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植物物种全基因组的测序与分析随着现代生物技术的不断发展和完善，越来越多的研究者开始将目光放在了植物的基因组测序和分析上。
植物物种的全基因组测序和分析可以帮助我们更好地了解植物的生长和发育规律，发现新的基因和蛋白质，促进植物育种和改良等方面的应用。
本文将从植物基因组测序和分析的意义、方法和应用等方面进行探讨。
一、植物基因组测序的意义植物基因组测序是现代遗传学和分子生物学领域的一项重要研究内容。
通过对植物基因组的测序和分析，可以为植物学、农业和生态学等方向的研究提供重要的基础数据。
首先，全基因组测序能够为我们提供大量的基因序列信息。
通过基因组测序，可以获得植物基因组的完整序列信息，为后续的基因鉴定、新基因发现、基因功能研究等提供基础，为植物学的研究提供了更全面的基础知识。
其次，基因组测序有助于发现新基因。
通过基因组测序，我们可以获取所有基因序列的信息，并进行比对分析，以发现新的、以前未知的基因，这对于数据驱动型的生物学研究具有重要的意义。
此外，基因组测序还可以促进生物信息学领域的发展。
基因组测序技术和生物信息学处理技术的结合，可以更好地研究基因与生态之间的关系，为生态学和植物保护提供更多的数据支撑。
二、植物基因组测序的方法目前，植物基因组测序主要采用Illumina高通量测序技术、 PacBio和Nanopore第三代测序技术、等温测序技术以及荧光原位杂交技术等方法。
其中，Illumina高通量测序技术是全球最为普遍的测序平台之一，其分辨率高、准确率高、数据量大，可以快速、高通量地测序，成为植物基因组测序的主流技术之一。
而PacBio和Nanopore第三代测序技术主要具有长读长和高准确性的特点，能够获得更全面的基因组序列信息，用于高质量的基因组组装。
等温测序和荧光原位杂交技术等方法也可以用于获得植物基因组信息。
在选择测序平台时，需要根据样品的特性、分辨率、数据量、费用等多个方面进行综合评估。
三、植物基因组测序的应用植物基因组测序的应用范围十分广泛，涉及到植物学、种质资源保护、农业种植和育种等多个领域。
野生羊茅基因组测序及遗传变异分析野生羊茅是草本植物中的一种，常生长在高海拔地区。
它具有一定的药用价值，对人体的神经系统有一定的保护作用，可用于缓解中枢神经系统疾病。
而野生羊茅的基因组测序及遗传变异分析，则是对其基因研究的重要组成部分。
首先我们需要了解的是什么是基因组测序。
基因组测序是指对一个生物体内全部基因组的DNA序列进行测序的一种技术手段。
这个过程需要先将野生羊茅的DNA提取出来，并进行打断、测序、拼接等步骤，综合结果就是一个完整的野生羊茅基因组测序图谱。
而野生羊茅基因组测序的结果可以为我们后续的研究带来很大的作用。
这是因为，我们可以通过对基因组测序数据的分析，获取野生羊茅所有基因的序列信息，并且可以进行各种遗传变异的分析。
这些分析结果可以为我们提供更多关于野生羊茅的遗传信息，比如哪些基因会导致野生羊茅在不同环境下呈现出不同的表型，进而有助于我们对野生羊茅的研究开展更深入的分析。
而在基因组测序的结果中，我们最常接触到的就是基因型（genotype）和表型（phenotype）。
基因型是指某个生物体存在的基因型式，而表型则是指这种基因型下，生物体呈现的形态或特征。
通过分析野生羊茅的基因组测序，我们可以获得野生羊茅不同基因型式下的表型和基因频率等信息，这对于后续的遗传变异分析非常有帮助。
遗传变异是指基因组内不同个体间隔离或交配等过程导致的一系列基因修改现象，可以分为单倍型和多倍性两类。
单倍型变异比较常见，是指来自母体和父体的基因不同而导致的基因变异，而多倍性变异则是指在有性繁殖过程中，基因组的某些区域复制了不止一次，在后代出现的基因里呈现出多个拷贝。
遗传变异分析可以帮助我们了解不同基因频率的变化与表型特征之间的关系，有助于我们在更深层次上了解到野生羊茅的基因遗传规律。
最后需要注意的是，野生羊茅基因组测序及遗传变异分析的研究数据还存在一定的限制。
这些限制包括基因组测序中序列拼接的不确定性、基因组大小和复杂度等。
拟南芥的基因组和功能分析拟南芥（Arabidopsis thaliana）是一种模式植物，因为它的基因组非常小，具有高度保守性和相对简单的生长环境。
这使得拟南芥成为研究植物基因组和生物学机制的理想模型。
拟南芥的基因组已被完整测序，它包含5条染色体和大约1.15亿个DNA碱基对。
与其他植物的基因组相比，拟南芥的基因组非常小，只有其他植物的1/10到1/25之间。
另外，拟南芥的基因组中的重复元件很少，这使得基因识别和注释变得更加容易。
拟南芥的基因组序列被广泛应用于各种基因研究，包括基因功能和表达分析、代谢组学、转录组学、蛋白质组学、细胞和发育生物学、信号转导和整个基因组水平的遗传和表观遗传研究。
通过对拟南芥基因组的分析，可以发现许多基因的拥有相似的序列、结构和功能，这使得预测其他植物的基因功能变得更容易。
另外，可以通过比较拟南芥与其他植物的基因组序列的异同，确定哪些基因是拟南芥特有的，哪些基因是其他植物所共有的。
拟南芥的基因组研究还有助于研究植物发育和适应的机制。
通过研究拟南芥基因组中与植物生长发育相关的基因，可以揭示植物发育的激素调节、蛋白质相互作用和转录因子网络等重要机制。
这些研究为植物育种、生产和药物开发提供了基础。
除了对基因组的研究，拟南芥的功能分析也被广泛应用于基因功能研究。
对拟南芥进行基因功能研究的方法包括T-DNA插入、CRISPR/Cas9基因编辑等。
这些方法允许破坏植物中的特定基因，以确定该基因在植物发育、代谢和适应等方面的重要性。
通过这些方法，已经确定了许多重要基因的作用，如卷心菜素合成途径中的几个关键酶、植物生长素受体、植物抗病性基因等。
这些研究为植物育种、生产和生物技术的开发提供了基础。
拟南芥的基因组和功能分析为植物研究提供了宝贵的工具和资源，也为植物学家和生物技术研究者提供了更深入的理解植物生物学和基因功能的契机。
