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大肠杆菌中质粒DNA大量提取条件的优化大肠杆菌是一种常见的细菌，可以在肠道和环境中找到。
质粒DNA是一种重要的DNA 分子，常常存在于细菌中，并且可以通过大肠杆菌进行大量提取。
在实验室中，提取质粒DNA是进行分子生物学实验的重要步骤之一。
本文将讨论大肠杆菌中质粒DNA大量提取条件的优化。
大肠杆菌中质粒DNA提取的基本步骤包括：菌落培养、菌体收集、细胞壁裂解、质粒DNA纯化和质粒DNA溶解。
在这些步骤中，有许多条件可以进行优化，以提高质粒DNA的提取效率和纯度。
菌落培养是质粒DNA提取的起始步骤。
优化菌落培养条件可以提高菌体数量和质粒DNA含量。
需要注意的是，合适的培养温度、培养时间和培养培养基的选择对质粒DNA的提取有重要影响。
一般来说，37摄氏度是大肠杆菌的适宜培养温度，培养时间通常在12-16小时之间。
选择适当的培养基也是提高菌体数量的重要因素，例如LB培养基通常是质粒DNA提取的较好选择。
菌体收集和细胞壁裂解也是质粒DNA提取过程中的关键步骤。
优化细胞壁裂解条件可以有效释放质粒DNA，并避免蛋白质和其他杂质的污染。
通常使用裂解缓冲液和蛋白酶来实现细胞壁裂解，而优化裂解缓冲液的配方和蛋白酶的添加量可以影响质粒DNA的纯度和产量。
合适的菌体收集方法也可以避免细胞壁裂解过程中的损伤和污染。
质粒DNA纯化是提取过程中最重要的一步。
通过离心、吸附、洗涤和洗脱等步骤，可以将质粒DNA从混合物中分离出来。
在这些步骤中，合适的离心速度、吸附剂选择、洗涤缓冲液的配方和洗脱溶液的pH值等条件都可以进行优化，以提高质粒DNA的纯度和产量。
质粒DNA的溶解条件也对最终的提取结果有影响。
通常使用TE缓冲液（Tris-HCl和EDTA）来溶解质粒DNA，而调节TE缓冲液的pH值和温度可以影响质粒DNA的稳定性和可溶性。
大肠杆菌质粒DNA的提取一、大肠杆菌质粒DNA的提取质粒DNA的提取是从事基因工程工作中的一项基本实验技术，但提取方法有很多种，以下介绍一种最常用的方法:碱裂解法:此方法适用于小量质粒DNA的提取，提取的质粒DNA可直接用于酶切、PCR扩增、银染序列分析。
方法如下:1、接1%含质粒的大肠杆菌细胞于2ml LB培养基。
2、37?振荡培养过夜。
3、取1.5ml菌体于Ep管，以4000rpm离心3min，弃上清液。
4、加0.lml溶液I(1,葡萄糖，50mM/L EDTA pH8.0，25mM/L Tris-HCl pH8.0)充分混合。
5、加入0.2ml溶液 II(0.2 mM/L NaOH，1, SDS)，轻轻翻转混匀，置于冰浴5 min 。
6、加入0.15m1预冷溶液III(5 mol/L KAc，pH4.8)，轻轻翻转混匀，置于冰浴5 min 。
7、以10，000rpm离心20min，取上清液于另一新Ep管8、加入等体积的异戊醇，混匀后于?0?静置10min。
9、再以10，000rpm离心20min，弃上清。
10、用70,乙醇0(5ml洗涤一次，抽干所有液体。
11、待沉淀干燥后，溶于0(05mlTE缓冲液中煮沸法1、将1.5ml培养液倒入eppendorf管中,4?下12000,离心30秒。
2、弃上清，将管倒置于卫生纸上几分钟，使液体流尽。
3、将菌体沉淀悬浮于120ml STET溶液中, 涡旋混匀。
4、加入10ml新配制的溶菌酶溶液(10mg/ml), 涡旋振荡3秒钟。
5、将eppendorf管放入沸水浴中,50秒后立即取出。
6、用微量离心机4?下12000g离心10分钟。
