克隆简单流程
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分子克隆实验流程一、引物的稀释1、引物干粉冻存于-20℃,用前12000rpm离心1min;2、按引物管上的nmol数稀释,nmol=4.92,加49.2µL ddH2O至100µM;3、稀释至10µM(5µL引物F+5µL引物R+40µL ddH2O)二、目的基因的扩增实验前准备:生物安全柜紫外照射30min,模板DNA、水、引物、buffer,dNTP提前10min拿出解冻,用75%酒精擦拭移液器及台面。
扩增体系:Reagent 25µL 50µL10xbuffer (含Mg2+) 2.5µL 5µLdNTP (10mM) 0.5µL 1µLrT aq酶0.25μL0.5μLprimer (10μM) 1.25μL 2.5μLTemplate DNA 2μL4μLddH2O 18.5µL 37µL反应程序:(延伸时间按目的片段大小进行调整)95℃预变性3min(95℃变性30 s,60℃退火30s,72℃延伸45s)x3572℃后延伸7min4℃保持电泳:120V,加2µLloading buffer,上样5µL,1000bp marker 5µL小胶:2%,0.6g琼脂糖,30ml 1xTAE中胶:2%,1g琼脂糖,50ml 1xTAE大胶:2%,2g琼脂糖,100ml 1xTAE三、目的产物切胶回收(试剂盒)四、连接实验前准备:SolutionI在冰上融化连接体系:Reagent 10µL胶回收DNA(50ng/μL)4µLPDM-18T载体1µLSolution I 5µL反应条件:16℃,4h(PCR仪,热盖105℃)/ 4℃过夜五、转化实验前准备:开启42℃水浴锅实验步骤:样品+阴性对照(无质粒)+阳性对照(感受态带的质粒)1、把感受态细胞TOP10从-80℃冰箱拿出并放置于冰上解冻;2、每管分装30 - 50μL感受态细胞(冰浴);3、向感受态细胞中加入5μL连接产物,冰浴30min。
实验室克隆技术解析实验室克隆技术是一种重要的生物技术手段,被广泛应用于生物学研究、医学领域以及农业生产中。
通过克隆技术,科学家们可以复制出与原始生物基因完全相同的个体,为研究和应用提供了便利。
本文将对实验室克隆技术进行深入解析,包括其原理、方法和应用等方面。
一、克隆技术的原理实验室克隆技术的原理主要是利用细胞核移植技术,将一个个体的细胞核移植到另一个细胞内,使得受体细胞具有与供体细胞相同的遗传信息。
具体而言,克隆技术包括以下几个步骤:1. 选择供体细胞:通常选择成熟的体细胞作为供体细胞,如皮肤细胞、肌肉细胞等。
2. 提取细胞核:通过细胞核抽提技术,将供体细胞的细胞核提取出来。
3. 受体细胞准备:选择另一种细胞作为受体细胞,去除其原有的细胞核,留下空间待细胞核移植。
4. 细胞核移植:将供体细胞的细胞核移植到受体细胞内,形成克隆胚胎。
5. 植入母体:将克隆胚胎植入母体子宫内,发育成新个体。
二、克隆技术的方法实验室克隆技术主要有三种方法,分别是基因克隆、细胞克隆和生物体克隆。
1. 基因克隆:通过重组DNA技术,将感兴趣的基因片段插入到载体DNA中,形成重组DNA,再将其导入宿主细胞内,使宿主细胞表达该基因。
2. 细胞克隆:利用体细胞核移植技术,将供体细胞的细胞核移植到受体细胞内,形成克隆胚胎,再植入母体子宫内发育。
3. 生物体克隆:通过体细胞核移植技术,将供体细胞的细胞核移植到受体卵母细胞内,再植入母体子宫内发育成新个体。
三、克隆技术的应用实验室克隆技术在各个领域都有重要的应用价值,主要体现在以下几个方面:1. 生物学研究:克隆技术可以帮助科学家研究基因功能、生物发育等重要问题,为生物学研究提供重要手段。
2. 医学应用:克隆技术可以用于治疗一些遗传性疾病,如克隆基因用于治疗疾病、克隆器官用于移植等。
3. 农业生产:克隆技术可以用于改良农作物品种、畜禽繁殖等,提高农业生产效率。
4. 繁殖保护:对于濒危物种的保护和繁殖,克隆技术也发挥着重要作用。
