绿原酸的微波超声波联合提取及其抑菌作用
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绿原酸的微波超声波联合提取及其抑菌作用1徐跃成,邓伟,杨迎伍,李正国重庆大学生物工程学院基因工程研究中心功能基因与调控新技术重点实验室,重庆(400044)E-mail:Xuyuecheng007@摘要:为了寻找更高效的绿原酸提取方法及进一步明确绿原酸的抑菌活性及抗菌谱,本文以金银花为材料,通过对稀醇回流法、超声波提取法、微波辅助提取法等方法的考察发现微波-超声波联合提取法的绿原酸提取率最高;正交实验得出其最佳工艺参数为:在250 W 功率下微波预处理3次,30 s/次;再按料液比(v/v,1/20)加入70 %乙醇,在功率18 W下超声提取20 min,一次性提取率即达73%以上;各因素的影响大小分别为:超声功率>溶剂倍量>超声时间。
抑菌研究表明,绿原酸对革兰氏阴性菌的抑菌活性比革兰氏阳性菌更强,绿原酸水溶液对志贺氏菌、沙门氏菌的最小抑菌浓度均为0.125 mg/ml,抑菌效果与0.1mg/ml的卡那霉素的抑菌效果相当。
关键词:金银花;绿原酸;微波-超声波联合提取;抑菌活性中图分类号:R282.71 文献标志码:B1 引言金银花(houneysuckle flowers)为忍冬科植物忍冬(Lonicera japonica Thunb)的干燥花蕾或初开的花。
金银花的特征活性成分为绿原酸,具有抗菌、抗病毒、升高白细胞、免疫调节、抗肿瘤、降血压、降血脂等作用[1,2]。
Hideko M 等的研究结果认为, 绿原酸是很有希望的抗艾滋病毒(HIV)的先导化合物[3]。
鉴于绿原酸的巨大开发价值,国内外已纷纷开展绿原酸提取及其药理活性的相关研究,绿原酸的提取工艺也取得了一定的研究进展,但提取率低、能耗大、耗时长、工艺复杂等问题一直未能有效解决。
微波、超声波提取作为新型的提取技术,具有被提取活性物质不被破坏,提取时间短等优点,在天然产物提取方面已得到广泛的应用,然而目前只有少量应用微波、超声波提取技术提取绿原酸的报道[4-11],且尚无将微波-超声波联用提取金银花中绿原酸的报道。
目前虽已有一些关于绿原酸抑菌活性作用的研究报道[12-16],但绿原酸的抑菌作用机理及其抗菌谱尚不明了,尚无绿原酸关于志贺氏菌、沙门氏菌、李斯特菌等几种常见致病菌的抑菌活性报道,为此,本文以重庆金银花为原料,以绿原酸提取率为指标,采用UV光谱法、HPLC法定性定量分析方法,通过对70%乙醇回流提取法、超声波提取法、微波辅助提取法与微波-超声波联用法进行比较研究;并研究了绿原酸对志贺氏菌、沙门氏菌、李斯特菌的抑菌活性,以期优化绿原酸的提取工艺,明确绿原酸抗菌谱提供参考。
2 材料与方法2.1材料、试剂与仪器金银花取自重庆市秀山县,沙门氏菌、志贺氏菌、李斯特菌、金黄色葡萄球菌菌株为实验室保存。
主要试剂:无水甲醇,冰乙酸为色谱纯;无水乙醇等购自重庆化学试剂公司,均为化学纯;绿原酸标准品购自Sigma公司。
1本课题得到国家自然科学基金项目(No. 3471214),重庆市科委自然基金重点项目(No. 2007BA1005)资助。
主要实验仪器:超声波发生器(SONICS&MATERIALS,美国);微波炉(格兰仕,中国);旋转蒸发仪(BUCHI,瑞士);紫外成相系统(Bio-Rad,美国);紫外可见光分光光度仪(岛津UV-2450,日本);HPLC仪(岛津10AVP-10AT,日本)。
2.2 提取工艺:2.2.1 稀醇回流法精密称取金银花粉末10 g,用70%乙醇按料液比1:8混合,在pH值3.0下60℃恒温振荡回流提取2次,2 h/次。
将样品液真空减压抽滤,加水沉淀蛋白鞣质等杂质,用旋转蒸发仪浓缩至原体积1/4~1/5,低温冷藏备用。
2.2.2 超声波提取法(UE)用70 %乙醇溶液将金银花干粉10g按液料比1:5 (v/v)预浸过夜,按料液比(v/v,1:8)加入70%乙醇溶液,调pH 3.0,超声(20Hz)提取两次,30 min /次,下同2.2.1。
2.2.3 微波辅助提取法(ME法)用70%乙醇溶液将金银花干粉10g按液料比(v/v,1/5)预浸过夜,微波(250 W)打3次,30 s/次;再按料液比(v/v,1/8)加入70%乙醇溶液调pH 3.0,60℃水浴回流提取两次,30 min/次,下同2.2.1。
2.2.4 微波-超声波联合提取法(MUE法)用70 %乙醇溶液将金银花干粉10g按液料比(v/v,1:5)预浸过夜,在微波功率250 W条件下预处理3次,30 s/次;加入70%乙醇溶液按料液比(v/v,1:8),调pH 3.0,超声(20 Hz)提取两次,30 min /次,反应温度为常温,下同2.2.1。
2.3 MUE法正交实验优化选用L(23)因素水平表对MUE法进行正交实验优化,见表1。
表1 正交实验因素表Table 1 The factors of orthogonal test水平溶剂倍量A 超声功率B (W) 超声时间C (min)12 142091820302.4 紫外光谱法(UV)分析配制绿原酸标准品溶液,用UV-2450型紫外可见光分光光度计在200~400nm波长范围内扫峰,确定绿原酸标准品的最大吸收波长;再用50%的甲醇溶液将绿原酸标准品精密配制成0.2,0.5,0.75,1.0,1.25,1.5µg/ml 6个浓度的溶液,在最大吸收波长下测定其吸光值(A)。
