动物实验概述
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动物实验一、动物实验的分类1、按动物实验的时间长短(1)急性实验(2天以内)(2)亚急性实验(1~4周)(3)慢性实验(2~6个月或更长时间甚至整个生命期)急性实验:在麻醉或清醒状态下进行实验研究,实验结束后马上初死,一般对动物做了较大的手术慢性实验:通过手术或特定处理,造成某种预期的病理状态,然后再详细进行较长时期研究的实验。
2、动物实验按机体水平不同的可分为在体实验离体实验二、常用动物的种类和特点:豚鼠、仓鼠、家兔、犬1、过敏反应或变态反应的研究直接用豚鼠:动物致敏反应大小顺序为:豚鼠〉家兔〉狗〉小鼠〉猫。
2、以呕吐反应为指标的实验研究最好用猫狗,不用食草动物。
如:兔、豚鼠不易产生呕吐。
3、外界环境因素对机体致热反应的研究最好用兔,次用猫。
4、做高血压病理模型用狗、大鼠、兔。
因为它们与人类的高血压有许多相似之处。
5、研究化学致癌作用时,用大鼠、小鼠,而且不同种系的小鼠发病率不同,甚至有的种系有自发性癌肿。
6、研究气体等物质对黏膜的刺激时用猫。
7、研究毒物对皮肤的局部作用时,用豚鼠、兔。
8、研究毒性物质对脏器的毒性时,用小鼠。
9、兔、狗、鸡、鸽最易形成动脉粥样硬化病变。
10、研究放射性物质致癌时,用狗、猴、大小鼠。
11、研究烧伤机理时,用猪,次用兔、狗、小鼠。
12、消化道分泌活动的研究时,用狗、猫,特别是狗。
13、在观察减压神经的作用时,只能用兔。
14、须摘甲状腺的手术时,用狗。
15、胰腺的切除、移植等用狗。
兔的较分散。
16、马和大鼠无胆囊。
一般动物都有。
17、免疫学实验常用青紫兰兔子后肢膕窝部有一个粗大的淋巴结。
18、大小鼠的子宫生长的很快,常用于避孕药物的研究。
三、常用体液标本的采集:(一)动物的取血方法1、采集血液:根据用血量多少1)微量取血,少于0.5ml:小鼠断尾、眶静脉取血;眼球摘除法;2)少量取血,0.5ml -2ml:兔耳缘静脉、狗贵要静脉取血;3)大量取血,大于5ml:大鼠腹主动脉取血、心室内取血、颈动脉、股动脉取血。
动物实验报告要求第一部分:动物实验概述应提供—个动物试验的主要内容提要,该提要应包括动物试验题目、研究小组成员、试验动物和研究产品的名称、试验用器械或药物的适应症、试验时间、试验目的、试验方法、试验研究动物、诊断及进入研究的主要标准、试验的产品信息、剂量、给药方式及批号、治疗持续时间、参考的治疗、剂量、给药方式及批号、评价标准(有效性、安全性)、统计方法、实验结论(效能结论、安全性结论、结论)及报告日期。
该提要应包括表明结果的数字资料,而不仅仅是文字和P值。
第二部分:实验内容(一)动物实验一般资料(动物类别选择实验用动物的入选标准和数量、试验用产品等):(二)动物实验试验方法;(三)所采用的统计方法及评价方法;(四)动物实验评价标准;(五)动物实验试验结果;(六)动物实验试验中发现的副作用及其处理情况;(七)动物实验试验效果分析;(八)动物实验试验验结论;第三部分:实验(一)实验名称:要能够明确表达试验内容;(二)实验目的:要直截了当的说明为什么要进行这个试验,解决什么问题,具有什么意义;(三)试验器材:所有仪器、材料应介绍齐全;所用材料、试剂、诱导物对动物有无危害影响说明。
(四)实验动物的选取(动物种类,性别,体重,年龄,品系,级别,健康状况,动物来源及其合格证号);(五)分析可能影响到动物试验结果准确性的因素以保证试验结果的准确性、可靠性和重复性(环境因素;理化因素;营养因素;居住因素;同种动物间因素;异种动物间因素);(六)动物实验设计与分组(是否符合对照性、一致性、重复性三原则;该试验选取了什么设计方法,比如单组比较设计、配对比较设计等等;动物随机分组方法应具体描述,如分为两组或者三组或者每个动物一组时具体的操作方法,切忌不可简单的“随机”二字就带过)。