植物基因组测序完成结果初步分析报告简介：本报告基于对植物基因组测序完成结果的初步分析，旨在提供对测序数据的解读和分析，以及相关发现和未来研究的建议。
背景：随着高通量测序技术的迅速发展，植物基因组测序成为现代生物学的重要研究领域之一。
植物基因组测序的完成为我们理解植物基因组的结构、功能和进化提供了重要的工具和资源。
本次测序旨在获得某植物的完整基因组序列，为进一步研究该植物的功能基因提供参考。
结果分析：1. 基因组大小估计：通过对测序数据的初步分析，我们得出了该植物的基因组大小估计。
基因组大小是指一个生物体所有基因组成的总长，是评估基因组复杂性和特征的重要指标。
根据我们的分析，该植物预计的基因组大小为XX Mb。
2. 基因注释：我们利用已知的植物基因组数据库和基因预测软件对测序数据进行了基因注释。
通过比对已有的基因序列与我们测序结果的相似性，我们成功注释了一部分的基因，包括编码蛋白质的基因和非编码RNA基因。
同时，我们还发现了一些新的基因，这些新基因可能与该植物在特定环境中的适应性具有重要的联系。
3. 基因家族和表达谱研究：我们进一步对注释的基因进行了家族分析，发现了一些具有重要功能和进化意义的基因家族。
家族分析的结果有助于我们深入理解该植物基因组的起源和进化。
同时，我们还通过测序数据的表达谱研究，了解了该植物不同组织和时间点上基因的表达模式，为进一步研究该植物的发育和生理过程提供了线索。
4. 功能注释和通路分析：我们还对测序结果的基因进行了功能注释和通路分析。
通过比对已知的功能数据库，我们成功注释了一部分基因的功能。
进一步地，通过通路分析，我们发现了一些显著富集的通路以及基因在这些通路中的参与度，有助于我们深入了解该植物的生理和代谢过程。
未来研究建议：1. 完整基因组组装：尽管我们完成了对该植物的基因组测序，但目前的结果仍存在一定的缺陷，例如基因组的碎片化程度和基因缺失的问题。
因此，今后的研究可以通过进一步优化测序方法和使用高级的组装算法来实现完整基因组的测序和组装。
这可能是最全面的已发表基因组物种列表！
少罗嗦，直接给网址：
/wiki/Lists_of_sequenced_genomes
点击文末评论区的“阅读原文”可直接在手机上查看，这里建议将链接复制到电脑端的浏览器查看。
打开后的页面是这样的，see，包括了8个列表：分别是动物（animal），古菌（archaea），细菌（bacteria），真菌（fungi）,植物（plant），质体（plastid），原生生物（protist）以及真核生物（eukaryote）的总列表。
比如点击植物对应的List，直接进入相应的页面，如下图。
页面包含一个分级目录，类似word的导航窗格，点击对应的分类，比如说点单子叶植物，可快速定位到当前页面相应的位置。
然后可单击列表变量名或者旁边的小三角会进行排序，如下图，比如可按物种名称排序，然后可快速定位到关注的一些物种（真菌和动物的展示方式比较简单）。
将鼠标光标移到物种的拉丁文学名上，会显示该物种相关的简介。
单击物种名称，会跳转到相应的百科词条，如下图。
点击年份的上标，会迅速定位到相应的文献，如下图。
点击引用文献的的doi或PMID号可直接跳转到当前文献的下载页面，如下图。
接着我们就可以下载该文献，进而追踪到基因组数据的下载链接。
当然，你也可以用拉丁名直接到Ensembl，NCBI，UCSC等数据库查找和下载相应物种的基因组数据。
今天的内容就到这里啦~。
植物基因组的测序与分析植物基因组的测序与分析，是一项重要的研究领域。
随着测序技术的发展，人们能够更深入地了解植物基因组的结构、功能和进化过程。
本文将介绍植物基因组测序的方法和分析的应用。
一、植物基因组测序的方法1. Sanger测序技术Sanger测序技术是最早发展的测序方法之一。
它基于DNA合成时添加的荧光标记的链终止剂，在PCR扩增的基础上进行，经过分离和扫描得到测序结果。
这种方法具有较高的准确性，但是成本较高且适用范围受限。
2. 下一代测序技术下一代测序技术的出现，使得植物基因组测序变得更加快速和经济。
常用的下一代测序技术包括 Illumina（HiSeq和MiSeq）、Ion Torrent和PacBio等。
这些方法具有高通量、高准确性和较低成本等优点，广泛应用于植物基因组的测序。
二、植物基因组测序的应用1. 基因功能研究植物基因组测序可以帮助研究人员识别基因组中的基因和调控元件，从而理解植物的生物学功能。
通过比对测序结果与已知的基因数据库，可以预测新的基因和非编码RNA，进一步研究其功能和调控机制。
2. 进化研究植物基因组测序可以揭示不同植物物种间的系统发育和进化关系。
通过比对多个植物基因组序列，可以研究它们之间的相似性和差异性，辨别出遗传变异和进化事件，深入了解植物的进化过程。
3. 基因组比较分析不同植物基因组序列的比较分析可以揭示基因组结构和功能的差异。
通过比较基因组序列中的基因家族、重复序列和单核苷酸多态性等特征，可以研究植物基因组的结构演化和功能分化。
4. 遗传改良与育种植物基因组测序可以加速植物的遗传改良和育种进程。
通过测序技术筛选出与农艺性状相关的基因，在育种中进行标记辅助选择和杂交设计，提高植物的抗逆性、产量和品质。
三、未来展望植物基因组的测序与分析在植物科研和农业领域具有广阔的应用前景。
随着测序技术的不断发展和降低成本，越来越多的植物基因组将被揭示出来，进一步推动植物生物学和农业科技的发展。
重要农作物基因组的测序和分析近年来，随着生物科技的不断发展，基因测序和分析成为了热门话题。
对于人类来说，基因测序可以帮助医学研究和疾病诊断。
而对于农作物来说，基因测序可以帮助农业生产更加高效、安全和可持续。
重要农作物的基因测序和分析已经成为了全世界科学家们共同的目标。
通过基因组测序和分析，科学家们可以更加深入地了解农作物的基因信息，进而对农作物进行育种改良和提高农作物抗病性等方面提供依据。
在农作物中，小麦、水稻、玉米、大豆等是被人们认为最重要的农作物。
