B-raf基因突变检测试剂盒(荧光PCR-毛细管电泳法)标准化操作流程1、预期用途该产品用于定性检测确诊的结直肠癌患者石蜡包埋病理组织切片DNA的B-rafV600E 基因突变。
B-raf 基因是一种癌基因，编码一种丝/ 苏氨酸特异性激酶，是RAS/RAF/MEK/ERK/MAPK 通路重要的转导因子，参与调控细胞内多种生物学事件，如细胞生长、分化和凋亡等。
B-raf 基因位于7p34，长约190kb，转录mRNA 长2.5kb，编码783 氨基酸的蛋白，相对分子质量为94000-95000 Da。
研究表明，在多种人类恶性肿瘤中，如恶性黑色素瘤、结直肠癌、肺癌、甲状腺癌、肝癌及胰腺癌等均存在不同比例的B-raf 突变，B-raf 突变主要发生在Exon15 上的激活区的第1799 氨基酸上(T 突变为A)，导致编码的氨基酸由谷氨酸变成缬氨酸(V600E)，该突变能使B-raf 激酶活性提高，V600E 突变能模拟T598 和S601 两个位点磷酸化作用，使BRAF 蛋白激活。
近来研究表明，对于野生型Kras、但存在B-raf 基因V600E 突变患者，抗EGFR 单抗治疗无效。
2010 年版《NCCN 结直肠癌临床实践指南》中已明确指出“如K-ras 基因无突变时，需检测B-raf 基因突变，如果后者存在V600E突变，则不应该给予抗EGFR 单抗治疗。
”2、仪器配置要求移液器，振荡器，微型离心机，生物安全柜，高速冷冻离心机，定性PCR仪，荧光定量PCR仪（ABI7500，LightCycler® 480，MX3000P，CFX-96等），微量紫外分光光度计，基因分析仪（ABI3130，ABI3500DX）。
3、耗材要求无菌带滤芯吸头、吸水纸，离心管（1.5ml，0.5ml，0.2ml）、PCR反应管（配套荧光定量PCR仪型号）及无粉一次性乳胶手套，基因分析板。
4、责任人基因扩增实验室室长负责技术指导和质量监督。
5、执行人操作人员应经过专业培训，具有合格的操作技能的检验专业技术人员。
6、检测原理本产品选取人类基因组B-raf 基因Exon 15 上设计特异性引物和探针，对扩增后的PCR 产物片段进行测序分析。
使用尿苷酶(UNG)防污染体系，经加热可以选择性地降解U-DNA，以防止先前PCR 扩增产物的污染。
7、试剂来源北京鑫诺美迪基因检测技术有限公司8、样本要求8.1用量：每例标本切5张(10µm)白片，连续切片，不漂洗脱蜡，直接封存于1.5ml EP管中；8.2质量：为确保DNA提取成功率，必须选择2年以内的石蜡标本；8.3标本收集方法：石蜡包埋病理切片样品应确定含有肿瘤病变细胞，为了保证切片组织中含有足够比例的肿瘤细胞，需要加同一组织HE染色片子一张（在显微镜下肿瘤细胞比例＞70%）。
9、标准操作程序9.1试剂准备（在试剂准备区完成）9.1.1配置说明：检测反应设置阴性质控品和阳性质控品。
9.1.2配置过程提前30分钟将试剂取出，室温融化，涡旋振荡10秒，2000 rpm离心15秒待用。
确定反应数N，N=待检样本数(n)+质控品数(2)+1。
计算加到反应混合物中的各个试剂的量，取1个灭菌离心管配置上述反应体系，试剂全部加入后涡旋振荡10秒，2000 rpm离心15秒。
然后将上述混合液23 μL/管分装至PCR反应管中(无菌和RNase-Free)。
配完试剂后，充分混合均匀，瞬时离心15sec，放入传递窗。
9.2标本制备（标本制备去完成）9.2.1在缓冲间内更换隔离衣，戴上帽子、口罩、手套，将传递窗的试剂取出放入标本制备区的冰箱冷藏，备用。
9.2.2从样本盒中取出待检石蜡组织样本，添加1ml二甲苯于样品中，剧烈涡旋10sec。
12000rpm离心2min，吸除上清，小心不要吸到沉淀。
9.2.3加入1ml无水乙醇于沉淀中，涡旋混匀。
12000rpm离心2min，吸除上清，小心不要吸到沉淀。
9.2.4打开管盖，室温（15℃-25℃）或者37℃放置10min直至残余的乙醇挥发完全。
注意：完全去除残余的乙醇很重要，任何残余的乙醇均会对DNA产生影响。
9.2.5重悬沉淀于180ul缓冲液GA中，加入20ul蛋白酶K，彻底涡旋均匀。
56℃水浴1小时（水浴到样本完全裂解为止），再转移到90℃孵育1小时。
9.2.6向离心管中添加200ul缓冲液GB，涡旋均匀。
加入200ul无水乙醇，涡旋均匀。
再加入200ul无水乙醇，彻底均匀。
9.2.7将上述得到的溶液加入吸附柱CR2中（吸附柱放在收集管中），12000rpm离心1min。
将离心出的溶液重新加入到吸附柱中，12000rpm再次离心1min，直到所有的溶液通过吸附柱，弃掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管中。
9.2.8向吸附柱中加入500ul缓冲液GD，12000rpm离心1min，弃掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管中。
9.2.9向吸附柱中加入500ul漂洗液PW，室温静置2min，12000rpm离心1min，弃掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管中。
9.2.10重复步骤15。