第三,实验基本技术的描述,包括:(一)实验动物的抓取与固定(哺乳类与非哺乳类动物的方法不同);(二)动物的编号、标记(临时性、半永久性及永久性标记)及去毛(剪毛法、拔毛法、剃毛法、脱毛法);(三)若该试验中动物需要麻醉,则采用了何种麻醉类型与方法(全身麻醉方法、局部麻醉方法)以及麻醉药物与麻醉剂用量(挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂),若过量麻醉,复苏和抢救措施是如何实施的;(四)动物的给药途径与方法:根据不同的实验目的、动物种类、药物类型来决定动物的给药途径与方法;(五)动物血液的采集方法(不同部位);(六)动物各种体液的采集方法(不同部位);(七)常见观察指标的测定与检查方法(生理指标测定方法;生化指标测定方法;血液学指标测定与检查方法;免疫学指标测定方法);(八)受试动物的动物实验检查方法(一般检查内容及方法;系统检查及方法;动物脏器组织的活检方法)。
动物实验定义
动物实验是指在科学研究、医学探索、药物研发等领域中,使用动物作为实验对象,进行一系列的实验操作和观察,以获得相关数据和信息,并进一步推进科学技术的发展和进步。
动物实验通常分为基础研究和应用研究两种类型,其中基础研究主要是为了探索动物生物学、生理学等方面的知识,而应用研究则更加注重将实验结果转化成现实中的应用和治疗效果。
动物实验广泛应用于医学、生物学、化学、环境科学等领域,但其同时也引发了一些道德和伦理的争议,需要在实验过程中考虑动物福利和权益的保护。
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实验部分实验一动物组织的观察实验属性:必做实验类型:验证性实验学时:2学时实验目的:掌握动物4类组织的结构特点及其与功能的关系实验要求:使学生对4类组织的微观结构有了初步的了解实验内容:观察动物4类组织的切片并绘单层扁平上皮图;总结三种肌纤维的异同点。
实验二原生动物综合实验实验属性:必做实验类型:综合性实验学时:2学时实验目的:1.通过实验,进一步认识和理解原生动物的单个细胞是一具完整的能独立生活的动物有机体。
2.认识原生质具有应激性;了解草履虫的科学研究价值。
实验要求:学习对运动活泼的微型动物的观察和实验方法;了解草履虫的形态结构。
实验内容:草履虫临时装片的制备并观察;绘草履虫图,并标出各部结构名称。
实验三鲫(或鲤)的外形观察和内部解剖实验属性:必做实验类型:验证性实验学时:3学时实验目的:通过对鲤鱼(鲫鱼)的结构观察,了解硬骨鱼类的主要特征以及鱼类适应于水生生活的形态结构特征;实验要求:学习硬骨鱼外形观察、内部解剖的基本操作方法。
实验内容:观察鲫(或鲤)的外形并对各部结构进行测量、记录;解剖鲫(或鲤)并对内部结构进行观察。
实验四蛙的外形观察和内部解剖实验属性:必做实验类型:验证性实验学时:3学时实验目的:1.通过对蟾蜍(或蛙)外形和内部解剖观察,了解脊椎动物由水生到陆生的过渡中,两栖类在形态结构、内部构造和功能上所表现出的初步适应陆生生活的特征。
2.并学习双毁髓处死蟾蜍的方法,掌握一般解剖技术。
实验要求:学习双毁髓处死蟾蜍(或蛙)的方法,掌握一般解剖技术;学习蟾蜍(或蛙)外形观察、内部解剖的基本操作方法。
实验内容:观察蟾蜍(或蛙)外形和内部解剖结构;总结蟾蜍(或蛙)对陆生生活的初步适应及其不完善性;绘制蟾蜍(或蛙)的解剖原位图,并注明各部位名称。
实验五家鸽的外形观察及内部解剖实验属性:必做实验类型:验证性实验学时:3学时实验目的:1.通过对家鸽外部形态及内部解剖观察,认识鸟类各系统的基本结构及其适应于飞翔生活的主要特征;2.同时学习解剖鸟类的方法。
动物实验方案设计目录一、内容概述 (1)1.1 动物实验在科学研究中的重要性 (1)1.2 本次动物实验的目的与意义 (2)二、实验设计原则与伦理规范 (4)2.1 遵循国家相关法规和国际标准 (5)2.2 实验设计伦理原则和考虑因素 (6)三、实验动物选择与准备 (7)3.1 实验动物种类选择依据 (7)3.2 动物来源及质量要求 (8)3.3 动物年龄、性别和数量确定 (10)四、实验方案具体内容设计 (11)4.1 实验分组与模型建立 (12)4.2 实验操作流程及关键步骤说明 (13)4.3 数据采集与记录方式选择 (14)五、实验观测指标设定与评估方法 (16)一、内容概述实验目的和背景:明确实验的研究目的、研究问题和研究背景,为实验方案的设计提供理论依据。
实验方法:详细介绍实验所采用的方法和技术,包括实验材料、试剂、仪器设备等,以及实验操作的具体步骤。
实验对象的选择与保护:根据实验目的和研究问题,选择合适的实验动物种类,并对实验动物进行严格的筛选和饲养管理,确保动物的健康和福祉。
