下载文档原格式
移者27例,占81.8%(27/33),共发现转移灶187处,平均每例检出转移灶5.7处。
33例骨转移者中,手术发现腋窝淋巴结转移者18例占54.5%(18/33)。
转移灶出现在原发灶同侧骨骼和中轴骨骼25例,占75.8%(25/33)。
33例(187处)乳腺癌骨转移的发生部位:肋骨36.4%,脊椎27.3%,骨盆12.1%,肩胛骨、锁骨12.1%,胸骨9.1%,四肢骨6.1%,颅骨6.1%。
33例骨转移患者中,有20例无骨痛表现,占60.7% (20/33)。
3 讨论乳腺癌为最常发生骨转移的恶性肿瘤之一,其转移途径有局部扩展、淋巴转移和血行转移等,骨转移多为血行转移所致。
骨转移的发生主要与下列因素有关:肿瘤的临床分期;肿瘤的病理分型;术前有无腋窝淋巴结肿大或术后腋淋巴结转移数量(据报道,乳腺癌骨转移发生与腋淋巴结转移明显相关[1]);随访的时间长短;不同的检查方法等。
本组33例骨转移患者中,转移灶出现在原发灶同侧骨骼和中轴骨骼25例,其原因是恶性肿瘤细胞通过B aton椎静脉丛转移至脊椎、肋骨和骨盆等躯干骨,且躯干骨总面积远大于四肢骨、头颅骨,因而受累几率较大[2]。
本研究中,乳腺癌骨转移的发生部位,以肋骨、脊椎、骨盆、肩胛骨、锁骨、胸骨等为多见。
本组33例骨转移患者中,无骨痛症状者20例,表明骨痛并不是早期骨转移的临床表现。
33例骨转移患者中,早期部分患者为无阳性病灶或仅为单发性病灶;定期复查后,发现病灶或病灶增多。
以往认为肿瘤的血行转移多发生在晚期,研究发现有些早期乳腺癌已有血行转移[3]。
因此,乳腺癌患者术前应做基础显像(即术前显像),不仅可以为治疗方案的选择提供重要信息,也可以作为以后随访对比的基础;一般情况下,术后最初2年内应每半年进行骨显像1次;2年后,无症状患者应每年随访一次,有症状的患者随访应增加。
核素骨显像可以早期诊断骨转移,这对乳腺癌治疗方案的制订及预后判断、疗效评估均有重要意义。
采集检验标本存在的问题与改进措施采集检验标本是医疗工作中非常重要的环节，它直接影响到检验结果的准确性以及患者的诊断和治疗。
然而，在实际操作中，采集检验标本存在一些问题，这些问题可能导致检验结果不准确，甚至对患者产生严重的后果。
本文将对采集检验标本存在的问题进行分析，并提出相应的改进措施。
一、存在的问题1. 标本采集不规范在实际操作中，部分医护人员对标本采集的知识掌握不熟练，导致采集的标本量不足、采集时间不当、采集部位不准确等问题，这些问题都会影响检验结果的准确性。
2. 标本储存和运输不当采集后的标本需要正确的储存和运输，以保持其稳定性。
然而，部分医疗机构在标本储存和运输过程中，未能严格按照规定操作，如温度控制不当、储存时间过长等，这些问题可能导致标本质量下降，影响检验结果。
3. 标本污染标本污染是采集检验标本过程中常见的问题，主要包括外源性污染和内源性污染。
外源性污染如细菌、病毒等微生物的污染，内源性污染如采集器具的污染等。
标本污染会影响检验结果的准确性，甚至导致误诊。
4. 信息记录不准确采集检验标本时，标本的标识、采集时间、采集部位等信息需准确记录，以便后续的检验工作。
然而，在实际操作中，部分医护人员对信息记录不够重视，导致信息记录不准确、不完整，影响检验结果的判断。
5. 患者配合度不高在采集检验标本时，患者的配合度对检验结果具有重要影响。
然而，部分患者对采集标本的过程不了解，产生恐惧、焦虑等情绪，导致标本采集困难，影响检验结果的准确性。
二、改进措施1. 加强医护人员培训医疗机构应加强对医护人员的培训，提高他们对标本采集知识的掌握程度，确保标本采集的规范性和准确性。
2. 完善标本储存和运输设施医疗机构应完善标本储存和运输设施，确保标本在储存和运输过程中的稳定性。
同时，要加强对标本的监管，确保标本在规定时间内完成检验。
