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兽医药物剂型学中的动物药物剂型与给药途径兽医药物剂型学旨在研究动物药物的剂型设计和给药途径，旨在提高药物的疗效和安全性，确保药物在动物体内得到合适的吸收和分布。
本文将重点讨论动物药物剂型的分类和常用的给药途径。
一、动物药物剂型分类1. 固体剂型固体剂型主要包括片剂、颗粒剂和粉剂等。
这些剂型适用于口服给药，常见于禽类和家畜的治疗中。
由于动物对固体剂型的接受度较高，这些剂型易于使用和管理。
2. 液体剂型液体剂型主要包括溶液、悬浮剂和乳剂等。
这些剂型适用于口服和注射给药。
液体剂型可根据生物利用度和药物稳定性的要求进行调整，以满足特定动物的需求。
3. 气体剂型气体剂型包括喷雾剂和吸入剂。
这些剂型主要用于治疗呼吸系统疾病。
喷雾剂和吸入剂可通过喷洒和雾化的方式将药物输送到动物的呼吸系统，提高药物的局部疗效。
二、常用的给药途径1. 口服给药口服给药是最常见和方便的给药途径之一。
通过口服给药，药物可通过消化道被吸收并进入血液循环系统。
口服给药具有简单易行、剂型多样的优点，但受到动物进食和排除物的干扰，会影响药物吸收的速度和效果。
2. 注射给药注射给药是将药物直接注射到动物体内的给药途径。
常见的注射途径包括皮下注射、肌肉注射和静脉注射。
注射给药可以确保药物的迅速吸收和高生物利用度，适用于急救和快速治疗等情况。
3. 外用给药外用给药主要包括局部涂敷、贴剂和滴眼剂等。
这些给药途径用于治疗皮肤病、眼科疾病和外伤等。
外用给药可以直接作用于患处，减少药物在全身的分布，有利于局部病变的治疗。
4. 粘膜给药粘膜给药包括口腔粘膜、鼻腔和阴道等给药途径。
这些给药途径可通过黏膜吸收将药物输送到血液循环中，常用于治疗口腔疾病、呼吸系统疾病和生殖系统疾病等。
5. 饮水给药饮水给药是将药物加入动物饮用水中进行给药，适用于养殖动物和群体动物的治疗。
饮水给药的优点是易于操作和大规模使用，但受到动物对水味的选择和饮水量的变化影响。
总结：兽医药物剂型学中的动物药物剂型与给药途径的研究旨在提高动物药物的效果和安全性。
实验动物分组和标记编号方法作者：时间：2008-05-15 14:50:29 来源: 生物谷浏览评论一、分组（一）分组原则实验动物分组应严格按照随机分组的原则进行，使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组中去，尽量避免人为因素对实验造成的影响。
（二）建立对照组实验动物分组时应特别注意建立对照组。
对照组可分自身对照组和平行对照组。
1．自身对照组自身对照是把实验动物本身在动物实验前、后两阶段的各项相关数据，分别作为对照组和实验组的结果并进行统计学处理。
2．平行对照组平行对照组分正对照组和负对照组（空白对照组）两种。
正对照组是对实验动物实施与实验动物相同但排除了所要观察的目的因子（如治疗手段或药物）的处理，负对照组则不作任何处理，这种方法就是平行对照组。
例如要观察某种药物的药效，对实验组动物采用肌肉注射的给药方法；正对照组动物同样进行肌肉注射，但注射的不是药物而是同等剂量的生理盐水，以便排除肌肉注射生理盐水可能产生的影响；负对照组动物则不进行肌肉注射，并与实验组动物和正对照组动物在相同的环境和条件下饲养，作为空白对照。
二、标记编号对随机分组后的实验动物进行标记编号，是动物实验准备工作中相当重要的一项工作。
标记编号方法应保证编号不对动物生理或实验反应产生影响，且号码清楚、易认、耐久和适用。
目前常用的标记编号方法有染色法、耳孔法、烙印法、挂牌法等标记编号方式。
此外还有针刺法、断趾编号法、剪尾编号法、被毛剪号法、笼子编号法等。
（一）染色法染色法是用化学药品在实验动物身体明显的部位，如被毛、四肢等处进行涂染，以染色部位、颜色不同来标记区分实验动物，是最常用、最易掌握的经济犯罪分子方法。
1．常用染色剂（1）3% ~ 5%苦味酸溶液，可染成黄色。
（2）0.5% 中性红或品红溶液,可染成红色。
（3）2%硝酸银溶液，可染成咖啡色（涂染后在可见光下暴露十分钟）。
（4）煤焦油酒精溶液，可染成黑色。
2．染色方法染色法适用于被毛白色的实验动物如大白鼠、小白鼠等。
实验一实验动物给药途径和方法一、动物的编号、捉拿和固定。
1、动物的编号犬、兔等动物可用特制的号码牌固定于耳。
白色家兔和小动物可用3-5%的黄色苦味酸溶液涂于毛上标号。
如编号1-10号时，将小白鼠背部分前肢、腰部、后肢的左、中、右部共九个区域，从右到左1-9号，第10号不涂黄色(图1-1)如加上其它颜色的染料还可进行1-100号和1-1000号等更多编号。
图1-1 小白鼠背部编号图1-2 小白鼠双手捉持法（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）2、动物的捉拿和固定①小鼠：右手抓住其尾，放在实验台上或鼠笼铁纱网上，在其向前爬时，左手拇指及食指沿其背抓住两耳及头颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住鼠尾固定。
另一抓法是只用手，用食指和拇指抓住鼠尾后再用小指和掌部夹住鼠尾，以拇指及食指捏住其颈部皮肤。
前一种方法易学，后一种方法便于快速捉拿。
（见图1-2，1-3）图1-3 小白鼠双手捉持法（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）②大鼠：以右手或持夹子夹住尾巴，左手戴上防护手套固定头部防止被咬，应避免用力过大造成大鼠窒息死亡。
根据实验需要麻醉或固定大鼠于鼠笼内或用绳绑其四肢固定于大鼠手术板上。
③豚鼠：以右手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢在豚鼠头与右手拇指与食指之间，轻轻扣住颈胸部，右手抓住两后肢(对体重较大的豚鼠则可托起其臀部)，使腹部向上。
④兔：用手抓起兔脊背近后颈部皮肤，手抓面积应尽量大些。
以另一手托起兔的臀部。
将兔仰卧固定时，一手抓住颈部皮肤，另一只手顺着腹部抚摸至膝关节处压住关节。
另一人将绳子用活结捆绑兔的四肢，使兔腹部向上固定在兔手术台上。
头部则用兔头固定夹固定，也可用棉线将兔的门牙固定于兔手术台上的柱子上，后者更常用(图1-4)。
图1-4 家兔捉持法（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）二、实验动物的去毛动物去毛是手术野的皮肤准备之一。
