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流式细胞仪检测细胞凋亡——PI单染色法碘化丙啶（propidium iodide，PI）检测早期死亡细胞膜通透性状态的不同是区分细胞凋亡和坏死的一个重要指标，凋亡细胞在进入最终溶解阶段前，细胞膜通透性无明显改变，相对分子质量大的与DNA结合的荧光染料(如PI)不能进入凋亡细胞内，而相对分子质量小的荧光染料（如Hoechest 3342或33258等）仍能被细胞摄取。
应用流式细胞仪或荧光显微镜可区分和坏死细胞，细胞内DNA出现Hoechest 3342标记而不出现PI标记的为凋亡细胞。
基本原理其原理主要是根据细胞凋亡时在细胞、亚细胞和分子水平上所发生的特征性改变.这些改变包括细胞核的改变、细胞器的改变、细胞膜成分的改变和细胞形态的改变等，其中细胞核的改变最具特征性，主要包括以下几个方面：1. 细胞核的改变：由于凋亡细胞核的改变，造成各种染色体荧光染料对凋亡细胞DNA可染性发生改变。
研究表明，用各种染色体荧光染料对经固定的凋亡细胞进行染色，其DNA可染性降低。
许多学者把这种DNA可染性的降低认为是凋亡细胞的标志之一。
2。
光散射特性：凋亡细胞形态上的改变影响它们的光散射特性。
在流式细胞仪上，前散射光与细胞的大小有关，而侧散射光反映的是光在细胞内的折射作用,与细胞内的颗粒多少有关。
在细胞凋亡时，细胞固缩，体积变小，故前散射光降低，这一特性往往被认为是凋亡细胞的特点之一。
此外细胞凋亡时由于染色体降解，核破裂形成，细胞内颗粒往往增多，故凋亡细胞侧散射光常增加.细胞坏死时,由于细胞肿胀,其前散射光增大；侧散射光在细胞坏死时也增大，因此可根据前散射光和侧散射光区别凋亡细胞和坏死细胞。
但需要注意的是，根据前散射光和侧散射光判断凋亡细胞的可靠性受被检测细胞形态上的均一性和核胞浆比率影响很大。
因此在某些淋巴细胞凋亡中，用光散射特性检测凋亡的可靠性较好，而在肿瘤细胞凋亡中,其可靠性就较差。
根据光散射特性检测凋亡细胞最主要的优点是可以将光散射特性与细胞的表面免疫荧光分析结合起来，用以区别经这些特殊处理发生选择性凋亡的淋巴细胞亚型。
PI三步法DNA定量检测技术
徐晓雪;王兴翠;孙丽娜
【期刊名称】《首都医科大学学报》
【年(卷),期】2008(29)5
【摘要】DNA定量检测技术是根据细胞周期中不同时相DNA含量的变化来检测细胞周期中G0／G1、S及G2／M各时相的细胞比例，在临床肿瘤诊断和医学科研中都有重要作用。
本文介绍了一种简便实用的碘化丙啶（Propidium Iodide，PI）染色方法，同时对染色中容易忽视的技术细节提出了一些规范性的建议。
【总页数】2页(P658-659)
【作者】徐晓雪;王兴翠;孙丽娜
【作者单位】首都医科大学医学实验与测试中心;首都医科大学化学生物学与药学院
【正文语种】中文
【中图分类】R4
【相关文献】
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三氧化二砷对HL-60细胞凋亡及其端粒酶hTERT-mRNA表达影响的实验研究章尧;赵燕;陈昌杰【期刊名称】《中国药理学通报》【年(卷),期】2003(019)002【摘要】目的探讨不同浓度的三氧化二砷(As2O3)对急性早幼粒细胞白血病细胞株HL-60细胞端粒酶亚单位hTERT-mRNA表达及其诱导凋亡的作用.方法不同浓度的As2O3与HL-60细胞株共培养48 h,流式细胞术鉴定HL-60细胞凋亡;RT-PCR法检测HL-60细胞端粒酶亚单位hTERT mRNA的表达.结果在0.1、1.0和5.0 μmol*L-1 3种浓度的As2O3作用下,HL-60细胞凋亡率分别为2.28%±0.40%、2.55%±0.22%和47.57%±2.79%;端粒酶亚单位hTERT-mRNA 表达的相对值分别为73.97%、63.70%和29.04%.细胞凋亡率在5.0 μmol*L-1与0.1和1.0 μmol*L-1浓度组间差异有显著性(P<0.01);端粒酶亚单位表达的差异也有显著性(P<0.05).As2O3诱导HL-60细胞凋亡效应与其抑制端粒酶亚单位hTERT mRNA的表达相关.