MTT法绘制生长曲线
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MTT原理、步骤、结果分析方法及注意事项MTT原理、步骤、结果分析方法及注意事项一、MTT原理MTT全称为3-(4,5)-dimethylthiahiazo(-2)-3,5-diphenytetrazoliumromide,汉语化学名为3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐,商品名:噻唑蓝。
是一种黄颜色的染料。
MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法。
其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒(Formazan)并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。
二甲基亚砜(DMSO)能溶解细胞中的甲瓒,用酶联免疫检测仪在490 nm 波长处测定其光吸收值,可间接反映活细胞数量。
在一定细胞数范围内,MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
该方法已广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。
它的特点是灵敏度高、经济。
缺点:由于MTT经还原所产生的甲瓒产物不溶于水,须被溶解后才能检测。
这不仅使工作量增加,也会对实验结果的准确性产生影响,而且溶解甲的有机溶剂对实验者也有损害。
二、MTT溶液的配制方法通常,此法中的MTT浓度为5 mg/mL。
因此,可以称取MTT 0.5 g,溶于100 mL的磷酸缓冲液(PBS)或无酚红的培养基中,用0.22 μm滤膜过滤以除去溶液里的细菌,放4℃避光保存即可。
在配制和保存的过程中,容器最好用铝箔纸包住。
实验的时候我一般关闭超净台上的日光灯来避光,觉得这样比较好。
需要注意的是,MTT法只能用来检测细胞相对数和相对活力,但不能测定细胞绝对数。
在用酶标仪检测结果的时候,为了保证实验结果的线性,MTT吸光度最好在0-0.7范围内。
MTT一般最好现用现配,过滤后4oC避光保存两周内有效,或配制成5 mg/mL保存在-20oC长期保存,避免反复冻融,最好小剂量分装,用避光袋或是黑纸、锡箔纸包住避光以免分解。
细胞生长检测方法细胞生长检测方法-------MTT法MTT法又称MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法。
一、基本原理:其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT 还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒(Formazan)并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。
二甲基亚砜(DMSO)能溶解细胞中的甲瓒,用酶联免疫检测仪在490nm 波长处测定其光吸收值,可间接反映活细胞数量。
在一定细胞数范围内,MTT 结晶形成的量与细胞数成正比。
该方法已广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。
它的特点是灵敏度高、经济。
缺点:由于MTT经还原所产生的甲瓒产物不溶于水,需被溶解后才能检测。
这不仅使工作量增加,也会对实验结果的准确性产生影响,而且溶解甲的有机溶剂对实验者也有损害。
需要注意的是,MTT法只能用来检测细胞相对数和相对活力,但不能测定细胞绝对数。
在用酶标仪检测结果的时候,为了保证实验结果的线性,MTT 吸光度最好在0-0.7 范围内。
二、MTT 溶液的配制方法MTT全称:3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide汉语化学名:3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐商品名:噻唑蓝,是一种黄颜色的染料。
MTT 溶液的配制方法:通常,此法中的MTT 浓度为5mg/ml。
因此,可以称取MTT 0.5克,溶于100 ml的磷酸缓冲液(PBS)或无酚红的培养基中,用0.22μm滤膜过滤以除去溶液里的细菌,放4℃避光保存即可。
