大肠杆菌的检测及原理
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一、实验目的1. 了解大肠杆菌的生化特性,掌握大肠杆菌的鉴定方法。
2. 掌握微生物生化实验的基本操作技术,提高实验技能。
3. 通过实验,加深对微生物生化反应原理的理解。
二、实验原理大肠杆菌是一种革兰氏阴性细菌,属于肠杆菌科。
在微生物学中,生化实验是鉴定细菌的重要手段之一。
通过观察细菌对特定底物的代谢能力,可以判断细菌的种类和特性。
本实验主要采用糖发酵实验、吲哚试验、甲基红试验等方法对大肠杆菌进行鉴定。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:大肠杆菌菌种、葡萄糖发酵培养基、乳糖发酵培养基、蛋白胨水培养基、吲哚试剂、甲基红试剂、卢戈氏碘液、乙醚、蒸馏水等。
2. 实验仪器:酒精灯、接种针、培养皿、试管、试管架、烧杯、量筒、德汉氏小管、电子天平、纱布、脱脂棉、灭菌锅、PH计或PH试纸、电炉、石棉网、铁架台、100ml量筒、橡皮手套、超净台等。
四、实验步骤1. 糖发酵实验(1)将大肠杆菌接种于葡萄糖发酵培养基中,37℃培养24小时。
(2)观察培养基中是否产生气泡,若有气泡产生,则说明大肠杆菌能够利用葡萄糖。
2. 吲哚试验(1)将大肠杆菌接种于蛋白胨水培养基中,37℃培养24小时。
(2)取少量培养液加入吲哚试剂,观察是否产生红色沉淀。
3. 甲基红试验(1)将大肠杆菌接种于乳糖发酵培养基中,37℃培养24小时。
(2)加入甲基红试剂,观察培养基颜色变化。
五、实验结果与分析1. 糖发酵实验:大肠杆菌在葡萄糖发酵培养基中产生气泡,说明其能够利用葡萄糖。
2. 吲哚试验:大肠杆菌在蛋白胨水培养基中产生红色沉淀,说明其具有吲哚酶活性。
3. 甲基红试验:大肠杆菌在乳糖发酵培养基中不产生红色沉淀,说明其不能发酵乳糖。
根据实验结果,可以判断该菌株为大肠杆菌。
六、实验总结通过本次实验,我们掌握了微生物生化实验的基本操作技术,加深了对微生物生化反应原理的理解。
在实验过程中,我们学会了如何观察细菌对特定底物的代谢能力,从而对大肠杆菌进行鉴定。
大肠杆菌的检测(MPN计数法) 大肠杆菌的检测在环境和食品微生物检测中至关重要,因为这些微生物的存在可能指示污染和潜在的健康风险。
MPN计数法是一种常用的检测大肠杆菌的方法,下面将详细介绍这种方法。
一、MPN计数法简介MPN计数法,全称Most Probable Number,即最可能数,是一种通过统计学方法估算微生物数量的方法。
它的基本原理是在一定的稀释度下,通过系列梯度稀释的样本中存在微生物的概率来推算样本中实际的微生物数量。
二、MPN计数法检测大肠杆菌的步骤1.样品采集:采集被检样品,如水、食品等,并按照无菌操作的要求进行处理,以避免污染和交叉感染。
2.制备稀释液:将样品进行一系列的稀释,如10-1、10-2、10-3等。
每个稀释度的样品需要进行三份平行试验,以增加结果的可靠性。
3.选择合适稀释度的样品:根据实验结果,选择适合的稀释度的样品进行MPN计数。
这个稀释度应该是使样品中大肠杆菌的数量落在10~100之间,以提高估算的准确性。
4.培养:将选择的稀释度的样品分别接种到含有特殊培养基的试管中,培养基是为了促进大肠杆菌的生长。
每个试管中接种的样品量为10ml。
5.结果分析:经过一定时间的培养后,观察每个试管中的菌落数并记录。
根据统计学原理,通过这些数据可以得出样本中大肠杆菌的最可能数。
6.结果报告:根据实验数据,计算并报告每100ml(或者每1g)样品中大肠杆菌的最可能数。