3. 严格控制标本污染医疗机构应加强标本采集、储存和运输过程中的污染控制，减少外源性污染和内源性污染。
采血存在问题及整改措施在我们日常生活中，采血这件事情可能看起来平常，但实际上它背后可是有不少的学问和细节。
说到这，大家可别以为采血就像喝水那么简单，没准一不小心就给你闹出点小麻烦来。
那么，采血过程中存在哪些问题呢？而又该怎么整改呢？咱们慢慢聊聊。
1. 采血过程中常见的问题1.1 采血前的准备不足首先，大家都知道，采血前的准备可是相当重要的。
有些小伙伴儿为了省事，随便吃点东西就来献血了，结果一上台，护士一看：“这血糖偏高啊，亲！你这是要上天吗？”其实，采血前吃点清淡的，保持充足的水分，才能让我们的小伙伴们在采血时顺利得多。
否则，来了个“血糖飙升”，采血就成了一场“艰难战斗”。
1.2 消毒措施不严谨再者，消毒这事儿也是马虎不得。
有时候护士小姐姐可能因为工作繁忙，稍微放松了警惕，消毒不够到位。
大家想想，这可不是小事，要是感染了，后果可就严重了。
因此，保持消毒的严谨性，绝对是采血工作的重中之重。
就像老话说的：“千里之行，始于足下。
”这一点可不能掉以轻心。
2. 采血操作中的问题2.1 操作不当导致的疼痛然后，咱们得提到采血的操作了。
有时候，护士可能因为技术不熟练或者紧张，针头进得不够精准，结果一抽，疼得让人直呼“妈妈”。
其实，熟练的操作不仅能减轻疼痛，还能提高采血效率。
为了保证大家的体验，定期进行培训和演练，是必不可少的。
2.2 血样标记错误还有一种情况就是血样标记出错了。
大家想象一下，等了半天的检查结果，医生一看，竟然查出的是另一位小伙伴的血样，那可真是“哭笑不得”。
为了避免这样的情况，咱们可得制定严格的标记流程，确保每一份样本都能“对号入座”。
3. 采血后的管理问题3.1 血样存储不当说到这里，咱们再聊聊采血之后的管理。
血样存储不当，可能导致样本变质，医生拿到的结果就不靠谱了。
为此，咱们得确保每个血样都在适当的温度和条件下保存，做到“无懈可击”。
这就像小孩儿上学一样，书包里的东西必须整整齐齐，才能不出乱子。
常见的干细胞移植失败原因及对策干细胞移植是一种重要的治疗方法，被广泛应用于各种疾病的治疗。
然而，干细胞移植并非总能取得成功，因此人们对干细胞移植失败原因及对策的研究非常重要。
本文将介绍一些常见的干细胞移植失败原因，并讨论对策。
首先，干细胞来源的选择是移植失败的一个重要因素。
干细胞可从胚胎、成体组织以及诱导多能干细胞中获得。
但是，胚胎干细胞的获取涉及胚胎的破坏，伦理道德问题引起争议。
另一方面，成体组织中的干细胞数量较少，且多能性较低，可能限制其临床应用。
因此，诱导多能干细胞被认为是最有前途的干细胞来源。
然而，诱导多能干细胞的质量和纯度仍然存在问题，可能导致移植失败。
为了解决这个问题，科学家需要继续改善诱导多能干细胞的制备方法，确保其质量和纯度。
其次，免疫排斥也是干细胞移植失败的一个重要原因。
干细胞移植后，移植物与宿主的免疫系统可能发生排斥反应，导致移植物无法正常生长和发育。
为了减少免疫排斥的风险，科学家已经开发出多种方法。
例如，使用相对配型的干细胞移植可以减少免疫排斥的发生。
此外，免疫抑制剂的使用也可以有效减少排斥反应。
然而，免疫抑制剂的使用会增加患者感染和肿瘤等副作用的风险，因此需要谨慎使用。
未来的研究应致力于开发更好的免疫调节方法，以减少免疫排斥的发生。
第三，缺乏适宜的移植环境也可能导致干细胞移植失败。
干细胞移植后，合适的环境可以促进干细胞的生长和分化。
受体组织的损伤、缺血和炎症等因素可能干扰干细胞的正常生长。
因此，为了提高移植成功率，科学家需要优化移植环境。
这可以通过改善受体组织的状态、提供适宜的营养和支持以及减少炎症反应等方法来实现。
此外，干细胞的干扰素水平也可能影响干细胞移植的成功率。
