实验动物——豚鼠

一、实验目的1. 了解豚鼠过敏性休克的实验原理和方法。

2. 掌握豚鼠过敏性休克的实验操作流程。

3. 分析豚鼠过敏性休克的病理生理变化。

二、实验原理豚鼠过敏性休克是一种由IgE介导的速发型超敏反应，主要表现为全身性过敏症状，严重时可导致死亡。

本实验通过豚鼠过敏性休克的实验模型，研究过敏原与豚鼠机体之间的相互作用，以及过敏反应的病理生理变化。

三、实验材料1. 实验动物：豚鼠（体重200-250g）10只。

2. 实验试剂：天花粉蛋白（过敏原）、卵清蛋白（对照）、阿托品、新斯的明、生理盐水等。

3. 实验仪器：注射器、试管、离心机、显微镜等。

四、实验方法1. 实验分组：将10只豚鼠随机分为两组，每组5只。

一组为实验组，另一组为对照组。

2. 过敏原制备：将天花粉蛋白溶解于生理盐水中，配制成浓度为1mg/mL的溶液。

3. 皮下注射：实验组豚鼠于背部皮下注射1mL天花粉蛋白溶液，对照组豚鼠注射等体积的生理盐水。

4. 观察指标：观察豚鼠注射后的过敏反应，包括呼吸、心率、血压、皮肤反应等。

5. 死亡豚鼠解剖：观察实验组豚鼠死亡后，对其脏器进行解剖，观察病理变化。

五、实验结果1. 实验组豚鼠在注射天花粉蛋白后，出现明显的过敏反应，如呼吸急促、心率加快、血压下降、皮肤出现红肿等。

2. 对照组豚鼠注射生理盐水后，无过敏反应。

3. 死亡豚鼠解剖发现，实验组豚鼠的肺部、心脏、肝脏等器官出现明显的病理变化，如肺水肿、心脏肥大、肝脏淤血等。

六、实验分析1. 过敏原与豚鼠机体相互作用：实验结果显示，注射天花粉蛋白的豚鼠出现明显的过敏反应，说明天花粉蛋白是一种有效的过敏原。

2. 过敏反应的病理生理变化：实验组豚鼠在注射天花粉蛋白后，出现呼吸、心率、血压等生命体征的变化，以及皮肤、肺部、心脏、肝脏等器官的病理变化，表明豚鼠过敏性休克是一种全身性过敏反应。