细胞克隆实验步骤及注意事项实验步骤一、平板克隆形成实验基本步骤:1.取对数生长期的各组细胞,分别用0.25%胰蛋白酶消化并吹打成单个细胞,并把细胞悬浮在10%胎牛血清的DMEM培养液中备用。
2.将细胞悬液作梯度倍数稀释,每组细胞分别以每皿50、100、2 00个细胞的梯度密度分别接种含10mL 37℃预温培养液的皿中,并轻轻转动,使细胞分散均匀。
置37℃ 5% CO2及饱和湿度的细胞培养箱中培养2~3周。
3.经常观察,当培养皿中出现肉眼可见的克隆时,终止培养。
弃去上清液,用PBS小心浸洗2次。
加4%多聚甲醛固定细胞5mL固定15分钟。
然后去固定液,加适量GIMSA应用染色液染10~30分钟,然后用流水缓慢洗去染色液,空气干燥。
4.将平皿倒置并叠加一张带网格的透明胶片,用肉眼直接计数克隆,或在显微镜(低倍镜)计数大于10个细胞的克隆数。
最后计算克隆形成率。
克隆形成率 =(克隆数/接种细胞数)×100%二、软琼脂培养克隆形成试验基本步骤:1.取对数生长期细胞,用0.25%胰蛋白酶消化并轻轻吹打,使之成为单细胞,作活细胞计数,用含20%胎牛血清的DMEM培养液调整细胞密度至1×106细胞/L。
然后根据实验要求作梯度倍数稀释。
2.用蒸馏水分别制备出1.2%和0.7%两个浓度的低溶点琼脂糖液,高压灭菌后,维持在40℃中不会凝固。
3.按1:1比例使1.2%的琼脂糖和2×DMEM培养基(含有2×抗生素和20%的小牛血清)混合后,取3mL混合液注入直径6cm平皿中(1 0cm平皿加7~10mL),冷却凝固,可作底层琼脂置CO2温箱中备用。
4.按1:1比例让0.7%的琼脂糖和2×DMEM培养基在无菌试管中相混以后,再向管中加入0.2mL的细胞悬液,充分混匀,注入铺有1. 2%琼脂糖底层平皿中,逐形成双琼脂层。
待上层琼脂凝固后,置入37℃ 5%CO2温箱中培养10~14天。
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基因克隆的基本过程
基因克隆是运用分子遗传学技术来搜索和复制一个特定DNA片段的一种技术。
它通常
出现在生物技术领域,用来寻找一些有价值的 ORF (开放读码框)序列或特定的基因,
为生物的治疗和克隆细胞过程提供有益的信息。
克隆基因的基本过程包括以下步骤:
(1)分离目标基因:这步骤的目的是把目标基因的片段从细胞DNA中分离出来。
有
很多不同的方法可以达到这一目的,例如酶切和PCR(聚合酶链反应)。
(2)子宫2524h基因克隆。
把分离出来的DNA片段放入“质粒”当中,它是一种特
殊的DNA,可以被细菌识别。
然后把质粒放入到细菌,细菌会将这些DNA片段当作自己的
基因,并将这些基因嵌入到自己的DNA序列之中。
(3)转入和测序步骤。
把细菌克隆到多种媒介中,让它们繁殖,形成不同的克隆细
胞群。
然后把克隆细胞放入实验室,进行DNA测序,验证是否得到了想要的特定DNA序列。
(4)应用阶段:通过以上步骤得到的特定DNA序列,可以开发可以给人体带来益处
的基因工程制剂,以实现基因治疗的目的。
基因克隆的过程是相对复杂的,但它也成为了生物技术领域提供有效和有用的信息的
重要工具,帮助研究人员更好地了解和处理DNA序列,从而更好地促进生物学研究的进步。
基因克隆的顺序
基因克隆的顺序通常包括以下步骤:
1. 选择目标基因:确定需要克隆的基因,可以是某个特定的基因,也可以是一段DNA序列。
2. 提取DNA:从源生物体中提取目标基因的DNA,通常使用DNA提取试剂盒来提取。
3. 制备质粒:选择一个适当的质粒,将其准备好作为目标基因的载体。
质粒通常是一段环状的DNA分子,可以自复制并在细胞中稳定存在。
4. 执行DNA切割:使用限制性内切酶将目标基因和质粒切割成相应的DNA片段。
内切酶是能够识别特定DNA序列并在其特定的位置进行切割的酶。
5. 连接DNA片段:将目标基因的DNA片段与质粒的DNA片段连接起来。