以浓度C(x轴)对浓度吸光度A (y轴)作图绘制UV标准曲线,得到标准曲线回归方程。
同法定溶各方法提取物及纯化物,制成待测样品,测定吸光值,通过标准曲线回归方程计算各终产物中绿原酸含量。
2.5 高效液相色谱(HPLC)分析采用外标法对待测样品进行定性分析。
色谱柱: ZOBAX SB(150mm×4.6 mm,5 µm) ;流动相:甲醇:超纯水:冰乙酸(18:81:1);流速:1 mL·min- 1;检测波长: 紫外扫描的最大吸收波长;柱温:30 ℃;进样量:20 µL。
用50 %的甲醇溶液将绿原酸标准品溶液精密配制成0.1,0.3,0.5,0.7,1.0,1.3 µg/ml 6个浓度的溶液进样检测。
以浓度C(x轴)对峰面积V(y轴)作图,得到标准曲线回归方程。
同法定溶各方法提取物及纯化物,制成待测样品,进样测定峰面积,通过标准曲线回归方程计算各终产物中绿原酸含量。
2.6 抑菌实验采用超净工作台无菌操作;取10ml 琼脂培养基于直径为9 cm 的无菌培养皿中,铺匀,凝固后,取50µl含有活菌数为106~108/ml的菌液均匀涂布到培养皿中,放入直径为5mm 的滤纸片;分别在滤纸片上滴加20µl用纯水配置的(1 mg/ml,0.5 mg/ml,0.25 mg/ml,0.125 mg/ml,0.0625 mg/ml )5个浓度梯度的绿原酸提取物及其纯品溶液;以浓度为0.1 mg/ml的卡那霉素作阳性对照,用超纯水作空白对照;37℃恒温培养箱培养24~48h后,观察抑菌圈的大小和透明度,恰好没有抑菌圈出现的培养皿所用的溶液浓度为最小抑菌浓度(MIC)。
三次重复。
3 结果与分析3.1金银花提取物的鉴定3.1.1金银花提取物的UV鉴定通过UV扫描测定绿原酸标准品的最大吸收波长约为327nm(图1),故确定该波长为UV及HPLC检测波长。
提取终产物出现最大吸收峰的波长及峰形均与标准品一致,因此,可初步认为该终产物含绿原酸(见图2,3)。
图1 绿原酸标准品UV图谱图2 MUE法提取绿原酸的UV图谱Fig 1 The UV picture of chlorogenic acid Fig 1 The UV picture of chlorogenic acid extracted by MUE3.1.2 金银花提取物的HPLC测定经实验优化,HPLC分析参数为:色谱柱ZOBAX SB( 150 mm ×4. 6mm, 5µm) ;流动相℃进样量:20µL。
在此为甲醇:水:乙酸(18:81:1) ;流速:1mL·min- 1 ;检测波长:327 nm;柱温:30;条件下,样品中绿原酸与相邻成分达到基线分离(见图3)。
根据绿原酸标准品的HPLC检测结果,以浓度C(x轴)对峰面积V(y轴)作图,得到标准曲线回归方程为:y = 52446 x-2573,R=0.9931;在1~13 µg/ml范围内线性关系良好。
采用外标法对提取的绿原酸进行确认,在保留时间8.832 min检测到的物质为绿原酸;同法测得金银花生药绿原酸含量为3.3 %(n=5,RSD=2.0 %),回收率98 %。
图3 MUE法提取绿原酸的HPLC图谱Fig 3 The HPLC picture of chlorogenic by MUE3.2 4种提取方法对绿原酸含量的影响由HPLC法测定各提取法终产物中绿原酸的含量,结果见表2。
表 2 4种方法提取绿原酸的提取率比较(n=3)Table 2 The extracted ratio of four methods (n=3)提取方法提取物得率(%)绿原酸提取率(%)提取率RSD(%)70%乙醇回流法UE法ME法MUE法38.4421.5427.6525.2571.2458.4553.8471.151.501.351.801.44由表2可以看出,用MUE法提取绿原酸的提取率与70 %乙醇回流法相当,高于单独的超声法和微波辅助提取法;采用MUE法提取的提取物中绿原酸含量最高,由图3可见MUE法粗提物有1个杂峰;而回流法提取物中杂质含量较高,其HPLC图谱有4个杂峰。
综合考虑以上因素,各提取法中MUE法提取物中绿原酸含量最高引入杂质最少,反应条件较回流法温和且耗时更短,常温短时间提取即可达到与回流法相当的绿原酸提取率。
第1次第2次第3次1234图4 MUE法提取率考察图 5 MUE法预浸时间、提取次数提取率比较Fig 4 The extracted ratio of chlorogenic by MUE Fig 5 The extracted ratio compare of pre-dip timeand extracted times by MUE注:图5中1,2为14倍剂量一次提取;3, 4为两次提取(v/v,1/8,1/6);1,3为预浸1 h;2,4为预浸2 h由图5可以看出,采用MUE法提取效率高,在第1、2次提取后其提取率已经达到80 %以上;由图7可以看出相同溶剂量情况下2次提取较1次提取的提取率提高了20 %以上,但2次提取缺点是增加了操作步骤,可以考虑适当加大溶剂量一次提取;另外,微波破壁前预浸2 h较1 h提取效率高了5 %以上,由此结合微波的工作原理可以推断预浸过程中预浸2 h较1 h水分进入样品更充分,更利于微波发挥作用。