OVA诱导小鼠过敏性哮喘模型的建立ppt课件
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一种病毒性哮喘模型制作方法的建立及评价童黄锦;范欣生;许惠琴;王露;崔姣【期刊名称】《西安交通大学学报(医学版)》【年(卷),期】2008(29)3【摘要】目的评价用呼吸道合胞病毒(RSV)诱导鸡卵白蛋白(OVA)致敏,建立小鼠急性病毒性哮喘模型的方法及效果.方法 BALB/c小鼠100只,随机分为磷酸盐缓冲液(PBS/PBS)对照组、PBS/RSV组、RSV/RSV组、OVA/PBS组和OVA/RSV组5组.应用OVA多点注射致敏、OVA气道雾化吸入结合RSV滴鼻激发复制急性病毒性哮喘模型.观察小鼠哮喘急性发作症状;动物体描箱法测定乙酰胆碱(Ach)激发条件下气道反应性(以肺阻力RL表示);支气管肺泡灌洗液(BALF)作细胞分类计数;HE 染色观察肺组织病理变化.结果①以45、135、405 μg/mL Ach激发时,与其他各组比较,OVA/RSV组RL均显著升高(P均<0.01);②BALF中炎性细胞分类计数,与其他各组比较,OVA/RSV组的细胞总数、淋巴细胞、嗜酸性粒细胞、中性粒细胞均显著升高(P均<0.01);③OVA/RSV组的肺组织病变程度重于其他各组(P均<0.01).结论 RSV诱导OVA致敏的方法建立小鼠急性病毒性哮喘模型是成功的.【总页数】4页(P349-352)【作者】童黄锦;范欣生;许惠琴;王露;崔姣【作者单位】南京中医药大学药学院药理学教研室,南京江苏,210029;南京中医药大学药学院药理学教研室,南京江苏,210029;南京中医药大学药学院药理学教研室,南京江苏,210029;南京中医药大学药学院药理学教研室,南京江苏,210029;南京中医药大学药学院药理学教研室,南京江苏,210029【正文语种】中文【中图分类】R562.25【相关文献】1.BALB/c小鼠阴虚型过敏性哮喘模型的建立与评价 [J], 王志旺;妥海燕;任远;李荣科;刘雪枫;程小丽2.一种新的氧化应激特征性哮喘模型的建立 [J], 梁正敏;文雪梅;廖晓光;徐杨峰;颜国庆;邓鑫;何家康3.SD大鼠哮喘模型建立方法及评价的比较研究 [J], 史琦; 李春雷; 孔艳华; 龙泓竹; 李阳溪; 阎玥; 李友林4.建立豚鼠哮喘模型的一种新方法 [J], 梁成结;陈江华;刘金保;罗灿峤5.一种改良型小鼠哮喘模型方法的建立及评价 [J], 田代印;符州;张燕;王莉佳;迟磊;李睿;戴继宏;罗晓菊因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
卵清蛋白诱导小鼠建立支气管哮喘模型张亚娟;王亚楠;丁亚骏;何璐云;刘鑫;康巧珍【摘要】目的:建立一种稳定的小鼠哮喘模型,以便用于支气管哮喘的研究及治疗.方法:清洁级,雌性BALB/c小鼠16只,随机分为模型组和对照组,模型组于第0天和第14天注射卵清蛋白(ovalbumin,OVA)氢氧化铝溶液致敏,第28~30天雾化吸入1%OVA溶液激发,对照组用生理盐水替代OVA溶液.结果:模型组在雾化过程中出现了较明显的头面部瘙痒,前肢缩抬,弓背,呼吸加深加快,安静少动等哮喘急性发作症状.支气管肺泡灌洗液(BALF)中的嗜酸性粒细胞数(eosinophils,EOS)和白细胞总数均明显增多.肺组织病理切片(HE染色后)可见小支气管和伴行血管周围都有较多的炎症细胞浸润,可以看到大量嗜酸性粒细胞,平滑肌增厚,杯状细胞增生,部分肺泡间隔融合并形成肺气肿.结论:用OVA致敏的方法可以成功地建立小鼠哮喘模型.【期刊名称】《河南医学研究》【年(卷),期】2012(021)003【总页数】3页(P268-270)【关键词】支气管哮喘;动物模型;卵清蛋白【作者】张亚娟;王亚楠;丁亚骏;何璐云;刘鑫;康巧珍【作者单位】郑州大学生物工程系河南郑州450001;郑州大学生物工程系河南郑州450001;郑州大学生物工程系河南郑州450001;郑州大学生物工程系河南郑州450001;郑州大学生物工程系河南郑州450001;郑州大学生物工程系河南郑州450001【正文语种】中文【中图分类】R-332支气管哮喘(bronchial asthma,简称哮喘)是一种慢性反复发作的、由多种细胞(尤其是肥大细胞、嗜酸性粒细胞和T细胞)和细胞因子参与的气道变态反应性疾病[1],在抗原刺激时会引起支气管平滑肌收缩、腺体分泌增多和黏膜血管扩张,最终导致支气管管腔狭窄、呼吸困难,严重时导致死亡。
