临床微生物检验标本的采集

临床微生物学检验的标本采集一、血液和骨髓细菌学检验标本的采集（一）适应症菌血症、败血症和感染性骨髓炎等感染菌的培养鉴定和药物敏感试验。

（二）病人准备1．凡怀疑菌血症和败血症的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用过抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，或在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。

2．应在病人发热期或寒颤时采集（三）标本采集1．血培养瓶领取：凭医嘱和检验申请单到检验科细菌室领取。

按照实际情况选择相应类型的血培养瓶：如灰色瓶盖为普通成人培养瓶；粉红色盖为儿童需氧菌培养瓶；紫色盖为厌氧菌培养瓶。

2．将患者信息录入相应的血培养瓶条码中，并在作好病人姓名、科别、床号等标识。

2．采集方法：严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液或骨髓后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀。

3．标本量：成人每次采血5~10ml，小儿采血3~5ml，骨髓2~3ml，采血量足够则阳性率高，反之阳性率减低。

（四）注意事项1．抽血、抽骨髓和接种时，须严格注意无菌操作，避免污染杂菌。

2．从抽血、抽骨髓到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固。

3．成人不明原因发热、怀疑血流细菌感染时宜在不同部位抽血2套，每套2瓶（需氧、厌氧各一瓶）。

4．怀疑伤寒、亚急性细菌性心内膜炎及布鲁氏菌病的病人等，一般一日抽血三次培养，必要时需追加次数。

（五）标本送检和保存1．标本采集后应及时送检，一般不超过1h送交细菌室。

2．送检过程中应注意防止培养瓶打破或其它潜在性污染可能。

二、痰液或下呼吸道分泌物细菌学检验标本的采集（一）适应症肺炎、肺气肿、支气管炎、鼻窦炎、肺结核等感染菌的培养鉴定、药物敏感试验和抗酸菌检查。

（二）病人准备1．尽量在未使用抗菌素前留取标本。

准备好无菌标本容器，贴上条码、标明标识。

2．住院病人应留取清晨起床第一口痰。

为减少正常菌群的污染，嘱患者早上起床后用清水或生理盐水漱口，不要刷牙，除去鼻咽分泌物。

（三）标本采集1．一般病人用力咳出气管深处或肺部痰液，留于无菌标本容器内。

临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中，微生物检验是不可缺少的一环。

临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。

本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。

1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。

2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时，一定要做好消毒工作。

选择采血部位后，用酒精或碘酒消毒，再用无菌针头采血，避免受污染。

血液标本采集后可以分成两份，一份用于血常规，另一份用于血培养。

2.2 尿液标本收集尿液标本时，要让患者用清洁肥皂清洁外阴部，再用无菌尿杯收集尿液，避免手部直接触摸尿杯和尿液。

尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。

2.3 粪便标本采集粪便标本时，要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。

最好不要使用纸巾，而是用无菌容器收集粪便。

粪便标本采集窗口为3天。

2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时，首先要选择采血部位进行消毒，然后将血培养瓶插入采血针器上，打开外部装置，使血液顺利流入血培养瓶中。

采集集中在早晨时段，每次采集2-3个血培养瓶。

2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行，患者应严格卧床休息，医生在患者腰部，采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。

2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时，需要选择无菌医用棉签，消毒采集部位。

在采集过程中，应尽量避免被采集部位感染污染到。

3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。

标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。

并且在运送过程中需要遵循以下几点：3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长，应尽早将标本送至检验室进行分析。

3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器，容器体积大小要相应合适。

送检前，要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。

标本包装时，应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。

3.3 运输温度不同种类的标本，其运输温度介于4-25摄氏度之间。

临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。

采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。

采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。

2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。

采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。

消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。

3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。

（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。

（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。

（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。

（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。

二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。

容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。

2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。

运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。

3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。

（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。

（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。

三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。

2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。

对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。

3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。

临床微生物检验标本采集程序1 标本采集的基本原则：1.1 严格的无菌操作，避免污染，避免来自寄生菌的污染，应当保证每份样本代表感染过程｡1.2 选择正确的解剖部位、合适时间、合乎规程技术，采集样本。

