1荧光共振能量转移原理如果两个荧光团相距在1~10nm之间,且一个
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简述荧光共振能量转移技术荧光共振能量转移技术(FRET)是一种通过荧光信号的传递来研究分子间相互作用的技术。
它基于荧光分子的特性,利用分子间的能量传递来研究化学和生物学系统中的相互作用。
荧光共振能量转移是一种非辐射能量传递的过程,它发生在足够靠近的两个荧光分子之间。
这两个分子分别称为给体和受体。
给体的激发态能量可以通过FRET传递给受体,从而使受体从基态跃迁到激发态。
这一过程在分子间的距离较近时才能发生,一般要求距离在1-10纳米范围内。
通过测量受体的荧光强度变化,可以获得有关给体和受体之间相互作用的信息。
在FRET过程中,给体和受体的选择非常重要。
给体的荧光发射波长应与受体的吸收波长相匹配,以确保能量传递的有效性。
常用的给体-受体组合包括荧光蛋白-荧光蛋白、荧光染料-荧光蛋白、荧光染料-金纳米颗粒等。
FRET技术在生物学研究中得到了广泛应用。
例如,通过将荧光蛋白标记在感兴趣的蛋白质上,可以研究蛋白质的定位、结构和功能。
通过观察荧光信号的变化,可以了解蛋白质与其他分子的相互作用、结合和解离过程。
此外,FRET还可以用于研究细胞和组织中的信号传导、代谢过程等。
除了生物学研究,FRET技术也在化学、材料科学等领域得到了应用。
例如,通过合成特定结构的荧光分子,可以实现对分子间相互作用的精确控制和检测。
这对于研究分子的自组装、聚集行为以及材料的光学性质具有重要意义。
FRET技术的发展受到了许多因素的影响。
首先,荧光分子的性质和性能对FRET的效果有着重要影响。
选择合适的荧光分子对于获得准确的结果至关重要。
此外,实验条件的控制也是关键因素。
温度、溶剂、pH值等因素都可能影响FRET的效果,因此需要进行严格的实验控制和优化。
荧光共振能量转移技术是一种用于研究分子间相互作用的强大工具。
通过测量荧光信号的传递,可以获得有关分子结构、相互作用和功能的重要信息。
FRET技术在生物学、化学和材料科学等领域具有广泛的应用前景,将为我们深入了解分子世界提供更多的可能性。
1.荧光共振能量转移如果两个荧光团相距在1~10 nm之间,且一个荧光团的发射光谱与另一个荧光团的吸收光谱有重叠,当供体被入射光激发时,可通过偶极-偶极耦合作用将其能量以非辐射方式传递给受体分子,供体分子衰变到基态而不发射荧光,受体分子由基态跃迁到激发态,再衰变到基态同时发射荧光。
这一过程称为荧光共振能量转移(fluorescence resonance energy transfer,FRET)。
1.适用于活细胞和固定细胞的各类分子,2.灵敏度和分辨率高,并能清晰成像,3.准确度高,操作简便4.最直观地提供蛋白质相互作用的定位和定量信息,首先,FRET对空间构想改变十分敏感,其测量范围在1~10 nm,但如果待测蛋白原本就相当接近, FRET信号已经达到最大值,此时一些刺激引起的微小的构想改变就可能无法引起FRET信号的很大改变;其次,存在光漂白作用, FRET需要起始激发光激发D,这时就很难避免对A的间接激发,这样的交叉激发降低了分析的灵敏性; 第三,存在其他一些本底荧光的干扰;另外,起始激发光可能会破坏一些光敏的组织和细胞,产生光毒性。
这些缺点很大程度上限制了FRET的进一步发展。
2.蛋白质双杂交技术以与调控SUC2基因有关的两个蛋白质Snf1和Snf2为模型, 将前者与Gal4的DB结构域融合, 另外一个与Gal4的AD结构域的酸性区域融合。