这可以通过DNA连接酶来实现,DNA连接酶能够催化两个DNA片段的连接。
6. 转化宿主细胞:将连接好的质粒转化到宿主细胞中,通常使用细菌作为宿主细胞。
转化可以通过电穿孔、化学方法或热激转化等方式进行。
7. 筛选重组细胞:利用筛选性培养基或标记基因等方法筛选出含有重组质粒的
细胞。
8. 纯化重组质粒:从筛选出的重组细胞中提取重组质粒。
9. 分析重组质粒:对提取出的重组质粒进行测序、限制性酶切等分析,确认克隆基因的准确性。
10. 表达目标基因:如果希望表达克隆的基因,可以将重组质粒转化到表达宿主细胞中,例如真核细胞或类似细胞。
需要注意的是,基因克隆的具体步骤可能会因实验目的、实验方法和克隆体的复杂性而有所不同。
克隆技术的原理及过程
克隆技术是指利用生物学手段产生一种与原始个体基因完全一
致的后代。
克隆技术的原理是利用细胞分裂的能力和基因复制的原理,将一个成熟细胞的基因组复制到一个无性生殖的胚胎中,从而产生一个与原个体基因完全一致的后代。
克隆技术的过程可以分为以下几个步骤:
1.采集供体细胞:从一个生物体中采集一个成熟细胞,通常使用皮肤细胞或血细胞作为供体细胞。
2.细胞核移植:将供体细胞的细胞核移植到一个去核的卵细胞中。
这可以通过使用一个微针将细胞核插入卵细胞内来完成。
3.激活卵细胞:使用化学物质或电脉冲激活卵细胞,使其开始分裂。
4.移植胚胎:将发育良好的克隆胚胎移植到一个代孕母体中。
5.孕育后代:如果胚胎发育成功并且嵌入代孕母体,它将组成一个克隆胎儿并最终出生为克隆后代。
克隆技术具有广泛的应用前景,包括用于动物繁殖、药物开发、疾病治疗和农业生产等领域。
但是,由于克隆技术的伦理和道德问题,以及技术上的一些挑战,它仍然是一个备受争议和受限制的领域。
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细胞克隆实验过程及原理细胞克隆实验,听起来是不是有点高大上的样子?别担心,今天我就给大家扒一扒这个看似复杂的实验到底是个什么玩意儿!细胞克隆实验其实就是在实验室里把细胞像复制粘贴一样,生生造出一大堆一模一样的细胞。
说到这儿,你可能会问,为什么要这么做呢?哎,细胞克隆可不是为了让我们在朋友圈里发“我有一模一样的姐妹”那种图啊,而是为了科学研究、医疗应用和一些生物技术的开发。
现在,咱们就一步一步地来看这个过程和原理。
1. 实验准备1.1 材料准备在做细胞克隆实验之前,得准备好一堆材料。
首先,咱们需要细胞源。
可能是小鼠的细胞,也可能是人类的细胞,当然,如果你能找到外星细胞,那也是可以的,哈哈!然后呢,还得准备培养基,简单来说就是细胞的“饭”。
没有好吃的,细胞可不乐意生长啊。
再来就是培养器皿,比如培养皿、试管啥的。
这些都是细胞的“家”,细胞在里头就像人在家里待着一样,舒服得很。
还有一些必要的工具,比如移液管、显微镜,这些就像是科学家的“武器”,帮助我们观察和操作。
1.2 实验环境别忘了实验环境也很重要哦!细胞对环境要求可高了,温度、湿度、pH值都得调得刚刚好,简直比我对房间的温度要求还要严格。
实验室要保持无菌,这就像是在大厨做菜时要保持厨房的干净,细胞才不会被细菌“袭击”。
2. 克隆过程2.1 细胞分离接下来,咱们就进入核心环节——细胞分离。
首先,用一些酶把细胞从组织里分离出来,想象一下就像是把苹果从果皮里挖出来。
分离好的细胞会被放到培养基里,像是在自家的小厨房里吃饭。
经过一段时间,它们就开始在这片“美食”中慢慢繁殖。
2.2 细胞传代等细胞长得差不多了,我们就得进行传代了。
这个过程简单来说就是把一部分细胞移到新的培养皿里,就像是把一些小草莓移植到新的土壤里继续生长。
这样一来,细胞就能在新的地方继续繁殖,越来越多。
随着时间的推移,细胞会不断分裂、复制,最终形成一个细胞克隆群体。
3. 观察与分析3.1 显微镜观察当克隆细胞繁殖到一定数量时,我们就可以用显微镜来观察这些细胞。
一、CDNA基因克隆的基本原理CDNAplementary DNA)是DNA的互补序列,通过反转录酶将mRNA作为模板合成的一种DNA。
