基因敲除细胞系技术
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基因敲除技术
基因敲除技术gene knockoutgene knockout简介基因敲除技术是一种通过破坏特定基因来研究该基因在细胞或生物体中功能的实验方法。
这项技术在基础研究、疾病模型构建以及药物开发等领域中起着重要作用。
通过敲除特定基因，我们可以揭示该基因在生物体中的功能，对其与相关疾病的关联进行研究，并探索其在生物学过程中的作用机制。
基因敲除技术的原理基因敲除技术是通过引入特定的DNA片段使目标基因发生突变或被删除，从而破坏目标基因的功能。
常用的基因敲除技术包括CRISPR/Cas9、转座子、RNA干扰等。
CRISPR/Cas9CRISPR/Cas9是目前应用最广泛的基因敲除技术之一。
它基于细菌和古菌的天然免疫系统中的一种防御机制。
CRISPR （Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats）是一种由短重复序列和变异序列组成的DNA片段。
Cas9是一种具有核酸内切活性的酶。
CRISPR/Cas9技术利用RNA导向的Cas9酶靶向识别和切割特定的DNA序列。
在细胞中引入含有目标基因的RNA分子和Cas9酶后，Cas9酶会与RNA分子结合形成复合物，通过RNA分子的导向，使Cas9酶与目标基因特异性结合，并切割目标基因的DNA序列，导致基因发生突变或敲除。
转座子转座子是一种能在基因组中移动的DNA片段。
转座子可以在基因组中发生插入、删除或重排等事件，从而导致基因的敲除和突变。
转座子技术通过引入含有转座子序列的DNA片段来实现基因敲除。
在细胞中，转座子序列会与基因组发生重组，导致目标基因的敲除或突变。
RNA干扰RNA干扰是一种通过介导靶向特定mRNA分解的机制来抑制基因表达的方法。
在RNA干扰中，特定的siRNA（small interfering RNA）或shRNA（short hairpin RNA）分子与目标mRNA相互作用，导致mRNA的降解，从而抑制特定基因的表达。
关于基因敲除U251细胞系的应用
关于基因敲除U251细胞系的应用U251细胞系是通过外植技术从恶性胶质母细胞肿瘤中衍生而来的，U251细胞系通常用作胶质母细胞瘤研究的实验模型。
U-251 MG细胞系人类已用于研究Pax6（配对盒蛋白）相关的Dkk3（Dickkopf 3）表达增加的机制，通过CRISPR/Cas9敲除PAX6的U251细胞系是常用的工具分子研究PAX6在减轻胶质母细胞肿瘤进程中的作用。
而且，U251细胞系可用于从U-251人胶质母细胞瘤细胞系中提取癌干细胞，这使其在基因编辑领域成为受欢迎的细胞系。
此外，它经常用于研究胶质母细胞瘤模型中JARID1B（富含Jumanji AT的交互式区域1B）在神经胶质瘤的发病机理中的作用以及艾力诺弗C联合替莫唑胺的治疗效果。
因此U251细胞是用于基因敲除，稳转细胞株等的合适细胞。
应用：发现PAX6-敲除的U251细胞系具有增强的增殖和集落形成能力转录因子PAX6在包括U251细胞系在内的各种癌细胞系中表达。
在间变性星形细胞胶质瘤中，PAX6表达与肿瘤级别成反比，从而导致胶质母细胞瘤（最高级别的星形细胞胶质瘤）中PAX6表达低。
U251细胞系通常用作胶质母细胞瘤研究的实验模型。
因此，一些科学家开发了PAX6基因敲除的U251细胞系，作为分子研究工具来研究PAX6在减轻胶质母细胞肿瘤进程中的作用。
CRISPR-Cas9技术用于敲除U251 N胶质母细胞瘤细胞中的PAX6。