结论 As2O3对HL-60细胞具有凋亡诱导效应,且对其端粒酶亚单位hTERT mRNA的表达具有抑制作用,两者均呈现浓度依赖效应.As2O3可能通过抑制HL-60细胞端粒酶亚单位hTERT mRNA的表达而诱导肿瘤细胞凋亡.【总页数】4页(P206-209)【作者】章尧;赵燕;陈昌杰【作者单位】蚌埠医学院医学检验系,蚌埠,233003;蚌埠医学院医学检验系,蚌埠,233003;蚌埠医学院医学检验系,蚌埠,233003【正文语种】中文【中图分类】R955;R329.24;R329.25【相关文献】1.三氧化二砷对HL-60细胞凋亡及Survivin和Caspase-3表达的影响 [J], 陈昌杰;陈正徐;章尧2.三氧化二砷对HL-60细胞端粒酶活性表达的抑制作用 [J], 章尧;赵燕;陈昌杰3.硼替佐米或联合三氧化二砷诱导HL-60细胞凋亡实验研究 [J], 孙启鑫;孟凡义;扶云碧;李利;田帅4.尼美舒利对SGC-7901胃癌细胞系增殖及端粒酶hTERT-mRNA表达的影响 [J], 廖爱军;刘立玺;石巍;申月明5.三氧化二砷诱导HL-60细胞凋亡的实验研究 [J], 王展翔;许勇钢;廖军鲜;麻柔;周霭祥因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
细胞凋亡的几种检测方法本页仅作为文档封面，使用时可以删除This document is for reference only-rar21year.March细胞凋亡的几种检测方法1、形态学观察方法（1）HE（苏木精—伊红染色法）染色、光镜观察：凋亡细胞呈圆形，胞核深染，胞质浓缩，染色质成团块状，细胞表面有“出芽”现象。
（2）丫啶橙（AO)染色，荧光显微镜观察：活细胞核呈黄绿色荧光，胞质呈红色荧光。
凋亡细胞核染色质呈黄绿色浓聚在核膜内侧，可见细胞膜呈泡状膨出及凋亡小体。
（3）台盼蓝染色：如果细胞膜不完整、破裂，台盼蓝染料进入细胞，细胞变蓝，即为坏死。
如果细胞膜完整，细胞不为台盼蓝染色，则为正常细胞或凋亡细胞。
此方法对反映细胞膜的完整性，区别坏死细胞有一定的帮助。
（4）透射电镜观察：可见凋亡细胞表面微绒毛消失，核染色质固缩、边集，常呈新月形，核膜皱褶，胞质紧实，细胞器集中，胞膜起泡或出“芽”及凋亡小体和凋亡小体被临近巨噬细胞吞噬现象。
2、 DNA凝胶电泳细胞发生凋亡或坏死，其细胞DNA均发生断裂，细胞内小分子量DNA片断增加，高分子DNA减少，胞质内出现DNA片断。
但凋亡细胞DNA断裂点均有规律的发生在核小体之间，出现180－200bpDNA片断，而坏死细胞的DNA断裂点为无特征的杂乱片断，利用此特征可以确定群体细胞的死亡，并可与坏死细胞区别。
正常活细胞DNA 电泳出现阶梯状（LADDER)条带；坏死细胞DNA电泳类似血抹片时的连续性条带3、酶联免疫吸附法（ELISA)核小体测定凋亡细胞的DNA断裂使细胞质内出现核小体。
核小体由组蛋白及其伴随的DNA片断组成，可由ELISA法检测。
检测步骤1、将凋亡细胞裂解后高速离心，其上清液中含有核小体；2、在微定量板上吸附组蛋白体’3、加上清夜使抗组蛋白抗体与核小体上的组蛋白结合‘4、加辣过氧化物酶标记的抗DNA抗体使之与核小体上的DNA结合’4、加酶的底物，测光吸收制。
细胞凋亡染色种类
细胞凋亡染色有多种方法，包括以下几种常见的染色种类：
1. HE染色：这是一种常用的细胞凋亡染色方法，使用苏木素-伊红染料对细胞进行染色。
在光学显微镜下观察，凋亡细胞会呈现圆形，胞核深染，胞质浓缩，染色质成团块状的现象。
2. Giemsa染色：Giemsa染色也是一种常见的细胞凋亡染色方法。
正常细胞的核色泽均一，而凋亡细胞的染色质会浓缩、边缘化，核膜裂解，染色质分割成块状和凋亡小体等。
3. AO/PI双染色法：吖啶橙(AO)是一种荧光染料，能透过细胞膜使核DNA和RNA染色。
在荧光显微镜下观察，活细胞核呈黄绿色荧光，胞质呈红色荧光。
凋亡细胞核染色质呈黄绿色浓聚在核膜内侧，可见细胞膜呈泡状膨出及凋亡小体。
