动物细胞的大规模培养

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第二章 动物细胞培养

第五节 动物细胞大规模培养

动物细胞培养的培养方法不仅仅只有我们前面介绍的几种培养方法,对于药

物、疫苗等生物制品的生产,就要通过细胞大规模培养来实现。

细胞的大规模培养与实验室规模的细胞培养不同,我们在实验室细胞培养中很多

不会考虑的因素,如葡萄糖的浓度、谷氨酰胺的浓度、通气等,大规模培养中都

必需要考虑。而且,我们可以通过工艺优化,选择合适的细胞培养模式和过程控

制策略,调控细胞代谢、提高培养细胞的密度和产物的表达水平,最终提高生产

效率和经济效益。

动物细胞大规模培养的主要影响因素包括:第一,谷氨酰胺,在细胞的合成

代谢中,谷氨酰胺可转化为α-酮戊二酸,作为合成核酸的中间产物;也可以转

化为其他氨基酸和天冬氨酸,参与蛋白质的合成;还可以彻底分解成水和CO2,

产生能量(图1)。

图1 谷氨酰胺的代谢

第二,氨,氨是细胞培养过程中主要代谢副产物,对细胞的生长不利,要尽

量减少氨的产生,当氨浓度大于4 mmol/L时将抑制细胞的正常生长。

第三,葡萄糖,通过糖酵解途径产生乳酸,乳酸是细胞培养的副产物,可抑

制谷氨酰胺酶的活性,对细胞培养不利。

葡萄糖还可通过磷酸戊糖途径转化为磷酸核糖,用于核酸的合成。葡萄糖还可以通过三羧酸循环彻底氧化分解成水和

CO2,产生大量的ATP。在低葡萄糖浓度下,更多葡萄糖地进入三羧酸循环进行

完全氧化(图2)。

图2 葡萄糖的代谢

第四,溶氧,溶氧的最适水平强烈地依赖于细胞株的类型和空气饱和度,不

同细胞株的需求不一样。

第五,pH值。在反应器中进行细胞大规模细胞培养时,不能像细菌或酵母

发酵那样,直接用酸或碱来调pH值。通常,我们通常用四种气体(空气、氧气、

氮气、二氧化碳)来调节pH值(图3)。根据这个反应式,CO2溶于水中,会生

产碳酸,碳酸解离出H离子和碳酸氢根离子。当培养液中pH偏低时,若培养液

中的溶氧值已达到设定值,则可通入氮气,降低CO2分压;若溶氧值低于设定值,

又有两种情况,当细胞密度较低时,可通入空气;当细胞密度较高时,则可通入

纯氧。这样,通过氮气、空气、氧气的通入,公式中反应向左移动,H+浓度降低,

pH值升高。相反,当培养液中pH偏高时,只要通入二氧化碳气体,公式中反应

向右移动,培养液中H+浓度增高,使pH

值下降至设定值。

图3 通过4种气体(空气、氧气、氮气、二氧化碳)调节大规模细胞中的pH值

细胞培养工程是以获取大量的细胞产物为目的的学科。动物细胞大规模培养

工艺模式主要有:分批培养,流加培养,半连续培养,连续培养和灌注培养等。

分批培养是指将细胞和培养基一次性装入反应器内进行培养,在此过程中,

细胞不断生长,产物不断形成,经过一段时间培养后,将整个反应系统取出。细

胞生长会出现典型的四个阶段:延迟期、对数生长期、稳定期和衰退期。在分批

培养过程中,随着细胞的生长和增殖,培养液中营养物的浓度逐渐降低,代谢副

产物的浓度逐渐升高,直接影响细胞的生长代谢和细胞的活性。通常实验室开展

的较小规模的细胞培养通常采用这种模式(图4)。

图4 分批培养模式

第二,流加培养,是先将一定量培养基装入反应器,接种细胞并进行培养,在此过程中,随着细胞对营养物质的不断消耗,新的培养基不断补充至反应器中,

使细胞持续生长、代谢,到培养结束时取出整个反应系统(图5)。在流加培养

操作中,由于添加培养基,细胞的生长期延长了,缓解营养物耗竭和代谢副产物

积累之间的矛盾。延长细胞培养时间,提高细胞密度。

图5 流加培养模式

第三,半连续培养,是在分批培养操作的基础上,在培养过程的中后期,取

出部分培养物,补充等体积的新鲜培养基,再按分批模式进行培养。这是一个半

连续培养的反应罐(图7)。细胞因为重新获得充足的营养物,加之新鲜培养基

的加入稀释了培养系统中残留的代谢副产物的浓度,细胞可继续生长、代谢、表

达产物,并维持较高的细胞活性。

图7 半连续培养模式

对于贴壁细胞的大规模培养,常采用微载体培养(图8)。微载体是直径在

60-250μm,能适用于贴壁细胞生长的微球,一般由天然葡聚糖构成。可以让细

胞先贴附在微载体表面,再让微载体悬浮在培养基中搅拌培养,这样,可大大提

高细胞的贴附面积,增加细胞的产量。微载体培养大规模培养细胞,

通常采用半连续培养方式。

图8 微载体培养

第四,连续培养,是将细胞和培养基一起加入反应器内进行培养,在培养

过程中,不断加入新鲜培养基,同时又将培养液(包括细胞)连续不断取出,使

反应条件处于一种恒定状态(图9)。连续培养的特点在于反应器中的培养状态

可以达到恒定,此时培养液中的细胞密度、营养物浓度、代谢副产物浓度不再随

时间变化。

图9 连续培养模式

第五,灌注培养,是在细胞培养过程中,以一定速率加入新鲜培养基,并以

相同速率排出上清液,通过反应器上附加的细胞截留系统将大多数活细胞与上清

液、死细胞及细胞碎片等分离,活细胞返回至反应器内继续培养的过程(图10)

图10 连续培养模式

在这个过程中,新鲜培养基不断加入,补充细胞消耗的营养物。培养上清液又

不断流出,降低了细胞生长过程中代谢副产物。产物在反应器中停留时间较短,

减少蛋白酶降解作用,有利于提高产物的收率。细胞截留在反应器中,维持较高

的细胞密度,有利于产物的分离纯化。下图中工人们正在进行灌注培养操作(图

11)。

图11 灌注培养操作

灌注培养的特点:可以从根本上解决营养物耗竭和代谢副产物积累之间的矛盾,

提高培养过程中的细胞密度,延长培养周期,提高目标产物产量,例如,凝血因

子VIII是第一个获得批准的采用灌注培养工艺生产的生物药物,生产周期达到

185 天,细胞产能与批式培养相比可提高30倍。采用灌注培养工艺,一个100-500

L的生物反应器就可达到批式培养3000-15000 L

生物反应器的生产能力。