9.2.11将上步实验所得吸附柱12000rpm离心3min，弃掉收集管及废液，将吸附柱转入一个新的1.5ml离心管中，打开吸附柱的盖子置于室温放置数分钟。
注意：此步骤目的是使吸附柱中残余的漂洗液挥发干净，漂洗液的残留，可能会影响后续的实验。
9.2.12向吸附柱膜的中央滴加20-50ul洗脱缓冲液TB，室温放置2min，12000rpm离心2min，得到DNA溶液。
9.2.13加样将B-raf阴性质控品C、已处理样本和B-raf阳性质控品C 分别取2 μL加入PCR 反应管中，盖紧管盖，瞬时离心将管壁上的液体全部甩至管底，避免产生气泡，如有气泡产生，轻弹PCR 反应管壁，再次瞬时离心（若仍有气泡重复此步骤），然后立即进行PCR 扩增反应。
9.3PCR扩增收集荧光：FAM 通道10、PCR结果分析10.1结果分析条件设定10.1.1 ABI 7500 型荧光定量PCR仪(Version 1.4.0)反应结束后，根据PCR仪说明书及荧光曲线进行手动或自动调整基线和阈值。
手动调整时，基线（Baseline）的起始点（Start）设定在5~8之间，终止点（Stop）设定在12~15之间，阈值线（Threshold）通常设定在1000~5000之间（视具体情况而定）。
设定之后，点击“Analyze”（分析）按键，即可从“Report”窗口的“Ct”处得到各样本的Ct值。
10.1.2 Stratagene Mx3000P型荧光定量PCR仪反应结束后，根据荧光曲线进行手动或自动调整基线和阈值，手动调整基线（Non-adaptive baseline）的起始点（Start）一般设定为5~8，终止点（Stop）一般设定为12~15，阈值线（Threshold fluorescence）通常设定在500~2000之间（视具体情况而定）。
设定之后，可以从“Text report”窗口的“Ct(dRn)”处得到各样本的Ct值。
10.2质量控制10.2.1B-raf 阴性质控品C：靶基因通道无S 型扩增曲线，Reports 界面Ct 一栏显示Undetermined；10.2.2B-raf 阳性质控品C：靶基因通道有S 型扩增曲线，且15≤Ct≤25；以上条件必须在同一次实验中全部满足，否则本次实验结果无效；10.2.3待测样品的Ct>32 时，低于本试剂盒测序检测下限，不能进行后续的测序反应，说明加入的DNA 含量不足或含有较多的PCR 抑制物，应重新提取DNA 或调整DNA 加样量，必须使待测样品的Ct≤32，才能满足后续实验要求；10.2.4若检测靶基因通道无S 型扩增曲线，Reports 界面Ct 一栏显示Undetermined，则样本提取无DNA，为阴性，建议重新提取；10.3反应完毕，存储PCR结果以便进行数据分析，PCR产物用于后续实验。
11、PCR产物的酶解对样本DNA 含量(Ct≤32) PCR 产物和B-raf 阳性质控品C 分别取5 μL于PCR反应管中，再分别加入2 µL SAP酶混合液涡旋振荡10秒，2000 rpm离心15秒，于PCR仪上进行酶解。
酶解程序如下：37℃ 60分钟，80℃ 15分钟。
12、基因分析PCR反应分别取样本和B-raf 阳性质控品C 酶解产物3 µL、测序试剂1 µL和B-raf 测序引物2 µL13、基因分析产物纯化0.2 ml离心管中13.1.在每孔内加入16 µL醋酸钠-乙醇混合物(3M NaAc:无水乙醇=1:15)，剧烈振荡，避光静置15分钟12000 g以上4 ℃离心30分钟，吸弃上层液体；13.2.加入70 µL 70%预冷乙醇，剧烈振荡，12000 g以上4 ℃离心15分钟，吸取上层液体；13.3.让酒精在室温挥发干净，加入12 µL Hi-Di Formamide溶解DNA；13.4.在PCR仪上变性：95 ℃ 4分钟，4℃ 4分钟，上机电泳；在自动化的基因分析仪上进行分析，若不能当日基因分析，可置-20℃保存。
14、检测结果分析采用测序分析软件Chromas 对结果进行分析：14.1.用Chromas 软件打开测序结果，在Edit 菜单下点击“Reverse+Complement”；14.2.删除不稳定测序区域；14.3.在Find 下，找到序列GGAGCT，移动光标至“G”左侧的第一个碱基，按快捷键Alt+L 选中测序前段不稳定区域，在Edit 菜单下点击“Delete Cutoff Sequences”删除以上区域；14.4.按快捷键Ctrl+1，显示氨基酸序列，将其后面的序列与下面的野生型标准序列比对，标记处600(T1799A)位密码子GTG 可能会发生T→A的突变（参考突变判读依据）。
野生型核苷酸野生型氨基酸F G L A T K S突变型核苷酸突变型氨基酸F G L A T K S突变判读依据：杂合峰：如果在一个特定的位点上出现了两种颜色的峰叠在一起即为杂合峰。
在毛细管电泳时，这些测序图的峰高代表荧光强度，一种荧光素的高度能在一定程度上代表某一特定片段的量。
临床取得的肿瘤组织一般会携带正常细胞和肿瘤细胞，因此得到的测序结果中往往会存在2 种颜色的峰同时存在。
判读结果时根据突变的热点区、噪音的高低以及污染的轻重来综合判断，当杂合峰的高度显著高于其左右周边的噪音时，可判读为存在突变型。
按上述方法查找突变位点，并将结果记录在报告上，若没出现则可能前面的序列发生了移码突变、插入碱基等情形,需要对照标准序列将测序序列校正后返回本步骤重新分析。
