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课程编码：5401006 学时数：28一、课程性质、目的和要求动物学实验以动物进化主线的代表动物为实验材料，研究代表动物的外部形态、内部结构；对有些动物进行培养和分类。
动物学实验课程的教学是实现由知识转化成能力的重要环节和有效途径。
通过实验课教学验证，加深理解和巩固课堂所学知识，熟悉动物学的基本操作技术，提高动手能力及观察分析问题的能力，培养科学，严谨，实事求是的学风。
通过实验教学，使学生应掌握动物学的研究方法，学会使用检索表，熟悉动物的栖息环境，学会动物的标本采集，制作和保藏技术。
二、实验内容和课时安排本实验在二年级第一学期开设。
本大纲包括16个实验，其中设计性实验1个，综合性实验1个，根据实验条件从以下实验中选做14个实验。
实验1 动物的细胞和组织（2学时）【实验目的】1.了解细胞的基本结构及有丝分裂各期的特点。
2.了解动物的4类基本组织的结构和功能。
【实验仪器与材料】人口腔上皮复层扁平上皮透明软骨平滑肌及神经组织四种组织的切片幻灯机载玻片盖玻片解剖器吸管吸水纸牙签1%的亚甲蓝0.7%及0.9%NaCl溶液蒸馏水【主要内容】1.细胞2.上皮组织3.结缔组织4.肌肉组织5.神经组织【实验步骤】1.观察人口腔上皮细胞2.观察疏松结缔组织3.观察血液组织4.观察肌肉组织【作业】（一）绘图：1.人口腔上皮细胞2.蝗虫横纹肌细胞，表示其结构（二）思考题：1.细胞的基本结构及其机能。
细胞分裂各期有何特点？2.4类基本组织的结构特点与主要机能。
实验2 眼虫和变形虫（2学时）【实验目的】通过眼虫、变形虫及其他鞭毛虫、肉足虫的观察，了解鞭毛虫纲与肉足纲的主要特点，并认识一些有经济价值或常见的种类。
【实验仪器与材料】培养的眼虫和变形虫团藻和痢疾内变形虫的玻片标本有孔虫和放射虫装片显微镜载玻片盖玻片吸管和吸水纸【主要内容】1.眼虫和变形虫的观察2.示范：常见其它原生动物【实验步骤】1.眼虫的观察2.变形虫的观察【作业】（一）绘图：眼虫的放大图，表示出所见到的各种结构。
动物实验一、动物实验的分类1、按动物实验的时间长短（1）急性实验（2天以内）（2）亚急性实验（1～4周）（3）慢性实验（2～6个月或更长时间甚至整个生命期）急性实验：在麻醉或清醒状态下进行实验研究，实验结束后马上初死，一般对动物做了较大的手术慢性实验：通过手术或特定处理，造成某种预期的病理状态，然后再详细进行较长时期研究的实验。
2、动物实验按机体水平不同的可分为在体实验离体实验二、常用动物的种类和特点：豚鼠、仓鼠、家兔、犬1、过敏反应或变态反应的研究直接用豚鼠：动物致敏反应大小顺序为：豚鼠〉家兔〉狗〉小鼠〉猫。
2、以呕吐反应为指标的实验研究最好用猫狗，不用食草动物。
如：兔、豚鼠不易产生呕吐。
3、外界环境因素对机体致热反应的研究最好用兔，次用猫。
4、做高血压病理模型用狗、大鼠、兔。
因为它们与人类的高血压有许多相似之处。
5、研究化学致癌作用时，用大鼠、小鼠，而且不同种系的小鼠发病率不同，甚至有的种系有自发性癌肿。
6、研究气体等物质对黏膜的刺激时用猫。
7、研究毒物对皮肤的局部作用时，用豚鼠、兔。
8、研究毒性物质对脏器的毒性时，用小鼠。
9、兔、狗、鸡、鸽最易形成动脉粥样硬化病变。
10、研究放射性物质致癌时，用狗、猴、大小鼠。
11、研究烧伤机理时，用猪，次用兔、狗、小鼠。
12、消化道分泌活动的研究时，用狗、猫，特别是狗。
13、在观察减压神经的作用时，只能用兔。
14、须摘甲状腺的手术时，用狗。
15、胰腺的切除、移植等用狗。
兔的较分散。
16、马和大鼠无胆囊。
一般动物都有。