在移植过程中，干细胞可能产生干扰素，干扰细胞间的通讯和协调。
这可能导致干细胞无法正确分化和生长。
为了解决这个问题，科学家需要深入研究干细胞产生干扰素的机制，并开发方法来调控干扰素的水平。
最后，移植后的并发症也可能导致干细胞移植失败。
血液标本采集错误原因分析_预防控制血液标本留取错误的对策血液标本采集错误是指在进行血液采集过程中出现的错误，导致标本质量不佳或无法使用的情况。
这些错误可能会影响患者的诊断结果和治疗效果，甚至可能对患者的健康和生命安全构成威胁。
因此，对于血液标本采集错误，我们需要进行仔细的原因分析，并采取一些预防和控制措施。
一、血液标本采集错误的原因分析1.不正确的采集器材使用：如过期的试剂、消耗品等，或者使用损坏的采集器材，会导致血液标本采集错误。
2.采集部位选择错误：选择错误的采集部位可能导致标本的质量不佳，影响结果的准确性。
如在静脉内有局部血栓、血管发育异常等情况下采集。
3.不正确的采集方法：不正确的采集方法可能导致血液采集错误，如不正确的抽血角度、不正确的压迫时间等。
4.操作流程不规范：不规范的操作流程可能导致血液采集错误，如未正确的进行消毒、未严格遵守无菌操作等。
5.采集现场环境不洁净：采集现场环境不洁净，可能引入细菌和其他污染因素，导致血液标本污染。
6.个人技术差异：不同的采集者技术水平差异较大，会导致采集错误。
如未能找到血管或者断血造成卡夹。
7.患者协作不良：患者不配合或者不合作会增加血液标本采集错误的概率，如患者不稳定造成难于寻找血管。
1.建立标本采集规范：制定和严格执行标本采集的规范操作流程，明确每一环节的要求和标准。
2.定期培训采集者：定期组织针对血液标本采集的培训和考核，提高采集者的技术水平，减少人为因素导致的错误。
3.严格执行操作规程：要求采集者严格执行操作规程，如正确消毒、正确选择采集器材和部位、正确的抽血角度和压迫时间等。
4.提供合适的器材和耗材：保证提供的器材和耗材都是合格的、有效的，并且不过期，提高标本采集的质量。
5.准确选择采集部位：根据患者的具体情况和需求，准确选择采集部位，确保标本的质量。
6.创建洁净的采集环境：保持采集环境的清洁和无菌，减少污染因素的引入。
7.加强沟通与协作：采集者应与患者沟通，解释操作目的和过程，增加患者的理解和配合，减少患者焦虑和抵抗情绪，提高血液标本采集的成功率。
捐献造血干细胞体检不合格的原因捐献造血干细胞是个神圣且充满爱心的行动，可能改变一个人的命运，甚至是生命。
听到“造血干细胞捐献”这个词，可能很多人都挺陌生，甚至不太明白它到底是怎么回事。
简单来说，捐献造血干细胞就是帮助有白血病等疾病的患者，给他们提供治疗所需的干细胞，让他们能重新获得生命的希望。
捐献前需要做个体检，确保捐献者的身体条件合适。
可是，有些人体检的时候不幸不合格，那是为什么呢？嗯，这里头可有不少原因，一起来瞧瞧。
不得不提的就是血常规检查。
有些朋友可能平时身体好像没啥问题，自己也挺有活力的，可一做血常规检查，医生发现你的血液指标不太正常，比如白细胞或者血红蛋白偏低。
你看，这就像车子加油加得不对，油箱里加了水，发动机就跑不起来了。
血常规结果不合格，捐献就没法进行。
可能有人会觉得，这不就是血常规吗，平常没觉得自己生病啊。
其实很多人有些小问题，平时不疼不痒，不容易发现，体检一做才知道。
还有一个很常见的原因，那就是传染病检测。
这个是非常重要的，毕竟干细胞移植后，如果捐献者携带病毒，病人可就惨了。
所以，体检时要做很多传染病相关的检查，比如乙肝、丙肝、艾滋等疾病的检测。
如果这些检查结果有问题，捐献就会被拒绝。
这不是说捐献者本身就一定生病，而是可能存在潜在的传染风险。
就像你出门打疫苗，医生不可能让你没打完就走，必须等全部检查合格，才能确保不出事。
再说了，有些人可能体检不合格，是因为本身存在一些慢性疾病，比如高血压、糖尿病等。
