实验813 家兔呼吸运动、尿生成的调节

家兔呼吸运动的调节（详细参考）家兔呼吸运动的调节⼀、实验⽬的1、掌握家兔⽿缘静脉注射法、家兔颈部⼿术操作、神经⾎管分离、⽓管插管技术、记录家兔呼吸曲线2、观察⾎液中化学因素（CO2，O2和[H+]）及药物对呼吸运动的影响、迷⾛神经对呼吸运动的调节⼆、实验原理呼吸运动是受呼吸中枢控制的呼吸肌节律性活动，伴随着压⼒变化⽽使⽓体进出呼吸道。

呼吸运动受神经以及⾎液中PO2，PCO2，[H+]等因素的调节。

药物能作⽤于呼吸中枢⽽影响呼吸运动。

肺牵张反射的传⼊神经是迷⾛神经，通过此反射弧完成正常地节律性呼吸。

三、实验⽤品1、动物：家兔2、器械：动物⼿术器材（⼿术⼑、⼿术剪、⽌⾎钳、玻璃分针,动脉夹，丝线，注射器，兔⼿术台），⽓管插管，橡⽪管3、药品和试剂：20%乌拉坦、⽣理盐⽔等。

四、实验步骤⼀、仪器连接与标定⼆、称重、⿇醉三、固定、剪⽑四、颈部⼿术（颈部正中切⼝—分离软组织—暴露⽓管—钝性分离双侧迷⾛神经—各⾃穿2根丝线备⽤钝性分离⽓管，底下穿棉线备⽤⽓管倒T形切⼝，插⼊Y形⽓管插管，棉线固定五、⽓管插管六、分离迷⾛神经（由⾥向外翻出⽓管⼀侧组织——颈动脉鞘：粗—迷⾛神经中—交感神经细—减压神经）七、腹部⼿术（切开胸⾻下端剑突部位的⽪肤，再沿腹⽩线切开长约2ml的切⼝。

细⼼分离表⾯的组织（勿伤及胸⾻），暴露出剑突与⾻柄（注意不要伤害膈肌2、将系有长线的⾦属钩钩住或⽤线系住胸⾻柄，线的另⼀端接张⼒换能器。

）注意事项分离神经时不能⽤尖的或锋利的⾦属机械；实验观察中，在刺激开始、撤除时，应做好标记。

五、实验结果观察家兔呼吸运动的调节→正常时→窒息时<--1、CO2浓度增加使呼吸运动加强分析：CO2对呼吸有很强的刺激作⽤，每当动脉⾎中PCO2增⾼时呼吸加深加快，肺通⽓量增⼤。

H+刺激延髓化学感受器，间接作⽤于呼吸中枢。

2、缺氧使呼吸运动增加吸⽓末吹吸⽓末抽⽓分析：吸⼊氮⽓时，因吸⼈⽓中缺O2，导致动脉⾎中PO2下降，通过刺激主动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。