1.3 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的样本。

1.4 要收集足够量的样本，量少可能导致假阴性结果。

1.5 应尽可能在病人使用抗菌药物前采集样本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。

1.6 血培养样本在病人寒颤和发热初起时为最佳时机。

1.7 导尿留取样本时，不可从尿袋中采集样本。

引流液样本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。

1.8 各类微生物样本不宜加防腐剂1.9 盛标本的容器须先经灭菌（煮沸、高热、或高压灭菌），但不得用消毒剂或酸类处理。

1.10 有些临床标本还要注意采集的时机和部位，如伤寒沙门菌的阳性检出率，发病的第1～2 周采集血液，第3～4 周采集大便和尿液，阳性率较高。

1.11 样本的运送处理和储存规定1.11.1 样本2h之内送到实验室。

1.11.2 血培养瓶如果不能及时送检，应置室温保存（但不得超过24 小时）。

禁止将不能及时送检的血培养瓶放置冰箱保存。

1.11.3 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养时，样本不能放4℃条件保存，应在30min内送检，并注意保温。

1.11.4 痰培养疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时，应立即送检，因为这些细菌在自然环境中极易死亡。

1.11.5 导管样本如不能在规定时间内送检，应在盛装导管的容器中加少量无菌生理盐水，以免导管干燥，病原微生物死亡。

1.11.6 活检组织样本和眼分泌物样本应在30min内送检，如样本较小或不能在规定时间内送检，应在盛装组织的容器中加少量无菌生理盐水，以免样本干燥，病原微生物死亡。

不可用纱布包裹组织样本。

2 常见临床微生物标本的采集方法。

2.1 血液及骨髓样本2.1.1 检验项目：血液及骨髓培养。

2.1.2 适应症病人出现以下临床表现：发热（38℃）或低温（36℃）、寒战、白细胞增多（白细胞数>10×109/L，特别有“核左移”时）、皮肤粘膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、C反应蛋白升高及呼吸加快、血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等临床可疑血流感染时应采集血液样本进行血培养及骨髓培养。

临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。

2.2正常菌群寄生部位：采集时应特别小心；应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。

3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。

3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作；3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊；3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。

盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。

标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。

4-适量标本4.1标本采集应足量。

标本量过少，可能会导致假阴性结果。

4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本：三1ml尿液标本：＞3ml4.1.3粪标本：1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊：4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液：>5ml;4.2.2清晨中段尿：5-10ml;4.2.3粪标本：>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等)：5- 10ml。

临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节，对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。

本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。

一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：微生物标本的采集应在抗生素使用前，以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。

在感染初期或病情加重时采集标本，可提高病原体的检出率。

2.无菌操作：在微生物标本采集过程中，应严格执行无菌操作，避免正常菌群和其他杂菌的污染。

采集非无菌部位的标本时，应尽量减少污染。

3.采集量：微生物标本的采集量要充足，以便进行后续的培养和检测。

不同类型的标本有不同的采集量要求，一般要求采集足够量的标本。

4.标本保存：微生物标本在采集后应及时保存，室温下保存时间不得超过 2 小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存），冷藏保存时间不得超过 8 小时。

5.标本运输：微生物标本在运输过程中应保持无菌状态，避免温度过高或过低，以及剧烈震动。

运输包装应具有良好的保护性能，防止标本破损或泄漏。

二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件：微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度，避免高温、低温和干燥。

不同类型的标本有不同的运送条件要求，一般要求在 2-8℃的条件下运送。

2.运送时间：微生物标本的运送时间应尽量缩短，以减少病原体的死亡或活性降低。

一般要求在采集后 24 小时内送检。

3.运送包装：微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能，防止标本在运输过程中破损或泄漏。

包装材料应无毒、无菌、防渗漏。

三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。

正确采集和运送微生物标本，可以提高病原体的检出率，为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。

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临床微生物标本采集和运送基本原则有：
第一，要及时采集微生物标本，做病原学检查。

第二，严格执行无菌操作，减少和避免污染。

第三，标本采集之后，要立即送到实验室，床旁接种可以提高病原菌的检出率。

第四，尽量的在使用抗菌药物之前采集标本，这样对于结果的影响比较小一些。

第五，以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。

第六，盛标本容器须经灭菌处理，不要使用消毒剂。

第七，送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

第八，对于混有正常菌群的污染标本，要做定量或半定量培养，然后判断是感染菌和定植菌。

第九，对分离到的病菌，要做药敏实验，提倡分级报告和现实报告。