7、用无菌牙签从eppendorf管中去除细菌碎片。
8、取20ml进行电泳检查。
[注意] 1. 对大肠杆菌可从固体培养基上挑取单个菌落直接进行煮沸法提取质粒DNA。
2. 煮沸法中添加溶菌酶有一定限度,浓度高时,细菌裂解效果反而不好。
感谢那些把自己的ppt放到网上的学长学姐！！要不然这实验怎么做！！设计实验报告12级七年儿科实验名称从动物肝组织样品中分离提取纯化鉴定一种酶实验目的1.掌握从肝细胞中分离提取纯化鉴定某种酶的实验方法2.培养灵活选择并综合使用各种生物学实验方法的能力3.培养探索精神和团队合作意识实验原理（一）材料的选择因动物肝脏中的酶往往结合较多的脂质、核酸的物质，所以取饥饿24小时的动物肝脏为实验材料。
（二）细胞破碎细胞破碎可选用三种方法：机械破碎法，物理破碎法，化学破碎法。
本次使用机械破碎法。
机械破碎法：可选匀浆法。
使用匀浆法时应先将大块的组织或者细胞团用组织捣碎机或研磨器械捣碎分散。
加入蛋白酶抑制剂的目的是防止蛋白酶的水解作用。
常用的蛋白酶抑制剂有苯甲基磺酰氟（PMSF）、二异丙基氟磷酸；金属蛋白酶抑制剂有EDTA和EGTA（乙二醇四乙酸）一般微生物和植物的粗酶液中有大量的核酸污染。
除核酸的常用方法是沉淀法，沉淀剂的选择需要大量的试验来选定，已知的有1%~2%的链霉素硫酸盐、PEG、溶菌酶等。
由于该酶的位置未知。
故应用超速离心分离技术分离胞液中的酶体和微粒体，细胞核和线粒体。
对三种成分分开研究，使得提取物中杂志减少。
（三）超速离心分离技术悬浮液静止不动时，由于重力场作用，悬浮颗粒就要逐渐的沉降下来，颗粒越重，下沉越快，反之则上浮。
但是颗粒在重力场中的沉降速度并不只与重量有关，还与密度，大小，形状有关。
但当颗粒大小小于几微米时沉降速度很慢而扩散现象非常严重。
所以必须用高速离心的方法，产生出强大的离心场，就产生了超速离心分离技术。
医保内不同结果的比重，大小，形态不同，在同一离心场中沉降速度不同。
可根据这一原理将亚细胞组分分离。
（四）酶的提取常用方法：盐溶液提取、酸溶液提取、碱溶液提取和有机溶剂提取。
本实验中因缺乏酶的更多信息，故采用盐溶液提取法。
盐溶液提取法盐溶液提取：适用于大多数酶。
盐溶现象：大多数P酶在低浓度的盐存在的条件下，酶的溶解度随盐浓度的升高而增加。
质粒提取的原理、操作步骤、各溶液的作用细菌质粒是一类双链、闭环的DNA，大小范围从1kb至200kb以上不等。
各类质粒都是存在于细胞质中、独立于细胞染色体之外的自主复制的遗传成份，通常情形下可持续稳固地处于染色体外的游离状态，但在必然条件下也会可逆地整合到寄主染色体上，随着染色体的复制而复制，并通过细胞割裂传递到后代。
质粒已成为目前最经常使用的基因克隆的载体分子，重要的条件是可取得大量纯化的质粒DNA分子。
目前已有许多方式可用于质粒DNA的提取，本实验采纳碱裂解法提取质粒DNA。
碱裂解法是一种应用最为普遍的制备质粒DNA的方式，其大体原理为：当菌体在NaOH和 SDS 溶液中裂解时，蛋白质与DNA发生变性，当加入中和液后，质粒DNA分子能够迅速复性，呈溶解状态，离心时留在上清中；蛋白质与染色体DNA不变性而呈絮状，离心时可沉淀下来。
纯化质粒DNA的方式一般是利用了质粒DNA相对较小及共价闭环两个性质。
例如，氯化铯-溴化乙锭梯度平稳离心、离子互换层析、凝胶过滤层析、聚乙二醇分级沉淀等方式，但这些方式相对昂贵或费时。
关于小量制备的质粒DNA，通过苯酚、氯仿抽提，RNA酶消化和乙醇沉淀等简单步骤去除残余蛋白质和RNA，所得纯化的质粒DNA已可知足细菌转化、DNA 片段的分离和酶切、常规亚克隆及探针标记等要求，故在分子生物学实验室中经常使用。