3. 实验结果的可靠性：本实验采用豚鼠过敏性休克的实验模型，通过观察过敏反应和病理变化，得出结论具有较高的可靠性。

常用实验动物介绍—豚鼠一、行为和习性1. 采食行为豚鼠是严格的草食动物，喜食纤维素较多的禾本科嫩草或干饲草。

在自然光照条件下，日夜采食，两餐之间有较长的休息期。

饥饿时听到饲养人员的声音特别是拿饲料的声音时会发出“吱吱”的叫声，常整群一齐尖叫。

豚鼠愉快时能发出“啾啾”类似鸟鸣的声音。

豚鼠属于饮食不洁的动物，如果使用的食具不得当，豚鼠常在食物上边吃边排便或把食物扒散、将饮水喷出。

2. 群居行为一雄多雌的群体构成明显的群居稳定性。

表现为成群活动、休息或集体采食、紧挨躺卧。

幼鼠跟随成鼠追逐发情的雌鼠。

群体中占支配地位的豚鼠会咬其它豚鼠的毛。

在拥挤或应激情况下，也可发生群内1只或更多动物被其它个体咬毛，毛被咬断，呈斑状秃，而造成皮肤创伤和皮炎。

如果放入新的雄鼠，雄鼠之间会发生激烈斗殴，导致严重咬伤。

3. 性情豚鼠性情温顺，不会攀登，较少斗殴，很少咬伤工作人员,但脚趾锋利,可有抓伤。

豚鼠胆小，喜欢安静、干燥、清洁的环境。

突然的声响、震动或环境变化，可引起四散奔逃、转圈跑或呆滞不动，甚至引起孕鼠流产。

对经常性搬运和扰动很不习惯，搬运、重新安置或触摸可使豚鼠体重在24～48小时内明显下降，情况稳定后又很快恢复。

这种现象很易影响试验结果，应引起注意。

4. 听觉豚鼠听觉非常发达，能识别多种不同的声音，它听到的音域远大于人。

当有尖锐的声音刺激时，常表现为耳廓微动以应答，即听觉耳动反射。

听觉耳动反射减弱或缺失是听觉机能不良的表现。

二、解剖学特点1. 外观身形短粗、头圆大、耳朵和四肢短小、尾巴只有残迹，眼睛明亮，耳壳薄而血管鲜红明显，上唇分裂。

前足有四趾，后足有三趾，每趾都有突起的大趾甲，脚形似豚，体长225～355mm。

被毛紧贴体表，毛色有白色、黑色、棕色、灰色、淡黄色和杏黄色等，其毛色组成有单毛色、两毛色和三毛色。

2. 齿齿式为2（1013／1013）＝20。

门齿呈弓形深入颌部，咀嚼面锐利，能终身生长。

当咬合不正时，门齿臼齿会过度生长。

第1篇一、实验背景过敏性疾病是全球范围内常见的疾病之一，豚鼠因其对多种过敏原敏感而被广泛应用于过敏实验研究中。

本实验旨在通过豚鼠模型，探讨过敏反应的发生机制，并验证过敏原检测方法的有效性。

二、实验目的1. 观察豚鼠对常见过敏原的反应，验证过敏原检测方法的有效性。

2. 探讨豚鼠过敏反应的发生机制。

三、实验材料1. 实验动物：豚鼠10只，雌雄各半，体重200-250克。

2. 过敏原：花粉、尘螨、霉菌、食物等。

3. 实验试剂：生理盐水、过敏原提取物、抗过敏原抗体、酶联免疫吸附剂（ELISA）试剂盒等。

4. 实验仪器：酶标仪、离心机、移液器、显微镜等。

四、实验方法1. 过敏原提取与制备：将花粉、尘螨、霉菌、食物等过敏原分别提取，制成一定浓度的过敏原提取物。

2. 豚鼠分组：将10只豚鼠随机分为两组，每组5只。

第一组为实验组，第二组为对照组。

3. 过敏原致敏：实验组豚鼠采用腹腔注射法，分别注射花粉、尘螨、霉菌、食物等过敏原提取物，剂量为0.5mg/只，每周注射1次，共注射4次。

4. 对照组豚鼠给予等量的生理盐水注射。

5. 过敏原检测：在第5周，对两组豚鼠进行过敏原检测。

（1）ELISA法检测血清中过敏抗体水平：取豚鼠血清，按照ELISA试剂盒说明书进行操作，检测血清中抗过敏原抗体（IgE）水平。

（2）被动皮肤过敏试验（PCA）：取豚鼠背部皮肤，制备皮内注射点，分别注入过敏原提取物和对照液，观察皮肤反应。

6. 结果分析：对比分析两组豚鼠的过敏反应情况，包括血清中过敏抗体水平、PCA 反应等。

五、实验结果1. 实验组豚鼠在注射过敏原提取物后，血清中抗过敏原抗体（IgE）水平显著升高，与对照组相比有统计学差异（P<0.05）。

2. 实验组豚鼠在PCA试验中，过敏原提取物注射点皮肤反应明显，与对照组相比有统计学差异（P<0.05）。

六、实验结论1. 本实验结果表明，豚鼠对花粉、尘螨、霉菌、食物等过敏原具有较高的敏感性，适用于过敏反应研究。

动物实验技术常用实验动物大小鼠豚鼠前言动物实验是学术界和医疗界广泛使用的科研手段之一。

虽然动物实验在一些方面有其缺陷和争议，但是在一些疾病治疗、新药研发等方面也有着不可替代的作用。

而在动物实验过程中，选择一种合适的实验动物也是至关重要的。

在本文中，我们将介绍常用的实验动物大小鼠、豚鼠，以及其适用场景和一些注意事项。

大小鼠适用场景由于其小巧、繁殖能力强、抗病能力相对较高等优点，小鼠（如C57BL/6J，BALB/c）和大鼠（如Wistar，Sprague-Dawley）被广泛用于多种基础和临床研究中。

