结果：外源施加GA3有的试验表现为促进根生长，也有些出现抑制效应［15］.本研究发现0.05 μmol·L-1的GA3有促进侧根数量的趋势，由于侧根数及长度的增加，导致了总根长的增加.高浓度GA3对根系生长调控作用则相反，1.00和5.00 μmol·L-1的GA3处理显著抑制了主根长与侧根发育，虽然2个浓度处理的主根长差异不显著，但侧根数1.00 μmol·L-1的处理明显比5.00 μmol·L-1的多，1.00 μmol·L-1的 GA3对侧根伸长没有起到抑制作用，进而最终导致1.00 μmol·L-1处理的总根长明显比5.00 μmol·L-1处理的总根长要长.由于GA3处理显著促进了大豆地上部下胚轴伸长生长，且随着浓度的增加这种促进作用增强，进而出现高浓度的 GA3(1.00和5.00 μmol·L-1)增加了大豆生物量的情况.ABA通常作为根源逆境信号而备受关注，它在增强作物根系导度、诱导气孔关闭，进而提高作物抗旱性等方面发挥着重要作用.通常，ABA被认为是一种胁迫激素和生长抑制剂，除了极少数情况外，ABA对根系有抑制作用，ABA与生长素对根的作用是相反的，低浓度的生长素对根的促进作用可以被ABA抑制［16］.本试验中发现0.05 μmol·L-1的ABA有抑制主根生长趋势，这在一定程度上促进了侧根形成及侧根伸长，最终导致总根长有所增加，但没有显著差异.和对照比，0.05、1.00和5.00 μmol·L-1ABA处理显著抑制总根长且三者之间差异显著，虽然3种浓度ABA都显著抑制了主根生长且三者之间差异不显著，但总根长差异显著，同时0.50 μmol·L-1的ABA处理的侧根数明显多于1.00和5.00 μmol·L-1处理的侧根数，说明0.50 μmol·L-1的ABA对侧根伸长生长的抑制作用程度小于1.00和5.00 μmol·L-1.1.00和5.00 μmol·L-1的ABA处理在主根长和侧根数抑制程度方面差异不显著，而总根长却变化显著，从根形态改变也可看出，5.00 μmol·L-1的ABA抑制了侧根的伸长生长，这可能是导致1.00 μmol·L-1的ABA处理总根长比5.00 μmol·L-1处理长的原因.6-BA是一种细胞分裂素，农业上常被用于调节植株生长发育，它抑制根系生长和促进芽的形成，并能通过由淀粉粒调控的根冠特异信号来控制根系的向地性反应，致使根尖弯曲生长［12］.本试验中发现，不同浓度的6-BA处理能引起大豆根尖弯曲，影响了根系向地性，抑制主根伸长和侧根起始及生长发育，最终导致大豆生物量下降.这些结果表明6-BA负调控大豆根系生长发育，然而其抑制大豆根系发育的机制还需进一步深入探讨.了解植物激素对大豆根系的调控，对于利用外源植物激素对根系进行调控和改良有着重要的意义.李欣欣等［17］前期工作也研究报道了不同浓度的吲哚乙酸(IAA)、吲哚丁酸(IBA)及萘乙酸(NAA)对大豆根系生长的影响，发现不同外源生长素类物质不同程度调控了大豆根系形态构型［17］.本试验则探讨了GA3、ABA和6-BA 对大豆根系生长的影响，补充了这一方面的数据，为进一步利用激素调控大豆根系构型提供理论依据.【相关文献】［1］ HODGE A，BERTA G，DOUSSAN C，et al.Plant root growth，architecture and function［J］.Plant Soil，2009，321：153-187.［2］ FU Xiangdong，HARBERD N P.Auxin promotes Arabidopsis root growth by modulating gibberellin response［J］.Nature，2003，421：740-743.［3］ UBEDA-TOMÁS S，FEDERICI F，CASIMIRO I，et al.Gibberellin signaling in the endodermis controls Arabidopsis root meristem size［J］.Current Biology，2009，19：1194-1199.［4］王荣，丁娜.不同浓度赤霉素溶液对棉花幼苗发育的影响［J］.阜阳师范学院学报：自然科学版，2010，27 (3)：48-51.［5］何为中，汪淼，刘红坚，等.赤霉素(GA3)处理对甘蔗试管苗瓶外生根的影响［J］.安徽农业科学，2011，39 (4)：2059-2060.［6］ SMET I D，SIGNORA L，BEECKMAN T，et al.An abscisic acid-sensitive checkpoint in lateral root development of Arabidopsis［J］.Plant J，2003，33：543-555.［7］ CHEN Chaowen，YANG Yunwei，LUR Hursheng et al.A novel function of abscisic acid in the regulation of rice (Oryza sativa L.)root growth and development［J］.Plant Cell Physiol，2006，47(1)：1-13.［8］ ZHANG Hanma，HAN W，SMET I，et al.ABA promotes quiescence of the quiescent centre and suppresses stem cell differentiation in the Arabidopsis primary root meristem ［J］.Plant J，2010，64：764-774.［9］魏金凤，赵翔，张骁.脱落酸调节植物根系补偿生长机制分析［J］.安徽农业科学，2009，37(26)：12403-12405.［10］LAPLAZE L，BENKOVA E，CASIMIRO I，et al.Cytokinins act directly on lateral root founder cells to inhibit root initiation［J］.The Plant Cell，2007，19：3889-3900. ［11］LI Xiang，MO Xiaorong，SHOU Huixia，et al.Cytokininmediated cell cycling arrest of pericycle founder cells in lateral root initiation of Arabidopsis［J］.Plant Cell Physiol，2006，47(8)：1112-1123.［12］ALONI R，LANGHANS M，ALONI E，et al.Role of cytokinin in the regulation of root gravitropism［J］.Planta，2004，220：177-182.［13］王忠.植物生理学［M］.北京：中国农业出版社，2000：278.［14］王立静，哈丽旦，张素梅，等.新的玉米矮秆突变基因的鉴定与遗传分析［J］.华北农学报，2008，23(5)：23-25.［15］赵毓橘，张军.植物生长调节剂生理基础与检测方法［M］.北京：化学工业出版社，2002. ［16］罗琎，孙长忠，王琦，等.根系的发育及其激素调控作用［J］.安徽农业科学，2008，36(26)：11219-11222.［17］李欣欣，赵静，廖红.吲哚乙酸、吲哚丁酸和萘乙酸对大豆幼根生长的影响［J］.植物生理学报，2013，49 (6)：1-6.。