目前哮喘的发病率和死亡率逐年增长,尚无根治的办法,严重困扰着人类的健康。
NGF对OVA致敏小鼠哮喘模型肺CDs的成熟及CD103+DCs比例的影响的开题报告背景:
神经生长因子(NGF)是一种神经源性分子,已被证实在免疫调节中起着重要作用。
在哮喘等炎症性疾病中,NGF的水平明显升高。
OVA 致敏小鼠哮喘模型是一种常用的哮喘病理模型,该模型可以模拟哮喘的发病机制,同时也可以评估新的治疗策略的有效性。
研究目的:
本研究旨在探讨在OVA致敏小鼠哮喘模型中,NGF对肺CDs成熟和CD103+DCs比例的影响。
研究方法:
选取40只C57BL/6小鼠,平均体重20g,随机分为四组:对照组,OVA组,NGF组和OVA+NGF组。
除对照组以外的小鼠均在背部应用OVA致敏,每周应用两次,总共应用四周。
NGF组和OVA+NGF组小鼠每周应用NGF,OVA+NGF组小鼠同时应用NGF和OVA致敏。
实验结束后,收集小鼠的肺泡灌洗液,进行流式细胞术,检测CDs的成熟及
CD103+DCs比例。
预期结果:
我们预计在OVA致敏小鼠哮喘模型中应用NGF后,CDs的成熟和CD103+DCs比例将较对照组有所提高,这可能会对哮喘的治疗和预防提供新的思路。
结论:
本研究的结果将为NGF在哮喘治疗中的应用提供理论依据,并可能为新的治疗策略的开发提供新的思路。
;捞夕;Z劳2003描磺圭磅究垒举垃论文哮喘小鼠气遒重建模型的建立及毒地奈德、孟鲁斯特的予该传用浙江大学医学院2000级硕士生导辫内科学(呼吸系病)王绍斌浇孥洛教筏审文摘要f磅党背景簿镳缒基本特薤凳漫性炎症帮气遂熹爱寝瞧(AHR)。
哮骧反复蓑作时莓凌的怠慢性炎瘢过程可引起气道不可逆结构性改变。
当出现气道上皮下基底膜网状结构(RBM)增簿鞠纾维纯(subepitheliumfibrosis)及乎潺飘联缮厚、擞警增生扩张等改变对,棼秀气道重建。
遮就是临床上慢性持续性哮喘气流阻勰存在不可逆性成分的重要原因。
气道重建形成的后果是对黪功链弱影响及嬲重哮喘发佟,影响疾病蛉转妇,gl匙哮喘致延率的增期。
气遂重建兹,k个藏要临床特征目前尚不十分清楚,如其开始的时间和速度,以及什么程度时这种重建能被抗炎药物或通过避免过敏原接触达到最大限度的逆转。
靶囱气道重建的治疗麴物的研制,将可§§产生新的抗哮喘药。
猩新药物问世前,早期应用或联合应用抗炎药物有效抗嶷预防气道重建的发生,将显樽更有研究领域的重要研究鼹的因此,动物模型成为该病理改变的小鼠哮喘模麓。
动态观察气道鼙重建之过程。
联合应用激素与孟鲁司特干减,观察箕对气道耋建预虢及治疗作用。
f研究假设致敬枣鼠经过反复雾纯啜入OVA激发,可出瑰气道壁、蓉赢貘浮度持续瞧蹭、抓滠映在病理上为胶原、弹性蛋白沉积,平滑肌增生、肥大。
上皮杯状细胞增生、粘液商分泌≤气遭鬟建),这辨菠交默晕蘩帮己撼瑷,邋抗蘸激发辩阚延长,澎送瞧增热。
警赣虚臻ICS、LTRA等药物至少可部分预防上述过程的发生。
联合成用两种药物将更好地抑制气道炎症及气递重建。
V研党劳法选择雄性C57BL/6小鼠,年龄6-8周,体重18*229,以鹏卵蛋白(OVA)作为抗瓢进舒致敏靼反复多次激发,每批实验均粥时设立对照缀(鄯以生理盐水代替OVA俘为撬原)。
在激发的不制时段(2w,4w,6w,8w,12w)分别测定BALF、外周血和骨髓中炎瘢细胞反应;测定上述波体上溃渡IL.5、lNF叫浓发;并进行组织病理学检查。