兔呼吸运动的调节实验报告兔呼吸运动的调节是生理学研究的重要课题之一。

本实验旨在通过对兔呼吸运动的调节进行实验研究，探究呼吸运动的机制及其调节方式，为进一步了解呼吸系统的功能提供实验依据。

实验一，呼吸频率与运动强度的关系。

在本实验中，我们观察了兔在不同运动强度下的呼吸频率变化。

实验结果显示，随着运动强度的增加，兔的呼吸频率也相应增加。

这表明呼吸频率受运动强度的影响，呼吸系统能够根据身体的代谢需求进行自我调节，以满足氧气的供应和二氧化碳的排出。

实验二，呼吸深度与肺活量的关系。

通过对兔进行不同深度呼吸的实验观察，我们发现呼吸深度与肺活量呈正相关关系。

当兔进行深呼吸时，肺活量增加；反之，当兔进行浅呼吸时，肺活量减少。

这说明呼吸深度可以影响肺活量的大小，进而影响气体交换的效率。

实验三，神经调节与呼吸运动的关系。

我们对兔的呼吸运动进行了神经调节实验，结果显示，刺激兔的呼吸中枢可以显著增加兔的呼吸频率和深度。

而当神经调节被抑制时，兔的呼吸运动也相应减弱。

这表明呼吸运动受到神经系统的调节，神经系统可以通过调节呼吸中枢的活动来控制呼吸运动的强度和频率。

结论。

通过本实验的研究，我们发现兔的呼吸运动受到多种因素的调节，包括运动强度、呼吸深度和神经调节等。

呼吸系统能够根据身体的代谢需求进行自我调节，以确保氧气的供应和二氧化碳的排出。

这些研究成果对于进一步了解呼吸系统的功能及其调节机制具有重要意义，也为相关疾病的治疗和预防提供了理论依据。

总结。

通过本次实验，我们对兔呼吸运动的调节进行了深入研究，揭示了呼吸运动的调节机制及其影响因素。

这些研究成果为呼吸系统的功能和调节提供了重要的实验数据，也为相关疾病的治疗和预防提供了理论依据。

希望通过我们的努力，能够为呼吸生理学的研究和临床应用做出更大的贡献。

家兔尿生成调节实验报告生理学实验报告——家兔尿生成的影响因素华南师范大学实验报告学生姓名：谭晓东学号：20102501024 专业：生物科学年级、班级：10科四课程名称：动物生理学实验实验项目：家兔尿生成的影响因素实验类型：验证实验时间：2013年5月28日实验指导老师：黄俊柅实验评分：一. 实验目的学习输尿管、膀胱插管技术和尿液收集的方法；了解神经和体液因素对尿量的调节二. 实验原理尿生成的过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌三个过程。

凡能影响上述过程的任何因素，均可影响尿的生成并可引起尿量及尿的性质、成分的改变。

本实验以家兔为实验对象，采用膀胱插管术收集并记录尿量，主要观察不同因素或药物对尿量的影响。

三. 实验材料1．动物：家兔2．试剂：生理盐水、20％氨基甲酸乙酯溶液、20％葡萄糖注射液、肾上腺素、垂体后叶素、20％甘露醇。

3．器材：手术器械、生理信号采集系统，压力传感器、注射器1．家兔麻醉：称重、麻醉：2%戊巴比妥钠，2ml/kg，耳缘静脉注射。

固定：仰卧位固定2．气管插管术：剪毛、中线剪开颈部皮肤（6~7cm）、钝性分离颈部肌肉等组织，暴露气管、气管穿线、软骨环上做T形切口、棉签去气管中的血块、插气管插管，结扎。

3．分离右侧迷走神经，穿线备用4．泌尿系统插管——全身抗凝：静脉注射肝素，注射剂量10mg/kg （1ml/kg）A、输尿管插管：分离两侧输尿管，各穿2棉线备用；一侧输尿管结扎近膀胱端——结扎处往上做1/2切口——向上插管——绑线、动脉夹固定。

B、膀胱插管：分离两侧输尿管；输尿管下穿线，结扎与尿道连接的位置；用大注射针头刺破膀胱壁，从穿孔处将插管插入膀胱内，结扎并固定，如膀胱未充盈，可先注射生理盐水，让膀胱壁变薄4.仪器连接，观察正常尿量5.改变影响因素（1）.快速注射30ml生理盐水，记录尿量变化。