这些农作物的基因测序和分析已经引起了全球科学家们的高度关注。
首先，小麦是世界上三大主要粮食作物之一，全球有超过20亿人依靠小麦作为主要食物来源。
近年来，科学家们通过对小麦基因组的测序研究，发现了许多与小麦相关的基因，推动了小麦的育种改良。
例如，通过对小麦的高密度基因图谱绘制和功能基因筛选，科学家们发现了水稻稻瘟病的抗性基因Lr67。
这个发现将为小麦抗病性育种提供依据。
与小麦相似，水稻也是全世界两亿人的主要食物来源。
水稻基因组的测序研究已经取得了重大突破。
例如，在水稻基因组测序的过程中，中国科学院遗传与发育生物学研究所的科学家发现了水稻重要基因——d1。
d1是一个调控水稻植株高度的基因，对于水稻育种改良具有重要作用。
通过筛选d1，科学家们最终培育出了高度相对较低、更加耐候性较强的水稻品种。
另外，大豆是世界上蛋白质最丰富的作物之一，广泛用来作为人类和家畜的食品和饲料。
目前，大豆基因组测序的工作也已经取得了很大的进展。
最近有研究发现，大豆的Si locus基因(fan输肽基转移酶基因)是大豆品质形成和营养价值的关键基因。
此外，作为世界上最广泛种植的作物之一，玉米的基因测序尤为重要。
通过对玉米基因组的测序研究，科学家们不仅可以了解到玉米的基因组信息，还可以挖掘出玉米中的药用植物成分、新型农药等有益成分。
玉米基因组测序研究还可以加速玉米病害抗性品种的育种改良过程。
植物基因组的测序和解析一、引言随着基因组学技术的飞速发展，对植物基因组的测序和解析也越来越深入。
通过对植物基因组的研究，不仅能够深入了解植物生长发育和适应环境的机理，也为植物育种和农业生产提供了重要的理论和技术支持。
本文将着重介绍植物基因组的测序和解析技术及其应用。
二、植物基因组测序对于植物基因组的测序，一般采用两种主要的方法：全基因组测序（WGS）和转录组测序。
目前已经完成了大量植物的全基因组测序工作，包括拟南芥、水稻、小麦、玉米、大豆、苹果等，这些测序数据为植物基因组研究提供了基础。
而转录组测序则可以在不同生物学阶段或不同环境条件下，对植物基因表达情况做出深入分析。
1. 全基因组测序WGS是指对物种整个基因组DNA序列的测序，包括基因区域和非基因区域。
全基因组测序技术通常会采用高通量测序平台，如Illumina、PacBio等。
基因组大小和复杂性是影响测序花费和时间的主要因素。
在植物基因组测序中，由于植物基因组的大小和复杂性较高，因此一般需要使用多平台组合测序的方式。
例如，可以先使用Illumina短读长度（150bp左右）测序高覆盖度，然后用PacBio长读长度（10kb以上）来填补基因组中的重复区域、插入元件和复杂重读区域等。
2. 转录组测序转录组测序是指对某个生物在特定环境或生物阶段的mRNA进行测序，一般分为总RNA测序和mRNA测序两种。
总RNA测序可以同时得到注释基因和非编码RNA等的全面信息，而mRNA 测序则会选择性地测序已经被转录核糖体识别和选择的信息。
此外，转录组测序也包括甲基化RNA的测序，可以获得DNA甲基化的空间分布和转录水平的相关性等信息。
三、植物基因组解析植物基因组测序仅仅是一个开始，如何处理和分析这些海量的基因组数据，才能更好地理解植物基因组结构与功能呢？这就需要应用各种生物信息学分析方法来进行解析，包括基因注释、结构预测、基因家族分析、进化分析、基因功能预测等。
植物基因组研究的现状与前景植物基因组研究是一门涉及植物遗传信息的学科，通过对植物基因组的理解，可以深入研究植物的进化、功能和形态特征，从而推动农业、生物技术和生态保护领域的发展。
随着高通量测序技术的不断发展和基因组学研究的兴起，植物基因组研究已经取得了很多重要的突破。
本文将介绍植物基因组研究的现状和前景，并展望未来的发展方向。
目前，植物基因组研究已经取得了很多重要的进展。
通过测序和分析多个植物基因组，我们已经了解了植物基因组的组成和结构。
例如，2024年，植物学家成功测序了拟南芥（Arabidopsis thaliana）的基因组，这是第一个全基因组已知的植物。
这项研究为我们提供了了解植物演化和适应环境的基础知识。
此外，研究人员还测序了其他重要的作物基因组，如水稻、小麦、玉米和大豆等，这些研究为改良农作物品质和产量提供了重要的信息。
在现代植物基因组研究中，高通量测序技术是最重要的工具之一、高通量测序技术的发展使得我们能够更快速、更经济地测序整个植物基因组。
此外，通过比较多个植物基因组的序列，我们可以发现共有的基因和结构，揭示它们之间的关联和功能。
另一个重要的研究方向是功能基因组学。
功能基因组学研究主要关注基因组中的功能基因和其在植物生理和发育中的作用。
通过分析植物基因的表达模式和突变体，我们可以识别和研究与植物重要生理过程相关的基因。
例如，通过比较表达模式，我们可以了解哪些基因在植物对逆境环境的适应中起关键作用。
此外，通过制作功能基因组饼图，我们可以将基因组中的基因分成不同的功能分类，了解每个功能类别的基因在植物生长发育中的作用。
未来，植物基因组研究仍将有很大的发展空间。
首先，随着测序技术的不断进步，我们将能够更快地测序更多的植物基因组。
这将使我们能够更好地了解植物基因组的差异和演化。
此外，随着单细胞测序和单细胞组学的发展，我们将能够更好地了解不同的细胞类型和组织在植物发育和功能中的作用。
此外，植物基因组研究还将与其他学科进行跨学科的合作，如计算机科学、生物信息学和生物化学等，以提高数据分析和解释的能力。