CDNA基因克隆是利用逆转录酶将mRNA逆转录合成cDNA,并通过PCR或其他方法将cDNA插入到质粒载体中,实现对目标基因的克隆。
二、CDNA基因克隆的流程1. RNA提取:首先需要从细胞中提取出总RNA,可以使用TRIzol等试剂进行RNA的提取纯化工作。
2. 反转录合成cDNA:将提取得到的RNA作为模版,利用逆转录酶进行cDNA的合成。
反转录反应通常包括RNA模版、随机引物、dNTPs、逆转录酶和缓冲液,并经过一系列温度循环反应,将mRNA 逆转录成cDNA。
3. cDNA纯化:为了避免反转录反应中产生的非特异性产物和杂质,需要对反转录反应产物进行纯化。
4. cDNA扩增:对cDNA进行PCR扩增,以获得目标基因的cDNA 片段。
PCR反应体系包括cDNA模板、引物、dNTPs、Taq聚合酶和缓冲液,通过一系列温度循环反应,扩增目标基因cDNA片段。
5. 酶切与连接:将PCR扩增得到的cDNA片段与质粒载体进行酶切,并在两者的黏端上连接。
6. 转化:将连接得到的质粒转化入大肠杆菌等细菌中,使其进行复制。
7. 筛选与鉴定:通过筛选和鉴定,选出携带目标基因cDNA片段的质粒,进行测序和分析,最终确定目标基因序列。
三、CDNA基因克隆的应用CDNA基因克隆技术已广泛应用于基因克隆、基因表达等多个领域。
在科研领域中,通过CDNA基因克隆技术可以方便快捷地获得目标基因的cDNA,实现对目标基因的研究和功能分析;在医药领域,CDNA基因克隆技术也被应用于基因治疗、蛋白表达等方面。
总结:CDNA基因克隆是一种重要的基因工程技术,通过反转录酶合成cDNA并将其插入到质粒中,可以方便地获取目标基因序列,具有广泛的应用前景。
掌握CDNA基因克隆的基本原理和流程对于开展相关实验研究具有重要意义。
1.目的基因~~~~~~产物纯化回收将带有目的条带的琼脂糖凝胶,在紫外灯下用已灭菌的刀片,延条带边际仔细切割条带(切割胶块时动作要快,在紫外灯下暴露的DNA易降解,在切胶时尽量一个一个的切,每切一次,关闭紫外灯)。
然后将其放入商品纯化柱内,进行片段纯化。
(具体方法步骤按照AXYGEN纯化试剂盒说明操作)(1)计算凝胶重量,以该重量作为一个凝胶体积,加入3个凝胶体积的Buffer DE-A,混合均匀后于75℃加热,间断混合(每2-3min),直至凝胶块完全融化。
(2)加入0.5个Buffer DE-A体积的Buffer DE-B,混合均匀。
(3)吸取上述步骤中的混合液,转移到DNA制备管中,12000×g离心1min.弃滤液。
(4)将制备管置回2ml离心管,加500ulBuffer W1,12000×g离心30s,弃滤液。
(5)将制备管置回2ml离心管,加700ulBuffer W2,12000×g离心30s,弃滤液。
(6)重复(5)。
(7)将制备管置回2ml离心管,12000×g离心1min。
(空离)(8)将制备管置于洁净的1.5ml离心管中,在制备膜中央加25~30ulEluent或去离子水,室温静置1min,12000×g离心1min洗脱DNA。
(9) 跑胶观察是否有纯化结果。
(10) 纯化产物放-20℃保存,备用。
2.扩增片段的克隆纯化的片段连接到克隆载体pMD19-T vector,转化导入宿主菌大肠杆菌DH5α,通过蓝白斑筛选,获得含所需要的目的片段的质粒。
2.1 扩增片段3’端加“A”尾(此步骤一般不用)反应体系:10×Buffer 1μlMgCl2 (25mM) 1μldATP (10mM) 1μl纯化的PCR产物5μlTaq酶(5U/μL) 1μlddH2O 补齐10μl混匀,瞬间离心,收集到管底。
70℃保温30min,取2μl进行连接反应。
基因克隆的方法基因克隆是一种将特定的DNA片段从一个组织或生物体中复制并插入到另一个生物体中的技术。
这种技术已经帮助我们研究和理解生命过程的许多方面,包括遗传学、发育生物学和分子生物学等领域。