指导RNA 被设计成在相对于转录起始位点（TSS）在+25至+58位之间的PAX6基因5'端附近产生突变。
强力霉素诱导的EGFP-PAX6表达载体的病毒转导用于在PAX6基因敲除的U251细胞中重新引入（拯救）PAX6表达。
通过分析形态，增殖，集落形成能力以及对氧化应激和化学治疗剂的反应，对敲除的U251细胞进行了严格表征。
结果表明，与WT细胞相比，敲除的U251细胞具有增强的增殖和集落形成能力，这与临床观察结果一致，表明PAX6可以起到抑癌作用。
cas9 构建基因敲除细胞系 步骤
cas9 构建基因敲除细胞系步骤1. 设计gRNA序列需要设计合适的gRNA（guide RNA）序列。
gRNA是一种由RNA和DNA组成的分子，在CRISPR-Cas9系统中起到引导Cas9蛋白识别和切割目标DNA的作用。
gRNA序列应当与目标基因的特定区域互补，并且要避免与其他基因的序列相互匹配。
2. 合成gRNA和Cas9蛋白合成设计好的gRNA序列，并将其与Cas9蛋白结合。
Cas9蛋白是CRISPR-Cas9系统中的核酸酶，能够与gRNA一起识别目标DNA 序列，并在其靶向区域引发双链断裂。
3. 转染细胞将gRNA和Cas9蛋白复合物转染到目标细胞中。
转染可以使用多种方法，如化学法、电穿孔法或病毒载体介导的转染等。
转染后，gRNA和Cas9蛋白会进入细胞质，并寻找目标基因。
4. 筛选敲除细胞系根据需要敲除的基因，选择适当的筛选方法来鉴定敲除细胞系。
常用的筛选方法包括PCR、Western blot和细胞克隆等。
通过这些方法，可以检测到目标基因的敲除情况。
5. 确认敲除细胞系对筛选出的细胞系进行进一步的确认。
可以使用DNA测序技术对目标基因的敲除位点进行测序验证。
此外，还可以通过功能实验来验证目标基因的敲除效果。
6. 存储和维护敲除细胞系成功敲除目标基因后，需要对敲除细胞系进行存储和维护。
细胞系应当保存在液氮中，以确保其长期保存和使用的稳定性。
同时，细胞系也需要定期培养和检测，以确保其生长状态和敲除效果。
以cas9构建基因敲除细胞系的步骤包括设计gRNA序列、合成gRNA和Cas9蛋白、转染细胞、筛选敲除细胞系、确认敲除细胞系以及存储和维护敲除细胞系。
这些步骤需要在实验室中进行，确保操作的准确性和稳定性。
基因敲除细胞系的建立为研究基因功能和疾病机制提供了有力的工具，对于深入理解生命活动和疾病发生发展具有重要意义。
细胞敲除基因
细胞敲除基因
细胞敲除基因是指通过基因编辑技术，利用CRISPR/Cas9系统或其他工具将目标基因从细胞中“剪切”掉，从而实现基因敲除。
这项技术可用于研究基因功能、疾病治疗等领域。
细胞敲除基因的方法一般分为两种：一是将CRISPR/Cas9系统导入到靶细胞中，通过设计合适的sgRNA靶向目标基因的剪切位点，使Cas9蛋白与sgRNA结合并切割目标基因，从而使其失去功能；二是利用RNA干扰技术，通过引入特定的siRNA或shRNA，干扰目标基因的表达，从而实现基因敲除。
细胞敲除基因技术广泛应用于基因功能研究、疾病模型建立以及基因治疗等领域。
例如，在基因功能研究中，通过敲除特定基因观察其对细胞生长、分化、代谢等的影响，可以帮助研究人员深入了解基因功能；在疾病模型建立中，通过敲除与某些疾病相关的基因，可以构建相应的动物模型，为疾病研究提供便利；在基因治疗中，通过敲除某些病因基因，可以有效治疗某些遗传性疾病。
然而，细胞敲除基因技术也存在一些挑战和局限性。
例如，在敲除多个基因时，可能会出现副作用或误差；在敲除在多个细胞中共同发挥作用的基因时，可能会导致不可预测的结果。