一、试剂预备1. 溶液Ⅰ: 50mM葡萄糖，25mM Tris-HCl(pH ，10mM EDTA(pH ）。
1M Tris-HCl<!--[if !supportAnnotations]--><!--[endif]--> (pH ）， EDTA（pH ）10ml，葡萄糖，加ddH2O至500ml。
在10 lbf/in2高压灭菌15min ，贮存于4℃。
任何生物化学反映，第一要操纵好溶液的pH，因此用适当浓度的和适当pH值的Tris-Cl溶液。
质粒提取是分子生物学中常用的实验技术，其目的是从细菌中提取出质粒DNA，用于后续的基因操作和分析。
下面是质粒提取的主要步骤和原理的详细解释。
一、质粒提取原理
质粒是细胞内的一种环状的小分子DNA，是进行DNA重组的常用载体。
作为一个具有自身复制起点的复制单位独立于细胞的主染色体之外，质粒DNA上携带了部分的基因信息，经过基因表达后使其宿主细胞表现相应的性状。
在DNA重组中，质粒或经过改造后的质粒载体可通过连接外源基因构成重组体。
从宿主细胞中提取质粒DNA，是DNA重组技术中最基础的实验技能。
二、质粒提取步骤
培养细菌使质粒扩增：将含有目标质粒的细菌接种在适当的培养基上，提供适当的条件（如温度、湿度和营养）使细菌生长和繁殖，从而使质粒得到扩增。
收集和裂解细菌：通过离心等方法收集培养好的细菌，然后使用适当的裂解液裂解细菌，使细菌的细胞壁和细胞膜破裂，释放出内部的质粒DNA。
分离和纯化质粒DNA：通过离心、过滤或层析等方法，将裂解液中的蛋白质、细胞碎片等杂质去除，得到相对纯净的质粒DNA。
这个过程中可能需要使用一些特殊的试剂或柱子来提高分离和纯化的效率。
通过以上步骤，我们可以从细菌中提取出高质量的质粒DNA，用于后续的基因操作和分析。
2020年上海市普通高中学业水平等级性考试生物试卷一、选择题1. “芳林新叶催陈叶，流水前波让后波”，新叶中叶绿素的合成必须含有的离子是（）A. Mg2+B. Fe2+C. Zn+D. Ca2+【答案】A【解析】【分析】细胞内的无机盐主要以离子的形式存在，有的无机盐是某些复杂化合物的组成成分，如Mg是叶绿素的组成成分，碘是甲状腺激素合成的原料，钙是骨骼和牙齿的组成成分等；许多无机盐对于维持细胞和生物体的生命活动具有重要作用，生物体内无机盐降低会出现相应的疾病；有的无机盐还对于维持酸碱平衡和渗透压具有重要作用。
【详解】Mg2+是叶绿素的组成成分，A正确。
故选A。
2. 观察1000个酵母菌有丝分裂，根据表格分析时间最长的是（）A. G1期B. G2期C. S期D. M期【答案】A【解析】【分析】分裂间期包括G1期、S期和G2期，主要特点是完成DNA的复制和蛋白质合成。
【详解】分析表格可知，G1期的细胞数目比S期多，说明G1期时间比S期长，A正确。
故选A。
3. B淋巴细胞分化形成浆细胞和记忆B淋巴细胞，他们相同的是（）A. 细胞形态相同B. 蛋白质相同C. 遗传物质相同D. mRNA相同【答案】C【解析】【分析】B淋巴细胞受到抗原刺激后，在淋巴因子的作用下，分化形成浆细胞和记忆B淋巴细胞。
【详解】A、细胞分化会导致细胞的形态结构和功能发生稳定性差异，故细胞形态不同，A错误；B、细胞分化的实质是基因的选择性表达，故产生的蛋白质不同，B错误；C、细胞分化过程中并不改变遗传物质，故三种细胞遗传物质相同，C正确；D、细胞分化的实质是基因的选择性表达，故转录产生的mRNA相同，D错误。
故选C。
4. HIV通过cd4受体主要感染T淋巴细胞，主要阻断了人体的（）A. 细胞免疫B. 体液免疫C. 非特异性免疫D. 特异性免疫【答案】A【解析】【分析】免疫分为非特异性免疫和特异性免疫，特异性免疫又包括体液免疫和细胞免疫．T淋巴细胞主要在细胞免疫中起作用，在体液免疫中主要起分泌淋巴因子的作用；B淋巴细胞主要在体液免疫中起作用。