碘化丙啶(PI)是一种DNA 结合性染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜而将细胞核染红。
因此，通过AO/PI双染色法可以区分活细胞、凋亡细胞和坏死细胞。
4. Hoechst染色：Hoechst染料与DNA的结合是非嵌入式的，主要结合在DNA的A-T碱基区。
在紫外光激发下，活细胞核呈均匀淡蓝色荧光，凋亡细胞则呈现亮蓝色，或核呈分叶状、边集的荧光。
5. TUNEL染色：这是一种检测细胞凋亡中DNA断裂的方法。
在细胞凋亡过程中，会激活DNA内切酶，导致DNA断裂。
TUNEL 染色可以标记这些断裂的DNA，从而检测细胞凋亡。
以上信息仅供参考，如需了解更多关于细胞凋亡染色的信息，建
议查阅专业书籍或咨询相关领域的专家。
细胞凋亡检测，细胞凋亡实验步骤，检测方法一、定性和定量研究只定性的研究方法：常规琼脂糖凝胶电泳、脉冲场倒转琼脂糖凝胶电泳、形态学观察（普通光学显微镜、透射电镜、荧光显微镜）进行定量或半定量的研究方法：各种流式细胞仪方法、原位末端标记法、ELISA定量琼脂糖凝胶电泳。
二、区分凋亡和坏死可将二者区分开的方法：琼脂糖凝胶电泳，形态学观察（透射电镜是是区分凋亡和坏死最可靠的方法），Hoechst33342/PI双染色法流式细胞仪检测，AnnexinV/PI双染色法流式细胞仪检测等。
不能将二者区分开的方法：原位末端标记法、PI单染色法流式细胞仪检测等。
三、样品来源不同选择组织：主要用形态学方法(HE染色，透射电镜、石蜡包埋组织切片进行原位末端标记，ELISA 或将组织碾碎消化做琼脂糖凝胶电泳)。
四、细胞凋亡检测1、早期检测:1) PS(磷脂酰丝氨酸)在细胞外膜上的检测2)细胞内氧化还原状态改变的检测3)细胞色素C的定位检测4) 线粒体膜电位变化的检测2、晚期检测：细胞凋亡晚期中，核酸内切酶在核小体之间剪切核DNA，产生大量长度在180-200 bp 的DNA片段。
对于晚期检测通常有以下方法：1) TUNEL(末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记)2) LM-PCR Ladder (连接介导的PCR检测)3) Telemerase Detection (端粒酶检测)3、生化检测：1）典型的生化特征：DNA 片段化2）检测方法主要有：琼脂糖凝胶电泳、原位末端标记（TUNEL）等3）TUNEL（末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记）4）通过DNA末端转移酶将带标记的dNTP （多为dUTP）间接或直接接到DNA片段的3’-OH端，再通过酶联显色或荧光检测定量分析结果。
可做细胞悬液、福尔马林固定或石蜡处理的组织、细胞培养物等多种样本的检测。
4、LM-PCR Ladder (连接介导的PCR检测)当凋亡细胞比例较小以及检测样品量很少（如活体组织切片）时，直接琼脂糖电泳可能观察不到核DNA的变化。
常用细胞凋亡检测方法更新日期：2009-03-23受关注度：324920 [ 哪个强 : 丁香园医学搜索引擎搜狗有道百度谷歌 ]∙上一篇：细胞冻存、解冻方法与细胞计数∙下一篇：没有了∙挑错∙推荐∙打印生物医学药学信息产业实验机构人物论坛, 分子生物学,基因芯片,细胞生物学,神经生物学,细胞,分子,基因,研究动态,生物产业,人才,招聘,求职,神经科学,生物学,功能基因组学,基础医学,功能蛋白组学,生物信息学,生命科学,生物技术,生物芯片,基因芯片,基因工一的形态学检测1 光学显微镜和倒置显微镜（1）未染色细胞：凋亡细胞的体积变小变形，细胞膜完整但出现发泡现象，晚期可见凋亡小体贴壁细胞出现皱缩变圆脱落（2）染色细胞：常用姬姆萨染色瑞氏染色等凋亡细胞的染色质浓缩边缘化，核膜裂解染色质分割成块状和凋亡小体等典型的凋亡形态2 荧光显微镜和共聚焦激光扫描显微镜一般以细胞核染色质的形态学改变为指标来评判的进展情况常用的DNA特异性染料有：HO 33342 (Hoechst 33342)，HO 33258 (Hoechst 33258)， DAPI三种种染料与DNA的结合是非嵌入式的，主要结合在DNA的A-T 