三、MPN计数法的优势和局限性优势:1.MPN计数法是一种广泛应用的方法,可用于估计微生物的数量,不仅适用于大肠杆菌,还适用于其他微生物。
2.该方法不需要昂贵的仪器设备,操作相对简单,可用于基层实验室。
3.MPN计数法可以提供微生物数量的范围,而非单一数值,对于初步估计和趋势分析具有一定的参考价值。
局限性:1.MPN计数法的主观性较强,结果会受到操作人员的影响。
因此,需要操作者接受专业培训并遵循严格的操作规程。
2.MPN计数法的准确性相对较低,尤其是在微生物数量较少的情况下,可能存在较大的误差。
一、实验目的1. 了解大肠杆菌的生物学特性。
2. 掌握大肠杆菌的分离、纯化和鉴定方法。
3. 掌握大肠杆菌的培养和计数方法。
二、实验原理大肠杆菌(Escherichia coli)是肠杆菌科的一种细菌,广泛存在于人体肠道中。
本实验通过分离、纯化和鉴定大肠杆菌,了解其生物学特性,并掌握其培养和计数方法。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:新鲜粪便、营养琼脂平板、营养肉汤、无菌生理盐水、无菌棉签、无菌试管、无菌培养皿、无菌移液器、酒精灯、显微镜等。
2. 实验仪器:恒温培养箱、高压蒸汽灭菌器、无菌操作台等。
四、实验方法1. 大肠杆菌的分离(1)取新鲜粪便样品,用无菌生理盐水进行稀释。
(2)取适量稀释液,用无菌棉签涂布于营养琼脂平板上。
(3)将平板放入恒温培养箱中,37℃培养24小时。
2. 大肠杆菌的纯化(1)观察平板上的菌落,挑选单菌落,用无菌移液器移至新的营养琼脂平板上。
(2)将平板放入恒温培养箱中,37℃培养24小时。
3. 大肠杆菌的鉴定(1)观察纯化后的菌落,记录菌落特征,如大小、形状、颜色等。
(2)将纯化后的菌株接种于营养肉汤中,37℃培养24小时。
(3)取培养液,用显微镜观察细菌形态,并进行革兰氏染色。
(4)对培养液进行生化试验,如乳糖发酵试验、吲哚试验等。
4. 大肠杆菌的培养与计数(1)将纯化后的菌株接种于营养肉汤中,37℃培养24小时。
(2)用无菌移液器取适量培养液,进行系列稀释。
(3)取稀释液,涂布于营养琼脂平板上。
(4)将平板放入恒温培养箱中,37℃培养24小时。
(5)观察平板上的菌落,记录菌落数,并计算大肠杆菌的浓度。
五、实验结果与分析1. 大肠杆菌的分离:在平板上观察到圆形、光滑、白色、半透明的菌落,说明已分离出大肠杆菌。
2. 大肠杆菌的纯化:经过纯化后,菌落特征与分离菌落相同,证明已得到纯化的大肠杆菌。
3. 大肠杆菌的鉴定:通过显微镜观察,发现细菌为革兰氏阴性短杆菌,生化试验结果显示该菌株能发酵乳糖,产生吲哚,表明已鉴定为大肠杆菌。
大肠杆菌的检测及原理1.检测原理:大肠菌群是一群能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌,该菌主要来源于人畜粪便,故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量,推断食品中有否污染肠道致病菌的可能。
食品中的大肠菌群数系以100ml(g)检样内大肠菌群最可能数(MPN)表示。
2.仪器设备与器具:2.1 恒温培养箱:36±1℃。
2.2 1000ml三角烧瓶、1ml、10ml移液管。
2.3 接种针。
2.4 显微镜。
2.5 超净工作台。
2.6 玻片、酒精灯、洗耳球、试管架。
2.7 天平:感量0.01g。
2.8 灭菌釜。
2.9 培养皿(直径为90mm)、试管,经121℃、30分钟灭菌。
