溶出度研究系列文章-谢沐风
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谢沐风老师关于溶出问题汇总(2008.12 ——2010.12)我的第一个仿制药属于小肠局部给药的降糖类药物,主药易溶于水,中性,且规格小于1mg/片。
参比制剂国家标准中溶出度测定时采用pH5.8磷酸缓冲液100ml小杯法,转速为40转每分钟,30分钟溶出不得低于80%。
参比制剂经测定在水、pH5.8磷酸缓冲液和0.1N盐酸液中15分钟时溶出度为60%~70%,不符合免做溶出曲线的条件(15分钟溶出度必须大于85%)。
自制品在相同条件下5分钟溶出60%、15分钟溶出达90%,比参比制剂溶出速度快很多,按照质量等同的原则,曲线必须与参比制剂一致,但是从药物作用机制来分析,本品通过抑制小肠α-糖苷酶,延缓糖尿病患者餐后葡萄糖吸收,从而预防餐后血糖升高,餐前服药时,应该是药物溶出越快起效越早,越有利于控制餐后血糖啊!请问在这种情况下是否必须比较参比制剂与自制品溶出曲线的一致性(f2)?另外本品用0.1N盐酸液溶出时采用参比制剂国家标准中溶出度检测方法检测时(荧光衍生-HPLC法)发现参比制剂和自制品的HPLC图谱中峰型很差,且结果波动特别大,请问一定要自己重新摸索检测方法绘制参比制剂和自制品的溶出曲线进行相似性比较吗?我们在试验研究过程中发现,峰型方面要求流动相和溶出液的pH 值必须在5.8以上,每次配制流动相和溶出液时先按照药典标准方法配制,然后测定实际pH,如果低于5.8,则继续用磷酸氢二钾将pH值调至5.8以上,否则检测结果波动很大,无法进行统计,请问这种情况下必须做0.1N盐酸也的溶出曲线吗?【建议】尽可能进行多介质比较。
如在某一介质中,参比制剂RSD较大,建议测定样品数增至12个单位。
不建议省略掉某一介质的研究!问题二:我的第二个仿制药主药为碱性药物,在冷水中难溶,热水中微溶,0.1N盐酸液中易溶,口服生物利用度大于90%。
该药在美国FDA药审中心口服固体制剂溶出曲线数据库中已有收载,其公布的法定溶出方法为桨法,pH6.8磷酸缓冲液1000ml,50转/分钟,溶出曲线取样时间点为10min、20mi、30min、45min。
上海市药品检验所谢沐风撰写【No.5 —— 溶出曲线的测定】—— 上海市药品检验所 谢沐风 撰写1. 关于测定时间点和结束时间点的设定 对于测定时间点,普通制剂与肠溶制剂可为 5、10、15、20、30、45、60、90、120 分钟,此后每隔 1 小时直至 6 小时止;缓控释制剂可为 15、30、45、60、90、120 分钟,3、 4、5、6、8、10、12、24 小时。
当连续两点溶出率均达 90%(调释制剂为 85%)以上、且 差值在 5%以内时,试验则可提前结束。
对于结束时间点,在酸性介质中(如 pH 值 1.0)最长测定时间为 2 小时,在其他各 pH 值介质中普通制剂为 6 小时,缓控释制剂为 24 小时。
2. 其他事项 (1) 试验样品 用于比较的两种制剂含量差值应在 5%以内;每个品种各取 12 个单位。
取三个批号样品,在最终溶出率均可达 90%以上的溶出介质(2) 参比制剂标准批号的选择中,取溶出率在约 70%处、位于中间批号的样品进行试验。
在进行仿制药研发时,考虑到原研品批间差异与耐受性,建议从市场流通渠道获得有效 期内不同时间段的 3~5 批样品,分别测定后,取结果均值用于比较;并同时确定参比制剂在 各 pH 值溶出曲线的波动范围,以更为有效地评估原研制剂内在质量和自身仿制制剂的研发 深入程度。
如果主成分是在溶解状态下进行溶出度试验的(如一些散剂、颗粒剂) ,则适当选择某一 批号,即可。
(3) 试验样品的生产规模 由于固体制剂生物利用度与生产规模密切相关, 故一般情况下应不少于今后工业化最大生产规模的 1/10 或不少于 10 万个单位。
3. 累积释放度校正计算公式 在多次取样时、可采取及时补充相同体积同温度溶出介质亦可采取不补液两种方式,但 必须保证每次抽取体积的固定性。
累积校正计算公式如下: (1)补液时:(C n−1 + ⋅ ⋅ ⋅ ⋅ ⋅ ⋅ +C 2 + C1 ) × V1 Cn L / V2 各时间点校正后的累积溶出量(%) = [ + ] × 100% L / V2 V2其中 Cn为各时间点取出后的样品浓度(即稀释前的) ;上海市药品检验所 谢沐风L为制剂标示量(单位需与Cn一致)撰写1上海市药品检验所谢沐风撰写V1为各时间点固定取样体积;V2为溶出介质体积;该公式如采用各时间点测得释放量表示,则可演变为:各时间点校正后的累积溶出量(%) = An +其中 An为各时间点测得释放量 【注:本子版给出了该种方式的累积计算模板,请参阅! 】( An−1 + ⋅ ⋅ ⋅ ⋅ ⋅ ⋅ + A2 + A1 ) × V1 V2(2)不补液时:各时间点校正后的累积溶出量(%) = C n × [V2 − (n − 1)V1 ] + (C n −1 + ⋅ ⋅ ⋅ ⋅ ⋅ ⋅ +C 2 + C1 ) × V1 × 100% LL为制剂标示量(单位需与Cn一致) V2为溶出介质体积;其中 Cn为各时间点取出后的样品浓度(即稀释前的) ; V1为各时间点固定取样体积;4. 曲线比较法 由于多 pH 值溶出曲线的绘制已成为剖析和表达固体制剂内在品质的重要手段,故对溶 出曲线比较的科学评价愈发重要。