注意:1.在配制和保存的过程中,容器最好用铝箔纸包住,实验的时候一般关闭超净台上的日光灯来避光)。
2. 配制MTT时用PBS(ph=7.4)溶解,PBS配方:Nacl 8g +Kcl 0.2g +Na2HPO4 1.44g +KH2PO4 0.24g调pH 7.4,定容1L。
MTT法检测细胞存活及生长【分享】MTT法检测细胞存活及生长什么是MTT?MTT全称为-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide,汉语化学名为 3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐,商品名:噻唑蓝。
是一种黄颜色的染料。
什么是MTT法? 又称MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法。
其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒(Formazan)并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。
二甲基亚砜(DMSO)能溶解细胞中的甲瓒,用酶联免疫检测仪在490nm波长处测定其光吸收值,可间接反映活细胞数量。
在一定细胞数范围内,MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
该方法已广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。
它的特点是灵敏度高、经济。
缺点:由于MTT经还原所产生的甲瓒产物不溶于水,需被溶解后才能检测。
这不仅使工作量增加,也会对实验结果的准确性产生影响,而且溶解甲瓒的有机溶剂对实验者也有损害。
MTT 溶液的配制方法通常,此法中的MTT 浓度为5mg/ml。
因此,可以称取MTT 0.5克,溶于100 ml的磷酸缓冲液(PBS)或无酚红的培养基中,用0.22μm 滤膜过滤以除去溶液里的细菌,放4℃ 避光保存即可。
在配制和保存的过程中,容器最好用铝箔纸包住。
需要注意的是,MTT法只能用来检测细胞相对数和相对活力,但不能测定细胞绝对数。
在用酶标仪检测结果的时候,为了保证实验结果的线性,MTT 吸光度最好在0-0.7 范围内。
MTT一般最好现用现配,过滤后4℃避光保存两周内有效,或配制成5mg/ml 保存在-20度长期保存,避免反复冻融,最好小剂量分装,用避光袋或是黑纸、锡箔纸包住避光以免分解。
我一般都把MTT粉分装在EP管里,用的时候现配,直接往培养板中加,没必要一下子配那么多,尤其当MTT变为灰绿色时就绝对不能再用了。
简述mtt法能绘制细胞生长曲线的原理
MTT法(即3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide)是一种常用的细胞代谢活性检测方法,常用于测定细胞增殖与毒性的活性。
MTT法的原理是通过将MTT激发后生成的水溶性产物还原成紫色的颗粒沉淀,进而通过溶解颗粒沉淀来评估细胞数量和代谢活性。
主要步骤如下:
1. 细胞接种:将待测细胞接种在含有MTT试剂的培养皿中。
2. 细胞培养:细胞在MTT试剂中进行培养,培养期间细胞会代谢活跃并增殖。
3. 溶解颗粒沉淀:经过一定时间的培养后,MTT试剂会被还原成紫色的颗粒沉淀。
将培养皿中的培养液倒掉,然后加入溶解剂(如酒精或二甲基亚硫酸钠溶液)溶解颗粒沉淀。
4. 颜色测定:溶解颗粒沉淀溶解后的溶液会变成紫色,利用酶标仪或多孔板读取器测定溶液的光密度。
MTT法通过测定光密度来间接评估细胞的增殖与活性。
细胞越多,MTT试剂被还原成颗粒沉淀就越多,溶解后的溶液光密度就越高,说明细胞数目越多,代谢活性越高。
因此,通过测定光密度的变化可以绘制细胞生长曲线,反映细胞增殖与活性的变化情况。
生物化学MTT名词解释(一)原理MTT分析法以活细胞代谢物还原剂3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di-phenytetrazoliumromide, MTT(噻唑蓝)为基础。
MTT为黄色化合物,是一种接受氢离子的染料,可作用于活细胞线粒体中的呼吸链,在琥珀酸脱氢酶和细胞色素C的作用下tetrazolium环开裂,生成蓝色的formazan结晶,formazan结晶的生成量仅与活细胞数目成正比(死细胞中琥珀酸脱氢酶消失,不能将MTT还原)。