质粒提取原理和方法质粒提取是从细菌基因组中提取出质粒DNA的一种方法。
它是分子生物学和遗传工程中常用的技术，可用于质粒的纯化和制备。
质粒提取的原理主要基于以下几个步骤：1.细菌培养：首先，我们需要将含有目标质粒的细菌培养在适当的培养基上，通过高速离心将细菌收集起来。
2.细菌溶解：将培养物进行离心，分离菌落。
然后采用一定的细胞破碎方法，如超声波震荡、冻融等，将细菌细胞壁破坏，使质粒DNA释放到溶液中。
3.质粒分离：通过离心将细菌碎片、蛋白质等杂质与质粒DNA分离。
一般是通过两次离心来完成，第一次较低速离心用于去除细菌碎片和细胞蛋白质，第二次较高速离心用于沉淀质粒DNA。
4.DNA纯化：将质粒DNA从上一步得到的沉淀物中提取出来。
可以使用酚/氯仿法、硅胶柱法、商用试剂盒等方法进行纯化。
其中酚/氯仿法是较为常用的方法，它可以将DNA溶于水相，而蛋白质和其他的污染物则溶于有机相。
5.DNA沉淀：将纯化得到的DNA溶液加入适量的酒精沉淀剂（如乙醇或异丙醇），再次进行高速离心，使DNA沉淀到离心管底部。
6.DNA洗涤：将离心管底部形成的DNA沉淀用70%乙醇洗涤，去除酒精沉淀剂和其他杂质。
然后用空气吹干，最后用一定体积的纯水或缓冲液溶解。
质粒提取的方法根据实验需求不同和实验室条件的不同可以有所差异，常用的方法有以下几种：1.酚/氯仿法：这是一种经典的DNA提取方法，它将质粒DNA溶于三氯甲烷和酚的混合物中，蛋白质和其他污染物则溶于酚相。
离心去除酚相，再用异丙醇沉淀DNA，最后用70%乙醇洗涤。
2.硅胶柱法：这是一种基于硅胶柱的离心柱技术，可用于高通量的质粒提取。
DNA样品在硅胶柱中被结合，杂质被洗掉，最后用纯水或缓冲液洗提质粒DNA。
3.磁珠法：这是一种基于磁性珠子的质粒提取方法，通过在磁性珠子表面修饰DNA结合物，使质粒DNA与磁性珠子结合。
通过外加磁场将磁性珠子与DNA一起沉淀，然后去除上清液，最后用纯水洗提DNA。
大肠杆菌质粒提取原理
大肠杆菌质粒提取的原理主要包括以下几个步骤：
1. 细胞裂解：将大肠杆菌菌落接种到液体培养基中培养，在适当的培养时间后，将菌液离心沉淀，得到含有大肠杆菌细胞的沉淀物。
细胞裂解是通过物理或化学方法破坏细胞壁，释放细胞的内容物。
2. 质粒提取：将裂解后的细胞加入适当的缓冲液中，经过离心分离得到上清液和沉淀物。
上清液中含有质粒DNA，而细胞碎片和其他细胞器等则在沉淀物中。
3. DNA纯化：使用DNA纯化试剂盒或其他纯化方法将上清液中的质粒DNA分离纯化。
这些方法通常涉及对上清液进行酚/氯仿提取、乙醇沉淀或离心柱纯化等步骤，以去除杂质和纯化质粒DNA。
4. 质粒DNA定量：使用紫外线分光光度计对纯化后的质粒DNA进行定量，以确定得到的DNA的浓度和纯度。
5. 质粒DNA的后续应用：得到纯化的质粒DNA后，可进一步进行测序、限制性酶切、聚合酶链式反应(PCR)等分子生物学实验，以研究质粒DNA所携带的目的基因的功能、构建重组质粒或进行基因克隆等实验。
需要注意的是，在文中不提供标题或重复的文字。
如果需要添加标题，可以根据具体内容进行修改。
大肠杆菌中质粒的小量提取及核酸电泳摘要：采用碱裂解法将大肠杆菌中的质粒DNA分子进行分离和纯化，将分离纯化后的质粒DNA分子进行琼脂糖凝胶电泳，并在紫外成像仪中观察DNA条带，以测定所得到的质粒DNA片段的分子量大小。
结果表明，成功从大肠杆菌中提取出质粒DNA分子，其分子量大小约为2000bp。