基因克隆的方法通常包括以下几个步骤:1. DNA片段的提取首先,需要从源组织或生物体中提取出含有目标基因的DNA片段。
这可以通过使用化学物质或机械方法来破坏细胞壁和细胞膜来完成。
然后,可以使用酶切(酶切),即将DNA 分子切割为多个部分,以获取需要的DNA片段。
接下来,需要将目标基因片段插入到载体DNA中,这种DNA通常来自细菌或病毒。
这些载体通常被称为质粒,由于它们可以独立地复制和转移到不同的生物体中,因此它们是进行基因克隆的理想选择。
这个过程的关键是要使用酶切和酶连反应将基因片段和质粒DNA连成一体。
3. 转化完成DNA插入之后,需要将质粒DNA插入到目标生物体中。
这个过程通常被称为转化。
质粒DNA可以通过添加化学物质,电击或热冲击等方法,使其进入目标细胞中。
如果转化成功,则目标细胞将含有与原细胞相同的基因,并且可以将该基因传递给其细胞后代。
4. 克隆筛选最后,需要进行克隆筛选,以确定哪些细胞包含所需的质粒和基因。
可以通过对转化沿用枝接派系进行筛选,这些派系通常包含一些荧光标记或抗生素耐受基因。
这样,只要细胞包含标记,就可以通过添加抗生素来杀死不含标记的细胞,从而将所需的基因克隆出来。
在生物技术的发展中,基因克隆的方法已经得到了广泛应用。
它可以用来生产抗生素、激素和其他药物,也可以用来改变植物和动物的遗传特征,以增加其产量或提高其抗病能力。
基因克隆还可以用来研究基因功能,发现新的基因或揭示遗传疾病的机制。
但是,由于基因克隆涉及到对生命体系进行干预和修改,因此我们必须注意其潜在的风险和不良后果,并确保其在道德和法律方面的合规性和可行性。
基因克隆的基本原理和流程
基因克隆是一种技术,它使用质粒或DNA片段来复制一个特定的基因序列。
这种技术可以被用来产生大量相同的基因,以改变物种的表型特征,也可以用来研究有关基因的功能、结构和表达的有关信息。
基因克隆的基本原理是使用一种叫做酶切的酶,通过限制性内切酶将DNA片段分割成较小的片段,然后使用DNA 聚合酶将它们连接在一起。
这样,就可以生成几乎完全相同的DNA序列。
基因克隆的流程可以分为三个主要步骤:
1. 提取DNA:首先,由于想要克隆的基因位于一个细胞上,所以必须提取该细胞中的DNA。
常见的提取方法有水解法和溶剂提取法,其中水解法主要通过分解细胞壁和细胞质来提取DNA。
2. 克隆:其次,在提取出DNA后,使用限制性内切酶将DNA分割成较小的片段,然后使用DNA聚合酶将它们连接在一起。
3. 将克隆的DNA植入宿主:最后,将克隆的DNA植入一个宿主细胞,使其可以在宿主体内进行表达。
这里,一般会使用一种叫做质粒的DNA载体,它可以将克隆的基因植入宿主细胞中,从而使细胞获得克隆的基因。
基因克隆是一个复杂的流程,其中包括对基因的提取、克隆和植入宿主体等步骤,而且要完成克隆,还需要使用一系列不同的技术和工具,如限制性内切酶、DNA聚合酶和质粒等。
基因克隆技术在生物学、医学和农业等领域都有着重要的应用,它们已经成为研究基因功能、结构和表达的重要工具。
克隆操作克隆分以下几部分:感受态细胞制备;连接转化;克隆结果验证一、感受态细胞制备1.实验原理:受体细胞经过一些特殊方法(如电击法,CaCl2等化学方法)的处理后,细胞膜的通透性发生了暂时的改变,能允许外源DNA分子进入。
在冰冻的CaCl2溶液中,细菌细胞膨胀成球形,而外源DNA形成羧基-钙磷酸复合物(具抗内切酶的能力)粘附与细胞表面,经42℃短时间热击处理,细胞可吸收外源DNA。
2.实验材料:1)材料:大肠杆菌JM109,灭菌离心管,灭菌滤纸条2)仪器:恒温摇床,冷冻离心机,无菌工作台,低温冰箱,制冰机,移液枪,灭菌锅;3)LB固体培养基:胰蛋白胨1g,酵母浸提物0.5g,NaCl 1g,蒸馏水100毫升,琼脂粉1.5g。
高压灭菌。
LB液体培养基:胰蛋白胨1g,酵母浸提物0.5g,NaCl 1g,蒸馏水100毫升,用NaOH调pH至7.0-7.20.1mol/L CaCl2溶液:称取1.11g CaCl2(无结晶水,分析纯,分子量110.99),溶于100mL重蒸水中,高压灭菌。