水稻、玉米、大豆、甘蓝、白菜、高粱、黄瓜、西瓜、马铃薯、番茄、拟南芥、杨树、麻风树、苹果、桃、葡萄、花生拟南芥籼稻粳稻葡萄番木瓜高粱黄瓜玉米栽培大豆苹果蓖麻野草莓马铃薯白菜野生番茄番茄梨甜瓜香蕉亚麻大麦普通小麦西瓜甜橙陆地棉梅毛竹桃芝麻杨树麻风树卷柏狗尾草属花生甘蓝物种基因组大小和开放阅读框文献Sesamum indicum L. Sesame 芝麻（2n = 26）293.7 Mb, 10,656 orfs 1Oryza brachyantha短药野生稻261 Mb, 32,038 orfs 2Chondrus crispus Red seaweed爱尔兰海藻105 Mb, 9,606 orfs 3Pyropia yezoensis susabi-nori海苔43 Mb, 10,327 orfs 4Prunus persica Peach 桃226.6 of 265 Mb 27,852 orfs 5Aegilops tauschii 山羊草（DD）4.23 Gb (97% of the 4.36), 43,150 orfs 6 Triticum urartu 乌拉尔图小麦（AA）4.66 Gb (94.3 % of 4.94 Gb, 34,879 orfs 7 moso bamboo (Phyllostachys heterocycla) 毛竹2.05 Gb (95%) 31,987 orfs 8Cicer arietinum Chickpea鹰嘴豆~738-Mb，28,269 orfs 9 520 Mb (70% of 740 Mb), 27,571 orfs 10Prunus mume 梅280 Mb, 31,390 orfs 11Gossypium hirsutum L.陆地棉2.425 Gb 12Gossypium hirsutum L. 雷蒙德氏棉761.8 Mb 13Citrus sinensis甜橙87.3% of ~367 Mb, 29,445 orfs 14甜橙367 Mb 15Citrullus lanatus watermelon 西瓜353.5 of ~425 Mb (83.2%) 23,440 orfs 16 Betula nana dwarf birch，矮桦450 Mb 17Nannochloropsis oceanica CCMP1779微绿球藻（产油藻类之一）28.7 Mb，11,973 orfs 18Triticum aestivum bread wheat普通小麦17 Gb, 94,000 and 96,000 orfs 19 Hordeum vulgare L. barley 大麦1.13 Gb of 5.1 Gb，26,159 high confidence orfs，53,000 low confidence orfs 20Gossypium raimondii cotton 雷蒙德氏棉D subgenome,88% of 880 Mb 40,976 orfs 21Linum usitatissimum flax 亚麻302 mb (81%), 43,384 orfs 22Musa acuminata banana 香蕉472.2 of 523 Mb, 36,542 orfs 23Cucumis melo L. melon 甜瓜375 Mb（83.3%）27,427 orfs 24Pyrus bretschneideri Rehd. cv. Dangshansuli 梨（砀山酥梨）512.0 Mb (97.1%), 42,812 orfs 25,26Solanum lycopersicum 番茄760/900 Mb，34727 orfs 27S. pimpinellifolium LA1589野生番茄739 MbSetaria 狗尾草属（谷子、青狗尾草）400 Mb，25000-29000 orfs 28,29 Cajanus cajan pigeonpea木豆833 Mb，48,680 orfs 30Nannochloropis gaditana 一种海藻~29 Mb, 9,052 orfs 31Medicago truncatula蒺藜苜蓿350.2 Mb, 62,388 orfs 32Brassica rapa 白菜485 Mb 33Solanum tuberosum 马铃薯0.73 Mb,39031 orfs 34Thellungiella parvula条叶蓝芥13.08 Mb 29,338 orfs 35Arabidopsis lyrata lyrata 玉山筷子芥? 183.7 Mb, 32670 orfs 36Fragaria vesca 野草莓240 Mb，34,809 orfs 37Theobroma cacao 可可76% of 430 Mb, 28,798 orfs 38Aureococcus anophagefferens褐潮藻32 Mb, 11501 orfs 39Selaginella moellendorfii江南卷柏208.5 Mb, 34782 orfs 40Jatropha curcas Palawan麻疯树285.9 Mb, 40929 orfs 41Oryza glaberrima 光稃稻（非洲栽培稻）206.3 Mb (0.6x), 10 080 orfs (>70% coverage) 42Phoenix dactylifera 棕枣380 Mb of 658 Mb, 25,059 orfs 43Chlorella sp. NC64A小球藻属40000 Kb, 9791 orfs 44Ricinus communis蓖麻325 Mb, 31,237 orfs 45Malus domestica (Malus x domestica)苹果742.3 Mb 46Volvox carteri f. nagariensis 69-1b一种团藻120 Mb, 14437 orfs 47 Brachypodium distachyon 短柄草272 Mb，25,532 orfs 48Glycine max cultivar Williams 82栽培大豆1.1 Gb, 46430 orfs 49Zea mays ssp. Mays Zea mays ssp. Parviglumis Zea mays ssp. Mexicana Tripsacum dactyloides var. meridionale 无法下载附表50Zea mays mays cv. B73玉米2.06 Gb, 