实验动物给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。
给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。
（一）皮下注射注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。
皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。
兔在背部或耳根部注射。
蛙可在脊背部淋巴腔注射。
（二）皮内注射皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
（三）肌肉注射肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。
注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。
给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。
（四）腹腔注射用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入皮下，使针头向前推 0.5～1.0cm，再以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液（图1），为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。
若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。
图1小鼠腹腔注射方法（五）静脉注射1．兔：兔耳部血管分布清晰。
兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。
内缘静脉深不易固定，故不用。
外缘静脉表浅易固定，常用。
先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液注入（图2），然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
实验动物编号及标记方法动物在实验前常常需要做适当的分组，那么就要将其标记使各组加以区别。
标记的方法很多，良好的标记方法应满足标号清晰、耐久、简便、适用的要求。
常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方法。
一、颜料涂染这种标记方法在实验室最常使用，也很方便，使用的颜料一般有3％～5％苦味酸溶液(黄色)，2％硝酸银(咖啡色)溶液和0.5％中性品红(红色)等，标记用毛笔或棉签蘸取上述溶液，在动物体的不同部位涂上斑点，以示不同号码。
编号的原则是，先左后右，从上到下，一段把涂在左前腿上的计为1号，左侧腹部计为2号，左后腿为3号，头顶部计为4号，腰背部为5号，尾基部为6号，右前腿为7号，右侧腹部计为8号，右后腿为9号。
若动物编号超过10或更大数字时，可使用上述两种不同颜色的溶液，即把一种颜色作为个位数，另一位颜色作为十位数，这种交互使用可编到99号，假如把红的记为十位数，黄的记为个位数，那么右后腿黄斑，头顶红斑，则表示是49号鼠(图1-18)，其余类推。
该方法对于实验周期短的实验动物较合适，时间长了染料易退掉；对于哺乳期的子畜也不适合，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。
图1-18 颜色被毛涂擦标记法二、烙印法用刺数钳在动物耳上刺号码，然后用棉签蘸着溶在酒精中的黑墨在刺号上加以涂抹，烙印前最好对烙印部位预先用酒精消毒。
三、号牌法用金属制的牌号固定于实验动物的耳上。
大动物可系于颈上。
对猴、犬、猫等大动物有时可不做特别标记，只记录它们的外表和毛色即可。
四、剪毛法用剪毛刀在动物一侧或背部剪出号码，此法编号清楚可靠，但该法只适用于大、中型动物，如犬、兔等的短期观察。
五、打号法用刺数钳(又称耳号钳)将号码打在动物耳朵上。
打号前用蘸有酒精的棉球擦净耳朵，用耳号钳刺上号码，然后在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。
该法适用于耳朵比较大的兔、犬等动物。
六、针刺法用七号或八号针头蘸取少量碳素墨水，在耳部、前后肢以及尾部等处刺入皮下，在受刺部位留有一黑色标记。
常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。
由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。
一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。
1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。
灌胃量0.2～0.5ml/10g。
胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。
注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。
2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。
灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。
灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。
灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。
先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。
4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。
具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。
此种操作较为简便。
5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。
实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。