17、免疫学实验常用青紫兰兔子后肢膕窝部有一个粗大的淋巴结。
18、大小鼠的子宫生长的很快，常用于避孕药物的研究。
三、常用体液标本的采集：（一）动物的取血方法1、采集血液：根据用血量多少1）微量取血，少于0.5ml：小鼠断尾、眶静脉取血；眼球摘除法；2）少量取血，0.5ml -2ml：兔耳缘静脉、狗贵要静脉取血；3）大量取血，大于5ml：大鼠腹主动脉取血、心室内取血、颈动脉、股动脉取血。
一、引言动物实验作为医学研究的重要手段，在探索疾病机理、开发新药、评估治疗效果等方面发挥着重要作用。
本文将对近年来动物实验的研究进展进行综述，以期为相关领域的研究提供参考。
二、动物实验在疾病机理研究中的应用1. 癌症研究近年来，动物实验在癌症研究方面取得了显著成果。
通过建立肿瘤动物模型，研究人员揭示了肿瘤发生、发展的分子机制，为寻找新的治疗靶点提供了重要依据。
例如，研究发现，PD-1/PD-L1信号通路在肿瘤免疫逃逸中发挥关键作用，为肿瘤免疫治疗提供了新的思路。
2. 心血管疾病研究动物实验在心血管疾病研究中的应用也取得了显著进展。
通过建立心血管疾病动物模型，研究人员揭示了心血管疾病的发病机制，为心血管疾病的防治提供了理论依据。
例如，研究发现，高血压大鼠模型中，肾素-血管紧张素系统过度激活与心血管损伤密切相关，为高血压的治疗提供了新的靶点。
3. 神经系统疾病研究动物实验在神经系统疾病研究中的应用日益广泛。
通过建立神经系统疾病动物模型，研究人员揭示了神经系统疾病的发病机制，为神经系统疾病的防治提供了理论依据。
例如，阿尔茨海默病小鼠模型的研究表明，β-淀粉样蛋白的沉积与神经元损伤密切相关，为阿尔茨海默病的治疗提供了新的靶点。
三、动物实验在新药研发中的应用1. 药物筛选与评价动物实验在新药研发中具有重要作用。
通过建立疾病动物模型，研究人员可以筛选出具有潜在治疗作用的药物。
例如，以肿瘤动物模型为基础，研究人员筛选出多种具有抗肿瘤活性的化合物，为肿瘤治疗提供了新的药物候选。
2. 药物代谢动力学与药效学评价动物实验在药物代谢动力学与药效学评价中具有重要作用。
通过动物实验，研究人员可以了解药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程，为药物的临床应用提供参考。
例如，通过建立药物代谢动力学模型，研究人员可以预测药物在人体内的代谢过程，为药物剂型和给药途径的设计提供依据。
四、动物实验在生物医学研究中的应用1. 生物学研究动物实验在生物学研究中的应用十分广泛。
动物实验基本操作一（固定、性别判定、标识）【实验目的】在做动物试验时，为确保给药、实验顺利进行，防止被动物咬伤、准确辨别动物性别、准确标识动物，要学会用正确方法捉拿实验动物、掌握辨别动物性别的方法以及掌握标识动物的方法。
【实验对象】SD大鼠，KM小鼠，雌雄各半，体重180-250g。
【实验器材和药品】器材：鼠笼、大小鼠固定器、方木板、美式图钉、细绳、防护手套药品：苦味酸80%~90%酒精饱和溶液、20%乌拉坦【实验步骤】一、小鼠的捉拿1、徒手固定：用右手提起尾巴中部，放在鼠笼盖或其他粗糙面上。
向后上方轻拉，此时，小鼠前肢紧紧抓住粗糙表面。
左手拇指和食指迅速捏住小鼠颈背部皮肤，再置小鼠于左手心，并以左手掌心和中指夹住小鼠背部皮肤，无名指压住小鼠尾根部，将其固定于手中。
右手可行注射或其它操作。
2、固定器固定：尾静脉注射或给药时，将小鼠放进固定器中或者大小和重量适当的容器（如烧杯），只露出尾巴，该类容器能够压住尾部，避免其活动。
勿固定过紧造成窒息死亡。
进行腹腔手术或心脏采血时，先准备一个15-20cm的方木板，边缘钉入五颗钉子。