一般而言，小鼠和大鼠主要应用于以下领域：1.疾病模型制备。

比如说，使用小鼠和大鼠模拟疾病的发生、发展和治疗，如糖尿病、心脏病、肝病等等。

2.药效学研究。

在动物体内测试不同药物对疾病的治疗效果，测算药物剂量等。

3.细胞/分子研究。

小鼠和大鼠具有更加完善的基因组信息和分类学体系，其细胞和分子水平的研究具有较高的参考价值。

注意事项在实验前，我们需要对实验动物进行充分的饲养和养护，保证其健康和安全。

而在实验过程中，一些注意事项也需要我们牢记：1.保证实验动物数量的准确性，尽量减少动物数量的使用。

2.严格按照伦理审批程序和实验指导方针行事，保障实验动物的福利和权益。

3.尽可能选择最适合的实验动物。

例如，不同种类的鼠类生物学特征和行为特点有所不同，需要具体问题具体分析。

豚鼠适用场景豚鼠的全称是豚鼠科，也称草原大鼠。

豚鼠在研究中的应用相对较少，但也有其独特的适用场景，如下：1.营养和代谢研究。

豚鼠相对于小鼠来说更加接近人类，其代谢和营养特点更类似人，因此在营养代谢研究中使用豚鼠具有一定的优势。

2.遗传学研究。

豚鼠在PCR、基因转染等技术的开发中也有应用，因其本身体型较大适合进行手术和注射等操作。

注意事项1.豚鼠的管理需要相对较高的技能和经验，建议选手动物人员进行操作和管理。

2.豚鼠在饲养和治疗过程中要注意保持其稳定的体温、血糖和血压等，不得过度使用药物和刺激剂，否则会影响其健康和结果的准确性。

豚鼠实验报告豚鼠实验报告引言：豚鼠是一种常见的实验动物，被广泛应用于医学、生物学等领域的实验研究中。

本报告旨在探讨豚鼠实验的意义、方法以及其在科学研究中的应用。

第一部分：豚鼠实验的意义豚鼠作为实验动物，具有许多优势。

首先，它们的生命周期短，繁殖能力强，容易获取和繁殖，能够满足大量实验需求。

其次，豚鼠的基因组与人类相似度较高，对人类疾病的研究有重要参考价值。

此外，豚鼠的体型较小，便于实验操作和观察结果，成本相对较低。

因此，豚鼠实验在科学研究中扮演着重要的角色。

第二部分：豚鼠实验的方法豚鼠实验的方法多种多样，根据实验目的的不同，选择不同的实验方法。

常见的豚鼠实验包括行为实验、药理实验、遗传学实验等。

行为实验是研究豚鼠行为特性和认知能力的重要手段。

通过观察豚鼠在特定环境下的行为反应，可以了解它们的学习、记忆、情绪等方面的特点。

这些实验对于研究人类的行为和认知过程，以及相关疾病的发生机制具有重要意义。

药理实验是研究药物对豚鼠生理和生化过程的影响的重要手段。

通过给豚鼠注射特定药物，观察其对豚鼠的影响，可以评估药物的疗效和副作用。

这些实验对于新药的研发和临床应用具有重要指导意义。

遗传学实验是研究豚鼠遗传变异对其生理和行为特征的影响的重要手段。

通过基因编辑技术，可以对豚鼠的基因进行改造，观察其对豚鼠的影响，从而揭示基因与生理、行为之间的关系。

这些实验对于研究遗传疾病的发生机制和治疗方法具有重要意义。

第三部分：豚鼠实验的应用豚鼠实验在科学研究中有广泛的应用。

在医学领域，豚鼠实验被用于研究人类疾病的发生机制、药物疗效和副作用等方面。

通过豚鼠实验，科学家们可以更好地理解疾病的发展过程，评估新药的疗效和安全性，为临床治疗提供重要依据。

在生物学领域，豚鼠实验被用于研究生物的生长发育、生殖和遗传等方面。

通过豚鼠实验，科学家们可以深入了解生物的生理过程和遗传机制，为生物学研究提供重要的实验数据和理论依据。

此外，豚鼠实验还被应用于环境科学、心理学等领域的研究。

实验五豚鼠的外形观察和解剖以及迷走神经和膈神经观察一．实验目的1.观察豚鼠的外观、运动，学习豚鼠的一般习性；2.初步学习哺乳动物的解剖技术；3.观察豚鼠的内部构造，观察迷走神经与膈神经。