这类疾病虽然平时控制得好，但还是会影响到身体的整体状态，尤其是捐献这种需要一定体力和健康支持的事情。
如果高血压控制不住，或者血糖不稳定，捐献者的身体就没办法承受大剂量的药物刺激，或是干细胞采集的过程可能带来的身体负担。
医生当然会选择拒绝，让身体更健康的人来承担这个责任，毕竟捐献者本身得先好好的，才有可能为别人带来希望。
再一个原因可能就和年龄有关系了。
一般来说，捐献者的年龄范围是18到45岁，这个年龄段的人身体状况比较好，恢复能力也强。
儿童供者外周血造血干细胞采集的操作及护理摘要】目的：探讨儿童供者在外周血造血干细胞采集过程中的操作及护理方法。
方法本科室2017.11-2020.5采用COBE Spectra 6.1 血细胞分离AutoPBSC程序对35例年龄1-14岁的儿童供者行外周造血干细胞采集。
结果：35例儿童供者外周血造血干细胞采集过程顺利，均获得了足量的MNC和CD34+细胞数。
供者生命体征平稳，无一例发生采集相关的严重不良反应。
结论：通过护理人员在采集前的准备和评估，心理护理和采集过程中的观察及不良反应的预防和处理，熟练的操作技术等保障了儿童供者采集外周血造血干细胞的安全。
关键词：儿童供者；外周血造血干细胞采集；护理随着造血干细胞移植技术在白血病中的广泛应用，其中儿童供者数量也逐渐增加。
而造血干细胞的成功采集是移植的关键因素，因此在外周血干细胞采集的过程中，确保儿童供者的安全，及采集的造血干细胞的数量和质量是至关重要的。
我科室自2017.11-2020.5对35例儿童供者外周血造血干细胞顺利采集及满足移植需要的护理过程进行了总结。
一、临床资料本科室2017.11-2020.5对35例年龄1-14岁的儿童供者行外周造血干细胞采集共58次。
男15例，女20例，均为健康供者。
年龄1-3岁4例，4-7岁14例，8-14岁17例，身高为90-177cm，体重为12-76kg。
所有儿童供者均在使用造血干细胞动员剂粒细胞集落刺激因子(G-CSF)动员的第 1 天开始到采集当天进行白细胞（WＢC）计数监测，白细胞数范围为10.99-70.5 x109/L，动员第5天开始采集细胞。
二、采集方法1.仪器耗材采用COBE Spectra 6.1 血细胞分离机，管路均为SpecteaAutoPBSC 操作系统配套的一次性离心带式血液成分分离器，采集端采用 18G 或20G留置针穿刺,对于血管条件欠佳的儿童供者采用7F的中心静脉导管。
ACD-I抗凝液500mL。
自体外周血造血干细胞采集术的护理配合自体外周血干细胞（APBSCT）采集是指抽取经化疗药物或重组人造血细胞生长因子动员的患者血液，经过抗凝，泵入旋转的离心杯内，根据细胞大小、比重，血液被分离成各种成分，在离心杯内形成不同层次，收集富含单个核白细胞，其余成分回输给患者，直至达到需要的造血干细胞的这一过程［1］。
现将2014年3月至2015年3月23例自体外周血干细胞采集过程的护理配合总结如下。
1 临床资料1.1 一般资料本组23例，其中男16例，女7例，年龄29～63岁（平均42岁），体重53～75kg（平均60kg）；急性白血病4例，恶性淋巴瘤11例，多发性骨髓瘤8例。
1.2 方法采用化疗联合重组粒细胞集落刺激因子动员，动员前接受化疗4～6周期，当白细胞降至最低点的次日开始每天皮下注射重组粒细胞集落刺激因子300μg，直至APBSC采集结束前1天。
当白细胞恢复到5.0×109/L以上时开始进行APBSC采集，采集目标是单个核细胞（MNC）≥2×108/kg，CD34细胞≥2×106/kg。
采集使用美国MCS+血细胞分离机LN971E，选择干细胞采集程序，全血流速70～80ml/min，全血ACD-抗凝剂比率11～12：1，全血处理量6998～11223ml（平均9786ml）。