106046 orfs 51Cucumis sativus 9930 黄瓜243.5 Mb, 63312 orfs 52Micromonas pusilla金藻21.7 Mb, 10248 orfs 53Sorghum bicolor 高粱697.6 Mb, 32886 orfs 54Phaeodactylum tricornutum 三角褐指藻24.6 Mb, 9479 orfs 55Carica papaya L. papaya 番木瓜271 Mb (75%), 28,629 orfs 56 Physcomitrella patens patens小立碗藓454 Mb, 35805 orfs 57Vitis vinifera L. Pinot Noir, clone ENTAV 115葡萄504.6 Mb, 29585 orfs 58 Vitis vinifera PN40024葡萄475 Mb 59Ostreococcus lucimarinus绿色鞭毛藻13.2 Mb, 7640 orfs 60 Chlamydomonas reinhardtii 莱茵衣藻100 Mb, 15256 orfs 61Populus trichocarpa黑三角叶杨550 Mb, 45000 orfs 62Ostreococcus tauri 绿藻12.6 Mb, 7892 orfs 63Oryza sativa ssp. japonica 粳稻360.8 Mb, 37544 orfs 64Thalassiosira pseudonana 硅藻25 Mb, 11242 orfs 65Cyanidioschyzon merolae 10D红藻16.5 Mb, 5331 orfs 66Oryza sativa ssp. japonica粳稻420 Mb, 50000 orfs 67Oryza sativa L. ssp. Indica籼稻420 Mb, 59855 orfs 68Guillardia theta -蓝隐藻，551 Kb, 553 orfs 69Arabidopsis thaliana Columbia拟南芥119.7 Mb, 31392 orfs 70参考文献1 Zhang, H. et al. Genome sequencing of the important oilseed crop Sesamum indicum L. Genome Biology 14, 401 (2013).2 Chen, J. et al. Whole-genome sequencing of Oryza brachyantha reveals mechanisms underlying Oryza genome evolution. Nat Commun 4, 1595 (2013).3 Collén, J. et al. Genome structure and metabolic features in the red seaweed Chondrus crispus shed light on evolution of the Archaeplastida. Proceedings of the National Academy of Sciences 110, 5247-5252 (2013).4 Nakamura, Y. et al. The first symbiont-free genome sequence of marine red alga, susabi-nori Pyropia yezoensis. PLoS ONE 8, e57122 (2013).5 Verde, I. et al. The high-quality draft genome of peach (Prunus persica) identifies unique patterns of genetic diversity, domestication and genome evolution. Nature Genetics advance online publication (2013).6 Jia, J. et al. Aegilops tauschii draft genome sequence reveals a gene repertoire for wheat adaptation. Nature 496, 91-95 (2013).7 Ling, H.-Q. et al. Draft genome of the wheat A-genome progenitor Triticum urartu. Nature 496, 87-90 (2013).8 Peng, Z. et al. The draft genome of the fast-growing non-timber forest species moso bamboo (Phyllostachys heterocycla). Nature Genetics 45, 456-461 (2013).9 Jain, M. et al. A draft genome sequence of the pulse crop chickpea (Cicer arietinum L.). Plant Journal, DOI: 10.1111/tpj.12173 (2013).10 Varshney, R. K. et al. Draft genome sequence of chickpea (Cicer arietinum) provides a resource for trait improvement. Nat Biotech 31, 240-246 (2013).11 Zhang, Q. et al. The genome of Prunus mume. Nat Commun 3, 1318 (2012).12 Lee, M.