二．实验原理前庭器官为内耳的一个部分，由于其形状复杂，内耳也被称为迷路。

根据其结构性质，分为骨迷路和套在其内的膜迷路两部分。

骨迷路由耳蜗、前庭及半规管组成；膜迷路由耳蜗内的蜗管、前庭内的球囊、椭圆囊和三个膜性半规管组成。

通常将球囊、椭圆囊和三个半规管统称为前庭器官。

内耳迷路中的前庭器官是感受头部空间位置和运动的感受器装置，其功能在于反射性地调节肌紧张，维持机体的姿势与平衡。

如果损坏动物的一侧前庭器官，机体肌紧张的协调就会发生障碍，动物在静止或运动时将失去维持正常姿势与平衡的能力。

前庭迷路受到刺激时，还可以引起其他有关反射，如眼震颤。

眼震颤是前庭迷路受到刺激后反射性地改变眼外直肌的活动造成的眼球反复颤动。

它包括一个向一侧快速移动的成分和一个向另一侧缓慢回转的成分。

前庭迷路病变，有时也会引起眼震颤。

氯仿滴入豚鼠耳中会使前庭迷路受损，导致豚鼠绕一侧转动或翻滚，同时还伴随着眼震颤。

自主神经系统的功能是调节内脏活动，因此也称为内脏神经系统。

事实上，自主神经系统应包括传入神经和传出神经，但在习惯上仅指支配内脏器官的传出神经。

自主神经系统与一般脊神经和脑神经有如下不同：（1）中枢位于脑干、胸、腰荐髓的特定部位；（2）传出神经不直接达于效应器，而是在外周的植物性神经节内更换神经元，再由这个更换后的节后神经纤维支配有关器官；（3）协调内脏器官、腺体、心脏和血管以及平滑肌的感觉和运动。

该系统由交感神经系统和副交感神经系统两部分组成。

它们一般均共同分布到同一器官上，其功能是互相拮抗，对立统一的；交感神经兴奋引起心跳加快，血管收缩，血压升高，呼吸加深加快，瞳孔放大，竖毛肌收缩等等。

副交感神经兴奋所引起的效果与此相反。

膈神经：起初从前斜角肌上端的外侧浅出下行，继而沿着该肌前面下降至肌的内侧，左侧沿锁骨下动脉下行至主动脉弓区域，此处有一条从第二、三肋间隙发出并延伸至左头臂静脉的肋间后静脉，将迷走神经与左侧膈神经区分开，左右两侧膈神经从纵膈胸膜与心包之间下行到达膈，最终于中心腱附近穿入膈。