50%甘油:相对密度为1.26的甘油,加双蒸水稀释1倍,高压灭菌。
3.实验步骤1)从-70℃保存的JM109甘油菌中挑微量菌划板(第一天);2)挑取大肠杆菌JM109受体菌单菌落于装有5mL的LB培养基的有盖试管中3)37℃振荡(150-180rpm)培养10-12小时,得到种子液(第二天)4)将5ml种子液接入100ml新鲜LB培养基中振荡(150-180rpm)培养,至菌液的OD600为0.4-0.9时比较合适(1.5-2小时)(第三天)5)取新鲜液体培养液转入2ml eppendorf管中,装满,冰上放置10min6)4℃下4000rpm离心10min,小心弃上清,用灭菌滤纸条吸尽残液7)加入冰预冷的0.1mol/L CaCl2溶液300ul轻轻悬浮细胞,冰上放置30min8)4℃下4000rpm离心10min,弃上清液9)如果12-24h内使用,则向沉淀加入100ul预冷的0.1mol/L CaCl2溶液轻轻悬浮细胞,即为感受态。
体细胞克隆技术流程体细胞克隆技术听起来就超级酷呢!那我来给你讲讲它的大概流程哈。
体细胞克隆技术呀,得先从体细胞的选取开始说起。
体细胞那可是身体里除了生殖细胞之外的细胞啦,像皮肤细胞之类的就很常用呢。
科学家们就像寻宝一样,在众多的体细胞里挑选出状态比较好的那些。
这些体细胞就像是被选中的小战士,准备开启一段奇妙的旅程。
选好了体细胞之后,就要把这个体细胞的细胞核取出来。
这一步就有点像给小细胞做个小手术,得小心翼翼的,不能把细胞给弄伤啦。
把细胞核取出来之后,这个细胞核就像是被单独拎出来的小指挥官,它可是很重要的呢。
接下来就轮到卵细胞出场啦。
要找一个健康的卵细胞,这个卵细胞就像是一个温馨的小房子。
然后把卵细胞原来的细胞核去掉,就像给这个小房子腾地方一样。
这时候把之前取出来的体细胞的细胞核放到这个卵细胞里面,就像是给小房子换了个新的指挥官。
然后呢,这个组合好的细胞就要被激活啦。
这就像是给这个新组合的细胞注入一股活力,让它觉得自己是个全新的小生命,要开始成长啦。
激活的过程有点像给细胞打一针强心剂,让它从一个有点懒洋洋的状态变得活力满满。
激活之后呢,这个细胞就会开始分裂啦。
从一个细胞变成两个,两个变成四个,就像细胞们在欢快地做乘法一样。
这个过程就像是细胞们在举行一场盛大的聚会,每个细胞都在积极地邀请自己的小伙伴加入。
随着细胞不断地分裂,慢慢就会形成一个早期的胚胎。
这个胚胎就像是一个充满希望的小种子,蕴含着无限的可能。
这个胚胎接下来就可以被移植到代孕母体的子宫里面啦。
代孕母体就像一个温暖的港湾,给这个小胚胎提供一个舒适的成长环境。
在代孕母体的子宫里,这个胚胎就会像小树苗一样慢慢地长大。
它会从一个小小的胚胎逐渐发育成一个完整的个体。
这个过程中,母体也会给这个小胚胎提供各种各样的营养,就像妈妈给宝宝准备各种好吃的一样。
体细胞克隆技术虽然听起来很复杂,但是它真的很神奇呢。
不过呢,这项技术也面临着很多的伦理问题,毕竟它和我们传统的生殖方式不太一样。
基因克隆的步骤一、RNA的提取1. 提取RNA前将洗净干燥的瓷研钵放入-70℃预冷10 min;2. 从液氮罐中取出样品组织放入预冷的研钵中,加液氮淹没后立即研磨,边研磨边加液氮,整个过程都不要使液氮挥干;3. 趁冷,将样品粉末50-80 mg加入1.5 mL离心管后再加入1 mL Trizol,样品体积应不超过所使用Trizol体积的10%,然后按照Trizol试剂盒说明操作;4. 室温静止5-15 min。
对于某些蛋白、多糖或脂含量很高的细胞或组织Trizol裂解后可能会有不溶物或油脂状漂浮物,需12000g、4℃离心10 min,然后吸取澄清的Trizol裂解产物至一新的离心管中;5. 每mL Trizol中加0.2 mL氯仿。
小心盖上离心管,剧烈地涡旋振荡15 sec,室温(24℃)静置3-5 min;(必需步骤)6. 12000 g、4℃离心15 min,此时混合物分成三部分:底层为苯酚-氯仿层,中间层,上层水相层,RNA完全存在水相中;7. 把小于80%的水相层(每mL Trizol约可吸0.5-0.55 mL)转移至一新的离心管中,并弃去下面的有机相(小心避免吸到中间层)。