由DB和AD形成的融合蛋白现在一般分别称之为“诱饵”(bait)和“猎物”或靶蛋白(prey or target protein)。
如果在Snf1和Snf2之间存在相互作用, 那么分别位于这两个融合蛋白上的DB和AD就能重新形成有活性的转录激活因子, 从而激活相应基因的转录与表达。
这个被激活的、能显示“诱饵”和“猎物”相互作用的基因称之为报道基因(reporter gene)。
通过对报道基因表达产物的检测, 反过来可判别作为“诱饵”和“猎物”的两个蛋白质之间是否存在相互作用。
荧光共振能量转移及相关分析方法荧光共振能量转移(Fluorescence Resonance Energy Transfer,FRET)是一种通过分子间非辐射能量转移过程来研究分子间相互作用的技术。
它广泛应用于生物医学领域,用于研究生物大分子(如蛋白质和核酸)的相互作用、结构和功能。
在FRET过程中,一个分子的荧光就能转移到另一个分子上,既不发出荧光也不带来辐射能量损失。
这种能量转移的效率与两个分子之间的距离密切相关,通常要求两个分子的距离在1至10纳米之间。
FRET的原理基于荧光分子的特性。
荧光分子(受体)吸收光子能量后进入激发态,然后通过非辐射能量转移的方式将能量传递给一个接受体分子。
接受体分子可以是一个发生荧光的分子,也可以是一个荧光猝灭剂。
如果接受体分子是一个发生荧光的分子,它将重新辐射有相同或不同波长的光子。
如果接受体分子是一个猝灭剂,它将通过非辐射机制将能量降低为热或振动能。
荧光共振能量转移具有很多优点。
首先,由于非辐射能量转移的效率与分子间距离的六次方成反比关系,所以FRET可以提供亚纳米尺度的分辨率。
其次,FRET技术操作简单,不需要复杂的分析设备,可以在大多数实验室中实施。
此外,FRET可以在单个分子水平上进行研究,提供了对生物大分子的高灵敏度分析。
因此,FRET广泛应用于生物医学研究中各个方面,例如蛋白质相互作用、信号传导、酶活性和膜蛋白结构的研究。
在FRET研究中,有几种常用的分析方法。
首先是通过荧光显微镜观察FRET信号。
荧光显微镜可以实现对单个分子或细胞的FRET信号实时监测和定量分析。
其次是可以借助分点突变的手段,通过改变受体分子上的特定氨基酸残基,来研究荧光共振能量转移的机制和效率。
此外,还可以利用光谱和时间分辨荧光光谱法来研究FRET现象。
这些方法能够提供更加详细和准确的FRET分析结果。
除了上述基本的FRET分析方法,还有一些改进和扩展的技术被用于更加复杂和精确的研究。
荧光共振能量转移技术的基本原理和应用-标准化文件发布号:(9456-EUATWK-MWUB-WUNN-INNUL-DDQTY-KII荧光共振能量转移技术的基本原理和应用荧光共振能量转移(fluorescence resonance energy transfer,FRET)作为一种高效的光学“分子尺”,在生物大分子相互作用、免疫分析、核酸检测等方面有广泛的应用。
在分子生物学领域,该技术可用于研究活细胞生理条件下研究蛋白质-蛋白质间相互作用。
蛋白质-蛋白质间相互作用在整个细胞生命过程中占有重要地位,由于细胞内各种组分极其复杂,因此一些传统研究蛋白质-蛋白质间相互作用的方法如酵母双杂交、免疫沉淀等可能会丢失某些重要的信息,无法正确地反映在当时活细胞生理条件下蛋白质-蛋白质间相互作用的动态变化过程。
FRET技术是近来发展的一项新技术,为在活细胞生理条件下对蛋白质-蛋白质间相互作用进行实时的动态研究提供了便利。
荧光共振能量转移是指两个荧光发色基团在足够靠近时,当供体分子吸收一定频率的光子后被激发到更高的电子能态,在该电子回到基态前,通过偶极子相互作用,实现了能量向邻近的受体分子转移(即发生能量共振转移)。