还原生成的formazan结晶可以用DMSO来溶解,利用酶标仪测定570 nm处的光密度OD值,以反映出活细胞数目。
(二)操作(实用于贴壁细胞)1、接种细胞:用含10%胎小牛血清得培养液配成单个细胞悬液,以每孔1000-10000个细胞接种到96孔板,每孔体积200ul、2、:培养细胞:同一般培养条件,培养2-3天(可根据试验目的和要求决定培养时间)。
3、显色:分别培养不同时间,每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS 配)20ul、继续孵育4小时,终止培养,小心吸弃孔内培养上清液,对于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培养上清液。
每孔加150ul DMSO,振荡10分钟,使结晶物充分融解。
4、比色:选择570nm波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值,记录结果,以时间为横坐标,吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
(三)结果以时间为横轴,光吸收值为纵轴绘制细胞生长曲线或计算细胞生长抑制率、细胞相对增殖率等。
【注意事项】1、选择适当得细胞接种浓度。
2、避免血清干扰:一般选小于10%的胎牛血清的培养液进行试验。
在显色后尽量吸尽孔内残余培养液。
3、设空白对照:与试验平行不加细胞只加培养液的空白对照。
其他试验步骤保持一致,最后比色以空白调零。
每组设定3复孔。
4、MTT粉末和溶液保存时都需要避光,用铝箔纸包好就可以。
5、酶联免疫检测仪使用前应打开电源预热半小时。
MTT法测定细胞生长曲线
1、取生长状况良好的细胞,常规消化制成单细胞悬液并计数,调整细胞成六个浓度梯度,依次为:5x103、1x104、2x104、3x104、4x104、5x104/ml,均匀接种细胞于96孔细胞培养板,每孔加细胞悬。
液200ul,每个浓度组设6个复孔,共接种7块培养板,37℃、5%C02浓度,饱和湿度培养箱中连续孵育24/48/72/96/120/148/172小时后。
2、每孔加入20ulMTT溶液(smg/m1用PBS<ph=7.4>配),继续孵育4h后终止培养。
3、快速翻转培养板,弃去上清液,每孔加入150ulDMSO,振荡10min,使MTT蓝紫色结晶完全溶解。
4、用酶联免疫检测仪于490nm处检测各孔的吸光值(OD值),并以未接种细胞只加培养基孔的吸光值为空白对照调零,取6孔平均值。
5、实验重复3次,以培养“时间”为横轴,“吸光值”为纵轴绘制细胞生长曲线。
悬浮细胞:MTT分析法是以活细胞代谢物还原剂3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide, MTT 噻唑蓝为基础。
MTT为黄色化合物,是一种接受氢离子的染料,可作用于活细胞线粒体中的呼吸链,在琥珀酸脱氢酶和细胞色素C的作用下tetrazolium环开裂,生成蓝色的for mazan结晶,formazan结晶的生成量仅与活细胞数目成正比(死细胞中琥珀酸脱氢酶消失,不能将MTT还原)。
还原生成的for mazan结晶可在含50%的N, N-二甲基甲酰胺和20%的十二甲基磺酸钠(pH 4.7)的MTT溶解液中溶解,利用酶标仪测定490 nm处的光密度OD值,以反映出活细胞数目。
也可以用DMSO来溶解。
MTT粉末和溶液保存时都需要避光,用铝箔纸包好就可以。
实验的时候建议关闭超净台上的日光灯来避光。
步骤如下:1:接种细胞:用含10%胎小牛血清的培养液配成单个细胞悬液,以每孔 1000-10000个细胞接种到96孔板,每孔体积200ul。
2:培养细胞:同一般培养条件,培养3-5天(可根据试验目的和要求决定培养时间)。
3: 呈色:培养3-5天后,每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS <ph=7.4>配)20ul. 继续孵育4小时,终止培养,小心吸弃孔内培养上清液,对于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培养上清液。
每孔加150ul DMSO,振荡10 分钟,使结晶物充分融解。
4:比色:选择490nm波长,在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸收值,记录结果,以时间为横坐标,吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