关键词：质粒DNA分子；碱裂解法；分子量；电泳引言质粒存在于许多细菌以及酵母菌等生物中，是细胞染色体外能够自主复制的很小的环状DNA分子。
碱裂解法是一种应用最为广泛的制备质粒DNA的方法，碱变性抽提质粒DNA是基于染色体DNA与质粒DNA的变性与复性的差异而达到分离目的。
在碱性电泳缓冲液中带负电荷，所以在外加电场作用下会向正极迁移。
将提取到的DNA 分子提取液中加入核酸染色剂，经过琼脂糖凝胶电泳后，利用紫外灯照射即可观察到所提取的DNA条带，第一泳道加入合适的Marker 与之进行比对，即可较为准确地估测出所提取出的质粒DNA分子量。
1 材料与方法1.1 实验材料(1) 含质粒Psd-T19的大肠杆菌(2) 试剂：细菌质粒小量提取试剂盒、琼脂糖，电泳缓冲液（TAE），核酸电泳上样缓冲液（6×），标准分子量的DNA等。
1.2 实验仪器微量移液器、试管、微波炉、离心机、电泳仪、凝胶成像系统、天平。
1.3 质粒的提取（小量试剂盒提取）(1) 首先取1.5ml混匀的菌液于1.5ml离心管中，台式离心机中12000r/m离心1min，弃上清液得到大肠杆菌菌体；(2) 按照试剂盒提取的步骤提取出大肠杆菌质粒DNA。
1.4 核酸电泳(1) 制备1%琼脂糖凝胶，并添加GoldVied I核酸染料；(2) 加样：在离心管中混合DNA样品2-3ul和1ul上样缓冲液。
采用梯度上样，上样量分别为2ul、4ul、6ul、8ul和5ulDNA分子量标记；(3) 电泳：120V，40min；(4) 观察：将电泳后的凝胶放置于透射紫外光下进行观察，对照分子量标记判断DNA样品的分子量大小。
2 实验结果与分析大肠杆菌在37℃恒温摇床中220r/min培养24h，离心收集菌液收集菌液，之后按照试剂盒的操作步骤进行质粒提取纯化，最后进行核酸电泳，电泳图如图1-1所示。
其中1,2,3,4分别代表质粒的上样量分别为2µL，4µL，6µL，,8µL，M代表5µL标准品。
DNA分子的分子量、分子构型的差异和所带电荷多少，都会影响电场中其迁移速率，另外琼脂糖凝胶的浓度、电压大小、缓冲液pH 和电泳时的温度等也影响迁移率，从而使DNA分子在凝胶中出现不同的区带。
如图1-1所示，从大肠杆菌中提取的质粒DNA分子的分子量大小为2000bp，梯度上样的对比结果表明最适上样量为6ul。
图1-1 1％核酸电泳图3结论所提取的质粒DNA分子量为2000kb，琼脂糖凝胶电泳最适上样量为6ul。
参考文献[1] 叶枫,董兴齐,彭何碧.四种提取细菌质粒DNA方法的比较[J].地方病通报,1994,9(4):66.[2] 黄永莲.琼脂糖凝胶电泳实验技术研究[J].湛江师范学院学报，2009，30(6):83-85.鸡肝中过氧化氢酶的提取、分离及检测摘要：为得到鸡肝中的过氧化氢酶，首先从肝中提取可溶性的蛋白质，并测定其蛋白质的含量和过氧化氢酶的活力；然后采用硫酸铵分级盐析及透析，并测定过氧化氢酶活力；最后采用SDS-凝胶电泳鉴定过氧化氢酶的纯度和测定其分子量。
选用考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白质含量，利用分光光度计测定过氧化氢酶活力。
结果表明，纯化后过氧化氢酶的总活性是4774U，比活性是155.43 U/(mg.N)，回收率是34%，纯化倍数是4.88，考马斯亮蓝G-250染色法测定的蛋白质含量是15.41mg/ml，SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳结果显示蛋白质的相对分子质量是。
关键词：蛋白质含量；酶活力；盐析及透析引言过氧化氢酶（Catalase，CAT）是一种酶类清除剂，又称为触酶，是以铁卟啉为辅基的结合酶[1]。