FRET是一种非辐射能量跃迁,通过分子间的电偶极相互作用,将供体激发态能量转移到受体激发态的过程,使供体荧光强度降低,而受体可以发射更强于本身的特征荧光(敏化荧光),也可以不发荧光(荧光猝灭),同时也伴随着荧光寿命的相应缩短或延长。
能量转移的效率和供体的发射光谱与受体的吸收光谱的重叠程度、供体与受体的跃迁偶极的相对取向、供体与受体之间的距离等因素有关。
作为共振能量转移供、受体对,荧光物质必须满足以下条件:①受、供体的激发光要足够分得开;②供体的发光光谱与受体的激发光谱要重叠。
人们已经利用生物体自身的荧光或者将有机荧光染料标记到所研究的对象上,成功地应用于核酸检测、蛋白质结构、功能分析、免疫分析及细胞器结构功能检测等诸多方面。
荧光共振能量转移技术原理与应用荧光共振能量转移技术,英文缩写为FRET,是一种通过荧光信号实现分子间距离测量的技术。
该技术最早应用于蛋白质分子的活性中心结构研究,成为现代生物学和化学研究领域中的重要工具之一。
一、荧光共振能量转移技术原理荧光共振能量转移技术原理基于两个发生共振能量转移的荧光分子间距离的变化。
当一种荧光分子(受体分子)在激发后发射荧光时,它发射出的光子会被另一种关联的荧光分子(供体分子)吸收,从而导致供体分子荧光减弱或熄灭。
供体分子和受体分子之间的距离必须在一定的范围内才能使荧光共振能量转移发生,否则共振能量转移不会发生。
通过测量供体分子荧光减弱的程度,可以确定受体分子和供体分子之间的距离。
荧光共振能量转移技术用于研究分子对之间相对位置和构象变化的动态,同时在细胞水平上探测蛋白质相互作用和配位化学反应,测量细胞内小分子、蛋白质、细胞外基质和组织的化学参数。
二、荧光共振能量转移技术应用1.生化研究荧光共振能量转移技术在生化研究中广泛应用。
例如,通过荧光共振能量转移技术可以研究酶促反应和基因表达,研究蛋白质相互作用,以及研究药物与受体之间的作用等问题。
该技术还可以用于分析分子间的相互作用,如研究蛋白质折叠的过程、细胞膜蛋白的分子机制、离子通道和受体的作用等等。
2.医学研究荧光共振能量转移技术在医学研究中也有广泛应用,如研究疾病的发生机制、药物筛选和药效评估、分子分析和诊断等等。
例如,该技术可以用于检测基因多态性和突变,研究肿瘤细胞的生长和死亡等,还可以为针对癌症的新药开发提供支持。
3.生物传感荧光共振能量转移技术在生物传感领域中也有许多应用。
例如,该技术可以用于生物标记物的检测和测量,以及用于检测细胞内活性酸化和细胞内的离子浓度等。
如在完全接触的膜上进行FRET 可以作为衡量间隙连接强度和下游传导的机制。
三、总结荧光共振能量转移技术凭借其高效、准确和灵敏的特点,成为当前化学和生物学研究中的重要工具。
荧光共振能量转移 (FRET) 相互作用是一种重要的生物化学现象,它在许多生物学研究领域中都有着重要的应用。
而酶标仪是一种常用的实验仪器,用于检测和测量各种生物分子的浓度和活性。
本文将从荧光共振能量转移的基本原理、在生物学研究中的应用、以及酶标仪的工作原理和应用等方面进行介绍。
一、荧光共振能量转移的基本原理1. 荧光共振能量转移是指一个荧光分子的激发态能量通过非辐射能量转移的过程,被另一个非激发态的荧光分子吸收的现象。
在此过程中,有一个荧光分子的激发态能量转移到另一个荧光分子,从而导致后者产生荧光。
这种荧光共振能量转移的现象通常用于研究蛋白质、核酸和其他生物大分子的构象变化、相互作用、以及测定它们之间的距离等。