实验过程的监控:建立完善的实验过程监控体系,对实验过程中的关键参数、指标和数据进行实时监测和记录,确保实验的可重复性和可靠性。
伦理审查:遵循相关伦理准则和法规要求,对实验方案进行伦理审查,确保实验的合法性和道德性。
数据分析和结果报告:对实验数据进行严格的统计分析和处理,得出可靠的实验结论,并撰写详细的结果报告,以便其他研究人员参考和借鉴。
1.1 动物实验在科学研究中的重要性动物实验在科学研究中占有极其重要的地位,它是研究生物生命现象和机理的重要手段之一,尤其在生物医学、生态学、行为学等领域具有不可替代的作用。
动物实验为我们提供了直观、深入的生物学数据,帮助我们理解人类自身的生理机制、疾病发生发展机制以及药物作用机制等。
通过动物实验,科学家们可以模拟自然环境下的各种条件,观察并记录动物的行为反应、生理变化以及病理变化,从而验证理论假设,推动科学进步。
动物实验科目
动物实验科目包括但不限于以下几个方面:
1. 药物测试:使用动物模型来测试新药物的疗效、毒性和安全性。
这可以包括口服、注射或其他途径给动物灌输药物,并通过观察动物的生理反应和病理变化来评估药物的效果。
2. 疾病研究:使用动物模型来研究人类疾病的发病机制、病理变化和治疗方法。
例如,使用小鼠模型研究癌症、心血管疾病、神经系统疾病等。
3. 基础生理学研究:使用动物模型来研究生物体的生理功能,包括呼吸、循环、消化、代谢等。
这可以帮助科学家更好地理解生命的基本运作原理。
4. 行为研究:使用动物模型来研究动物的行为特征、学习能力、记忆力等。
这有助于了解动物行为背后的机制,以及与人类行为相关的基因和神经途径。
5. 遗传学研究:使用动物模型来研究基因的功能和遗传变异对生物体的影响。
这可以通过基因敲除、基因突变、基因转导等技术来实现。
6. 毒性测试:使用动物模型来评估化学品、环境污染物等对生物体的毒性和安全性。
这可以通过观察动物的生理反应、组织病理学变
化等来评估。
需要注意的是,动物实验在伦理和道德上存在争议,并且一些科学家和动物权益组织认为应该尽量减少或替代动物实验。
因此,在进行动物实验时应该遵守相关的伦理和法律规定,并尽量采用替代方法来减少动物使用。
1、实验动物和动物实验的概念是什么?实验动物:主要围绕着实验动物种质培育、保存、生物学特性、生活环境、饲养繁殖与管理、质量监测、疾病防治、野生动物的实验动物化等,开展有关研究,最终达到实验动物质量标准化的要求。
动物实验:以实验动物为材料,采用各种手段和方法在实验动物身上进行实验,研究实验过程中实验动物的反应、表现及其发生机制、发展规律,以探讨生命科学的疑难问题。
3、按照遗传学控制分类,实验动物主要分为哪三大类?近交系、封闭群、杂交群4、动物替代理论中的3R原则是什么?研究3R的主要意义是什么?(一)减少(Reduction是指在科学研究中,使用较少量的动物获取同样多的实验数据或使用一定数量的动物能获得更多实验数据的科学方法。
(二)替代(Replacement)是指使用其它方法而不用动物所进行的试验,或者说是使用没有知觉的试验材料代替以往使用神志清醒的活的脊椎动物进行试验的一种科学方法。
(三)优化(Refinement)是指在符合科学原则的基础上,通过改进条件,善待动物,提高动物福利或完善实验程序和改进实验技术,避免或减轻给动物造成的与实验目的无关的疼痛和紧张不安的科学方法。
5、按照动物福利法,动物具有哪几种自由?足够饮水和营养良好的食物;任何时间不受饮水的限制;免受痛苦和疾病的折磨;免受焦虑和害怕的折磨;能够表达正常生理学行为,如躲藏、犊和互相关照等。
7. 近交系的特征和生物医学应用价值引种:繁殖用原种的近交系动物必须遗传背景明确、来源清楚、有较完整的资料(包括品系名称、近交代数、遗传基因特点及主要生物学特征等)。
引种动物必须来自近交系的基础群。
近交系动物繁殖方法的选择原则:保持近交系动物的同基因性及其基因的纯合性。
近交系动物的繁殖可分为:基础群:严格以全同胞兄妹交配方式进行繁殖;对动物个体记录要详细,包括品系名称、近交代数、动物编号、出生日期、双亲编号、离乳日期、交配日期、生育记录和繁殖系谱等。