碱基区紫外光激发时发射明亮的蓝色荧光Hoechst是与DNA特异结合的活性染料，储存液用蒸馏水配成1mg/ml的浓度，使用时用PBS稀释，终浓度为10ug/mlDAPI为半通透性，用于常规固定细胞的染色储存液用蒸馏水配成1mg/ml 的浓度，使用终浓度一般为10ug/ml结果评判：过程中细胞核染色质的形态学改变分为三期：Ⅰ期的细胞核呈波纹状（rippled）或呈折缝样（creased），部分染色质出现浓缩状态；Ⅱa期细胞核的染色质高度凝聚边缘化；Ⅱb期的细胞核裂解为碎块，产生凋亡小体图1：3 透射电子显微镜观察结果评判：凋亡细胞体积变小，细胞质浓缩凋亡Ⅰ期（pro-apoptosis nuclei）的细胞核内染色质高度盘绕，出现许多称为气穴现象（cavitations）的空泡结构图2：；Ⅱa期细胞核的染色质高度凝聚边缘化；的晚期，细胞核裂解为碎块，产生凋亡小体二磷脂酰丝氨酸外翻分析（Annexin V法）磷脂酰丝氨酸（Phosphatidylserine，PS）正常位于细胞膜的内侧，但在的早期，PS可从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面，暴露在细胞外环境中图3：Annexin-V是一种分子量为35～36KD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，能与PS高亲和力特异性结合将Annexin-V进行荧光素（FITC PE）或biotin标记，以标记了的Annexin-V作为荧光探针，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测的发生碘化丙啶（propidine iodide，PI）是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜而使细胞核红染因此将Annexin-V与PI匹配使用，就可以将凋亡早晚期的细胞以及死细胞区分开来方法：1 悬浮细胞的染色：将正常培养和诱导凋亡的悬浮细胞（0.5～1×106）用PBS洗2次，加入100ul Binding Buffer和FITC标记的Annexin-V（20ug/ml）10ul，室温避光30min，再加入PI（50ug/ml）5ul，避光反应5min后，加入400ul Binding Buffer，立即用FACScan进行流式细胞术定量检测（一般不超过1h），同时以不加AnnexinV-FITC及PI的一管作为阴性对照2 贴壁培养的细胞染色：先用0.25%的胰消化，洗涤染色和分析同悬浮细胞3 爬片细胞染色：同上，最后用荧光显微镜和共聚焦激光扫描显微镜进行观察结果图4图5：注意事项：1 整个操作动作要尽量轻柔，勿用力吹打细胞2 操作时注意避光，反应完毕后尽快在一小时内检测时主要的生化特征是其染色质发生浓缩，染色质DNA在核小体单位之间的连接处断裂，形成50～kbp长的DNA大片段，或180～200bp整数倍的寡核苷酸片段，在凝胶电泳上表现为梯形电泳图谱（DNA ladder）细胞经处理后，采用常规方法分离提纯DNA，进行琼脂糖凝胶和溴化乙啶染色，在凋亡细胞群中可观察到典型的DNA ladder如果细胞量很少，还可在分离提纯DNA后，用32P-ATP和脱氧核糖核苷酸末端转移（TdT）使DNA标记，然后进行电泳和放射自显影，观察凋亡细胞中DNA ladder的形成1 大分子染色体DNA片段的测定的早期,染色体断裂成为50～kbp长的DNA大片段所有超过一定分子量大小的双链DNA分子在琼脂糖凝胶中的迁移速度相同线性DNA的双螺旋半径超过凝胶半径时，即达到分辨力的极限此时凝胶不再按分子量的大小来筛分DNA，DNA像通过弯管一样，以其一端指向电场一极而通过凝胶，这种迁移模式称之为"爬行"因此，早期产生的50～kbp长的DNA大片段不能用普通的琼脂糖凝胶电泳来分离通常采用脉冲电泳技术可圆满地解决这一问题这个方法是在凝胶上外加正交的交变脉冲电场每当电场方向改变后，大的DNA分子便滞流在爬行管中，直至新的电场轴向重新定向后，才能继续向前移动DNA分子量越大，这种重排所需要的时间就越长当DNA分子变换方向的时间小于电脉冲周期时，DNA 就可以按其分子量大小分开参考文献Brown,D.G., Sun, X.M., and Cohen, G.M.