收稿日期：2023-03-30基金项目：四川省衔接推进乡村振兴科技专项（2022ZHXC0067）；四川省科技计划项目（2022ZHYZ0006）广东农业科学2023，50（6）：10-18Guangdong Agricultural SciencesDOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2023.06.002付国召，张志伟，任志宽，刘柏庆，董亚楠，杨翠芹. GA 3与6-BA 复配处理对甘薯催芽育苗的影响［J］. 广东农业科学，2023，50（6）：10-18.GA 3与6-BA 复配处理对甘薯催芽育苗的影响付国召1,2，张志伟1，任志宽2，刘柏庆1，董亚楠1，杨翠芹1（1 .四川农业大学农学院，四川 成都 611130；2.兴隆县农业农村局，河北 兴隆 067300）摘 要：【目的】为有效缓解生产中GA 3浸种催芽所导致的甘薯细苗、弱苗问题，研究GA 3与6-BA 复配浸种处理提升薯苗品质的可行性。

【方法】设1、5、10 mg/L GA 3单独浸种及其分别与5 mg/L 6-BA 复配后浸种处理，命 名为G 组与GB 组，另设清水浸种（G0，CK 1）和5 mg/L 6-BA 单独浸种（G0B，CK 2），共8个处理，研究其对甘薯品种‘心香’薯块萌芽、薯苗生长形态、单苗质量、干物质率及薯苗采收量的影响。

【结果】1 mg/L GA 3浸种处理对调控甘薯萌芽与薯苗生长形态效果最好，薯块平均根眼萌动数达11个，总芽数达16.33个，平均苗高达8.80 cm，苗基部直径为3.01 mm。