实验动物学课程实验报告实验内容:1. 小鼠的基本实验操作2. 小鼠皮肤移植试验、睾丸(或卵巢)摘除术3. 豚鼠和兔的一般操作技术4. 大鼠实验的基本操作5. 大鼠性周期观察和大鼠急性肺水肿模型建立6. 小鼠无菌取胎术7. Beagle犬的一般操作和沙鼠、金黄地鼠、裸小鼠的特性实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓取和固定、性别鉴定、编号、去毛、给药、采血、麻醉、处死,尤其是染色法编号、灌胃、眼球摘除法采血、腹腔注射、脊椎脱臼法处死。
二、实验动物:昆明小鼠4只(2雌2雄)三、实验步骤1、抓取和固定2、性别鉴定3、编号(染色法)4、去毛(脱毛剂法)5、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射6、采血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法7、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉8、处死:脊椎脱臼法、过量麻醉9、解剖:9.1 生殖系统:9.1.1雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明)9.1.2雌性:双角子宫、卵巢9.2 肾上腺、胰腺、胆囊、甲状腺四、实验结果1、抓取和固定:抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
2、性别鉴定:观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性:距离长,毛发密(和其他部位一样);雌性:距离短,毛发稀疏。
3、编号:3.1染色法:3.1.1用苦味酸(黄色)在小鼠背面染色3.1.2逆毛发生长方向染色,自毛根开始3.1.3可编1-10号(10号为不编号)3.2去毛:脱毛剂:8% Na2S,自毛发根部涂抹3.3 给药:3.3.1 灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0.5ml3.3.2 注射给药:3.3.2.1腹腔注射:3.3.2.1.1从下腹部的两侧进针3.3.2.1.2进针时针与腹部成45°。
实验动物学基本概念基本概念:实验动物:指经人工培育,对其携带的微生物实行控制,遗传背景明确,来源清楚,用于科学研究、教学、生产、检定及其他科学实验的动物。
实验用动物:指一切用于科学实验的动物。
动物实验:为科研、教学、药物检定等目的,对实验动物进行物理、化学、生物等因素处理,观察其反应,获得实验数据,解决科研中问题的过程。
实验动物学:研究动物实验和实验动物的科学。
近交系及特点;经至少连续20代的全同胞兄妹交配或亲代与子代交配培育而成,品系内所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先。
比较医学:对实验动物与人类基本生命现象的异同,进行比较研究。
通过研究实验动物与人类的共性探讨人类相应疾病的发生、发展规律。
通过研究实验动物与人类的差异寻找治病的方法和手段。
动物福利:就是让动物在康乐的状态下生存,在无痛苦的状态下死亡。
即动物无任何疾病、无行为异常、无心理紧张压抑和痛苦等。
基本原则包括:让动物享有不受饥渴的自由、生活舒适的自由、不受痛苦伤害的自由、生活无恐惧感和悲伤感的自由以及表达天性的自由。
实验动物学在生物医学研究中的意义:AEIR——实验动物、设备、信息、试剂。
实验动物的营养需要包括:维持需要(即维持动物正常体温、呼吸、心跳、基础代谢等各项基本生命活动及满足动物随意活动的需要);生产需要(就是供给动物生长、妊娠、泌乳、产肉、产蛋等生产活动的需要。
)封闭群及特点;以非近亲交配方式繁殖生产的一个实验动物种群,在不从其外部引入新个体的条件下,至少连续繁殖4代以上,称为一个封闭群,或叫远交群。
品种与品系;指具有相似的外貌特征,独特的生物学特性以及稳定的遗传性能,共同遗传来源和一定遗传结构的动物群体。
近交系数;指群体中某个个体通过遗传携带两个同源等位基因的概率。
Fn=〔1-(1-△F)n 〕×100%(越亲越高)全同胞△F=19.1%同父异母△F=11.0%堂兄妹△F=8%亲子交配△F=19.1%近交衰退;指在近交过程中动物群体由于基因分离和纯合而产生的不利于个体和群体发育的现象。
动物学实验报告(范文)(一)引言概述:动物学实验报告是对特定动物或一组动物进行观察、记录和分析的科学性文档,通过实验分析动物的行为、特征和生态习性,从而更好地了解动物的生态环境和行为模式。