因此，研究人员需要仔细设计实验方案，并结合其他技术手段进行验证，以确保实验结果的准确性和可靠性。
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基因敲除细胞系：如何设计gRNA高效KO,以及避免蛋白残留 —源井生物
基因敲除细胞系：如何设计gRNA高效KO，以及避免蛋白残留——源井生物基因组编辑是一种理想的研究基因功能的方法。
它可以精确地识别和定位基因组中的特定序列，然后改变目标序列以达到各种目的。
CRISPR/Cas9系统由于其简单的机制已经成为当今世界基因组编辑的代名词。
其中基因敲除是目前CRISPR/Cas9最常见的应用。
在CRISPR/Cas9介导的基因敲除实验中，Cas9核酸酶在gRNA的指引下，打靶目的基因，并产生双链DNA断裂（DSB）。
由于DSB的不完全修复而产生插入和缺失（indels），引起移码突变，导致终止密码子提前，实现编码基因敲除的目的。
在CRISPR/Cas9实验中，gRNA的选择将很大程度上影响项目的成功率。
在选择gRNA的时候，有几个因素可以帮助大家选取有效的gRNA以产生成功的敲除：1）预测gRNA效率；2）选择脱靶风险低的gRNA；3）同时使用多个gRNA以提高敲除效率。
在编码基因敲除实验中，DNA水平验证KO结果是首要的，此外，蛋白质水平的验证也非常关键。
蛋白水平的验证通常是通过Western Blot实现的，但以下这两种现象，有可能导致截短蛋白仍然表达，从而致使WB 验证时出现阳性情况。
(1) 基因产生移码突变后，下游ATG密码子有可能启动翻译，从而导致蛋白表达。
或者位于移码突变上游的外显子翻译表达，产生N末端截短蛋白。
(2) 细胞跳过被编辑的外显子翻译表达，产生内部序列缺失的蛋白质异构体。
图1: 抗INDEL效应导致CRISPR基因敲除实验失败的细胞机制翻译重新启动CRISPR介导的基因敲除通常是通过Cas9产生dsDNA断裂来实现的：在切割之后，非同源末端连接（NHEJ）的易出错性质会导致在切割位点有一个或多个核苷酸的插入或缺失（indels），从而引起移码突变，终止密码子提前，并产生无义介导的降解(NMD)，从而完全敲除基因。
因此打靶位点常常选择尽量靠近开放阅读框（ORFs）5′端。
基因敲除技术
基因敲除技术1．概述：基因敲除是自80年代末以来发展起来的一种新型分子生物学技术，是通过一定的途径使机体特定的基因失活或缺失的技术。
通常意义上的基因敲除主要是应用DNA同源重组原理，用设计的同源片段替代靶基因片段，从而达到基因敲除的目的。
随着基因敲除技术的发展，除了同源重组外，新的原理和技术也逐渐被应用，比较成功的有基因的插入突变和iRNA，它们同样可以达到基因敲除的目的。
2．实现基因敲除的多种原理和方法：2．1． 利用基因同源重组进行基因敲除基因敲除是80年代后半期应用DNA同源重组原理发展起来的。
80年代初，胚胎干细胞（ES细胞）分离和体外培养的成功奠定了基因敲除的技术基础。
1985年，首次证实的哺乳动物细胞中同源重组的存在奠定了基因敲除的理论基础。
到1987年，Thompsson首次建立了完整的ES细胞基因敲除的小鼠模型[1]。
直到现在，运用基因同源重组进行基因敲除依然是构建基因敲除动物模型中最普遍的使用方法。
2.1.1利用同源重组构建基因敲除动物模型的基本步骤(图1)：a． 基因载体的构建：把目的基因和与细胞内靶基因特异片段同源的DNA 分子都重组到带有标记基因(如neo 基因，TK 基因等)的载体上，成为重组载体。
基因敲除是为了使某一基因失去其生理功能，所以一般设计为替换型载体。