No.11 ——溶出度测定中应注意的若干问题谢沐风(上海市药品检验所上海)摘要为保证溶出度测定数据的客观性、准确性和科学性,本文列举了在溶出度测定中常见的若干问题和解决办法,希望引起试验者的重视。
关键词溶出度测定The Questions In the Dissolution TestXie Mufeng Cao HongxinAbstruct::To assure the accuracy of the dissolution test, analyze and illustrate the questiona in the routine tests, and offer the method of the validations.溶出度试验是反映样品的溶出速率和程度,其重要性不言而喻[]1。
为保证测定数据的客观性、准确性和科学性,本文就溶出度测定中常见的若干问题和解决办法进行了综述。
1、试验前1.1 转篮的处理应用转篮法试验时,应注意转篮的洁净程度,一般在阳光下观察转篮的空隙是否有堵塞。
如有,可采用超声或在稀硝酸中煮沸、再在水中煮沸的办法进行清理,否则将影响溶出度数据的准确性。
尤其是在低转速时,影响更为明显。
同时,还应注意尽可能取用干燥的转篮[]2。
1.2 溶出介质的脱气溶出度试验规定溶出介质试验前应进行脱气处理,因为介质中的气体会影响样品的崩解、扩散和溶出。
脱气与否对转篮法的影响较明显,因为溶液中的气泡会堵塞转篮空隙,抑制释放。
而对桨板法一般认为影响不大。
脱气方法有:煮沸法、抽滤法、超声法等,其中最常用的是抽滤法。
1.3 配制溶出介质的试剂和试液溶出介质中所用到的无机盐或有机溶剂(乙醇或异丙醇等),不同厂商的差异不显著。
而水则会由于来源各异、pH不同,导致测定结果的差异[]3。
表面活性剂,如十二烷基硫酸钠(SDS)、吐温-80、溴化十六烷基三甲铵、三羟甲基氨基甲烷等,有时会因生产厂商的不同,或进口、国产的不同而导致测定结果的显著差异。
【No.1 ——溶出度技术的应用】固体制剂品质的主要评价指标有含量、含量均匀度、有关物质和溶出度等。
就含量/含量均匀度而言,目前国内生产状况均是在造粒之后、压片之前,在盛装被认为已充分混匀的中间体容器内,于具有代表性的多处抽取一定样品量,混合均匀后送至质检科测定出主药含量为100%的平均片重(或装量),生产部门根据该数值调节充填量后进行压片。
只要制剂机械性能良好、将压片误差控制在一定范围内、含量/含量均匀度一般情况下均不会出现问题,更何况含量范围一般在90%~110%、均匀度A+1.8S要求在15.0以内。
由以上过程我们可知,这其中几乎不存在“技术含量”,仅是将一物件使成均匀状后按照一定规格制作即可。
这与药品的内在品质、与该药物在体内吸收的多寡没有必然联系。
所以、关于含量/含量均匀度就固体制剂内在品质而言,没有任何关联性。
因为即便是含量再精确,如到体内无吸收或无有效吸收,该含量亦是毫无意义的!所以,要牢固树立“吃药不是吃含量、而是吃生物利用度”的科学理念!至于有关物质,能够建立起准确测定杂质的检验方法固然重要,但与该药物在体内吸收的重要性相比,已显得无足轻重。
因为如果主药尚无有效吸收、主体吸收,即便存在2%杂质已是无关紧要。
除非一些明确的、毒性较强的杂质,例如盐酸二甲双胍中的双氰胍,对乙酰氨基酚中的对氨基酚等需特别注意外。
而溶出度技术可谓是“评价固体制剂的灵魂与核心所在”,随着人们对溶出度的不断研究与深入,对其认识与理解亦在不断发展与变化着。
现今,该试验不仅具有为建立体内外相关性而设立的理念,且还已成为证明药物体内释放特性的一种简单、廉价而不失严谨的实验室检测方法;成为“剖析”和“肢解”原研固体制剂内在品质的一种擘肌分理的科学评价手段与方法;更已成为固体制剂内在品质外在表象的映射与载体。
所以,对该检测技术的深入研究可在药品研发、质控、生产、流通、变更等一系列事态中均发挥出举足轻重的作用,该项技术亦愈来愈受到各方面的瞩目与期待!现就该技术的应用方面列举如下——(1) 对于创新药物或新剂型药物,在药品研发阶段,该试验有助于制剂辅料和处方筛选以及活性成分(原料药)的溶出评价。