二、荧光共振能量转移在生物学研究中的应用2. 荧光共振能量转移在生物学研究中有着广泛的应用,例如用于研究蛋白质与蛋白质、蛋白质与核酸、蛋白质与小分子的相互作用,以及在细胞内的功能和信号传导等方面的研究中。
荧光共振能量转移技术的发展,促进了生物学研究对分子相互作用、细胞信号传导以及疾病机制等方面的深入了解。
三、酶标仪的工作原理和应用3. 酶标仪是一种用于检测生物分子浓度和活性的仪器,它基于酶标记技术,利用酶和底物之间的特异性反应来测定样品中生物分子的浓度。
酶标仪通过光电检测技术,将样品中的荧光、吸光度等信号转换成可视化的数据,从而实现对生物分子的定量分析。
四、荧光共振能量转移与酶标仪的结合应用4. 荧光共振能量转移技术与酶标仪的结合应用,拓展了酶标记技术在生物学研究中的应用范围。
利用荧光共振能量转移技术可以实现对生物分子的高灵敏度、高通量的检测分析,结合酶标仪的定量测量功能,可以实现对生物分子浓度和活性的精准测定,极大地促进了生物学研究的深入发展。
五、结语在生物学研究领域中,荧光共振能量转移技术和酶标仪的结合应用,为科研工作者提供了强大的工具,促进了对生物分子相互作用、疾病机制和细胞信号传导等方面的深入研究。
荧光共振能量转移技术在光催化研究中的应用光催化是指利用光能使催化反应发生的方法,它是一种绿色环保的催化技术,可以应用于环境治理、能源转化、有机合成等领域。
近年来,荧光共振能量转移技术在光催化研究中的应用越来越广泛,尤其是在有机光催化反应和光催化材料的研究中具有重要的作用。
一、荧光共振能量转移技术的原理荧光共振能量转移技术是一种非辐射能量转移现象,主要利用荧光分子间的相互作用。
当存在两个具有不同波长的荧光分子时,若它们之间的距离在几纳米范围内,那么较短波长的荧光分子就会发生电子激发跃迁,将能量转移给较长波长的荧光分子,使其发射荧光。
这个过程称为荧光共振能量转移。
二、荧光共振能量转移技术在有机光催化反应中的应用有机光催化反应是指通过光敏剂的光激发产生的激发态能量,促进有机反应发生的一种新型化学反应。
传统的有机催化反应需要使用高温高压条件,而有机光催化反应具有反应速度快、选择性高等优点。
荧光共振能量转移技术作为一种非辐射能量转移现象,可以在有机光催化反应中起到扩大吸收光谱和提高光催化反应效率的作用。
例如,利用荧光共振能量转移技术,将荧光分子修饰到光敏剂上,可以有效地提高光敏剂的光吸收能力,增强光催化反应的效率。
同时,荧光共振能量转移技术还可以用于反应中间体的检测和分析,为光催化反应的研究提供了更加优秀的工具。
三、荧光共振能量转移技术在光催化材料研究中的应用光催化材料是指将光催化材料与光催化反应剂相结合,并对其进行表面修饰,以提高光催化效率、选择性和稳定性的材料。
荧光共振能量转移技术可以将荧光分子修饰到光催化材料表面或内部,来研究光催化材料的吸收、转移和发射过程,提高光催化效率和稳定性,并对材料进行监测和表征。
此外,荧光共振能量转移技术还可以用于研究光催化材料和晶体的结构和性质,为材料设计和优化提供重要的参考和指导。
四、总结和展望荧光共振能量转移技术作为一种非辐射能量转移现象,在光催化研究中具有广泛的应用。
FRET荧光共振能量转移本词条由“科普中国”科学百科词条编写与应用工作项目审核。
当一个荧光分子(又称为供体分子)的荧光光谱与另一个荧光分子(又称为受体分子)的激发光谱相重叠时,供体荧光分子的激发能诱发受体分子发出荧光,同时供体荧光分子自身的荧光强度衰减。
FRET 程度与供、受体分子的空间距离紧密相关,一般为7~10 nm 时即可发生FRET; 随着距离延长,FRET呈显著减弱。