采集的APBSC于无菌环境下按4：1加入干细胞低温保护剂，不需速率降温直接放入-80℃冰箱保存。
采集全过程实施全面的护理配合。
1.3 结果23例共采集50次（1 例采集1 次，20例采集2次，3例采集3次），其中8次外周静血管条件差采用深静脉穿刺外，其余15次采集均顺畅。
每次采集量67～110 ml（平均85ml）；采集时间273～380min（平均320min）；采集的MNC均≥2×108/kg，CD34＋细胞≥2×106/kg。
全部病例均获造血功能重建，到目前为止无移植相关死亡。
１５例外周血造血干细胞采集中出现问题的原因分析及对策
【摘要】目的探讨外周血造血干细胞采集中出现问题的原因，提出相应护理对策。
方法2004年2月至2007年2月应用美国增强型多功能细胞分离机进行了15例外周血造血干细胞采集。
结果本组采集中出现问题14例，包括管道系统通路障碍，血流通路障碍，枸橼酸钠中毒反应，低血糖反应，顺利采集1例。
结论在进行外周血干细胞采集过程中，对所出现的问题进行分析，并采取相应护理对策，包括心理护理，正确安装耗材，选择合适静脉，预防用药，密切观察患者反应等，15例均完成了外周血造血干细胞采集。
【关键词】外周血;造血干细胞采集;问题;对策
外周血造血干细胞移植的临床应用已日益引起人们的关注，其发展速度已超过传统的骨髓移植。
特别是非骨髓性干细胞的出现，使外周血造血干细胞移植从治疗实体瘤、白血病等恶性疾病［1］,进一步扩展至治疗自身免疫性疾病（如重型系统性红斑狼疮、难治复发性类风湿性关节炎等）［2］。
然而，在采集过程中，出现的各种不良反应直接决定着能否成功采集，也直接影响成品质量。
2004年2月至2007年2月在本科应用美国增强型多功能细胞分离机进行了15例外周血造血干细胞采集，总结采集过程中出现不良反应原因及对策，报道如下。
1 临床资料
1.1 一般资料2004年2月至2007年2月在本科进行15例外周血造血干细胞采集，其中供者7例，男3例，女4例；患者8例，男3例，女5例，年龄23~62岁，平均34岁。
血液系统疾病患者11例：其中非霍奇淋巴瘤3例，急性淋巴细胞白血病3例，急性非淋巴细胞白血病2例，慢性粒细胞白血病2例，骨髓增生异常综合征1例；自身免疫性疾病4例：其中重型系统红斑狼疮3例，难治复发性类风湿关节炎合并干燥综合征1例。
1.2 外周血干细胞采集方法选用美国血液技术公司增强型多功能血细胞分离机（MCS+）,PBSC程序卡及美国血液技术公司一次性全封闭971E型管道耗材，按规定程序进行操作，根据被采集者身高，体质量，红细胞压积等情况设定相关参数，采血和回输速度均为60~80 ml/min，开阀时限45%，关闭时限15%。
抗凝剂采用上海血液技术公司产品复方枸橼酸钠溶液（ACD-A），与血量比例1：12。
静脉通道选择肘部静脉（如正中静脉，贵要静脉，头静脉）或桡静脉。
1.3 采集中出现问题及处置采集外周血造血干细胞过程中，出现问题是由多种原因引起。
本组被采集者中，出现问题14例，顺利采集1例，其中管道系统通路障碍4例，血流通道障碍2例，枸橼酸钠中毒反应7例，低血糖反应1例。
经过心理护理，检查调整管道及参数，保证静脉管道通畅，血流量充足，用药预防枸橼酸钠中毒，指导饮食预防低血糖反应，最后问题都得到解决，15例采集外周血造血干细胞均成功。
2 原因分析
2.1 管道系统通路障碍管道系统通路障碍4例，包括以下几个方面。
2.1.1 献血员系统监测器（DPM）压力故障报警2例，主要原因有:①献血员系统管道闭塞；②管道上有夹紧的夹子；③红细胞阀被关；④出血压低，血流不畅。
2.1.2 系统压力监测器（SPM）低压故障报警1例，主要原因有:①系统压力管有夹紧的夹子；②产品袋瘪缩；③阀处管道扭曲。
2.1.3 滴注监测器未检出抗凝剂（AC）流量，报警1例，主要原因①AC袋液体滴完；②献血管管道闭塞；③AC管道有夹子夹紧。