2.10试管夹、酒精灯、秒表、载玻片3.培养基及试剂:3.1 乳糖胆盐发酵管:按照制造厂家使用说明进行配制,灭菌。
3.2 伊红美兰琼脂平板:按照制造厂家使用说明进行配制,灭菌。
3.3 乳糖发酵管:按照制造厂家使用说明进行配制,灭菌。
3.4 革兰氏染色液。
3.4.1 结晶紫染色液:结晶紫1g95%乙醇20ml1%草酸铵水溶液80ml将结晶紫溶解于乙醇中,然后与草酸铵溶液混合。
3.4.2 革兰氏碘液:碘1g碘化钾2g蒸馏水300ml将碘与碘化钾先进行混合,加入蒸馏水少许,充分振摇,待完全溶解后,再加蒸馏水至300 ml。
3.4.3 沙黄复染液:沙黄0.25g95%乙醇10ml蒸馏水90ml将沙黄溶解于乙醇中,然后用蒸馏水稀释。
3.5 生理盐水。
4.检验程序:检样稀释↓乳糖胆盐发酵管,36±1℃,24±2hr ↓不产气产气↓大肠菌群阴性伊红美兰琼脂平板,36±1℃,24±2hr报告↓ ↓革兰氏染色乳糖发酵管,36±1℃,24±2hr ↓ ↓ ↓G+ G-,无芽孢杆菌产气不产气大肠菌群阴性大肠菌群阴性报告大肠菌群阳性报告5.测定方法:5.1 检样稀释:5.1.1 以无菌操作将检样25ml(或25g)放于含有225ml灭菌生理盐水的灭菌塑料烧杯中,经充分振摇成1:10均匀稀释液。
一、实验目的1. 掌握大肠杆菌检测的基本原理和方法;2. 学会使用国标法测定大肠杆菌样本的细菌总数;3. 提高微生物实验操作技能,为后续相关实验奠定基础。
二、实验原理大肠杆菌(Escherichia coli)是一种革兰氏阴性菌,广泛存在于人类和动物肠道中,属于条件致病菌。
本实验采用国标法测定大肠杆菌样本的细菌总数,主要利用大肠杆菌在LB培养基上生长繁殖的特性,通过计数菌落数来估算大肠杆菌的浓度。
三、实验器材1. 培养箱;2. 移液管(10只);3. 锥形瓶(250ml,12只);4. 大试管(5只);5. 试管架;6. 平皿(45个);7. 大烧杯(500ml,1个);8. 电子天平;9. 纱布;10. 脱脂棉;11. 灭菌锅;12. pH计或pH试纸;13. 电炉;14. 石棉网;15. 铁架台;16. 量筒(100ml,1个);17. 橡皮手套;18. 超净台。
四、实验药品1. 磷酸盐缓冲液;2. 蒸馏水;3. LB培养基;4. 琼脂;5. 5%NaOH;6. 5%HCl。
五、实验步骤1. 培养基制备(1)称取成品LB 3.1241g和琼脂1.8756g放入250ml的洁净锥形瓶中;(2)用量筒量取125ml的蒸馏水加入锥形瓶中,制成培养基;(3)用棉花堵住锥形瓶的瓶口,用牛皮纸包住瓶口,用橡皮筋扎牢;(4)将培养基放入灭菌锅中,在121摄氏度下灭菌20min;(5)灭菌后放入超净台中备用。
2. 样本处理(1)取适量样本(如食品、水等);(2)用无菌生理盐水进行梯度稀释;(3)取适量稀释液加入平皿中,制成平板;(4)将平板放入培养箱中,在37摄氏度下培养24h。
3. 菌落计数(1)观察平板,找出菌落数在30-300之间的平板;(2)用移液管吸取适量菌液,加入锥形瓶中;(3)在锥形瓶中加入适量的5%NaOH溶液,充分振荡;(4)将锥形瓶放入培养箱中,在37摄氏度下培养24h;(5)观察锥形瓶中的菌落生长情况,记录菌落数。
大肠杆菌检测细菌的原理大肠杆菌(Escherichia coli)是一种最常见的细菌之一,它存在于人体和动物的肠道中。
大肠杆菌的检测主要是为了评估水、食物、环境等样品是否受到大肠杆菌的污染,从而判断其卫生质量。
大肠杆菌检测的原理可以简单地归纳为以下几个方面:1. 大肠杆菌的特征:大肠杆菌是革兰氏阴性杆菌,属于肠杆菌科,可以通过一系列特征来进行检测和鉴定。