供体和受体之间FRET的效率,可以由E=1/1+(R/R0)exp6反映,其中R表示供体和受体之间的距离,R0表示福氏半径,依赖供体发射谱和受体激发谱的重叠程度,以及供体和受体能量转移的偶极子的相对方位。
中文名•荧光共振能量转移外文名•Förster resonance energy transfer, fluorescence resonance energy transfer(FRET)条件•激发光谱相重叠时简介•供体荧光分子自身的荧光强度衰减范围•两个不同的荧光基团中发生原理荧光共振能量转移是指在两个不同的荧光基团中,如果一个荧光基团(供体 Donor)的发射光谱与另一个基发生条件能量供给体-接受体(D–A)对之间发生有效能量转移的条件是苛刻的,主要包括:(1)能量供体的发射光谱与能量受体的吸收光谱必须重叠;(2)能量供体与能量受体的荧光生色团必须以适当的方式排列;(3)能量供体、能量受体之间必须足够接近,这样发生能量转移的几率才会高。
此外,对于合适的供体、受体分子在量子产率、消光系数、水溶性、抗干扰能力等方面还有众多的要求。
可见,要找到一个合荧光共振能量转移适的D–A对是很不容易的。
荧光共振能量转移在蛋白质研究中的应用荧光共振能量转移(FRET)是一种常用的生物分子相互作用研究技术。
该技术利用分子之间的荧光共振能量转移进行非标记性的分子间距离测量,常用于研究蛋白质分子的结构和功能。
本文将就荧光共振能量转移在蛋白质研究中的应用做一简要介绍。
1. FRET的基本原理荧光共振能量转移是指在两个相邻的荧光染料分子之间,当一个荧光染料分子处于激发态时,能量会通过非辐射能量转移的方式传递给另一个染料分子,使其转入激发态并发射荧光。
这种能量转移的发生需要两种键合荧光染料分子之间的距离近到一定程度,一般为1-10nm,也称相互作用距离范围。
2. FRET在蛋白质研究中的应用蛋白质是由数百个氨基酸残基组成的大分子,已知的蛋白质共有20种氨基酸组成。
氨基酸残基之间的相互作用关系直接影响着蛋白质分子的结构、功能和生物学活性等特性。
FRET技术可以用于研究蛋白质分子的结构和功能。
在表面修饰或标记蛋白质分子上,通过在特定氨基酸上引入荧光染料,可以将蛋白质分子分成两个荧光标记(称为供体和受体)。
当供体荧光染料处于激发态时,被受体荧光染料吸收,发生单电子转移,发射荧光。
通过计算供体和受体的荧光强度比值,可以测量蛋白质分子间的距离变化,或者判断蛋白质分子间的相互作用是否发生改变。
3. FRET在蛋白质结构研究中的应用FRET技术可以通过测量分子间的距离和角度变化,分析蛋白质分子结构的变化,揭示蛋白质分子的构象变化与生物学活性之间的关系。
在蛋白质折叠研究中,FRET技术可以用来测量折叠状态中氨基酸残基的距离变化。
通过将供体和受体荧光染料标记在蛋白质的不同区域,可以分别测定这些区域的结构变化,并揭示蛋白质折叠的过程。
此外,FRET技术还可以用来研究蛋白质分子的构象变化,例如环化分子构象和不同质构状态中群体坐标变化等。
4. FRET在蛋白质功能研究中的应用FRET技术还可以用于研究蛋白质分子的功能活性,例如计算蛋白质酶活性的变化,探究蛋白质相互作用的动力学过程。
荧光共振能量转移技术原理
嘿,朋友们!今天咱来聊聊荧光共振能量转移技术原理,这可真是个神奇又有趣的玩意儿!
你看啊,这就好比是一场特别的“能量接力赛”。
想象一下,有两个小伙伴,一个叫供体,一个叫受体。
供体呢,就像是带着能量的小运动员,活力满满。
而受体呢,就等着接收这份能量。
在这个过程中,供体发出特定波长的光,就好像它在呼喊:“嘿,我这里有能量啦!”当供体和受体离得足够近的时候,神奇的事情发生了,能量就像接力棒一样,从供体传递到了受体手上。
这不是很奇妙吗?