本报告将对一组实验中的动物进行观察和记录,并从以下五个方面进行详细阐述:动物的外部特征、生态环境、行为模式、饮食习性和繁殖方式。
一、动物的外部特征:1. 观察动物的体型、体长、体重等基本特征;2. 记录动物的体色、毛发和羽毛等外部特征;3. 探究动物的头部结构、四肢形态等特征;4. 观察动物的感觉器官如眼睛、耳朵等的形态和构造;5. 记录动物的运动能力和适应环境的特征。
二、动物的生态环境:1. 调查动物栖息地的地理位置和气候条件;2. 分析动物所处环境的地形和植被状况;3. 记录动物栖息地的海拔高度和水域特征;4. 探究动物栖息地的食物来源和天敌情况;5. 分析动物栖息地对其生活和繁殖的影响。
三、动物的行为模式:1. 观察动物的觅食行为和觅食策略;2. 记录动物的睡眠习性和活动规律;3. 探究动物的社交行为和群体组织结构;4. 观察动物的逃避和防御行为;5. 分析动物的繁殖行为和繁殖季节。
四、动物的饮食习性:1. 调查动物食性类型和摄食方式;2. 记录动物的主要食物来源和摄入量;3. 探究动物的消化系统结构和功能;4. 观察动物对不同食物的偏好和适应能力;5. 分析动物的饮食选择和食物摄入与能量需求的关系。
五、动物的繁殖方式:1. 调查动物的性别比例和交配方式;2. 记录动物的交配行为和繁殖季节;3. 探究动物的受精方式和卵胎生或胎生特征;4. 观察动物的孵化或生育过程和育儿行为;5. 分析动物的繁殖成功率和繁殖对后代生存的影响。
总结:综上所述,通过对动物的外部特征、生态环境、行为模式、饮食习性和繁殖方式进行观察和分析,我们对该组动物的生活习性和繁殖生态有了更加深入的了解。
这些信息对于保护和管理特定动物群体以及生态环境的保护具有重要的参考价值。
实验一大、小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作,掌握大、小鼠的一般操作方法,包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。
二、实验动物:昆明小鼠4只(2雌2雄)、大鼠4只(2雌2雄)、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠2.3同样鉴别方法,重复鉴别大鼠。
3. 给药3.1 灌胃法3.1.1按正确方法用左手抓取和固定小鼠,使腹部朝上,颈部拉直。
3.1.2固定后,右手持持接灌胃针的注射器吸取药液(或事先将药液吸好),将针头从口角插入口腔内,然后用灌胃针头压其头部,使口腔与食管成一直线,再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入,转动针头刺激动物吞咽,然后沿咽后壁慢慢插入食道。
3.1.3当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内,向外抽动注射器活塞,感觉有负压,此时可将药液灌入。
用75%酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,用中指从下面托起鼠,右手持注射器,使针头尽量采取与尾部平行的角度进针,从尾末端处刺入。
注入药液,无阻力,表示针头已进入静脉,注射后把尾部向注射侧弯曲,或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血。
4取血4.1内眦取血:手固定小鼠,食指和拇指轻轻压迫颈部两侧,使眶后动静脉充血。
手持毛细采血管,以45 度从内眼刺入,并向下旋转,感觉刺入血管后,再向外边退边吸,使血液顺承血管自由流入小管中,可次,进血管后注意保持稳定,针尖很容易刺穿血管的。
2.3尾静脉就在尾巴的正左右两边,先用酒精用力擦,可以去掉部分角质,然后按住近心端让充血,就很容易看到了。
3.灌胃3.1针头插入食道过程中,若动物挣扎厉害,应退出后灌胃针,待动物安静后重新插入。
切不可强行插入,以免损伤食道或误入气管导致动物死亡。
3.2当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内,向外抽动注射器活塞,感觉有负压说明灌胃针未插入气管,此时可将药液灌入。