-K. et al. Construction of a plant-transformation-competent BIBAC library and genome sequence analysis of polyploid Upland cotton (Gossypium hirsutum L.). BMC Genomics 14, 208 (2013).13 Paterson, A. H. et al. Repeated polyploidization of Gossypium genomes and the evolution of spinnable cotton fibres. Nature 492, 423-427 (2012).14 Xu, Q. et al. The draft genome of sweet orange (Citrus sinensis). Nat Genet 45,59–66 (2013).15 Belknap, W. R. et al. Characterizing the citrus cultivar Carrizo genome through 454 shotgun sequencing. Genome 54, 1005-1015 (2011).16 Guo, S. et al. The draft genome of watermelon (Citrullus lanatus) and resequencing of 20 diverse accessions. Nat Genet 45, 51–58 (2013).17 Wang, N. et al. Genome sequence of dwarf birch (Betula nana) and cross-species RAD markers. Mol Ecol Article first published online: 21 NOV 2012 DOI:10.1111/mec.12131 (2012).18 Vieler, A. et al. Genome, functional gene annotation, and nuclear transformation of the heterokont oleaginous alga Nannochloropsis oceanica CCMP1779. PLoS Genet 8, e1003064 (2012).19 Brenchley, R. et al. Analysis of the bread wheat genome using whole-genome shotgun sequencing. Nature 491, 705-710 (2012).20 Consortium, T. I. B. G. S. A physical, genetic and functional sequence assembly of the barley genome. Nature 491, 711–716 (2012).21 Wang, K. et al. The draft genome of a diploid cotton Gossypium raimondii. Nature Genetics 44, 1098–1103 (2012).22 Wang, Z. et al. The genome of flax (Linum usitatissimum) assembled de novo from short shotgun sequence reads. The Plant Journal 72, 461-473 (2012).23 D'Hont, A. et al. The banana (Musa acuminata) genome and the evolution of monocotyledonous plants. Nature 488, 213–217 (2012).24 Garcia-Mas, J. et al. The genome of melon (Cucumis melo L.). PNAS 109, 11872-11877 (2012).25 reporter, A. G. s. Consortium releases pear genome data. GenomeWeb Daily News (2012).26 Wu, J. et al. The genome of pear (Pyrus bretschneideri Rehd.). GenomeRes.Published in Advance November 13, 2012, doi:10.1101/gr.144311.112 (2012).27 Consortium, T. T. G. The tomato genome sequence provides insights into fleshy fruit evolution. Nature 485, 635–641 (2012).28 Bennetzen, J. L. et al. Reference genome sequence of the model plant Setaria. Nat Biotech 30, 555-561 (2012).29 Zhang, G. et al. Genome sequence of foxtail millet (Setaria italica) provides insights into grass evolution and biofuel potential. Nat Biotech 30, 549-554 (2012).30 Varshney, R. K. et al. Draft genome sequence of pigeonpea (Cajanus cajan), an orphan legume crop of resource-poor farmers. Nat Biotech 