往水相中加入异丙醇来沉淀RNA,每使用1 mL Trizol,便加500 uL的异丙醇,颠倒混匀,室温下孵育样品10 min;8. 4℃、12000 g离心样本10 min弃去上清,每mL Trizol加入1 mL 75%乙醇,涡旋混匀,室温沉淀10 min后,7500 g、4℃离心5 min,弃上清。
再用离心机甩一下(5000rpm,离心1 s);9. 小心吸走乙醇,短暂地在室温下置2-5 min,让RNA团风干,不要用离心干燥装置或真空干燥装置,因为过度干燥会导致很难用水重新溶解RNA,然后在55-60℃温浴10 min,然后-70℃保存。
[RNA](ng/uL)=A260×40×稀释倍数[DNA](ng/uL)=A260×50×稀释倍数纯DNA:OD260/OD280≈1.8(>1.9,表明有RNA污染;<1.6,表明有蛋白质、酚等污染)纯RNA:1.7<OD260/OD280<2.0(<1.7时表明有蛋白质或酚污染;>2.0时表明可能有异硫氰酸残存)二、M-MLV RT反转录1. oligo dT 1 uL + dNTP(2.5 mM)4 uL + 1-5 ug total RNA + 水= 12 uLHeat mixture to 65℃ for 5 min and quick chill on ice;2. 上述12 uL液体+ 5×Buffer 4 uL + 0.1 M DTT 2 uL + RNase OUT 1 uLMix contents of the tube,incubate at 37℃for 2 min3. 上述19 uL液体加M-MLV RT 1 uLIncubate tube at 25℃for 10 min;Incubate 50 min at 37℃;70℃for 15 min。
克隆表达的流程
克隆表达的流程可以分为以下步骤:
1. 设计引物:根据目标基因的序列设计引物,包括正向引物和反向引物。
2. DNA提取:从目标细胞或组织中提取总DNA。
3. 聚合酶链式反应(PCR)扩增:使用DNA提取物作为模板,通过PCR
扩增目标基因的DNA序列。
4. 酶切与连接:将扩增得到的目标基因DNA与克隆载体(如质粒)进行酶切,产生互补的黏性末端,并将目标基因DNA连接到载体上。
此外,还有T/A克隆、传统酶切-酶连克隆和无缝克隆等克隆方法。
以上信息仅供参考,如有需要,建议查阅基因克隆相关文献或咨询相关专家。
克隆形成实验
在科学领域中,克隆技术一直是备受关注的话题之一。
克隆形成实验是一种重要的科学方法,通过实验过程可以获取有关生物复制和发展的重要信息。
下面将介绍克隆形成实验的基本原理和实施方法。
原理
克隆形成实验的原理主要基于生物复制过程中的细胞分裂和遗传物质传递。
在实验中,研究人员通常会选择一个成熟的细胞,将其核移植到一个去除了细胞核的受体细胞中。
这个过程类似于自然界中的受精过程,新的细胞会继续遵循原细胞的遗传信息发展成为一个克隆体。
实施方法
1.细胞采集:首先需要从一个成熟的细胞中提取细胞核。
2.受体细胞准备:准备一个去除了细胞核的受体细胞,通常为卵母细
胞。
3.细胞核移植:将第一步中提取的细胞核移植到受体细胞中。
4.培养:将形成的新细胞培养至一定阶段,确保其正常发育。
这种方法虽然看似简单,但实际操作中却需要高超的技术和精密的操作,因为任何一丝差错都可能导致实验失败。
应用与影响
克隆形成实验在生物学研究和医学领域中具有重要的应用价值。
通过克隆形成实验,科学家们可以更好地研究细胞分裂、遗传物质传递等生物基本过程,为后续的研究工作奠定基础。
此外,克隆技术还在医学领域具有潜在的应用前景,比如用于治疗某些疾病或生成器官。
总的来说,克隆形成实验是一项挑战性的科学实验,它不仅推动了生物学研究的发展,也为医学领域的创新带来了新的可能性。