国外动物实验定义全文共四篇示例,供读者参考第一篇示例:国外动物实验定义动物实验是指科学家们在研究中利用动物作为实验对象来进行研究的一种实验方法。
动物实验被广泛应用于医学、生物学、心理学等领域,以探索各种疾病的病因和治疗方法,以及了解动物行为和生理特征等。
虽然动物实验在科学研究中扮演着不可替代的角色,但也引发了一系列争议,尤其是动物福利方面的问题。
在国外,动物实验的定义主要包括以下几个方面:1. 实验对象:动物实验的实验对象通常是非人类的动物,包括小鼠、大鼠、猪、狗、猫等。
选择实验对象主要考虑到其生理结构和生理功能与人类相似程度,以确保实验结果的可靠性和适用性。
2. 实验目的:动物实验的目的主要包括基础研究、应用研究和毒性试验等。
基础研究旨在探索动物的生理特征和行为规律,为进一步研究提供基础;应用研究则主要用于研究各种疾病的病因、预防和治疗方法;毒性试验则用于评估化学品、药物和其他物质对动物的毒性作用。
3. 实验方法:动物实验可以采用多种方法进行,包括给药、手术、行为观察等。
通过实验方法,科学家们可以获取大量的生物数据,进而分析和研究动物的生理特征和行为规律。
4. 伦理问题:动物实验在国外普遍受到伦理问题的严格监管,包括实验动物的保护、实验程序的合理性和实验结果的透明度等。
科研机构和实验者必须遵守相关的伦理规范和法律法规,确保实验过程的合法性和公正性。
国外的动物实验在维护动物福利的也致力于推动科学研究和医学进步。
通过动物实验,科学家们可以更深入地了解动物的生理特征和行为规律,为人类健康和社会发展做出更大的贡献。
但我们也需要认识到,动物实验存在一定的伦理问题和争议,必须在严格监管下进行,以确保实验过程的合法性和人道性。
第二篇示例:国外动物实验是指在国外进行的针对动物进行的科学实验。
这些实验通常是为了测试新药物的安全性和有效性,研究疾病的病因和治疗方法,以及推动科学技术的发展。
动物实验在医学研究领域起着非常重要的作用,但也引发了伦理和道德争议。
动物实验一、实验动物的编号与标记编号与标记通常是动物实验开始时进行的第一项工作。
编号的目的是使个体易于识别,便于实验者观察每个动物的变化,为清楚记录结果做好准备。
无论何种编号方法,良好的标记方法都应满足号码清晰、耐久、简便和适用的要求。
(一)染色法常用的染液有3%~5%的苦味酸溶液(黄色)、2%的硝酸银溶液(咖啡色)、0.5%的中性品红溶液(红色)。
染色法编号的原则是“先左后右,先上后下”。
(二)穿耳孔法(三)剪趾法(四)挂牌法(五)挂腿圈法(六)烙印法(七)针刺法(八)剪尾法剪尾法是将动物尾尖部剪去,一般用于大鼠、小鼠的分组,但仅限于将两组动物区分开,无法给每只动物编号。
如果若需进行尾尖取血,此法不适用。
(九)剪毛法剪毛法是将动物背部的被毛用剪刀剪去,用于标记,此法编号标记清楚、可靠,便于试验人员观察,常用于大中型动物的编号。
二、实验动物的分组(一)随机分组的原则及方法动物编号后,通常需要根据实验要求进行分组。
动物随机分组一般使用随机数字表或用计算器产生随机数字来进行。
(二)分组的注意事项动物随机分组的目的在于使某实验中的某主要指标平均分配到各个组中,为确保实验结果具有统计学意义,实验分组时应注意各组动物的数量不可太少,一般需进行统计学处理的实验数据,各组动物至少不可少于6只,若再考虑到实验过程中出现意外等情况,动物数量还需适当增加。
实验分组时还应考虑到动物性别的影响。
如果条件允许,可选择雌雄各半进行实验,但应保证雌雄动物的实验数据均应具有统计学意义;若条件不允许,考虑到雌性动物的生理因素,选择雄性动物进行实验为好。
三、实验动物的抓取和固定(一)小鼠的捉取与固定小白鼠正常体温37℃左右,小鼠性情比较温顺,一般不会主动咬人。
在小鼠较安静时打开鼠笼盖,一般情况下用右手在靠近鼠尾尾根部捏住并将其提起,放在较粗糙的平面或鼠笼盖上,轻轻地向后拉鼠尾,当其向前爬行时,用右手拇指和食指捏住小鼠颈部皮肤和两耳,捏住的皮肤要适量,太多太紧小鼠会窒息,太少太松小鼠会回头咬伤实验者。
捏住后翻转右手,掌心向上,将鼠体置于右手掌心中,左手拉住小鼠尾部,用左手无名指或小指压紧尾根,使小鼠身体成一条直线(图2)。
此种抓取固定方法适用于肌肉注射、腹腔注射、灌胃等操作。
图1 小鼠的抓取图2 小鼠固定(三)豚鼠的抓取与固定豚鼠正常体温38.6(37.8~39.5)℃,豚鼠性情温顺,一般不咬人。
抓取时,不能粗暴,更不能抓腰腹部,这样易造成肝破裂而引起死亡。