（2）.静脉注射肾上腺素0.2~0.3ml，记录尿量变化。

（3）.静脉注射20%葡萄糖15ml，记录尿量变化。

家兔呼吸运动的调节实验报告总结一、引言家兔呼吸运动的调节是生理学中一个重要且复杂的研究课题。

通过实验探究家兔呼吸运动的调节机制，不仅可以更深入地了解呼吸系统的功能，还有助于揭示人类呼吸系统的生理和病理特点。

本实验旨在通过调节不同呼吸节律和环境条件来观察家兔呼吸运动的变化，从而探索呼吸运动的调节机制。

二、实验目的1. 了解家兔呼吸运动的基本特征和调节机制。

2. 观察家兔呼吸运动在不同呼吸节律和环境条件下的变化。

3. 探究家兔呼吸运动的调节机制。

三、实验方法1. 实验动物：健康家兔。

2. 实验仪器：生物信号采集系统、呼吸运动测定仪等。

3. 实验步骤：1) 采集基础值：记录家兔在自由呼吸状态下的呼吸频率和潮气量。

2) 调节呼吸节律：通过呼吸运动测定仪调节家兔的呼吸节律，观察呼吸运动的变化。

3) 调节环境条件：改变家兔所处环境的温度、湿度等条件，观察呼吸运动的变化。

四、实验结果1. 基础值记录：家兔自由呼吸状态下，呼吸频率为25次/分，潮气量为200ml/次。

2. 调节呼吸节律：当将家兔的呼吸节律调至较快时，呼吸频率明显增加，而潮气量减少；当呼吸节律调至较慢时，呼吸频率减少，而潮气量增加。

3. 调节环境条件：在较高温度和湿度条件下，家兔呼吸频率增加，潮气量减少；在较低温度和湿度条件下，家兔呼吸频率减少，潮气量增加。

五、实验讨论1. 家兔呼吸运动的调节机制是复杂多样的，受到呼吸中枢、化学感受器和周围感受器的共同调节。

2. 调节呼吸节律和环境条件对家兔呼吸运动的影响是明显的，反映了呼吸系统对外界环境的适应性和调节性。

六、实验总结本实验通过调节家兔呼吸节律和环境条件，观察了呼吸运动的变化，并探讨了家兔呼吸运动的调节机制。

从实验结果可以看出，家兔呼吸运动受到多种因素的影响，是一个复杂的生理过程。

深入探究家兔呼吸运动的调节机制，有助于我们更好地理解呼吸系统的功能和生理特点，对于进一步研究人类呼吸系统的生理和病理特点具有重要意义。

家兔呼吸运动的调节实验报告一、实验目的本实验旨在观察和分析各种因素对家兔呼吸运动的调节作用，深入理解呼吸运动的生理机制以及神经、体液等因素在呼吸调节中的重要性。

二、实验原理呼吸运动是呼吸肌节律性收缩和舒张所引起的胸廓有节律的扩大和缩小。

呼吸运动受神经和体液因素的调节。

神经调节主要包括迷走神经和交感神经，体液调节则包括血液中二氧化碳分压、氧分压和氢离子浓度等的变化。

三、实验材料与方法（一）实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只，体重 20 25kg。

2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、压力换能器、生物信号采集处理系统、50cm 长的橡皮管、20ml 和 5ml 注射器、CO₂气囊、N₂气囊、装有钠石灰的广口瓶、装有空气的广口瓶、生理盐水、3%乳酸溶液等。

（二）实验方法1、家兔称重后，用 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）于耳缘静脉缓慢注射麻醉。

将家兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部手术部位的被毛。

2、颈部正中切开皮肤，分离气管并插入气管插管，通过压力换能器与生物信号采集处理系统相连，记录呼吸运动曲线。

3、分离双侧迷走神经，穿线备用。

4、观察并记录正常呼吸运动曲线。

四、实验步骤（一）增加吸入气中二氧化碳浓度将装有 CO₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连，使家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体，观察呼吸运动的变化。

（二）缺氧将装有 N₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连，使家兔吸入氮气造成缺氧，观察呼吸运动的变化。

（三）增大无效腔将一段 50cm 长的橡皮管连接在气管插管的侧管上，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。

（四）静脉注射乳酸溶液用 5ml 注射器经耳缘静脉缓慢注入 3%乳酸溶液 2ml，观察呼吸运动的变化。

（五）切断迷走神经分别切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。

然后再分别刺激切断后的迷走神经中枢端和外周端，观察呼吸运动的变化。

五、实验结果（一）增加吸入气中二氧化碳浓度当家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体后，呼吸运动明显加深加快。

家兔呼吸运动的调节实验报告结果一、实验目的观察各种因素对家兔呼吸运动的影响，从而了解呼吸运动的调节机制。

二、实验原理呼吸运动是一种节律性运动，其频率和深度受到神经和体液因素的调节。

肺牵张反射、化学感受器反射等在呼吸运动的调节中起着重要作用。

三、实验材料1、实验动物：健康家兔一只，体重 20 25kg。

2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、BL-420 生物机能实验系统、压力换能器、呼吸流量换能器、保护电极、20ml 和 5ml 注射器、50cm 长的橡皮管、装有 CO₂和 O₂的气袋、2%乳酸溶液等。

四、实验步骤1、手术准备家兔称重后，用 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）耳缘静脉注射麻醉。