(1993) Dexamethasone-induced apoptosis involves cleavage of DNA to large fragments prior to internucleosomal fragmentation. J. Biol.Chem. 268, 3037-30392 DNA Ladder 测定方法：收获细胞（1′107）沉淀？细胞裂解液？10rpm′5min，收集上清？1%SDS和RnaseA（5mg/ml）56°C，2h？蛋白K（2.5mg/ml）37°C，2h？1/10体积3M醋酸钠和2.5倍体积的冷无水乙醇沉淀DNA，4°C过夜？14000rpm′15min？最后将沉淀溶解在TE buffer中，加DNA Loading Buffer？1.2%琼脂糖凝胶电泳，EB染色并照相结果：图6：参考文献 Herrmannm M, Lorenz HM, Voll R et al. A Rapid and simple method for the isolation of apoptotic DNA fragments. Nucleic Acid Res. 1994; 22:5506-55073 凋亡细胞DNA含量的流式细胞计分析方法：收集细胞？70%冷乙醇（in PBS）4°C固定过夜？PBS洗涤，1000rpm′10min？RNase A（0.5mg/ml）37°C消化30min？PI（50mg/ml）染色，室温避光15min？FACScan分析DNA亚二倍体的形成及细胞周期的变化结果：图8：4 ApoAlertTM LM- Ladder Assay (CLONTECH)优点：敏感度高，适合于检测少量样本，小部分凋亡细胞如临床活组织检测。
碘化丙啶染色流式细胞术分析肿瘤细胞凋亡的方法学探讨李妍;王海;张铎;李瑶;曹慧玲【摘要】@@ 针对凋亡细胞的生物化学改变[1],已经建立了多种基于FCM来检测凋亡的方法.其中,碘化丙啶单染(propidium iodide,PI )单染法和PI/ AnnecxinⅤ 双染法应用最为广泛[2].双染法可精确区分早期凋亡、晚期凋亡和坏死细胞.虽然PI 单染法仅能检测到晚期凋亡和坏死细胞,但因操作简单、试剂廉价,更适合样本量大的预实验或新药筛选.实践中发现,细胞培养、收集和染色等环节,存在多处影响检测结果的因素.本文以贴壁生长的Hela为例,从样品制备的角度出发,讨论影响PI染色检测凋亡的因素.【期刊名称】《中国实验诊断学》【年(卷),期】2012(016)005【总页数】2页(P799-800)【作者】李妍;王海;张铎;李瑶;曹慧玲【作者单位】吉林医药学院检验学院,吉林,吉林132013;吉林大学中日联谊医院检验科,吉林,长春130033;吉林医药学院检验学院,吉林,吉林132013;吉林医药学院检验学院,吉林,吉林132013;吉林医药学院科研处,吉林,吉林132013【正文语种】中文针对凋亡细胞的生物化学改变［1］，已经建立了多种基于FCM来检测凋亡的方法。
其中，碘化丙啶单染（propidium iodide，PI）单染法和 PI／AnnecxinⅤ双染法应用最为广泛［2］。
双染法可精确区分早期凋亡、晚期凋亡和坏死细胞。
虽然PI单染法仅能检测到晚期凋亡和坏死细胞，但因操作简单、试剂廉价，更适合样本量大的预实验或新药筛选。
实践中发现，细胞培养、收集和染色等环节，存在多处影响检测结果的因素。
本文以贴壁生长的Hela为例，从样品制备的角度出发，讨论影响PI染色检测凋亡的因素。
1 材料与方法1.1 材料人宫颈癌细胞Hela引自美国典型物种保藏中心，去甲斑蝥素（norcantharidin，NCTD）购自国家标准物质中心，胰蛋白酶（trypsin）、乙二胺四乙酸（EDTA）二钠、PI和 Triton X－100和台盼蓝购自Sigma公司（美国）。