抓取幼小的豚鼠时,可用双手捧起。
抓取较大的豚鼠时,可将手轻轻地伸进笼子,先用手掌扣住豚鼠的背部,抓住其肩胛上方,将左手张开,用手指抓住颈部慢慢将其提起。
怀孕或体重较大的豚鼠,应用右手托起臀部(图4)。
图3大鼠的抓取图4豚鼠的抓取及固定四、注射免疫方法(一)皮下注射皮下注射一般选取皮下组织疏松的部位,大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射,猪的皮下注射部位为耳根部皮下。
牛的皮下注射部位是颈部的两侧或者肩胛后方的胸侧皮肤容易移动的部位。
皮下注射时,先用酒精棉球消毒需注射部位的皮肤,再将皮肤提起,进针时,从头部方向刺入皮下,再沿体轴方向将注射针推进5~10mm,若针尖易左右摆动,表明已刺入皮下。
然后轻轻抽吸,如无回流物可缓慢注射药液。
注射完毕,缓慢拔出注射针,用干棉球压针刺部位,以防止药液外漏。
(二)肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达,无大血管通过的部位。
大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉。
猪的肌肉注射部位为颈部肌肉或者耳后肌肉。
牛的肌肉注射部位是颈部三角区(项韧带下缘,胸头肌后缘,肩胛骨前方围成的)、后臀的前外侧(髋结节后面的)。
(三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时,以左手固定动物,使腹部向上,为避免伤及内脏,应尽量使动物头处于低位,使内脏移向上腹,右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下,针头稍向前,再将注射器沿45℃角斜向穿过腹肌进入腹腔,此时有落空感,回抽无回血或尿液,即可注入药液。
(四)皮内注射皮内注射用于观察皮肤血管通透性变化或皮肤反应。
大鼠、小鼠、豚鼠、家兔等动物皮内注射常选择背部脊柱两侧的皮肤。
猪的皮内注射一般选取耳壳外面或腹侧皮肤注射。
操作时需先将动物注射部位脱毛,酒精棉球消毒局部,用左手将皮肤捏成皱襞,右手持注射针,将针头与皮肤大约呈30℃角刺入皮下,然后使针头向上挑起并稍刺入,即可注射。
注射后,皮肤表面可见鼓起一小丘,停留片刻拔出针头。
五、采血方法(一)大鼠、小鼠的采血方法:1、尾尖采血:此种采血方法血量很少,约1~2滴,可以做血涂片、试纸检测血糖等实验。
动物固定露出尾巴,用酒精擦拭尾尖,使血管扩张,然后剪去尾尖1mm~2mm(小鼠)或3mm~5mm(大鼠),血液即可流出。
若剪尾后,未见血,可用手沿尾根部至尾尖部捋尾巴,血液即可流出,取血后用干棉球压迫止血。
2、眼眶后静脉丛采血:是以采血管刺破后眼眶静脉丛进行采血的方法。
操作者一手固定小鼠或大鼠,食指和拇指轻轻压迫颈部两侧,使眶后动静脉充血,另一只手持玻璃制的毛细采血管(小鼠采血管直径约1mm,大鼠采血管直径约2mm)以大约45℃角从内眼角刺入,并向下旋转,感觉刺入血管后,再向外边退边吸,使血液顺取血管自由流入小管中,当得到所需血量后,放松加于颈部的压力,并拔出采血器,以防穿刺孔出血。
采血后,用消毒纱布压迫眼球止血30s。
若技术熟练,此方法在短期内可重复采血,小鼠一次可取血0.2ml~0.3ml左右,大鼠可取血约0.5ml~1ml。
3、摘眼球采血:若一次性采血可选择摘眼球法从眶动脉或眶静脉采血。
取血时左手固定动物,将动物头部皮肤绷紧,眼球突出,右手持眼科弯镊夹住眼球根部,将眼球迅速摘出,并立即将鼠倒置,头朝下使眼眶内动静脉血液流入容器。
(二)豚鼠采血方法1、耳缘切口采血:先将豚鼠耳消毒,用刀片割破耳缘,则血可自动流出而进入容器。
此法能采血约0.5ml。
2、背中足静脉采血:将豚鼠后肢关节伸直,提到实验者面前。
实验者将动物脚背面用酒精消毒,找出背中是静脉后,用左手拇指和食指拉住豚鼠的趾端,右手持注射针刺入静脉,抽出注射针后即有血液渗出。
(三)猪采血方法1、耳静脉采血:适用于40Kg以上的中大猪或种猪。
采用站立保定,由1名助手用猪保定器套住猪的上颌骨、收紧,用力向前方牵引,另一助手在猪耳根处用力压住耳静脉近心端,采血员左手拉伸猪耳,右手用酒精棉球反复涂擦耳静脉使血管怒张后,右手持连接9号针头的注射器,沿血管走向刺入,针头与猪耳水平面呈10~15℃角进针,回血后,缓慢抽取所需血液量后,用干棉球或棉签按压止血。