那为啥会这样呢?这就得说说它们之间的那种特殊关系啦。
就好像好朋友之间特别有默契,一靠近就能产生奇妙的反应。
而且这种能量传递可不是随便发生的,是有条件的哟!它们得符合特定的要求,才能让这场“能量接力赛”顺利进行。
咱再打个比方,这就像两个人跳舞,得节奏对得上,步伐协调,才能跳出优美的舞步。
如果节奏都不对,那可就乱套啦,能量也没法好好传递了。
荧光共振能量转移技术原理在很多领域都大显身手呢!比如说在生物学研究中,能帮助我们更好地了解细胞里的各种活动,就像我们有了一双超级眼睛,可以看清细胞里那些细微的变化。
在医学上,它也能发挥大作用呢!可以帮助医生们更准确地诊断疾病,找到那些隐藏的小毛病。
这多厉害呀!
想想看,如果没有这个技术,我们对很多事情的了解可能就没那么深入了,那得是多大的损失呀!所以说,这个荧光共振能量转移技术原理真的是太重要啦!
它就像一把神奇的钥匙,打开了我们探索未知世界的大门,让我们能看到更多的精彩和奥秘。
朋友们,你们说这是不是超级棒呢?难道你们不觉得这是一个让人惊叹的技术吗?让我们一起为这个神奇的技术点赞吧!。
关于“荧光共振能量转移”荧光共振能量转移(fluorescence resonance energy transfer,FRET )是一种高效的光学“分子尺”,是研究活细胞生理条件下蛋白质与蛋白质相互作用的方法之一。
一、FRET原理:荧光共振能量转移是指两个荧光发色基团在足够靠近时,当供体分子吸收一定频率的光子后被激发到更高的电子能态,在该电子回到基态前,通过偶极子相互作用,实现了能量向邻近的受体分子转移(即发生能量共振转移)。
当供体荧光分子的发射光谱与受体荧光分子的吸收光谱重叠,并且两个分子的距离在10nm范围以内时,就会发生一种非放射性的能量转移,即FRET现象,使得供体的荧光强度比它单独存在时要低的多(荧光猝灭),而受体发射的荧光却大大增强(敏化荧光)。
二、实例:例如要研究两种蛋白质a和b间的相互作用,可以根据FRET原理构建融合蛋白当蛋白质a与b没有发生相互作用时,CFP与YFP相距很远不能发生荧光共振能量转移,因而检测到的是CFP的发射波长为476nm的荧光;但当蛋白质a与b发生相互作用时,由于蛋白质b受蛋白质a作用而发生构象变化,使CFP与YFP充分靠近发生荧光共振能量转移,此时检测到的就是YFP的发射波长为527nm的荧光。
将编码这种融合蛋白的基因通过转基因技术使其在细胞内表达,这样就可以在活细胞生理条件下研究蛋白质-蛋白质间的相互作用。
三、 PRET技术的应用此外,RRET主要有以下重要应用:1、检测酶活性变化(1)活细胞内检测蛋白激酶活性(2)关于细胞凋亡的研究;2、关于膜蛋白的研究(1)受体激活效应在细胞膜上的横向扩散(2)膜蛋白的定位修饰;3、细胞膜受体之间相互作用;4、细胞内分子之间相互作用。
Fret荧光共振能量转移对于分子生物学来讲,生物分析手段的发展,是阐明机理的必要条件。
在研究分子间相互作用的道路上,人们不断探索,总结出很多方法,免疫技术,晶体衍射,核磁共振等。
1948年,荧光共振能量转移(Fluorescence resonance energy transfer,FRET)理论被首次提出,它可以测定1.0-6.0nm距离内分子间的相互作用。
1967年,这一理论得到了实验验证,将1.0-6.0nm的距离称为光学尺。
二十世纪八十年代出,通过科学家的不断探索,Fret技术成功运用到蛋白质结构的研究中。
自Fret荧光共振能量技术诞生以来,已结合多种先进的技术和方法,如电子显微镜,X射线衍射等,推动了分子生物学检测手段的发展。
作用原理荧光共振能量转移技术,是采用物理方法去检测分子间的相互作用的方法。