其普遍存在于能呼吸的生物体内，主要存在于植物的叶绿体、线粒体、内质网、动物的肝和红细胞中，其酶促活性为机体提供了抗氧化防御机理[2]，其次过氧化氢酶的应用也十分广泛[3]。
CAT在不同的组织中其活性水平高低不同。
过氧化氢在肝脏中分解速度比在脑或心脏等器官快，就是因为肝中的CAT含量水平高[4]。
考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白质含量属于染料结合法的一种。
考马斯亮蓝G-250在游离状态下呈红色，最大光吸收在465nm；当它与蛋白质结合后变为青色，蛋白质-色素结合物在595nm波长下有最大光吸收。
其光吸收值与蛋白质含量成正比，因此可用于蛋白质的定量测定。
以牛血清白蛋白(BSA)为标准品配制浓度梯度标准液，用考马斯亮蓝G-250法进行吸光值的测定，作标准曲线，依据标准曲线推算样品中蛋白质含量[5]。
酶活力单位指每毫升样品在反应体系中每分钟催化1nmolH2O2 降解定义为一个酶活力单位。
过氧化氢酶检测试剂盒(Catalase Assay Kit)是一种简单易行的通过显色反应来检测细胞、组织或其它样品中过氧化氢酶(Catalase)活性的试剂盒。
过氧化氢酶的活性可以用紫外分光光度计测定A240，H2O2在240nm有特征吸收峰，CA T能够分解H2O2，使反应溶液240nm下的吸光度随反应时间而下降，根据吸光度的变化率可计算出CAT活性。
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳，在聚丙烯酰胺凝胶系统中引进SDS，SDS能断裂分子内和分子间氢键，破坏蛋白质的二级和三级结构，强还原剂能使半胱氨酸之间的二硫键断裂，蛋白质在一定浓度的含有强还原剂的SDS溶液中，与SDS分子按比例结合，形成带负电荷的SDS-蛋白质复合物，这种复合物由于结合大量的SDS，使蛋白质丧失了原有的电荷状态形成仅保持原有分子大小为特征的负离子团块，从而降低或消除了各种蛋白质分子之间天然的电荷差异，由于SDS与蛋白质的结合是按重量成比例的，因此在进行电泳时，蛋白质分子的迁移速度取决于分子大小[6]。
当分子量在15KD到200KD之间时，蛋白质的迁移率和分子量的对数呈线性关系，符合下式：logMW=K-bX，式中：MW为分子量，X为迁移率，k、b均为常数，若将已知分子量的标准蛋白质的迁移率对分子量对数作图，可获得一条标准曲线，未知蛋白质在相同条件下进行电泳，根据它的电泳迁移率即可在标准曲线上求得分子量。
1材料与方法1.1 实验材料(1) 新鲜鸡肝、低分子量标准蛋白、透析袋。
(2) 试剂：硫酸铵、考马斯亮蓝G-250、牛血清白蛋白标准液、过氧化氢酶检测试剂盒、聚丙烯酰胺、SDS、TEMED、4%浓缩胶、12%分离胶、样品缓冲液、染色液、脱色液、电泳缓冲液。
1.2 实验仪器可见分光光度计、研钵、冷冻离心机、电泳仪、垂直板电泳装置。
1.3水浸提法提取过氧化氢酶(1) 肝脏研磨液的制取；(2) 水浸提法提取过氧化氢酶按研磨液与水的体积比为1:5计算，加入相应体积的样品提取缓冲液浸提，浸提温度为25℃，浸提时间为5 h左右。
4℃10000r/min离心20 min，得上清液备用；(3) 将上清液分为3份：一份用于测总蛋白含量及过氧化氢酶活性；一份保存冰箱中用于最后SDS-PAGE电泳；另取一份用于盐析、透析等。
1.4 过氧化氢酶粗酶液的分级盐析及透析(1) 将硫酸铵研磨成粉末加入粗酶液中，使达40%饱和度（使大部分杂蛋白沉淀），在电磁搅拌器上边搅拌边加入，然后置冰箱放置1～2h。
(2) 12000 r/min冷冻离心20min。