在未来,随着技术的不断进步,相信克隆形成实验将会在更多领域展现出其重要性和价值。
克隆的技术流程
1.收集细胞根据所要克隆的生物不同,收集其体细胞、胚胎细胞等成熟细胞。
2.剪接基因将收集的细胞进行基因剪接,选择需要的基因片段。
3.根据选择的基因片段放入载体中将选择的基因片段放入一个载体,大多数情况下选择细胞质内或细胞质外的载体.
4.转染将载体和治疗细胞放在一起,用电穿孔法,微注、冷冻水浴方法将载体中的DNA 转入人类细胞,并与其内的DNA 融合。
5.筛选克隆经转染后,将被转染治疗的细胞进行分化,筛选同质多次基因和先天性异常筛选。
6.培养克隆过筛的正品克隆被写透明拓扑表达式,成为完美的DNA基因库,这些克隆被培养,以备日后的应用。
8000用户密码apps/vg10thn
环境IP 数据库用户应用用户基础目录
8001 192.168.1.218oratest appltest /erp/test
8003 192.168.1.218 oravis applvis /erp0/vis
8007 192.168.1.218 oracrp3 applcrp3 /erp/crp3
8005 192.168.1.216 oratest appltest /hr/test
克隆流程
正式环境全备数据库
/erpdb/rman/script/bk.sh full
user:root
检查克隆环境原进程是否全部停止
ps –fu appltest
ps –fu oratest
根据克隆环境创建PROD链接恢复数据(以下以8001为例)
cd /erpdb
ln -s /erp/test prod
修改测试环境Oracle目录属主
cd prod
chown -R oraprod:dba db
user:oraprod
打开数据库
sqlplus / as sysdba
startup nomout pfile=?/dbs/initPROD.ora
恢复数据
rman target /
restore controlfile from '/erpdb/rman/EBS_ctl_c-110618086-20110127-01';
alter database mount;
restore database;
recover database;
alter database open resetlogs;
以上在recover database会报错可不予理会,若想不报错可使用until指定时间或SCN
克隆数据库
user:root
cd /erpdb/prod
chown -R oratest:dba db
user:oratest
cd $ORACLE_HOME/appsutil/clone/bin/
perl adcfgclone.pl dbTier
完成后修改密码及环境描述:
cd /erp/clone/script/
sqlplus / as sysdba @1
关闭数据库,修改Oracle参数(测试环境改以下几个就行,不改太容易出错):cd $ORACLE_HOME/dbs
vi inittest.ora
sga_target = 3G
pga_aggregate_target=2G
processes = 300
sqlplus / as sysdba
startup pfile=?/dbs/inittest.ora
create spfile from pfile;
应用克隆
user:appltest
cd $COMMON_TOP/clone/bin
perl adcfgclone.pl appsTier
克隆完成后,关闭应用,修改密码,定义客户化内容等。
adstpall.sh apps/vgy10thn
ps –fu appltest
cd /erp/clone/script
cpw.sh
ftp.sh
启动并做简单测试完成克隆
用户密码:apps/apps123sysadmin/1SYS2ADMIN adstrtal.sh apps/apps123。