他适用于在细胞正常的生理条件下,验证已知分子间是否存在相互作用。
此方法的检测原理如下;将我们要检测的蛋白(如图X和Y),分别偶联上D和A荧光蛋白,D和A是一对荧光物质,我们称之为供体(donor)和受体(acceptor)。
当用430nm的紫光去激发X融合蛋白时,它能够产生490nm的蓝色荧光;同样,当我们用490nm的蓝光去激发Y融合蛋白时,它能够产生530nm的黄色荧光。
(结合图1)。
当蛋白X和Y间没有相互作用时(两者的空间距离>10nm),融合蛋白X和Y分别产生相应的荧光而被检测到,如果蛋白X和Y间存在相互作用(两者的空间距离需<10nm,结合图2),用紫光激发融合蛋白X其产生的蓝光会被融合蛋白Y吸收,从而产生黄色荧光,这时,在细胞内将检测不到蓝色荧光的存在。
这时因为能量从X融合蛋白转移到了Y融合蛋白,这就是荧光共振能量转移技术。
技术难点一个理想的Fret相互作用体系,要求要有一对合适的荧光物质,即供体的发射光谱与受体的吸收光谱有明显的重叠。
且当供体的激发波长时对受体无影响,供体和受体的发射光谱要完全分开,否则容易造成光谱干涉,而使反应体系不稳定。
荧光共振能量转移原理
荧光共振能量转移原理是一种物理过程,由几个物理量和分子的动力学行为组成。
它是一种发射光子(即荧光)的过程,当一个受激分子吸收一个光子时,它会被激发,这意味着它从其原始的能态跃迁到一个高能态,而不自发地,这个受激分子将不及时失去这个能量,而是将它转移到一个相邻的分子中,这称为荧光共振能量转移(FRET)。
当荧光共振能量转移发生时,第一个分子将失去能量,而第二个分子将吸收能量,并将其用于荧光发射,这样就可以从一个化学体系中有序地释放出光子。
因此,荧光共振能量转移是一种光子的有效发射方式。
1荧光共振能量转移原理如果两个荧光团相距在1~10nm之
间,且一个
1.荧光共振能量转移
原理
如果两个荧光团相距在1~10 nm之间,且一个荧光团的发射光谱与另一个荧光团的吸收光谱有重叠,当供体被入射光激发时,可通过偶极-偶极耦合作用将其能量以非辐射方式传递给受体分子,供体分子衰变到基态而不发射荧光,受体分子由基态跃迁到激发态,再衰变到基态同时发射荧光。
这一过程称为荧光共振能量转移(fluorescence resonance energy transfer,FRET)。
优点
1.适用于活细胞和固定细胞的各类分子,
2.灵敏度和分辨率高,并能清晰成像,
3.准确度高,操作简便
4.最直观地提供蛋白质相互作用的定位和定量信息,
缺点
首先,FRET对空间构想改变十分敏感,其测量范围在1~10 nm,但如果待测蛋白原本就相当接近, FRET信号已经达到最大值,此时一些刺激引起的微小的构想改变就可能无法引起FRET信号的很大改变;
其次,存在光漂白作用, FRET需要起始激发光激发D,这时就很难避免对A的间接激发,这样的交叉激发降低了分析的灵敏性; 第三,存在其他一些本底荧光的干扰;
另外,起始激发光可能会破坏一些光敏的组织和细胞,产生光毒性。
这些缺点很大程度上限制了FRET的进一步发展。
2.蛋白质双杂交技术
原理
以与调控SUC2基因有关的两个蛋白质Snf1和Snf2为模型, 将前者与Gal4的DB结构域融合, 另外一个与Gal4的AD结构域的酸性区域融合。
由DB和AD形成的融合蛋白现在一般分别称之为“诱
饵”(bait)和“猎物”或靶蛋白(prey or target protein)。
如果在Snf1和Snf2之间存在相互作用, 那么分别位于这两个融合蛋白上的DB和AD就能重新形成有活性的转录激活因子, 从而激活相应基因的转录与表达。
这个被激活的、能显示“诱饵”和“猎物”相互作用的基因称之为报道基因(reporter gene)。