注意事项:1、选择适当得细胞接种浓度。
2、避免血清干扰:一般选小于10%的胎牛血清的培养液进行试验。
在呈色后尽量吸尽孔内残余培养液。
3、设空白对照:与试验平行不加细胞只加培养液的空白对照。
其他试验步骤保持一致,最后比色以空白调零。
生长曲线和细胞生长周期的测定MTT比色法绘制生长曲线生长曲线测定一般可用细胞计数法进行,但数值不够精确,可有20%-30%的误差,需结合其他指标进行分析。
原理:MTT,商品名噻唑蓝,是一种能接受氢原子的染料的四唑盐。
活细胞的线粒体中的琥珀脱氢酶能使外源性的MTT还原为难溶的蓝紫色结晶物并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。
二甲基亚砜能溶解细胞中的蓝紫色复合物,用酶联免疫检测仪在490nm波长处测定其光吸收值,可间接反映细胞数量。
在一定细胞数范围内,MTT结晶物形成的量与细胞数成正比。
步骤;1.接种:用含%10胎小牛血清的培养液配成细胞悬液,以每孔1000-10000个细胞接种到96孔板,每孔体积200ul.2细胞培养:同一培养条件,培养3-5天3呈色:培养3-5天后,每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS配制,ph=7.4)20ul.继续孵育4h。
终止培养,小心吸弃孔内培养基上清液,对于悬浮细胞需要分离后再吸弃孔内上清液。
每孔加150ul DMSO,脱色摇床震荡10min,使结晶充分溶解。
4.比色;选择490nm(570nm)波长,在没脸免疫检测仪上测定各孔光吸收值,记录时间,以时间为横坐标,吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
流式细胞仪测细胞生长周期:流式测细胞周期,只需在实验结束后收集细胞(细胞数量须达到2-5x105),离心,用PBS洗三次,再转移到1.5ml的EP管内,用预冷的70百分之的酒精固定1小时,就可以送到流式细胞仪检测。
流式细胞仪细胞周期检测流程1,做前提前换液,调整细胞状态,小皿或大皿(保证细胞达到10--100万个)。
2,遇冷PBS 清洗两次3,加入胰酶(Tripsin),静止2-3分钟(消化时间不要过长,以免损伤细胞),加入2-3mlDMEM慢慢吹打细胞成单细胞悬液。
4,1000rpm 离心3min5,去上清,加入遇冷PBS 1000rpm 离心3min6,去上清,加入0.5ml PBS(预冷)悬浮细胞7,加入1.5ml无水乙醇在漩涡器上涡旋(逐滴加入)8,-20℃固定过夜(overnight)9,拿出已固定细胞,1000rpm 离心3min 去上清10,加入预冷PBS 100rpm 离心3mim11,去上清加入500ul---1000ul 预冷PBS 悬浮细胞12,加入5-10ul RNA酶37℃水浴消化30min13,过400目细胞筛注入EP管,封口膜封口。
MTT 原理、步骤、结果分析方法及注意事项一、MTT 原理MTT 全称为3-(4,5)-dimethylthiahiazo(-2)-3,5-diphenytetrazoliumromide ,汉语化学名为3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐,商品名:噻唑蓝。
是一种黄颜色的染料。
MTT 比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法。
其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT 还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒(Formazan )并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。
二甲基亚砜(DMSO )能溶解细胞中的甲瓒,用酶联免疫检测仪在490 nm 波长处测定其光吸收值,可间接反映活细胞数量。
在一定细胞数范围内,MTT 结晶形成的量与细胞数成正比。
该方法已广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。
它的特点是灵敏度高、经济。
缺点:由于MTT 经还原所产生的甲瓒产物不溶于水,须被溶解后才能检测。
这不仅使工作量增加,这不仅使工作量增加,也会对实验结果的准确性产生影响,也会对实验结果的准确性产生影响,也会对实验结果的准确性产生影响,而且溶解甲的有而且溶解甲的有机溶剂对实验者也有损害。