例如,大肠杆菌通常是乳酸阴性,证明能产生气体,能发酵果糖等。
2. 典型培养基:大肠杆菌的检测一般使用典型培养基进行,如MacConkey培养基、VRBD培养基等。
这些培养基含有特定的成分,如乳糖、无机盐、指示剂等,能够促进大肠杆菌的生长,并显示其典型的反应。
3. 选择性培养基:为了增强对大肠杆菌的选择性,常常还需要使用一些选择性培养基,如Eosin Methylene Blue(EMB)培养基、脱氧胆盐琼脂培养基(DCM)等。
这些培养基在含有抑制其他细菌生长的成分的同时,对大肠杆菌有选择地促进其生长。
4. 确认试验:大肠杆菌的检测还需要进行一系列确认试验,以确认所得结果的准确性。
常用的确认试验包括牛磺胆酸发酵试验、甲状腺脱色酶试验等。
通过这些试验可以确保检测结果是准确可靠的。
除了以上的传统方法,现代生物技术也为大肠杆菌的检测提供了更加快速和精确的手段。
例如,PCR(聚合酶链反应)是通过扩增大肠杆菌的特定片段来鉴定其存在与否。
其操作步骤主要包括:提取目标DNA片段,设计合适的引物,扩增DNA,检测扩增产物并鉴定大肠杆菌。
此外,还可以利用蛋白质分析技术,如质谱分析和酶联免疫吸附检测(ELISA),来检测大肠杆菌污染。
这些技术通过检测大肠杆菌特有的蛋白质组成或抗原来确定其存在与否。
总的来说,大肠杆菌的检测原理可以归纳为传统培养、生物技术PCR扩增和蛋白质分析等多种方法。
这些方法能够准确快速地鉴定出大肠杆菌的存在与否,为卫生质量的评估和控制提供有力的手段。
1. 掌握水中大肠杆菌检测的基本原理和方法。
2. 了解水中大肠杆菌污染的严重性及预防措施。
3. 培养实验操作技能,提高对水质监测的认识。
二、实验原理大肠杆菌(Escherichia coli)是一种条件致病菌,广泛存在于人和动物的肠道中。
在水质监测中,大肠杆菌常作为粪便污染的指示菌。
本实验采用伊红美蓝培养基进行大肠杆菌的检测,通过观察菌落特征,确定水中大肠杆菌的存在。
三、实验材料1. 实验器材:无菌试管、移液器、培养箱、酒精灯、无菌棉签、试管架、培养皿、显微镜等。
2. 实验试剂:伊红美蓝培养基、无菌水、水样、氯化钠、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠等。
四、实验步骤1. 水样采集:采集待检测水样,用无菌容器盛装,避免污染。
2. 水样稀释:将水样进行适当的稀释,以便在培养基上形成单菌落。
3. 接种:取适量稀释后的水样,用无菌棉签均匀涂布于伊红美蓝培养基表面。
4. 培养:将接种后的培养基放入培养箱中,在37℃条件下培养24小时。
5. 观察:观察培养基上的菌落特征,如菌落大小、形状、颜色等,判断是否存在大肠杆菌。
6. 鉴定:对疑似大肠杆菌的菌落进行进一步的鉴定,如革兰氏染色、生化试验等。
五、实验结果与分析1. 菌落观察:在伊红美蓝培养基上,大肠杆菌菌落呈深紫色(黑色),边缘整齐,有金属光泽。
2. 鉴定结果:经革兰氏染色和生化试验,证实所观察到的菌落为大肠杆菌。
1. 大肠杆菌是水质监测中的重要指标,其存在表明水质可能受到粪便污染,存在健康风险。
2. 本实验采用伊红美蓝培养基进行大肠杆菌检测,操作简便,结果准确。
3. 在实际水质监测中,还需结合其他指标,如粪大肠菌群、耐热大肠菌群等,全面评估水质状况。
七、实验总结1. 本实验成功检测了水中大肠杆菌,掌握了水中大肠杆菌检测的基本原理和方法。
2. 通过实验,提高了对水质监测的认识,增强了环保意识。
3. 在今后的学习和工作中,将继续关注水质问题,为保护水资源、保障人民群众健康贡献力量。
大肠杆菌检测原理