b．ES 细胞的获得：现在基因敲除一般采用是胚胎干细胞，最常用的是鼠，而兔，猪，鸡等的胚胎干细胞也有使用。
常用的鼠的种系是１２９及其杂合体，因为这类小鼠具有自发突变形成畸胎瘤和畸胎肉瘤的倾向，是基因敲除的理想实验动物。
而其他遗传背景的胚胎干细胞系也逐渐被发展应用。
[2，3]ｃ．同源重组：将重组载体通过一定的方式(电穿孔法或显微注射)导入同源的胚胎干细胞(ES cell)中，使外源DNA与胚胎干细胞基因组中相应部分发生同源重组，将重组载体中的DNA序列整合到内源基因组中，从而得以表达。
一般地，显微注射命中率较高，但技术难度较大，电穿孔命中率比显微注射低，但便于使用。
简述基因敲除技术操作方法
简述基因敲除技术操作方法
基因敲除技术是将某一特定基因在细胞或生物体中进行完全或部分去除或失活的一种基因编辑技术。
操作步骤：
1. 设计sgRNA：首先，为目标基因设计合适的sgRNA (single guide RNA)序列。
sgRNA由两个部分组成，一个是能够结合到Cas9蛋白上的常规RNA序列，另一个是与目标基因靶向结合的特定RNA序列。
2. 获得Cas9蛋白：将Cas9基因导入目标细胞中，通过蛋白质合成过程获得Cas9蛋白。
3. sgRNA和Cas9蛋白配对：将sgRNA分别与Cas9蛋白组装在一起，形成"CRISPR-Cas9复合物"。
4. 将CRISPR-Cas9复合物导入目标细胞：利用一些常见的基因转染技术或选择性培养细胞系等方法将该复合体导入目标细胞。
5. 分析基因敲除效果：使用PCR，Western印迹、等手段来确定基因是否被去除、缺失或失活。
需要注意的是，基因敲除技术可以有效地诱导基因缺失或失活，但有时它也可能导致同源重组或非同源重组，使得去除那些不想去除的基因或区域。
因此，在实验操作时，必须谨慎考虑sgRNA的设计和基因敲除效果的确定方法。
ko细胞系原理
ko细胞系原理关于ko细胞系的原理解析什么是ko细胞系•ko细胞系是一种基因敲除细胞系，它在基因组中引入一种突变来观察该基因的功能以及与其他基因的相互作用。
ko细胞系的原理1.敲除基因：ko细胞系的主要原理是通过敲除（Knockout）目标基因来观察其对生物体的影响。
2.敲除方法：通常使用CRISPR-Cas9系统来实现目标基因的敲除。
该系统利用RNA导向的方式将Cas9核酸酶引导至目标基因上，通过Cas9的核酸酶活性切断目标基因的DNA，导致基因产生突变。
3.突变效果：通过敲除目标基因，可以观察到该基因在细胞活动、发育、代谢等方面的变化，以及与其他基因的相互作用。
ko细胞系的应用1. 基因功能研究•ko细胞系常用于验证基因对特定性状或疾病的影响。
比如，敲除特定基因后观察细胞的表型变化，有助于揭示基因在细胞生理中的功能和作用机制。
2. 药物研发•利用ko细胞系，可以评估某种药物对目标基因的影响。
在研发药物的过程中，通过敲除特定基因并观察药物对敲除细胞的作用，可以了解药物的特异性和治疗潜力。
3. 疾病研究•借助ko细胞系，可以探究某些基因与疾病之间的关联。
通过敲除可能与疾病相关的基因，研究人员可以研究这些基因对身体的影响，从而深入了解疾病的病因和发展机制。
总结•ko细胞系是一种通过敲除目标基因来研究其功能和与其他基因的相互作用的方法。
它在基因功能研究、药物研发和疾病研究等领域具有重要的应用价值。
通过ko细胞系的研究，我们可以深入了解基因的功能和生物体的复杂性，进一步推动科学研究和医学进步。
细胞基因敲除不成功的原因
细胞基因敲除不成功的原因细胞基因敲除是一种常用的基因编辑技术，通过引入特定的DNA 修饰酶，可以将目标基因的DNA序列剪切掉，从而实现对该基因的“关闭”。