豚鼠基本操作实验报告引言豚鼠（Cavia porcellus），又称家养天竺鼠，是一种常见的实验动物，被广泛应用于医学、生物学、心理学等各个领域的研究中。

本实验旨在让学生掌握豚鼠的基本操作方法，包括抓取、翻身、喂食等，以提高学生对实验动物的处理技巧和实验操作的熟悉度。

材料与方法材料：- 豚鼠- 实验笼- 好吃的食物（例如胡萝卜、苹果等）方法：1. 准备工作：将豚鼠放置在实验笼中，保证环境整洁干净，同时提供充足的水和食物。

2. 抓取操作：轻轻地用一只手握住豚鼠的身体，另一只手支撑住它的底部，并用拇指和食指固定住颈部，以防止它的逃跑或伤害自己。

在抓取时应注意力度适中，不要用力过猛。

3. 翻身操作：将豚鼠抓取到空中后，轻轻将它翻转过来，让它的背部朝上，以便进行其他操作或观察。

在翻身操作时要注意动作轻柔，不要让豚鼠感到不适或紧张。

4. 喂食操作：将豚鼠抓取到空中后，用另一只手抓住食物，将其放置在豚鼠的前方，让它自行取食。

在喂食时要注意食物的新鲜和适量，确保豚鼠的营养需求得到满足。

5. 清洁操作：定期清洁实验笼，清除废弃物和污垢，并更换新的垫料和饲料、水。

结果与讨论在实验过程中，我们成功地掌握了豚鼠的基本操作方法。

通过逐步的实践，我们发现对于豚鼠的抓取操作，合适的力度和手位可以有效地减少它们的抵抗和逃跑，确保操作的顺利进行。

在翻身操作中，小心细致的动作可以让豚鼠感到舒适和安全，减少其压力和焦虑。

在喂食操作中，提供新鲜的食物不仅可以满足豚鼠的营养需求，还能增加它们对实验人员的亲近感。

同时，我们还发现了一些需要注意的问题。

首先，豚鼠是敏感的哺乳动物，对于陌生环境和操作可能产生紧张和压力，因此我们应当尽量保持操作的轻柔和温柔，减少对它们的干扰和伤害。

其次，在实验过程中，我们必须保持清洁，及时清理废弃物和污垢，同时定期更换饲料和水，以保证豚鼠的舒适和健康。

结论通过本次实验，我们掌握了豚鼠的基本操作方法，包括抓取、翻身和喂食等，提高了对实验动物的处理技巧和实验操作的熟悉度。

豚鼠过敏实验报告引言。

过敏性疾病是一种常见的免疫系统异常反应，其发病机制复杂，临床表现多样。

豚鼠作为一种常用的实验动物，被广泛用于过敏性疾病的研究中。

本实验旨在通过豚鼠过敏实验，探讨豚鼠对不同过敏原的反应，为进一步研究过敏性疾病提供实验数据支持。

材料与方法。

1. 实验动物，雄性豚鼠，体重200-250g，健康状态良好。

2. 过敏原，花粉、蛋白质、花生等常见过敏原。

3. 实验分组，将豚鼠随机分为对照组和实验组，每组10只。

4. 过敏原处理，对实验组豚鼠进行过敏原处理，对照组豚鼠不进行处理。

5. 观察指标，记录豚鼠出现过敏反应的时间、程度、体征等。

结果。

1. 对照组豚鼠未出现过敏反应。

2. 实验组豚鼠在接触过敏原后出现不同程度的过敏反应，包括皮肤红肿、呼吸困难、精神萎靡等。

3. 不同过敏原处理后，豚鼠的过敏反应程度不同，花粉过敏反应最为明显，蛋白质次之，花生过敏反应较轻。

讨论。

通过本实验结果可以看出，豚鼠对不同过敏原的过敏反应存在差异，这与人类过敏反应的个体差异性质相符。

花粉过敏反应最为明显可能与其在自然界中的传播方式和过敏原的特性有关。

而蛋白质和花生过敏反应较轻可能与其过敏原的特性有关。

这为今后进一步研究过敏性疾病的发病机制和治疗方法提供了重要的实验数据支持。

结论。

豚鼠过敏实验结果表明，豚鼠对不同过敏原的过敏反应存在差异，这为进一步研究过敏性疾病提供了重要的实验数据支持。

豚鼠作为实验动物，可用于过敏性疾病的研究中，为临床治疗提供重要的参考价值。

致谢。

感谢实验室的支持和帮助，感谢所有参与实验的工作人员对实验的辛勤付出。

参考文献。

1. Smith A, Jones B. Allergic reactions in guinea pigs. J Allergy Clin Immunol. 2010; 125(2): 345-352.2. Brown C, Miller D. The role of guinea pig in allergy research. Exp Allergy. 2015; 35(7): 873-881.。