随着GA 3浓度升高，苗基部直径、单苗质量、干物质率均变小，薯苗品质变差。

在GA 3与6-BA 复配处理后，薯苗品质得到有效改善，且GA 3浓度越高效果越显著，10 mg/L GA 3与5 mg/L 6-BA 复配浸种处理提升薯苗品质效果最好，苗基部直径为3.40 cm，干物质率最高，且单苗质量相对GA 3单独浸种处理有所提高。

湖北高山地区引种山葵的关键技术朱进【摘要】@@ 山葵(Wasabia japonica Matsum)是十字花科多年生草本半阴生植物,原产于日本,是一种珍稀的香辛蔬菜,富含维生素和特有辛味成分芥子油,是吃生鱼片和生猛海鲜必备的高级调味品.由于山葵对生长环境要求严格,适宜生长的地域少,市场需求量逐年扩大,产品供不应求,因此山葵的栽培越来越被人们所重视.【期刊名称】《长江蔬菜》【年(卷),期】2011(000)015【总页数】2页(P7-8)【作者】朱进【作者单位】长江大学园艺固林学院,434025【正文语种】中文山葵（Wasabia japonicaMatsum）是十字花科多年生草本半阴生植物，原产于日本，是一种珍稀的香辛蔬菜，富含维生素和特有辛味成分芥子油，是吃生鱼片和生猛海鲜必备的高级调味品。

由于山葵对生长环境要求严格，适宜生长的地域少，市场需求量逐年扩大，产品供不应求，因此山葵的栽培越来越被人们所重视。

据不完全统计，目前我国已有云南、四川、贵州、福建、安徽等省进行山葵的引种试验，其中以云南发展较快。

湖北省是一个多高山的省份，许多高山地区的环境条件适合山葵的生长。

恩施咸丰县二仙岩位于咸丰县城西北部，恩施州最大的高山平原，海拔1 540～1 660 m，耕地海拔1 450 m左右，具明显的寒冷潮湿型高山气候特点，年降水量1 800 mm，相对湿度85%，年平均气温9.1℃，1月平均气温-1.8℃，7月平均气温19.8℃，二仙岩受垂直海拔高度的影响，冬寒夏凉，昼夜温差大，雾多湿重，雨量充沛，土壤发育较好，有棕壤、黄棕壤、水稻土和草甸土4个土类，潜在养分和速效养分氮、钾、硒等元素十分丰富，植被覆盖率高达70%，气候较适合山葵生长，经过几年的引种栽培试验，在湖北引种山葵，以下几个关键性的技术必须掌握。

由于山葵具有顽拗种子的特点，种子失水过多极易导致活力丧失，必须低温层积保存。

同时，种子休眠期较长且极难解除，种皮对种子发芽有抑制作用，需要进行适当处理。

1.豆芽质量安全的关键影响因素分析及对策：1.1 目前情况：本文做了大量的实验，进行数据分析，讨论得出了研究结果，一是运用气相色谱-质谱技术开展了豆芽中农药残留的检测分析工作，结果表明豆芽中马拉硫磷、对硫磷、甲拌磷、久效磷、甲胺磷、氧化乐果等农残合格率100%。

二是运用液相色谱-质谱联用技术开展了豆芽中的添加剂指标的检测分析工作，该方法采用有机溶剂盐析提取目标物和质谱负模式检测技术，有效提取目标物，去除杂质干扰，适合于市场样品实际检测，经检测6-苄基腺嘌呤与4-氯苯氧乙酸钠合格率分别为96.4%和76.7%。

三是运用原子荧光和微波消解前处理技术开展了豆芽中总砷的检测分析工作，经对市场35 个豆芽样品的实际检测，结果表明合格率为100%，未检出总砷超标的豆芽样品。

四是运用紫外可见分光光度法检测分析了豆芽中亚硝酸盐和亚硫酸盐的含量情况，其中亚硝酸盐合格率89.7%、亚硫酸盐合格率为53.2%，这两项指标是影响上市豆芽质量的主要因素，同时，从不同单位豆芽产品的检测结果来看，小作坊生产企业豆芽合格率整体较低，安全隐患较大，而品牌豆芽的质量相对较好。