将小鼠四肢分别用20-30cm的线绳捆绑，线的另一头分别绑在方木板的钉子上，并且在头部上颚切齿牵引一根线绳，也固定在钉子上，达到完全固定。
二、大鼠的捉拿4-5周内的大鼠，方法同小鼠。
周龄较大的，则：1、首先戴好防护手套。
2、用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上。
3、左手顺势按、卡在大鼠躯干背部，稍加压力向头颈部滑行。
4、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤，其余三指和手掌握住大鼠背部皮肤，完成抓取保定。
三、性别判定小鼠、大鼠性别判定（1）幼鼠外生殖器与肛门间隔短的是♀，外生殖器与肛门间隔长的是♂。
（2）成年动物可直接肉眼辨认，雄性有膨起的阴囊和阴茎，雌性动物有阴道口。
四、动物的标记小鼠的短期标记法：苦味酸80%~90%酒精饱和溶液（黄色），标出属于自己的编号【注意事项】1、实验人员要有精神准备：掌握方法，胆大心细，做好防护。
动物实验一、实验动物的编号与标记编号与标记通常是动物实验开始时进行的第一项工作。
编号的目的是使个体易于识别，便于实验者观察每个动物的变化，为清楚记录结果做好准备。
无论何种编号方法，良好的标记方法都应满足号码清晰、耐久、简便和适用的要求。
（一）染色法常用的染液有3%～5%的苦味酸溶液（黄色）、2%的硝酸银溶液（咖啡色）、0.5%的中性品红溶液（红色）。
染色法编号的原则是“先左后右，先上后下”。
（二）穿耳孔法（三）剪趾法（四）挂牌法（五）挂腿圈法（六）烙印法（七）针刺法（八）剪尾法剪尾法是将动物尾尖部剪去，一般用于大鼠、小鼠的分组，但仅限于将两组动物区分开，无法给每只动物编号。
如果若需进行尾尖取血，此法不适用。
（九）剪毛法剪毛法是将动物背部的被毛用剪刀剪去，用于标记，此法编号标记清楚、可靠，便于试验人员观察，常用于大中型动物的编号。
二、实验动物的分组（一）随机分组的原则及方法动物编号后，通常需要根据实验要求进行分组。
动物随机分组一般使用随机数字表或用计算器产生随机数字来进行。
（二）分组的注意事项动物随机分组的目的在于使某实验中的某主要指标平均分配到各个组中，为确保实验结果具有统计学意义，实验分组时应注意各组动物的数量不可太少，一般需进行统计学处理的实验数据，各组动物至少不可少于6只，若再考虑到实验过程中出现意外等情况，动物数量还需适当增加。
实验分组时还应考虑到动物性别的影响。
如果条件允许，可选择雌雄各半进行实验，但应保证雌雄动物的实验数据均应具有统计学意义；若条件不允许，考虑到雌性动物的生理因素，选择雄性动物进行实验为好。
三、实验动物的抓取和固定（一）小鼠的捉取与固定小白鼠正常体温37℃左右，小鼠性情比较温顺，一般不会主动咬人。
在小鼠较安静时打开鼠笼盖，一般情况下用右手在靠近鼠尾尾根部捏住并将其提起，放在较粗糙的平面或鼠笼盖上，轻轻地向后拉鼠尾，当其向前爬行时，用右手拇指和食指捏住小鼠颈部皮肤和两耳，捏住的皮肤要适量，太多太紧小鼠会窒息，太少太松小鼠会回头咬伤实验者。
一、实验题目动物心肌细胞动作电位与兴奋传导的观察二、实验目的1. 观察动物心肌细胞动作电位的变化。
2. 分析心肌细胞兴奋传导的规律。
3. 掌握观察心肌细胞动作电位和兴奋传导的实验方法。
三、实验原理心肌细胞是心脏的基本功能单元，其兴奋和收缩是心脏搏动的基础。
心肌细胞动作电位是心肌细胞兴奋和收缩的前提，兴奋在心肌细胞之间的传导则是心脏协调搏动的基础。
本实验通过观察动物心肌细胞动作电位的变化和兴奋传导的规律，进一步了解心肌细胞的功能和心脏的生理机制。