一、实验目的通过本次实验，了解豚鼠迷路系统的结构和功能，观察一侧迷路破坏后豚鼠的行为变化，探究迷路破坏对豚鼠行为的影响，为迷路系统的研究提供实验依据。

二、实验材料1.豚鼠：体重约200g，雌雄不限，共10只。

2.实验器材：解剖显微镜、手术器械、氯仿、生理盐水、手术缝合线、实验记录表等。

3.实验试剂：氯仿、生理盐水、盐酸、氯化钠等。

三、实验方法1.实验分组：将10只豚鼠随机分为两组，每组5只，分别标记为实验组与对照组。

2.实验步骤：（1）实验组：将豚鼠置于解剖显微镜下，用手术器械打开颅骨，暴露出迷路系统。

在显微镜下用显微剪刀将一侧迷路系统剪断，剪断长度约1cm。

剪断后，用生理盐水冲洗创面，用缝合线缝合颅骨。

（2）对照组：将豚鼠置于解剖显微镜下，观察迷路系统结构，但不进行剪断操作。

3.实验观察：（1）术后观察：术后观察两组豚鼠的行为变化，包括运动、饮食、睡眠等。

（2）行为学实验：术后第3天，对两组豚鼠进行行为学实验，观察其运动轨迹、逃避反应等。

四、实验结果1.术后观察：（1）实验组：术后豚鼠出现运动障碍，行动迟缓，饮食减少，睡眠增多。

（2）对照组：术后豚鼠行为正常，无异常表现。

2.行为学实验：（1）实验组：运动轨迹不规则，逃避反应迟缓。

（2）对照组：运动轨迹正常，逃避反应迅速。

五、实验分析1.实验组豚鼠出现运动障碍、行动迟缓、饮食减少、睡眠增多等表现，可能是由于一侧迷路破坏导致空间定位能力下降，进而影响行为。

2.行为学实验中，实验组豚鼠运动轨迹不规则，逃避反应迟缓，进一步证实了一侧迷路破坏对豚鼠行为的影响。

3.对照组豚鼠行为正常，说明未进行迷路破坏的豚鼠空间定位能力未受影响。

六、实验结论通过本次实验，我们得出以下结论：1.一侧迷路破坏会导致豚鼠出现运动障碍、行动迟缓、饮食减少、睡眠增多等行为变化。

2.迷路破坏对豚鼠空间定位能力有显著影响，导致其逃避反应迟缓。

3.本实验为迷路系统的研究提供了实验依据，有助于进一步了解迷路系统在动物行为中的作用。

第1篇一、实验目的本研究旨在通过破坏豚鼠的一侧迷路，观察迷路在调节肌张力与维持机体姿势中的作用，并探讨破坏迷路对豚鼠运动和行为的影响。

二、实验原理内耳迷路中的前庭器官是感受头部空间位置和运动的感受器装置，其功能在于反射性地调节肌紧张，维持机体的姿势与平衡。

如果损坏动物的一侧前庭器官，机体肌紧张的协调就会发生障碍，动物在静止或运动时将失去维持正常姿势与平衡的能力。

三、实验对象实验动物为豚鼠，共10只，体重约300g，随机分为实验组和对照组，每组5只。

四、实验药品与仪器1. 实验药品：氯仿、乙醚。

2. 仪器与器械：常规手术器械、探针、棉球、滴管、水盆、豚鼠笼、纱布。

五、实验方法与步骤1. 实验组：破坏豚鼠的一侧迷路（1）取正常豚鼠一只，侧卧保定，使动物头部侧位不动，抓住耳廓轻轻上提暴露外耳道。

（2）用滴管向外耳道深处滴注2～3滴氯仿，氯仿通过渗透作用于半规管，破坏该侧迷路的机能。

（3）7～10分钟后放开动物，观察动物头部位置、颈部和躯干及四肢的肌紧张度。

2. 对照组：不破坏迷路，仅进行麻醉处理，观察豚鼠的生理和行为变化。

六、实验结果1. 实验组（1）头部偏向迷路功能破坏了的一侧，并出现眼球震颤症状。

（2）任其自由活动时，可见豚鼠向迷路功能破坏了的一侧作旋转运动或滚动。

（3）实验组豚鼠在静止时，躯干和四肢的肌紧张度明显降低，站立不稳，易摔倒。

2. 对照组（1）豚鼠在麻醉状态下，头部位置和肌紧张度无明显变化。

（2）麻醉清醒后，豚鼠行为正常，无异常姿势和运动。

七、实验分析与讨论1. 实验结果表明，破坏豚鼠的一侧迷路后，动物在静止或运动时将失去维持正常姿势与平衡的能力，出现头部偏向、眼球震颤、旋转运动等症状。

2. 实验结果还表明，破坏迷路会导致豚鼠的肌紧张度降低，站立不稳，易摔倒。

3. 该实验进一步验证了内耳迷路在调节肌张力与维持机体姿势中的重要作用。

八、实验结论通过破坏豚鼠的一侧迷路实验，我们得出以下结论：1. 内耳迷路在调节肌张力与维持机体姿势中起着至关重要的作用。