2.2 血流通路障碍血流通路障碍2例1例是供者精神紧张、血管收缩，外周血管充盈度降低，出现血流不畅;1例是非霍奇金淋巴瘤患者行自体移植，由于患者多次住院化疗，静脉弹性较差，在血液回输时冲破血管。
2.3 枸橼酸钠中毒反应枸橼酸钠中毒反应共7例，因采集血液循环量一般为7000~10 000 ml，ACD-A血液抗凝剂使用量较大，平均为650 ml，其中枸橼酸钠含17.9 g，正常人枸橼酸钠中毒剂量为15 g左右，过多的枸橼酸钠可引起中毒及低钙血症，表现为手足口唇发麻，血压下降，抽搐等症状［3］。
2.4 低血糖反应本组出现低血糖反应为1例，由于患者担心进食后影响采集质量，进食少，采集后3 h出现饥饿感、心悸、出冷汗，测指尖血糖为
3.1 mmol/L。
3 护理对策
3.1 心理护理无论是供者还是患者，大多对干细胞缺乏正确认识，存在一定紧张、恐惧心理。
护理人员要了解其心理活动，精神要求，收集有效的资料和信息，向被采集者讲解采集的方法、注意事项，取得他们的信任。
采集环境应明亮、宽敞，准备一些通俗易懂的资料及报刊供其阅读，配备收音机、电视机，分散其注意力。
3.2 饮食指导采集前一天避免食用油腻食物，防止出现乳糜血液，影响干细胞收集［4］。
采集当天早餐不要进食水份多的食物如：稀饭、汤面等，预防术中出现尿急情况。
由于采集时间长约4~6 h，切忌空腹采集，采集前必要可测指尖血糖，术中感到饥饿感时，帮助进食高蛋白、低脂肪的清淡食物，如牛奶、鸡蛋等，预防低血糖反应。
3.3 正确安装耗材系统在MCS+机器安装前，护理人员应核实一次性耗材与选择的PBSC规程和选项相符，可按下列次序有效的安装：①血浆采集管线；
②离心杯和复式泵总管；③干细胞采集管线；④献血员/血液管线；⑤溶液管线。
安装完毕后，在仔细观察各管道是否扭曲，各夹子是否夹紧，DPM、SPM、离
心杯、泵总管是否安装到位，准确安装耗材是减少机器采集中报警次数的关键因素之一。
3.4 选择合适静脉由于采血量大，穿刺针一般选14~16G，需要弹性好、粗大的静脉，一般选择肘部的正中静脉，贵要静脉，头静脉或桡静脉。
穿刺后要固定牢固，摆放舒适体位，嘱供者不要弯曲手臂，以免穿破血管。
穿刺部位一旦出现血肿或堵塞，立即重新穿刺。
3.5 保证采集血管充盈由于天气寒冷或被采集者血管细小、精神紧张，使外周血管收缩，出现血管不畅，引起血管低压报警时，要注意保暖，调节室温为22~25℃，湿度为55%~65%；指导被采集者放松心情，并在穿刺血管上方扎止血带，嘱其捏皮球，以增加血管中的压力和血量，同时降低采血速度，最低为20~30 ml/min。
3.6 防止枸橼酸钠中毒反应采集前口服钙尔奇D 0.6 g或静脉注射10%葡萄糖酸钙10 ml，如供者出现口唇、四肢麻木等中毒反应，立即静脉补充钙剂。
近年来，外周血干细胞移植在临床上广泛应用，通过血细胞分离和获得足量干细胞是确保临床移植和恢复快速造血的先决条件和重要因素之一［5］。
而在采集外周血干细胞前予心理护理、饮食指导、正确安装耗材，保证管道畅通，预防用药及时处理被采集者不良反应可保证采集干细胞顺利进行。
本组采集中，所出现的问题经对症、对因处理后，均顺利完成干细胞采集。
参考文献
［1］达万明，裴雪涛.外周血干细胞移植.人民卫生出版社，2000：4.
［2］王金铠.自体外周血干细胞移植治疗自身免疫性疾病.河北医药,2004,26(3):221-223.
［3］田兆嵩.临床输血学.人民卫生出版社，1998：158.
［4］常梅芳，朱霞明，沈静慧.MAG方案动员采集干细胞的护理.中华现代护理学杂志，2006，22（3）：19-20.
［5］何志国，侯丽君，等.应用间断流动式血细胞分离机采集外周血造血干细胞的效果分析.中国组织工程研究与临床康复，2007，11（24）：4815-4817.。