四、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：显微镜、心肌细胞培养箱、心肌细胞培养液、电极、信号采集系统、计算机3. 实验试剂：胎牛血清、青霉素、链霉素、培养皿、吸管、手术刀、缝合针等五、实验方法1. 动物心肌细胞的培养：（1）取家兔心脏，用无菌手术刀切取心肌组织，放入含有胎牛血清的培养液中，用吸管吹打使其分散成单个细胞。
（2）将分散的细胞放入培养皿中，加入培养液，放入心肌细胞培养箱中培养。
（3）待细胞生长至一定密度后，进行实验。
2. 观察心肌细胞动作电位：（1）将培养好的心肌细胞涂在载玻片上，用显微镜观察。
（2）用电极刺激心肌细胞，观察动作电位的变化。
3. 观察心肌细胞兴奋传导：（1）将心肌细胞分为两组，一组为实验组，另一组为对照组。
（2）在实验组心肌细胞的一端施加刺激，观察兴奋传导的情况。
（3）对照组不施加刺激，观察心肌细胞的正常状态。
六、实验结果与分析1. 动物心肌细胞动作电位的变化：（1）实验组心肌细胞动作电位表现为快速上升和下降，峰电位明显。
（2）对照组心肌细胞动作电位表现为缓慢上升和下降，峰电位不明显。
2. 心肌细胞兴奋传导的规律：（1）实验组心肌细胞兴奋传导速度较快，且呈对称性。
（2）对照组心肌细胞兴奋传导速度较慢，且呈不对称性。
七、结论1. 动物心肌细胞动作电位的变化与兴奋传导的规律密切相关。
2. 心肌细胞动作电位的变化和兴奋传导的规律是心脏搏动的基础。
第1篇一、实验目的1. 理解猫狗的解剖结构，包括骨骼、肌肉、内脏等系统的组成和位置关系。
2. 掌握解剖实验的基本技能，如动物解剖、器官分离、观察和记录等。
3. 深入了解猫狗生理功能，为兽医临床实践提供理论基础。
二、实验材料1. 实验动物：成年猫、成年狗各一只。
2. 实验工具：解剖刀、剪刀、镊子、解剖剪、解剖针、解剖台、解剖图谱、记录纸、笔等。
三、实验步骤1. 准备工作- 实验前对实验动物进行编号，并做好基本信息记录。
- 检查实验动物的生命体征，确保其处于正常状态。
- 准备实验工具和材料，并放置于实验台上。
2. 解剖过程- 皮肤与肌肉层分离：从腹部开始，沿中线切开皮肤，用剪刀剪开肌肉层，暴露内脏器官。
- 骨骼系统观察：观察骨骼结构，包括头骨、脊柱、肋骨、四肢骨等，记录其形态、位置和连接关系。
- 肌肉系统观察：观察肌肉组织，包括躯干肌肉、四肢肌肉等，记录其名称、位置和功能。
- 内脏系统观察：观察内脏器官，包括心脏、肺、肝脏、胃、肠、肾脏、生殖器官等，记录其形态、位置和功能。
- 神经系统观察：观察神经系统，包括大脑、脊髓、神经等，记录其位置和功能。
3. 器官分离与观察- 将内脏器官逐一分离，如心脏、肺、肝脏、胃、肠、肾脏、生殖器官等。
- 观察各器官的形态、色泽、质地等特征，并记录相关信息。
4. 实验记录- 在实验过程中，详细记录观察到的解剖结构和功能特征。
- 对观察到的异常情况进行分析和讨论。
四、实验结果1. 猫狗骨骼系统- 猫狗骨骼系统包括头骨、脊柱、肋骨、四肢骨等。
- 头骨分为颅骨和面骨，颅骨由顶骨、枕骨、颞骨、蝶骨、筛骨等组成。
- 脊柱分为颈椎、胸椎、腰椎、荐椎和尾椎。
- 四肢骨包括肩胛骨、肱骨、桡骨、尺骨、掌骨、跖骨、跗骨、趾骨等。
2. 猫狗肌肉系统- 猫狗肌肉系统包括躯干肌肉和四肢肌肉。
- 躯干肌肉包括背阔肌、胸大肌、腹直肌、臀大肌等。
- 四肢肌肉包括股二头肌、股四头肌、腓肠肌、肱二头肌、肱三头肌等。
第1篇一、实验目的1. 了解鸡的生物学特性、生理功能及生长发育规律。
2. 掌握鸡的饲养管理技术，为实验动物学教学和科研提供基础。
二、实验材料1. 实验动物：鸡（品种、年龄、性别等）2. 实验器材：温度计、湿度计、饲料、饮水器、称重器、笼具等3. 实验试剂：消毒液、营养液等三、实验方法1. 观察鸡的外部形态结构，了解其生长发育规律。