2、前腔静脉采血法:20~30Kg的小猪。
一般用仰卧保定法,由一名助手抓握两后肢,尽量向后牵引,另一助手用手将下颌骨下压,使头部贴地,并使两前肢与体中线基本垂直。
此时,两侧第一对肋骨与胸骨结合处的前侧方呈两个明显的凹窝。
采血员用酒精棉球消毒皮肤后,手持连接7~9号针头的一次性注射器(10~40Kg小猪,选择9×25毫米针头;10Kg以下乳猪,选择7×20毫米针头),向右侧凹窝处,由上而下,稍偏向中央及胸腔方向刺入,见有回血,即可采血,采血完毕,左手拿酒精棉球紧压针孔处,右手迅速拔出采血针管,稍压片刻止血后,解除保定。
40Kg以上的中大猪,采用站立式保定,由一名助手用猪保定器套住猪的上颌骨、收紧,用力向前上方牵引,使猪的上颌骨稍稍吊起,两前肢刚刚着地,让猪的胸前凹窝充分暴露,采血员用酒精棉球消毒皮肤后,手持连接12×38毫米针头的一次性注射器,朝右侧胸前凹窝最低处,由下而上,且垂直凹窝方向进针,见回血后,标志已刺入血管,轻轻抽动注射器活塞,采取血液。
采血完毕,拔出针头,术部用酒精棉球压迫片刻止血后,解除保定。
(四)牛采血方法1、牛、羊静脉采血:将动物保定,稍抬头颈,于经脉沟上1/3与中1/3交界部剪毛消毒,一手拇指按压采血部位下方颈静脉沟血管,促使静脉怒张,另一手执针头,与皮肤呈45℃角,由下向上方刺入,血液顺器壁流入容器内,防止气泡产生。
待血量达到要求后,拔下针头,用消毒棉球按压针眼,轻按止血。
2、牛尾静脉采血:固定动物,使牛尾往上翘,手离尾根部约30cm。
在离尾根10cm 左右中点凹陷处,先用酒精棉球消毒,然后将采血针垂直刺入(约1cm深)。
针头触及尾骨后再退出1mm进行抽血。
采血结束,消毒并按压止血。
3、乳房静脉采血:奶牛、奶山羊可选乳房静脉采血,奶牛腹部可看到明显隆起的乳房静脉,消毒后在静脉隆起处,针头向后肢方向快速刺入,见有血液回流,缓慢抽取所需量血液或接入真空采血管。
六、不同动物感染FMDV后的症状:(一)猪口蹄疫的症状与病变:潜伏期为24h至7天,少数可达到14天,开始时,病猪发热,可达到41℃,精神萎顿,打盹,猪蹄底部或蹄冠部皮肤潮红、肿胀,继而出现水泡,行走呈跛行,有明显的痛感,行走发出凄厉的尖叫声,很快蹄壳脱落,蹄部不敢着地,病猪跪行或卧地不起,鼻颈部出现一个或数个水泡,黄豆大或乒乓球大小不等,水泡很快破裂,露出鲜色溃疡面,如无细菌感染,伤口可在一周左右逐渐结痂愈合。
哺乳母猪的乳头常出现水泡,引起疼痛而拒绝哺乳;哺乳仔猪出现急性胃肠炎、急性心肌炎或四肢麻痹,衰弱死亡,死亡率可达80%以上;大猪解剖一般特征性病变,少数可见胃肠出血性炎症。
仔猪呈现典型的“虎斑心”,心肌外出现黄色条纹斑,心外膜有不同程度的出血点,个别肺有气肿现象。
(二)牛口蹄疫的症状与病变:口蹄疫病毒侵入动物体内后,经过2~3日,有的则可达7~21日的潜伏时间,才出现症状。
症状表现为口腔、鼻、舌、乳房和蹄等部位出现水泡,12~36h后出现破溃,局部露出鲜红色糜烂面;体温升高达40~41℃;精神沉郁,食欲减退,脉搏和呼吸加快;流涎呈泡沫状;乳头上水泡破溃,挤乳时疼痛不安;蹄水泡破溃,蹄痛跛行,蹄壳边缘溃裂,重者蹄壳脱落。
犊牛常因心肌麻痹死亡,剖检可见心肌出现淡黄色或灰白色、带状或点状条纹,似如虎皮,故称“虎斑心”。
有的牛还会发生乳房炎、流产症状。
牛的潜伏期2~7天,可见体温升高40~41℃,流涎,很快在唇内、齿龈、舌面、颊部粘膜、蹄趾间及蹄冠部柔软皮肤以及乳房皮肤上出现水泡,水泡破裂后形成红色烂斑,之后糜烂逐渐愈合,也可能发生溃疡,愈合后形成斑痕。
病畜大量流涎,少食或拒食;蹄部疼痛造成跛行甚至蹄壳脱落。
该病在成年牛一般死亡率不高,在1%~3%之间,但在犊牛,由于发生心肌炎和出血性肠炎,死亡率很高。
(三)未断乳小鼠感染FMDV后的症状:未断乳小鼠非常敏感,是能查出病料中少量病毒最好的实验动物,一般用3~5日龄(也可用7~10日龄)的乳鼠,皮下或腹腔接种,经10~14小时表现呼吸急促、四肢和全身麻痹等症状,于16~30小时内死亡。
(四)豚鼠感染FMDV后的症状:豚鼠是常用实验动物,在后肢趾部皮内接种或刺划,常在24h后,接种部位形成原发性水泡,此时病毒在血液中出现,其后18~32h,在口腔出现继发性水泡时,病毒即在血液中消失。