30, 83-89 (2012).31 Radakovits, R. et al. Draft genome sequence and genetic transformation of the oleaginous alga Nannochloropis gaditana. Nat Commun 3, 686 (2012).32 Young, N. D. et al. The Medicago genome provides insight into the evolution of rhizobial symbioses. Nature 480, 520–524 (2011).33 Wang, X. et al. The genome of the mesopolyploid crop species Brassica rapa. Nat. Genet. 43, 1035-1039 (2011).34 Consortium, T. P. G. S. Genome sequence and analysis of the tuber crop potato. Nature 475, 189-195 (2011).35 Dassanayake, M. et al. The genome of the extremophile crucifer Thellungiella parvula. Nat. Genet. 43, 913-918 (2011).36 Hu, T. T. et al. The Arabidopsis lyrata genome sequence and the basis of rapid genome size change. Nat. Genet. 43, 476-481 (2011).37 Shulaev, V. et al. The genome of woodland strawberry (Fragaria vesca). Nat. Genet. 43, 109-116 (2011).38 Argout, X. et al. The genome of Theobroma cacao. Nat. Genet. 43, 101-108 (2011).39 Gobler, C. J. et al. Niche of harmful alga Aureococcus anophagefferens revealed through ecogenomics. PNAS 108, 4352-4357 (2011).40 Banks, J. A. et al. The selaginella genome identifies genetic changes associated with the evolution of vascular plants. Science 332, 960-963 (2011).41 Sato, S. et al. Sequence analysis of the genome of an oil-bearing tree, Jatropha curcas L. DNA Res. 18, 65-76 (2011).42 Sakai, H. et al. Distinct evolutionary patterns of Oryza glaberrima deciphered by genome sequencing and comparative analysis. Plant Journal 66, 796-805 (2011).43 Al-Dous, E. K. et al. De novo genome sequencing and comparative genomics of date palm (Phoenix dactylifera). Nat Biotech 29, 521-527 (2011).44 Blanc, G. et al. The Chlorella variabilis NC64A genome reveals adaptation to photosymbiosis, coevolution with viruses, and cryptic sex. Plant Cell 22, 2943-2955 (2010).45 Chan, A. P. et al. Draft genome sequence of the oilseed species Ricinus communis. Nat Biotech 28(951-956 (2010).46 Velasco, R. et al. The genome of the domesticated apple (Malus x domestica Borkh.). Nat. Genet. 42, 833-839 (2010).47 Prochnik, S. E. et al. Genomic analysis of organismal complexity in the multicellular green alga Volvox carteri. Science 329, 223-226 (2010).48 Initiative, T. I. B. Genome sequencing and analysis of the model grass Brachypodium distachyon. Nature 463, 763-768 (2010).49 Schmutz, J. et al. Genome sequence of the palaeopolyploid soybean. Nature 463, 178-183 (2010).50 Hufford, M. B. et al. Comparative population genomics of maize domestication and improvement. Nat Genet 44, 808-811 (2012).51 Wei, F. et al. The physical and genetic framework of the maize B73 genome. PLoS Genet 5, e1000715 (2009).52 Huang, S. et al. The genome of the cucumber, Cucumis sativus L. Nat. Genet. 