然而，尽管细胞基因敲除在许多研究领域都有广泛应用，但并非所有的基因敲除实验都能够成功。
本文将探讨细胞基因敲除不成功的原因。
基因敲除不成功可能是由于选择的敲除靶点不合适。
在进行基因敲除实验之前，研究人员需要对目标基因进行仔细的筛选和分析。
一些基因可能具有重要的生理功能，其敲除可能导致细胞甚至整个生物体无法正常生存。
此外，一些基因可能在特定的细胞类型或发育阶段才发挥作用，若在错误的细胞类型或发育阶段进行基因敲除实验，也容易导致敲除不成功。
基因敲除不成功可能与敲除效率不高有关。
敲除效率是指在目标细胞中成功敲除基因的比例，如果敲除效率过低，可能导致无法获得敲除成功的细胞克隆。
敲除效率受多种因素影响，例如敲除载体的构建质量、转染方法的选择以及细胞系的选择等。
如果在这些环节出现问题，都可能导致敲除效率降低，从而使基因敲除不成功。
基因敲除不成功可能是由于细胞中存在修复机制的干扰。
在细胞中，存在一种被称为同源重组的DNA修复机制。
当细胞中的DNA发生损伤时，同源重组可以修复这些损伤，使细胞恢复正常功能。
然而，在进行基因敲除实验时，同源重组可能会干扰引入的DNA修饰酶对目标基因的剪切作用，从而导致基因敲除不成功。
基因敲除不成功可能还与细胞中的转录调控网络有关。
细胞中的基因表达受到复杂的调控网络的控制，这些调控网络包括转录因子、染色质结构和表观遗传修饰等。
如果目标基因参与了重要的转录调控网络，其敲除可能会导致其他基因的表达异常，从而影响细胞的正常功能。
因此，在进行基因敲除实验时，需要充分考虑目标基因的转录调控网络，以避免敲除不成功的情况发生。
基因敲除不成功还可能与实验操作的技术问题有关。
基因敲除实验需要进行一系列的实验操作，包括细胞培养、转染、筛选等。
如果在这些操作中存在操作不当或实验条件不合适，都可能导致基因敲除不成功。
基因敲除技术
．概述：基因敲除是自80年代末以来发展起来的一种新型分子生物学技术，是通过一定的途径使机体特定的基因失活或缺失的技术。
通常意义上的基因敲除主要是应用DNA同源重组原理，用设计的同源片段替代靶基因片段，从而达到基因敲除的目的。
随着基因敲除技术的发展，除了同源重组外，新的原理和技术也逐渐被应用，比较成功的有基因的插入突变和iRNA，它们同样可以达到基因敲除的目的。
2．实现基因敲除的多种原理和方法：2．1．利用基因同源重组进行基因敲除基因敲除是80年代后半期应用DNA同源重组原理发展起来的。
80年代初，胚胎干细胞<ES细胞）分离和体外培养的成功奠定了基因敲除的技术基础。
1985年，首次证实的哺乳动物细胞中同源重组的存在奠定了基因敲除的理论基础。
到1987年，Thompsson首次建立了完整的ES细胞基因敲除的小鼠模型[1]。
直到现在，运用基因同源重组进行基因敲除依然是构建基因敲除动物模型中最普遍的使用方法。
2.1.1利用同源重组构建基因敲除动物模型的基本步骤(图1>：a．基因载体的构建：把目的基因和与细胞内靶基因特异片段同源的DNA 分子都重组到带有标记基因(如neo 基因，TK 基因等>的载体上，成为重组载体。
基因敲除是为了使某一基因失去其生理功能，所以一般设计为替换型载体。
b．ES 细胞的获得：现在基因敲除一般采用是胚胎干细胞，最常用的是鼠，而兔，猪，鸡等的胚胎干细胞也有使用。
常用的鼠的种系是１２９及其杂合体，因为这类小鼠具有自发突变形成畸胎瘤和畸胎肉瘤的倾向，是基因敲除的理想实验动物。
而其他遗传背景的胚胎干细胞系也逐渐被发展应用。