大肠杆菌检测是一种用于确定食品、水源或环境中是否存在大肠杆菌的常用方法。
大肠杆菌是一种肠道菌群常见的细菌,其存在通常表明可能存在粪便污染或其他健康危害的风险。
大肠杆菌检测主要基于以下原理:
1. 培养方法:采集样品后,将其接种到含有适宜营养物质的培养基上,利用大肠杆菌特有的形态、生理生化特性以及产生的气体等特点进行初步鉴定。
2. 确认方法:通过进一步的生化试验,如颜色反应、形状、气体产生情况等,进一步确认被培养出的菌落是否为大肠杆菌。
3. 分子生物学方法:利用PCR技术或核酸杂交等方法,针对大肠杆菌特异的基因序列进行扩增或检测。
4. 免疫学方法:利用特异性抗原或抗体与大肠杆菌产生的免疫反应,进行检测和确认。
这些方法都可以用于大肠杆菌的初步筛查和确认,根据不同的检测需求和样品特性选择合适的方法进行检测。
大肠杆菌检测的结果可以用于评估食品、水源、环境等是否存在粪便污染,从而采取相应的控制和预防措施。
大肠杆菌检测实验报告一、实验目的掌握大肠杆菌的检测方法,了解其在水质检验中的重要性。
二、实验原理1. 大肠杆菌大肠杆菌是一种常见的肠道杆菌,是一类嗜热性、厌氧性以及革兰阴性杆菌。
该菌种常常是肠道菌群的组成部分,同时也是水污染的重要指示菌之一。
(1)标准培养基法经过富营养培养基的生长,大肠杆菌会形成显性和隐性的群体。
这种检测方法适用于水质样本、地球样品以及饮用水。
(2)膜过滤法样品通过过滤器滤过后,将过滤后的膜放入培养基上培养。
这种方法既适合于生物质量较小的样品,也适用于分析浓度高的样品。
(3)MPN法通过使用3组不同浓度的小管,并观察哪个浓度的小管有生长曲线的所有格子都被满足,来计算菌落形成单位的浓度。
可以适用于样品浓度较低的环境。
三、实验操作1. 实验材料大肠杆菌标准菌株、优化阳性对照菌株、培养基、蒸馏水、实验器材、滤纸、吸管、离心机、洗涤液和细胞硬度试剂。
2. 实验步骤(1)制备纯菌液:将大肠杆菌基配合缓冲液跳接种到营养琼脂平板上,并在37℃的恒温培养箱中培养过夜。
将菌落划入脱色水中,通过洗涤和离心的方式,获得纯化的细胞菌悬液。
(2)制备样品:将需要检测的水样分别过滤,过滤膜使用巨孔滤纸。
滤膜被慢慢放在脱色水上U型板中间的孔里,然后浸泡(3)培养过程: 将U型板接入温度为37℃的有氧培养箱内,在24 - 48小时内观察细菌进行生长,并做出相应的计数和检测。
四、实验结果与分析按照实验操作规程进行样品处理和培养后,确认样品中是否存在大肠杆菌。
如果在实验中产生的试样中出现了大肠杆菌生长,且其生长优于阳性对照;或者在某些水样中不能检测出大肠杆菌,说明该水质品质不满足相关规范的要求。
五、实验结论本实验通过不同的大肠杆菌检测方法,较为全面地了解了大肠杆菌的检测方法及其在水质检验中的重要性。
在实验的基础上,我们有理由相信,通过科学准确的操作,人们可以更好地保证饮用水的健全和安全。
发酵法检测大肠杆菌的原理
发酵法是一种常用的检测大肠杆菌的方法,其原理是利用大肠杆菌在发酵过程中产生的酸性产物引起试剂的颜色变化。
大肠杆菌是一种革兰氏阴性的细菌,它可以产酸和气体的能力强。
发酵法使用含有易于发酵的碳源(如葡萄糖)的试剂,将待检样品培养在含有上述碳源的培养基中。
如果待检样品中存在大肠杆菌,它将利用碳源进行发酵,产生酸性产物。
当试剂与酸性产物接触时,试剂中的某些指示剂(例如溴酚蓝)会发生颜色变化。
通常,指示剂的颜色会从蓝色变为黄色。
这种颜色变化可以通过肉眼观察或使用光谱仪等设备来检测。
通过对试剂的颜色变化进行观察或测量,可以判断待检样品中是否存在大肠杆菌。
如果试剂发生明显的颜色变化,表示样品中存在大肠杆菌;如果试剂颜色无明显变化,说明样品中不含大肠杆菌。