41, 1275-1281 (2009).53 Worden, A. Z. et al. Green evolution and dynamic adaptations revealed by genomes of the marine picoeukaryotes Micromonas. Science 324, 268-272 (2009).54 Paterson, A. H. et al. The Sorghum bicolor genome and the diversification of grasses. Nature 457, 551-556 (2009).55 Bowler, C. et al. The Phaeodactylum genome reveals the evolutionary history of diatom genomes. Nature 456, 239-244 (2008).56 Ming, R. et al. The draft genome of the transgenic tropical fruit tree papaya (Carica papaya Linnaeus). Nature 452, 991-996 (2008).57 Rensing, S. A. et al. The Physcomitrella genome reveals evolutionary insights into the conquest of land by plants. Science 319, 64-69 (2008).58 Velasco, R. et al. A high quality draft consensus sequence of the genome of a heterozygous grapevine variety. PLoS One 2, e1326 (2007).59 Jaillon, O. et al. The grapevine genome sequence suggests ancestral hexaploidization in major angiosperm phyla. Nature 449, 463-467 (2007).60 Palenik, B. et al. The tiny eukaryote Ostreococcus provides genomic insights into the paradox of plankton speciation. PNAS 104, 7705-7710 (2007).61 Merchant, S. S. et al. The Chlamydomonas genome reveals the evolution of key animal and plant functions. Science 318, 245-250 (2007).62 Tuskan, G. A. et al. The genome of black cottonwood, Populus trichocarpa (Torr. & Gray). Science 313, 1596-1604 (2006).63 Derelle, E. et al. Genome analysis of the smallest free-living eukaryote Ostreococcus tauri unveils many unique features. PNAS 103, 11647-11652 (2006). 64 Project, I. R. G. S. The map-based sequence of the rice genome. Nature 436,793-800 (2005).65 Armbrust, E. V. et al. The genome of the diatom Thalassiosira Pseudonana: ecology, evolution, and metabolism. Science 306, 79-86 (2004).66 Matsuzaki, M. et al. Genome sequence of the ultrasmall unicellular red alga Cyanidioschyzon merolae 10D. Nature 428, 653-657 (2004).67 Goff, S. A. et al. A draft sequence of the rice genome (Oryza sativa L. ssp. japonica). Science 296, 92-100 (2002).68 Yu, J. et al. A draft sequence of the rice genome (Oryza sativa L. ssp. indica). Science 296, 79-92 (2002).69 Douglas, S. et al. The highly reduced genome of an enslaved algal nucleus. Nature 410, 1091-1096 (2001).70 Kaul, S. et al. Analysis of the genome sequence of the flowering plant Arabidopsis thaliana. Nature 408, 796-815 (2000).。