二、MTT 溶液的配制方法通常,此法中的MTT 浓度为5 mg/mL 。
因此,可以称取MTT 0.5 g ,溶于,溶于100 mL 的磷酸缓冲液(PBS )或无酚红的培养基中,用0.22 μm 滤膜过滤以除去溶液里的细菌,放4℃避光保存即可。
在配制和保存的过程中,容器最好用铝箔纸包住。
纸包住。
实验的时候我一般关闭超净台上的日光灯来避光,实验的时候我一般关闭超净台上的日光灯来避光,实验的时候我一般关闭超净台上的日光灯来避光,觉得这样比较好。
觉得这样比较好。
觉得这样比较好。
需需要注意的是,MTT 法只能用来检测细胞相对数和相对活力,但不能测定细胞绝对数。
在用酶标仪检测结果的时候,为了保证实验结果的线性,MTT 吸光度最好在0-0.7范围内。
MTT实验
实验材料:
1,5%FBS-L-DMEM, 5x104个/ml细胞悬液,5mg/mlMTT溶液,DMSO,0.01M PBS, 2, 96孔板共7个,酶标仪,50ml离心管,1.5ml离心管,0.22μm滤膜,锡箔纸,MTT 工作液(1ml/管)
实验步骤:
1,分别选取生长良好的P1、P3、P5代BMSCs消化后制备成细胞悬液,调整细胞密度为5x104/ml。
接种到96孔板,每孔接种200μl细胞悬液进行培养(每孔1x104
细胞)。
2,培养16-48后,每天选择6个培养孔各自加入MTT溶液(5mg/ml)20μl,37℃继续孵育。
3,孵育4h后终止培养,吸出孔内上清,此时应该倾斜96孔板,用枪头小心的将上清液吸去,不可吸去下面的结晶颗粒,慢慢吸去。
每孔加入150μlDMSO,室温振
荡10min,使结晶充分溶解,于试验孔平行设不加细胞只加培养液的空白对照1
孔。
注意事项:
【1】1, 两种方法分离小型猪骨髓间充质干细胞的比较
分别取两组0,1,3代细胞,制成1x103的细胞悬液,接种到96孔板,每孔细胞悬液200微升,置37℃、5%CO2饱和湿度孵箱内孵育,各组每24小时分别取出4孔,每孔加入MTT(2mg/ml)20微升37℃孵育,4h后吸弃孔内培养液,每孔加入150微升分析纯的二甲基亚砜,移至酶联免疫检测仪上振荡10min,用分光光度计在492nm波长处测定每孔的吸光度值(OD492),以OD(492)值为纵坐标,时间为横坐标绘制生长曲线
【2】来自:SD大鼠骨髓间充质干细胞体外分离培养的实验研究
大鼠MSCs生长曲线测定:为了定量测定大鼠BMSCs的生长状况,对来源于同一动物的原代细胞进行连续培养。
分别选取生长良好的P1、P3、P5代BMSCs消化后制备成细胞悬液,调整细胞密度为5x104/ml。
接种到96孔板,每孔接种200μl细胞悬液进行培养(每孔1x104细胞)。
次日起每天选择6个培养孔各自加入MTT溶液(5mg/ml)20μl,37℃继续孵育4h后终止培养,吸出孔内上清,每孔加入150μlDMSO,室温振荡10min,使结晶充分溶解,于试验孔平行设不加细胞只加培养液的空白对照1孔。
在酶标仪上选择570nm波长,以空白孔调零,测定各孔吸光度(A)值,连续测7天,以时间为横轴,A值为纵轴绘制细胞生长曲线。
来自:2003人骨髓间充质干细胞的分离培养及部分生物学特性的实验研究
来自:2007贴壁法培养大鼠的骨髓间充质干细胞
来自:大鼠骨髓间充质干细胞移植促进皮肤创伤愈合的研究
(3)接种细胞时,尽量混匀后再接种,尽量保持每孔细胞数接近
(4)为防止96孔板的边缘效应,最好在实验组留出一空孔,内加平衡盐溶液,或者培养液以维持适当湿度,减少实验误差。
(5)加入MTT时每孔加入量很少,通常是10-15微升,不宜准确定量,可以事先算好要加入的培养液总量,以及所需MTT量,混匀后再加入培养孔内。
(6)加入MTT时,建议熄灭酒精灯,配置好的MTT应避光冷藏,一周内用完,最好在加入MTT前换一次液。
(7)在进行检测期间需要换液,换液时最好不用PBS洗,这样会损失紫色结晶,可以将96孔板拿掉铺几张滤纸在其上,小心将板翻过来,孔中液体会流出来,且不会损失,肉眼可见的结晶,加入MTT溶解液后,上下吸收可以完全溶解甲簪。
(8)为了防止板来回移动对细胞的影响,因此,把需要测得的孔,做完所有操作后吸出来,放在一个外面用的酶标板里,然后上机检测。
(9)MTT对菌很敏感,所以整个过程都要无菌。
保存在-20℃,防止反复冻融,保存到4℃最多一周。
一旦变为绿色应禁止使用。
(10)加入DMSO前需要去掉原培养液,但是去掉原培养液就怕会丢失结晶,因此。