第37卷第5期2020年10月实验动物科学LABORATORY ANIMAL SCIENCEVol.37 No.5October 2020《研究简报i制作简易实验动物雾化箱建立小鼠哮喘模型研究田丹许虎峰(首都医科大学附属北京友谊医院科研实验中心北京市临床医学研究所移植耐受与器官保护北京市重点实验室王松灵院士口腔与全身健康免疫研究实验室北京100050)摘要:目的应用简单易操作的方法将家用型医疗雾化吸入装置改造为实验动物雾化箱,为实验动物呼吸道疾病的研究提供便利。
方法利用家用型雾化器和动物实验室常见的独立通气鼠笼组合改造为实验动物雾化箱。
应 用自制实验动物雾化箱和鸡卵清白蛋白建立小鼠过敏性哮喘模型。
结果实验动物雾化箱能同时为1~20只小鼠实验快速稳定地产出雾化吸人气体,利用该雾化箱成功建立起小鼠过敏性哮喘模型。
结论我们利用该实验动物雾化箱建立小鼠过敏性哮喘模型并观察到明显的肺组织炎症表现。
该方法为简便和低成本地进行实验动物雾化实验提供具有操作性的指导。
关键词:雾化箱;动物模型;哮喘;小鼠中图分类号:Q95-337 文献标识码:A文章编号:1006-6179(2020)05-0071-03D O I;10. 3969/j.issn. 1006-6179. 2020. 05. 013哮喘在全世界的发病率正在逐步上升,目前已 经成为全球人类健康的巨大威胁m。
雾化吸人给药是临床治疗呼吸道相关疾病的重要治疗手段,也 是实验室进行呼吸道相关疾病研究的重要实验方法12]。
目前越来越多的医疗厂商开发出小巧高效的药物雾化吸人仪器用于各种呼吸道患者的居家给 药。
相对家用型雾化器,用于动物研究的特制雾化箱可选型号少、价格偏高且便携性偏低。
因此,应用 简单易操作的方法将家用型医疗雾化吸人装置改造 为实验动物雾化箱将为呼吸道疾病的顺利研究提供 便利。
本研究将利用家用雾化器和动物实验室常见的 独立通气鼠笼改造为实验动物用雾化箱,并进行小 鼠过敏性哮喘造模。
哮喘模型豚鼠国内1.腹腔注射10% OV A(国产),200 mg/kg。
15天以5% OV A雾化吸入诱导哮喘发作。
2.腹腔注射10% OV A(sigma Ⅲ)1 ml。
14天以1% OV A雾化吸入诱导哮喘发作,每次数秒至数分钟不等,连续5天。
3.腹腔注射10% OV A(sigma,没标明级别)1 ml,14天以0.05% OV A雾化吸入诱导哮喘发作,40 s/次/只,连续4次,15天,1% OV A激发2次,2 min/次/只,4 h后5min/次/只。
国外4.第1、5天腹腔注射100 μg OV A+100 mg Al(OH)3,1 ml生理盐水溶解。
14天以1μg /ml OV A雾化吸入诱导哮喘发作,1 h,连续7天。
5.第0、14天腹腔注射10 μg OV A+100 mg Al(OH)3。
18、19、20天以10 mg /ml OV A雾化吸入诱导哮喘发作,3 min。
6.第1天腹腔注射10 μg OV A+100 mg Al(OH)3。
14天以100μg /ml OV A雾化吸入诱导哮喘发作,1 h。
大鼠1.腹腔注射1 ml(含100 mg OV A +100 mg Al(OH)3,灭活百日咳杆菌疫苗5*109个)致敏,14天,1% OV A雾化吸入20 min2.第1、8天腹腔注射10% OV A、氢氧化铝混合液1ml,腰部两侧各取1点,每点皮下注射0.5 ml,共计2 ml。
第15天,3% OV A 40 ml喷雾激发,每次15分钟,隔日一次,共4周。
3. OV A ( Grade V,Sigma) 1 mg+氢氧化铝200 mg+生理盐水1 mL混悬液在大鼠两腹股沟、腹、前足跖,共4点作皮下注射,每点0.2mL,最后腹腔注射0 .2 mL,1 wk后重注射1次。
OV A ( Grade Ⅲ,Sigma) 10 g/l雾化吸入,30 min,连续6天。
小鼠1. 10%氢氧化铝凝胶配制成浓度为2 mg/ml OV A,每只小鼠在两后足足跖、两腹股沟、背部两点、腹腔,共7点,除腹腔注射0.2 ml,其余每点皮下注射0.05 ml,共计0.5 ml。