需要注意的是,发酵法只能对大肠杆菌进行初步的筛查和定性检测,并不能提供对大肠杆菌数量的准确测量。
对于准确计数或定量大肠杆菌的检测,需要使用更加精确和灵敏的方法,如培养基法、PCR等。
大肠杆菌的检测及原理
1.检测原理:
大肠菌群是一群能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌,该菌主要来源于人畜粪便,故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量,推断食品中有否污染肠道致病菌的可能。
食品中的大肠菌群数系以100ml(g)检样内大肠菌群最可能数(MPN)表示。
2.仪器设备与器具:
2.1 恒温培养箱:36±1℃。
2.2 1000ml三角烧瓶、1ml、10ml移液管。
2.3 接种针。
2.4 显微镜。
2.5 超净工作台。
2.6 玻片、酒精灯、洗耳球、试管架。
2.7 天平:感量0.01g。
2.8 灭菌釜。
2.9 培养皿(直径为90mm)、试管,经121℃、30分钟灭菌。
2.10试管夹、酒精灯、秒表、载玻片
3.培养基及试剂:
3.1 乳糖胆盐发酵管:按照制造厂家使用说明进行配制,灭菌。
3.2 伊红美兰琼脂平板:按照制造厂家使用说明进行配制,灭菌。
3.3 乳糖发酵管:按照制造厂家使用说明进行配制,灭菌。
3.4 革兰氏染色液。
3.4.1 结晶紫染色液:
结晶紫1g
95%乙醇20ml
1%草酸铵水溶液80ml
将结晶紫溶解于乙醇中,然后与草酸铵溶液混合。
3.4.2 革兰氏碘液:
碘1g
碘化钾2g
蒸馏水300ml
将碘与碘化钾先进行混合,加入蒸馏水少许,充分振摇,待完全溶解后,再加蒸馏水至300 ml。
3.4.3 沙黄复染液:
沙黄0.25g
95%乙醇10ml
蒸馏水90ml
将沙黄溶解于乙醇中,然后用蒸馏水稀释。
3.5 生理盐水。
4.检验程序:
检样
稀释↓
乳糖胆盐发酵管,36±1℃,24±2hr ↓
不产气产气↓
大肠菌群阴性伊红美兰琼脂平板,36±1℃,24±2hr
报告↓ ↓
革兰氏染色乳糖发酵管,36±1℃,24±2hr ↓ ↓ ↓
G+ G-,无芽孢杆菌产气不产气
大肠菌群阴性大肠菌群阴性
报告大肠菌群阳性报告
5.测定方法:
5.1 检样稀释:
5.1.1 以无菌操作将检样25ml(或25g)放于含有225ml灭菌生理盐水的灭菌塑料烧杯中,经充分振摇成1:10均匀稀释液。
5.1.2 用1ml灭菌吸管吸取1:10稀释液1ml,注入含有9ml灭菌生理盐水的试管中,振摇成1:100稀释液。
5.1.3 重复5.1.2的操作,使成1:1000稀释液。
5.2乳糖胆盐发酵试验:根据食品卫生标准要求或对检样污染情况的估计,选择二个稀释度,每一稀释度接种3管,接种量在1ml以上者,用双料乳糖胆盐发酵管。
1ml及1ml以下者,用单料乳糖胆盐发酵管。
然后置于36±1 ℃培
养箱内,培养24±2hr,如所有乳糖胆盐发酵管都不产气,则可报告为大肠菌
群阴性;如有产气者,则可按以下程序进行。
5.3分离培养:将产气的发酵管分别接种于伊红美兰琼脂平板上,置36±1℃温箱内,培养24hr后取出,观察菌落形态,并作革兰氏染色。
5.4证实试验:在上述平板上,挑取可疑大肠菌群菌落1~2个进行革兰氏染色同时接种乳糖发酵管,置于36±1℃温箱内培养24±2hr,观察产气情况。
乳糖发酵管产气,革兰氏染色为阴性的无芽孢杆菌,即可报告为大肠菌群阳性。
5.5报告:根据证实为大肠菌群阳性的管数,查MPN检索表,报告每100ml(g)大肠菌群的最可能数。