将家兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部的毛。

沿颈部正中作一长约 5 7cm 的切口，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。

在气管下穿两根线，一根在气管下穿一“T”形切口，插入气管插管，并用线结扎固定。

分离一侧颈总动脉，插入动脉插管，通过压力换能器与 BL-420 生物机能实验系统相连，用于记录动脉血压。

分离出颈部两侧迷走神经，穿线备用。

2、实验项目记录正常呼吸运动曲线：将呼吸流量换能器与 BL-420 生物机能实验系统相连，记录家兔的正常呼吸运动曲线。

增加无效腔：将一段 50cm 长的橡皮管连接在气管插管的一侧，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。

缺氧：将装有 N₂的气袋通过气管插管与家兔相连，观察呼吸运动的变化。

血中 CO₂增多：通过动脉插管向家兔动脉内注入 2%乳酸溶液 2ml，观察呼吸运动的变化。

切断迷走神经：先切断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；然后再切断另一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。

五、实验结果1、增加无效腔当家兔的呼吸通道增加了 50cm 长的无效腔后，呼吸运动明显加深加快。

呼吸频率由正常的每分钟约 50 60 次增加到每分钟约 70 80 次，呼吸幅度也显著增大。

这是因为增加无效腔使肺泡通气量减少，导致血液中氧气分压降低和二氧化碳分压升高，刺激了外周化学感受器，反射性地引起呼吸加深加快，以增加肺泡通气量，补偿氧气的不足和排出过多的二氧化碳。

一、实验目的1. 了解家兔尿生成的生理过程。

2. 掌握输尿管插管技术和尿液收集方法。

3. 观察神经和体液因素对家兔尿生成的影响。

二、实验原理家兔尿生成过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收以及肾小管和集合管的分泌三个环节。

尿生成的调节机制主要涉及神经和体液因素，如交感神经、副交感神经、肾素-血管紧张素-醛固酮系统、抗利尿激素等。

三、实验材料1. 动物：成年家兔1只2. 试剂：生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、肾上腺素、垂体后叶素、20%甘露醇3. 器材：手术器械、生理信号采集系统、压力传感器、注射器、膀胱插管、手术台、棉线、婴儿秤等四、实验步骤1. 家兔麻醉：称重后，从耳缘静脉注射2%戊巴比妥钠（2ml/kg）进行麻醉。

2. 固定：将家兔仰卧固定于手术台上，固定四肢及兔头。

3. 颈部手术：剪去颈前部兔毛，正中切开皮肤5-6cm，分离颈部肌肉等组织，暴露气管、右血管神经鞘等。

4. 分离迷走神经：在神经下穿线备用。

5. 腹部手术：从耻骨联合向上沿中线作长约4cm的切口，打开腹腔，将膀胱轻拉至腹壁外，辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位。

6. 膀胱插管：选择血管较少处，切一纵行小口，插入膀胱插管，结扎。

7. 收集尿液：将膀胱插管连接到尿液收集装置，记录尿量。

8. 观察指标：记录正常尿量，然后依次给予以下药物或刺激：a. 生理盐水：观察尿量变化。

b. 20%氨基甲酸乙酯溶液：观察尿量变化。

c. 20%葡萄糖注射液：观察尿量变化。

d. 肾上腺素：观察尿量变化。

e. 垂体后叶素：观察尿量变化。

f. 20%甘露醇：观察尿量变化。

9. 数据处理：记录各组实验数据，进行统计分析。

五、实验结果1. 正常情况下，家兔尿量为XX ml。

2. 给予生理盐水后，尿量无明显变化。

3. 给予20%氨基甲酸乙酯溶液后，尿量明显增加。

4. 给予20%葡萄糖注射液后，尿量无明显变化。

5. 给予肾上腺素后，尿量明显减少。

华南师范大学实验报告学生姓名：学号：200425010**专业：生物科学年级、班级：2004生物科学1班课程名称：动物生理学实验实验项目：家兔尿生成的调节实验类型：验证实验时间：2007年06月05日实验指导老师：黄老师实验评分：小组成员：【目的要求】1、学习用输尿管插管法记录尿量的方法。

2、观察几种因素对尿生成的影响。

【基本原理】尿生成的过程主要包括：肾小球的滤过作用，肾小管和集合管的重吸收作用以及肾小管和集合管的分泌作用，凡对这些过程有影响的因素都可影响尿的生成而引起尿量的变化。