收集上清液S1（取部分上清液测总蛋白及酶活力）。
上清液中再加入硫酸铵使达80%饱和度，放置1h左右，12000r/min冷冻离心20min，收集上清液S2（取部分上清液测总蛋白及酶活力）。
(3) 将第二次离心的沉淀复溶于1/20原始体积的缓冲液中，装入透析袋中，用大量的此缓冲液在冰箱中进行透析过夜（4℃），其间更换缓冲溶液约3-4次，直至无白色沉淀析出为止（用BaCl2溶液检查）。
透析完毕后，将提取液保存于冰箱中备用，取部分提取液测总蛋白及酶活力，也留部分进行SDS电泳。
1.5 考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白质含量1.5.1蛋白标准曲线的制作以蛋白质含量为横坐标，吸光度值为纵坐标，绘制牛血清蛋白含量标准曲线。
1.5.2样品测定取一支试管，加入末知浓度稀释20倍的蛋白质溶液1ml，考马斯亮蓝G250试剂5ml，放置5min后，在595nm波长下比色，记录A595nm。
对照标准曲线求得末知蛋白浓度。
1.6 过氧化氢酶活力的测定(1) 分光光度计预热30min，调节波长到240nm，蒸馏水调零。
(2) 测定前将CAT检测工作液25℃水浴10min。
(3) 加入10ul样本和190ul工作液，混匀5s并立即计时，记录240nm下初始吸光值A1和1min后的吸光值A2。
CAT（U/ml）=反应液总体积÷样本体积÷反应时间÷H2O2消光系数（43.6×10-3）×△A=459×△A1.7 SDS-PAGE电泳测定蛋白质相对分子质量(1) 配胶：4%浓缩胶、12%分离胶。
(2) 制备凝胶板：混合分离胶各组分，用移液管快速加入分离胶，大约5cm左右，之后加少许蒸馏水，静置至溶液聚合。
(3)加样样品在沸水中加热5min，去掉亚稳态聚合，上样量10ul。
(4) 电泳：开始电压恒定在70V，当进入分离胶后改为150V，溴酚蓝距凝胶边缘约1cm时，停止电泳。
(5) 凝胶板剥离与染色：取出凝胶板，加入染色液，染色30min 左右。
(6) 脱色：蒸馏水漂洗，脱色液脱色，直到蛋白质区带清晰。
2实验结果与分析考马斯亮蓝G-250染色法测定的牛血清蛋白含量标准曲线方程为y=0.0062x+0.0072(R2=0.9985)，标准曲线图如图1所示。
图1牛血清蛋白含量测定标准曲线图表1酶液酶液总体积（ml）蛋白质（mg/ml）酶活性（U/ml）总活性（U）比活性[U/(mg.N)]回收率（%）纯化倍数粗酶液57 7.66 244 13912 31.85 100 1 上清S1 59 5.37 190 11210 35.38 81 1.11 上清S2 55 0.95 / / / / / 透析后11 15.41 2395 4774 155.43 34 4.883结论参考文献[1]刘昌玲,王国庆.细菌过氧化氢酶的分离结晶及性质[J].生物化学与生物物理进展,1900,17(5):380-383.[2]黄永洪,花慧,等.猪肝过氧化氢酶提取条件的研究[J].生物技术通讯,2005,16(1):40-42.[3]张坤生,田荟琳.过氧化氢酶的功能及研究[M].食品科技,2007,1:8-11.[4]刘冰,梁婵娟.生物过氧化氢酶研究进展[J].中国农学通报,2005,21(5):223-232.[5]王孝平,邢树礼.考马斯亮蓝法测定蛋白含量的研究[M].天津化工,2009,23(3):13-14.[6] 朱广廉,杨中汉. SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法测定蛋白质的分子量[M].植物生理学通讯,1982(2)：43-47.。