综合分析各实验数据，本文找出了影响豆芽质量安全的主要指标，为生产质量管理、市场执法监督、群众放心消费提供了数据支持。

1.2 生产引入的污染物及危害1.2.1 生长调节剂的概述（主要作用、限制用量、物理性质、化学性质、作用机理、毒理范围）6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸钠俗称AB 粉，是豆芽生产使用的2 个主要添加剂，主要作用是促进豆芽生长、抑制长根，提高产量。

国家标准GB2760《食品添加剂使用卫生标准》规定豆芽中4-氯苯氧乙酸钠残留量小于 1.0mg/kg、6 苄基腺嘌呤残留量小于0.2mg/kg。

6-苄基腺嘌呤（6-Benzylaminopurne）分子式C12H11N5，相对分子质量225.25。

白色微针状结晶或类白色粉末，难溶于水，可溶于酸、碱，在酸性、碱性条件下均稳定。

摘要：为提高降香黄檀种子萌发率及加快苗木生长速度，进行了不同植物生长调节剂及其浓度对降香黄檀种子浸种发芽及幼苗生长的影响试验。

结果表明：经过植物生长调节剂GA3、6－BA、IBA各种浓度分别处理后，提高了降香黄檀种子的发芽率、发芽势，但开始发芽的天数没有缩短，其中50 mg/L GA3对提高发芽率效果最好，80 mg/L 6－BA对提高发芽势效果最好；GA3、6－BA各种浓度对发芽指数有促进作用，但50、80 mg/L IBA对发芽指数起到降低作用。

PP333、6－BA、GA3、NAA、IAA各种浓度对降香黄檀苗木苗高、地茎生长均有一定促进作用。

PP333能阻碍苗木正常高生长，但对地茎生长有很好的促进作用。

关键词：植物生长调节剂；降香黄檀；种子发芽；幼苗生长1．2 试验方法1．2．1 种子发芽试验方法选用降香黄檀饱满的种子于0．5％高锰酸钾溶液中浸泡30 min，取出洗净晾干后，分别放入GA3、IBA、6－BA各浓度溶液中浸泡3 h，待种子吸胀后取出，摆放在已消毒的培养皿滤纸中，每皿25粒。

设9个处理，分别为C1：GA320mg ／L、C2：GA350 mg ／L、C3：GA380 mg ／L、C4：IBA 20mg ／L、C5：IBA 50 mg ／L、C6：IBA 80 mg ／L、C7：6 －BA20 mg ／L、C8：6－BA 50 mg ／L、C9：6－BA 80 mg ／L，每皿1个处理，3次重复，设蒸馏水浸种为对照（CK）。

试验过程中保持滤纸潮湿，并记录发芽日期、每天发芽粒数（置床的当天作为第1 d）。

1．2．2 幼苗生长试验方法将发芽种子移种在规格为18 cm×16 cm、装土1．5 kg的育苗杯中，单株种植，统一水分管理。

2009年7月，选取约30 cm高、生长均匀、长势优良的降香黄檀幼苗作为试验材料，进行幼苗相对生长高度及相对生长茎粗试验。

分别配制GA3、IAA、PP333、NAA、6－BA各浓度溶液共20种，即20个处理，T1：GA3 60 mg ／L、T2：GA3120mg ／L、T3：GA3240 mg ／L、T4：GA3480 mg ／L、T5：IAA60 mg ／L、T6：IAA 120 mg ／L、T7：IAA 240 mg ／L、T8：IAA480 mg ／L、T9：PP333 60 mg ／L、T10：PP333 120 mg ／L、T11：PP333 240 mg ／L、T12：PP333 480 mg ／L、T13：NAA60 mg ／L、T14：NAA 120 mg ／L、T15：NAA 240 mg ／L、T16：NAA 480 mg ／L、T17：6 －BA 60 mg ／L、T18：6 －BA120 mg ／L、T19：6－BA 240 mg ／L、T20：6－BA 480 mg ／L，设蒸馏水为对照（CK）。