[2，3] ｃ．同源重组：将重组载体通过一定的方式(电穿孔法或显微注射>导入同源的胚胎干细胞(ES cell>中，使外源DNA与胚胎干细胞基因组中相应部分发生同源重组，将重组载体中的DNA序列整合到内源基因组中，从而得以表达。
一般地，显微注射命中率较高，但技术难度较大，电穿孔命中率比显微注射低，但便于使用。
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细胞系是由具有无限分裂能力的转化细胞群组成。
这通常来源于实验室患者或动物的细胞系的致瘤起因。
细胞系在研究中可能是无价的，整个医学领域都异常的重视。
它们通常坚固并且需要相对简单的条件，从而进行组织培养。
通过这种方式，这些类型的细胞最适合用于概念验证工作的基因敲除细胞系技术（例如生物打印设备和技术的开发和初始实施）。
但是，尽管细胞系确实保留了其来源细胞类型的某些正常功能，但通常会大大降低其功能。
含有谷氨酰胺合成酶（GS）基因敲除的细胞系和使用该基因敲除的HEK293细胞系生产靶蛋白的方法
本发明涉及从转基因HEK293（人胚肾293）细胞系中敲除的新型GS（谷氨酰胺合成酶）基因和使用该转基因HEK293细胞系制备靶蛋白的方法。
特别地，本发明人消除了HEK293细胞中GS的表达，以克服由GS的过表达引起的细胞系选择障碍，从而通过GS / MSX系统产生靶蛋白，从而提高了效率。
因此，高产量靶蛋白的细胞系选择将增加，因此所选细胞系的蛋白产量显上升，这表明稳转细胞系的基因编辑技术可以有效地用于生产靶蛋白。
转基因细胞系网状细胞可以剖析宿主疟疾入侵的需求
这种无核细胞的遗传难治性阻碍了对宿主红细胞蛋白在疟疾感染中的作用进行了研究。
而在研究人员的报告中，从体外分离出的永生红细胞系（BEL-A）分化出的网状细胞支持恶性疟原虫的成功入侵和细胞内发育。
利用CRISPR介导的基因敲除和随后的互补作用，研究人员验证了红细胞受体西那平在恶性疟原虫侵袭中起到的重要作用，并通过受体的重新表达证明了对侵袭性细胞系基因编辑进行挽救。
网织红细胞的成功侵袭补充了截短的突变体，消除了侵袭过程中basigin 胞质域的功能作用。
相反，据报道，参与侵袭并与basigin相互作用的亲环蛋白B 的敲除不影响网织细胞的侵袭敏感性。
这些数据建立了永生红细胞来源的网织红细胞作为强大的模型系统的用途，以探索有关恶性疟原虫入侵的宿主受体需求的假设。
研究人员表明，来自永生红细胞的网状细胞支持恶性疟原虫的侵袭和发展，并使用CRISPR介导的基因敲除和侵袭受体的互补来证明该模型系统在疟疾侵袭研究中的实用性。
EndoC-βH1细胞系中的CRISPR/Cas9基因组编辑管道，用于研究与细胞功能有关的基因
2型糖尿病（T2D）是全球性的大流行病，具有很强的遗传成分，但是影响疾病风险的大多数致病基因都为未知的。
现在，很清楚，胰岛β细胞是T2D发病机制的中心。
迄今为止，用于研究T2D风险基因的体外基因敲除（KO）模型一直集中在啮齿动物β细胞上。
但是，啮齿动物和人的细胞系之间存在重要的结构和功能差异。
考虑到这一点，研究人员已经开发出了强大的管道，可以在真实的人类细胞系中（EndoC-βH1）中创建稳定的CRISPR/Cas9 KO。
KO流程包括双重慢病毒sgRNA策略，研究人员针对三个基因（INS，IDE，PAM）进行了概念验证。
研究人员实现了所有靶基因mRNA水平的显着降低和蛋白质的完全消耗。
使用这种双重sgRNA策略，可以从目标基因中切割出多达94 kb的DNA，每个sgRNA
的编辑效率都超过了87.5％。
脱靶序列没有特别的敲除和编辑。
最重要的是，管
道有不影响细胞的葡萄糖反应性胰岛素分泌。