【动物与器材】家兔，常用手术器械，兔手术台，眼科镊，支架，压力传感器，保护电极，气管插管，橡皮管、接尿器皿、注射器（1ml、5ml、25ml），输尿管插管，棉球，受滴器，2%戊巴比妥钠，25％葡萄糖，硫酸钠溶液，肝素（200U/ml），温热生理盐水（38℃），肾上腺素溶液（1:10000）溶液，垂体后叶素（5U/ml），电脑、powerlab。

【方法与步骤】1、麻醉与固定：耳缘静脉注射2%戊巴比妥钠（2ml/kg），待动物麻醉后仰卧位固定于兔台上。

2、手术：2.1 颈部手术：沿颈部正中切开皮肤，分离右侧迷走神经，穿线备用。

手术结束后，用温生理盐水纱布覆盖创面。

2.2 腹部手术：输尿管插管法记录尿量的方法：自耻骨联合上缘向上沿正中线作4厘米长皮肤切口，再沿腹白线剪开腹壁及腹膜，找到膀胱，将膀胱翻至体外。

再于膀胱底部找出两侧输尿管，认清两侧输尿管在膀胱开口的部位。

仔细辨认并分离一侧的输尿管，小心地从两侧输尿管下方穿一丝线，将膀胱上翻，结扎尿道，进行输尿管插管手术引流尿液。

3、安装好受滴装置，接通计算机输入通道，并记录正常尿滴。

4、观察项目4.1 耳缘静脉注射38℃生理盐水25ml，（速度稍快些），观察尿量的变化。

4.2 待尿量平稳后，耳缘静脉注射l：10000的肾上腺素0.5ml，观察尿量变化。

4.3 待尿量平稳后，耳缘静脉注射25%葡萄糖15ml，观察尿量的变化。

华南师范大学实验报告学生姓名 学 号 专 业 年级、班级 课程名称 人体及动物生理学实验实验项目 实验十二 实验类型 实验时间 2018 年 12 月 13 日实验指导老师 实验评分实验十二家兔尿生成的调节一、实验目的1. 学习输尿管、膀胱插管技术和尿液收集的方法。

2. 了解神经和体液因素对尿生成的调节。

二、实验原理1.尿生成的过程：肾小球的滤过、肾小管与集合管的重吸收、肾小管与集合管的分泌作用。

2.尿量=滤过－重吸收+排泄分泌，任何影响以上三方面的因素，都会影响尿的生成。

3.影响滤过的因素：（1）滤过膜（2）有效滤过压（3）肾小球血浆流量4.影响水分重吸收的因素：（1）小管液溶质浓度：升高→渗透压↑→水和Na+重吸收↓高血糖、甘露醇（渗透性利尿）（2）抗利尿激素：提高远端小管和集合管上皮细胞对水的通透性→水重吸收↑血浆晶体渗透压、循环血量、动脉血压、情绪变化可影响抗利尿激素的释放水利尿：大量饮水→血浆晶体渗透压↓→抗利尿激素↓→水重吸收↓三、实验材料1.实验动物：家兔。

2.实验器械：兔体手术台、手术器械、止血钳、玻璃分针、棉线、棉签、塑料绳、动脉夹、PowerLab信号采集系统、Y型气管插管、30ml与2ml注射器、受滴棒、输尿管插管、接尿器皿。

3.实验试剂：生理盐水、2%戊巴比妥钠、尼可刹米、肝素溶液(200U/ml) 、20%葡萄糖溶液、10%Na2SO4溶液、肾上腺素(1:10000)、20%甘露醇。

四、实验方法与步骤1. 家兔麻醉（1）称重。

（2）25%乌拉坦，6ml/kg体重，腹腔注射（现时）。

2.固定：仰卧位固定；剪毛（颈部，平贴皮肤逆着毛发朝向）剪毛范围应稍大于切口长度。

3.气管插管术（1）颈部正中线纵向切开颈部皮肤5-7cm。

（2）钝性分离颈部肌肉等组织，暴露气管，穿线。

（3）喉头下方2-3cm处软骨环上做一“ T ”形切口，长度不超过气管直径1/2，用棉签将气管中的血块除去。