通过对报道基因表达产物的检测, 反过来可判别作为“诱饵”和“猎物”的两个蛋白质之间是否存在相互作用。
酵母双杂交系统的优点及局限
双杂交系统的另一个重要的元件是报道株。
报道株指经改造的、含报道基因(reporter gene)的重组质粒的宿主细胞。
最常用的是酵母细胞,酵母细胞作为报道株的酵母双杂交系统具有许多优点: 〈1〉易于转化、便于回收扩增质粒。
〈2〉具有可直接进行选择的标记基因和特征性报道基因。
〈3〉酵母的内源性蛋白不易同来源于哺乳动物的蛋白结合。
一般编码一个蛋白的基因融合到明确的转录调控因子的DNA -结合结构域(如GAL4-bd,LexA-bd);另一个基因融合到转录激活结构域(如GAL4-ad,VP16)。
激活结构域融合基因转入表达结合结构域融合基因的酵母细胞系中,蛋白间的作用使得转录因子重建导致相邻的报道
基因表达(如lacZ),从而可分析蛋白间的结合作用。
酵母双杂交系统在分析蛋白—蛋白间相互作时的优点:
(1)检测在真核活细胞内进行,在一定程度上代表细胞内的真实情况。
(2)作用信号是在融合基因表达后,在细胞内重建转录因子的作用而给出的,省去了纯化蛋白质的繁琐步骤。
(3) 检测的结果可以是基因表达产物的积累效应,因而可检测存在于蛋白质之间的微弱的或暂时的相互作用。
(4) 酵母双杂交系统可采用不同组织、器官、细胞类型和分化时期材料构建cDNA 文库,能分析细胞浆、细胞核及膜结合蛋白等多种不同亚细胞部位及功能的蛋白。
(5)分析新基因的生物学功能,用未知功能的基因去筛选文库,然
后根据钓到的已知基因的功能推测新基因的功能。
缺点
(1) 双杂交系统分析蛋白间的相互作用定位于细胞核内,而许多蛋白间的相互作用依赖于翻译后加工如糖基化、二硫键形成等,这些反应在细胞核内无法进行。
(2) 酵母双杂交系统的“假阴性”
(3) 酵母双杂交系统的一个重要的问题是“假阳性”。
3.噬菌体展示技术
原理
噬菌体展示技术是利用基因工程手段将合成的一组一定长度的
随机序列寡核苷酸片段克隆到特定表达载体中, 使其表达产物以融合蛋白的形式呈现在丝状噬菌体表面。
进而通过亲和富集法筛选表达有特异肽或蛋白质的噬菌体。
优点
不受样品量限制,可人工扩增,类似PCR对DNA的扩增
融合目的蛋白的噬菌体被分泌出胞外,免去了细胞破碎、提纯等物理化学步骤,保持了蛋白的天然构象
可进行反复筛选,对目的蛋白进行春花和富集
缺点
由于受大肠杆菌转化效率的限制, 一般肽库的容量只有109, 所以高于这一限制的基因将难以表达。
从建库开始, 密码子的选择与寡核苷酸的合成, 即编码肽的基因就带有一定的偏爱性, 这就从先天决定了肽库复杂度即多样性的局限性。
作为噬菌体的宿主, 大肠杆菌的生物合成系统有本身的表达限制, 如不能进行氨基酸的修饰。
4.蛋白质的亲和色谱
原理
色谱又叫层析。
亲和层析属于吸附层析的范畴,根据不同物质在同一吸附剂上的吸附能力不同进行分离,将样品放入基质中,经展开,吸附能力差的迁移快,吸附能力强的迁移慢,达到分离的目的。
优点
利用它从粗提液中经过一次简单的处理便可得到所需的高纯度的活性物质,不但能可以用来分离一些含量极微的物质,而且可以分离那些性质十分相似的生化物质。
缺点
载体(如琼脂糖)价格昂贵,机械强度低;配基制备困难,有的配基本身需要分离纯化,步骤繁琐。
5.亲和印迹
原理
印迹法(bloting)是指将样品转移到固相载体上,而后利用相应的探测反应来检测样品的一种方法。
在电场的作用下将电泳分离的多肽从凝胶转移至一种固相支持体,然后利用这种多肽的特异抗体来检测。
优点
高分辨率的电泳技术,特异敏感的抗原-抗体反应,1-5ng中等大小的靶蛋白
缺点
易产生背景太高的原因等问题。