（1）观察鸡的头部、颈部、胸部、腹部、尾部等部位，记录其形态、颜色、羽毛等特征。
（2）测量鸡的体长、体重、翼长等指标，了解其生长发育规律。
2. 观察鸡的生理功能。
（1）观察鸡的呼吸、心跳、排泄等生理现象。
（2）观察鸡的采食、饮水等行为。
3. 掌握鸡的饲养管理技术。
（1）了解鸡的饲料种类、营养成分、饲养方式等。
（2）观察鸡的饲养环境，包括温度、湿度、光照等。
（3）掌握鸡的消毒、防疫、疾病防治等技术。
四、实验结果与分析1. 鸡的形态结构（1）头部：鸡的头部呈椭圆形，有喙、眼、耳等器官。
（2）颈部：鸡的颈部细长，肌肉发达，有利于采食和呼吸。
（3）胸部：鸡的胸部宽大，有发达的胸肌，有利于飞行。
（4）腹部：鸡的腹部较宽，有利于消化和生殖。
（5）尾部：鸡的尾部较短，羽毛密实，有利于保温。
2. 鸡的生理功能（1）呼吸：鸡的呼吸以肺为主，气囊辅助呼吸。
（2）心跳：鸡的心脏四腔，心跳较快，有利于血液循环。
（3）排泄：鸡的排泄器官有肾脏、输尿管、泄殖腔等。
（4）采食：鸡的喙尖利，善于啄食。
（5）饮水：鸡的饮水需求较高，需保持充足的水源。
3. 鸡的饲养管理技术（1）饲料：鸡的饲料应富含蛋白质、碳水化合物、脂肪、维生素和矿物质等。
（2）饲养环境：鸡的饲养环境应保持适宜的温度、湿度、光照等，以利于其生长发育。
（3）消毒：定期对鸡舍、饲料、饮水等消毒，预防疾病传播。
（4）防疫：定期进行疫苗接种，预防疫病发生。
（5）疾病防治：发现病鸡应及时隔离治疗，防止疫情扩散。
五、实验总结本次实验通过对鸡的形态结构、生理功能及饲养管理技术的观察，使我们对鸡的生物学特性有了更深入的了解。
第1篇一、实验目的1. 掌握动物充血实验的基本操作技术。
2. 了解充血对动物生理功能的影响。
3. 培养实验操作和数据分析能力。
二、实验材料1. 实验动物：小鼠（体重20-25g，雌雄不限）2. 实验器材：手术刀、剪刀、镊子、针筒、注射器、秒表、电子天平、生理盐水、酒精、碘伏、无菌纱布等。
三、实验方法1. 实验分组：将实验动物随机分为三组，每组10只，分别为对照组、充血组、充血恢复组。
2. 实验步骤：（1）充血组：用手术刀在充血组小鼠的右后肢股动脉处做一小切口，用注射器抽取约1ml生理盐水注入股动脉，使小鼠右后肢充血。
充血过程中注意观察小鼠的行为变化。
（2）充血恢复组：在充血组实验后1小时，对充血恢复组小鼠进行同样操作，使其右后肢充血。
充血过程中注意观察小鼠的行为变化。
（3）对照组：不做任何处理，作为对照组。
3. 观察指标：（1）充血程度：观察充血组小鼠右后肢肿胀程度，以肿胀程度大小进行评分。
（2）活动能力：观察充血组小鼠活动能力，以活动速度、灵活性进行评分。
（3）生理指标：测量充血组小鼠的体温、心率、呼吸频率等生理指标。
4. 数据分析：对实验数据进行统计分析，比较充血组、充血恢复组与对照组在充血程度、活动能力、生理指标等方面的差异。
四、实验结果1. 充血程度：充血组小鼠右后肢肿胀程度明显大于对照组和充血恢复组，充血恢复组肿胀程度与充血组无显著差异。
2. 活动能力：充血组小鼠活动能力明显下降，活动速度变慢，灵活性降低。
充血恢复组活动能力有所恢复，但与对照组相比仍有显著差异。
3. 生理指标：充血组小鼠体温、心率、呼吸频率等生理指标与对照组相比均有显著差异，充血恢复组生理指标有所恢复，但与对照组相比仍有显著差异。
五、实验结论1. 充血对小鼠的生理功能有显著影响，表现为充血程度、活动能力和生理指标等方面。
2. 充血恢复组小鼠在充血后1小时进行再次充血，其充血程度、活动能力和生理指标与充血组无显著差异。
3. 充血对动物生理功能的影响较大，实验结果可为临床医学和生物学研究提供参考。