AnnexinV-FITCPI双染法流式细胞术检测细胞凋亡看到来我们眼科公共平台来使用Fortessa检测凋亡时，看到很多人都是泪流满面，鉴于此，作者大找网络资源结合自己的理解，针对普遍的问题给眼科的童鞋们一个交代，期待对大家有用，期待大家板砖！！Reference1. Galluzzi L, Aaronson SA, Abrams J, et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring cell death in higher eukaryotes. Cell Death Differ 2009; 16:1093-107.一、原理在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸（PS）只分布在细胞膜脂质双层的内侧，而在细胞凋亡早期，细胞膜中的磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧。
Annexin V是一种分子量为35~36kD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力，故可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。
因此Annexin V被作为检测细胞早期凋亡的灵敏指标之一。
将Annexin V进行荧光素（FITC）标记，以标记了的Annexin V作为荧光探针，利用荧光显微镜或流式细胞仪可检测细胞早期凋亡的发生。
碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但对凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜而使细胞核染红。
因此将Annexin V与PI（7-AAD也可以）匹配使用，就可以将处于不同凋亡时期的细胞区分开来。
二、注意事项1．Annexin V-EGFP，Propidium Iodide （PI）避光保存及使用。
2． Propidium Iodide （PI）有毒，操作时要戴手套。
3．推荐使用悬浮培养细胞，如果是贴壁细胞，用胰酶消化不当，会引起假阳性，而用细胞刮子会造成细胞粘连成团，而影响检测。
三氧化二砷诱导HL-60细胞凋亡的实验研究王展翔;许勇钢;廖军鲜;麻柔;周霭祥【期刊名称】《中国中西医结合杂志》【年(卷),期】2000(20)7【摘要】目的：探讨三氧化二砷（Ａｓ_２Ｏ_３）治疗白血病的疗效机理。
方法：以ＨＬ－６０细胞株为体外模型，终浓度为０．２０μｍｏｌ／ＬＡｓ２_Ｏ_３作用２４、４８ｈ后，用ＰＩ／ＡｎｎｅｘｉｎＶ－ＦＩＴＣ双标记，流式细胞术观察Ａｓ_２Ｏ_３对ＨＬ－６０细胞凋亡及其对细胞株端粒酶活性的影响。
结果：Ａｓ２_Ｏ_３作用于ＨＬ－６０细胞后ＰＩ阴性／ＡｎｎｅｘｉｎＶ－ＦＩＴＣ阳性细胞增多，提示细胞发生凋亡，ＤＮＡ周期分析显示主要作用在细胞Ｇ_２－Ｍ期，４８ｈ对端粒酶有轻微抑制作用。
结论：Ａｓ_２Ｏ_３主要通过诱导细胞凋亡杀伤白血病细胞。
【总页数】3页(P536-538)【关键词】三氧化二砷;HL-60;细胞凋亡;端粒酶;白血病【作者】王展翔;许勇钢;廖军鲜;麻柔;周霭祥【作者单位】中国中医研究院西苑医院血液科,全国中医血液病医疗中心【正文语种】中文【中图分类】R733.705;R73－36【相关文献】1.内源性TGF-β1、TNF-α在三氧化二砷诱导HL-60细胞凋亡中作用的研究 [J], 陈元仲;吴勇;黄美娟;吕联煌2.三氧化二砷和曲古抑菌素A协同诱导HL-60细胞凋亡的作用及分子机制研究[J], 杨炜华;温培娥;谢超;乔高娟;任霞;任海泉;唐天华;姜国胜3.三氧化二砷对HL-60细胞凋亡及其端粒酶hTERT-mRNA表达影响的实验研究[J], 章尧;赵燕;陈昌杰4.硼替佐米或联合三氧化二砷诱导HL-60细胞凋亡实验研究 [J], 孙启鑫;孟凡义;扶云碧;李利;田帅5.c-Myc和Fas在三氧化二砷体外诱导HL-60细胞凋亡中的变化与作用的研究[J], 杨晓梅;温培娥;乔高娟;赵海涛;范华;任霞;姜国胜;杨炜华因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