有趣的是，使用siRNA介导的敲除（KD）方法比较NEUROD1和SLC30A8的KO细胞系表现出表型差异。
NEUROD1-KO细胞不活跃，并显示出较高的内质网应激和凋亡标记。
然而，NEUROD1-KD的促凋亡转录因子CHOP和基因表达谱仅适度升高，增幅为34％，表明慢性ER应激，而没有细胞死亡的证据。
另一方面，与siRNA沉默相反，SLC30A8-KO细胞显示出K ATP通道基因表达没有降低。
总体而言，这种在人的细胞系EndoC-βH1中有效创建稳定KO的策略将使人们更好地了解与编辑细胞功能异常有关的基因，与其潜在的功能机制和T2D发病原理。
由Ubigene开发的CRISPR-U™（基于CRISPR / Cas9技术）在双链断裂方面比普通CRISPR / Cas9更有效，而CRISPR-U™可以大大提高同源重组的效率，轻松实现敲除（KO）），体外和体内的点突变（PM）和敲入（KI）。
借助CRISPR-U，Ubigene 已成功编辑了100多个细胞系上的基因。
Reference
Gyun Min Lee, Da Young Yu, Soo Min Noh.Cell line containing a knockout of the glutamine synthetase (GS) gene and a method of producing target proteins using a GS knockout HEK293 cell Patent
Satchwell T J, Wright K E, Haydnsmith K L, et al. Genetic manipulation of cell line derived reticulocytes enables dissection of host malaria invasion requirements[J]. Nature Communications, 2019, 10(1): 3806-3806.
Grotz AK, Abaitua F, Navarro-Guerrero E, Hastoy B, Ebner D, Gloyn AL. A
CRISPR/Cas9 genome editing pipeline in the EndoC-βH1 cell line to study genes implicated in beta cell function. Wellcome Open Res. 2020;4:150. Published 2020 Apr 29.
doi:10.12688/wellcomeopenres.15447.2.
基因敲除切割效率不仅可以让人具有生成蛋白基化谱和建立调控记录的能力，而且具有多种优势，是一种特别有吸引力的重组蛋白表达系统。
首先，它在谷氨酸上羧基化，在酪氨酸上硫酸化。
第二，操作简单，通过瞬时基因表达可以快速产生重组蛋白。
第三，可用于稳定的重组蛋白生产。
一些研究人员利用基因细胞敲除切割效率系统产生基因编辑细胞系，对GLUL基因组位点进行靶向测序，产生了EPO的稳转细胞系，并发现重组促红细胞生成素在人体内稳定表达的机制。
Ubigene根据科研需求，结合靶基因的情况进行基因稳转敲除方案设计
方案1：小片段基因敲除方案，gRNA设在外显子2两端的内含子中，敲除外显子编码碱基数为非3倍数，敲除后可造成移码。
方案2：移码基因敲除方案，gRNA设在外显子上，缺失的碱基数为非3倍数，敲除后可发生移码突变。
方案3：大片段基因敲除方案，将整个基因的编码序列敲除，达到大片段敲除的效果。
注明 | 文章是源井生物原创，转载请注明。