水貂阿留申病毒荧光PCR检测方法的实验室规范
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水貂阿留申病毒检测方法研究进展刘艺;刘亚东;杜锐;冷雪;时坤;李健明;曾范利;宗颖;宫庆龙;张姗姗;孙志博【摘要】水貂阿留申病是由水貂阿留申病毒引起的以浆细胞增多为主要特征的慢性、消耗性、病毒性传染病.主要侵害水貂的免疫系统,导致机体免疫系统紊乱引起的器官衰竭,病死率极高,严重损害了水貂养殖产业的经济利益,该病存在于绝大多数养殖水貂的国家和地区.目前,能有效预防该病的疫苗尚未研制成型,该病的防控已成为水貂养殖领域的世界性难题,在防控方面主要采取淘汰检疫阳性水貂的办法.论文主要针对目前该病在国内外检测方法的特点和流行情况进行阐述,以期为水貂阿留申病快速检测方法的建立及水貂阿留申病的有效防控提供参考.【期刊名称】《动物医学进展》【年(卷),期】2018(039)010【总页数】4页(P74-77)【关键词】阿留申病毒;检测方法;防控【作者】刘艺;刘亚东;杜锐;冷雪;时坤;李健明;曾范利;宗颖;宫庆龙;张姗姗;孙志博【作者单位】吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118;吉林农业大学,吉林长春 130118【正文语种】中文【中图分类】S852.659.2水貂阿留申病(Aleutian disease of mink,ADM)是一种能够令宿主终生携带并引起机体免疫系统紊乱的毒血症。
水貂阿留申病毒(Aleutian disease virus,ADV)感染幼貂,可在其肺泡Ⅱ型细胞高效复制,引起急性致死性间质性肺炎,而感染成年貂,则主要感染淋巴结巨噬细胞,呈低水平病毒复制,引起以脾肿大、高丙种球蛋白血症、浆细胞增多、动脉炎、免疫复合物型肾小球肾炎为特征的慢性疾病,可致使水貂消瘦,繁殖力低下[1-2]。
·研究论文·Chinese Journal of Animal Infectious Diseases中国动物传染病学报摘 要:为快速检测水貂圆环病毒(MiCV ),本试验根据MiCV Cap 基因序列设计合成特异性引物,建立了水貂圆环病毒SYBR Green II 实时荧光定量PCR 检测方法。
结果显示,该方法在模板浓度为1.0×106 ~1.0×101 copies/μL 范围内呈良好线性关系,相关系数为0.9983。
本试验建立的检测方法对水貂阿留申病毒、猪圆环病毒2型、水貂肠炎病毒、犬瘟热病毒和猪伪狂犬病毒进行检测均无特异性扩增,批内和批间CV 均小于2%,对重组阳性质粒的检测下限为1.0×101 copies/μL ,比普通PCR 的敏感度高100倍,对阳性样品DNA 的检测下限为2.38×10-2 pg/µL ,比普通PCR 的敏感度高1000倍。
应用该方法对吉林省部分毛皮动物养殖场的水貂、狐狸、貉和环境样品进行检测,结果其阳性率分别为57.23%、48.42%、39.71%和68.48%。
上述结果表明,本研究建立的实时荧光定量PCR 检测方法具有良好的灵敏性、特异性和重复性,为MiCV 的诊断及流行病学调查提供技术支持。
关键词:水貂圆环病毒;Cap 基因;SYBR Green II 实时荧光定量PCR 方法中图分类号:S852.65文献标志码:A文章编号:1674-6422(2024)02-0131-08Development and Application of a Real-time Fluorescence Quantitative PCR DetectionMethod for Mink Circovirus收稿日期:2022-03-03基金项目:吉林省科技发展计划项目(20190304004YY)作者简介:盛陈艳,女,硕士,主要从事经济动物疫病研究通信作者:冷雪,E-mail:******************水貂圆环病毒实时荧光定量PCR 检测方法的建立与应用盛陈艳1,麻宝艺1,李健明2,宫庆龙1,刘 菲1,时 坤2,孙志博5,刘 艺1,冷 雪2,杜 锐2,3,4(1.吉林农业大学动物科学技术学院,长春130118;2.吉林农业大学中药材学院,长春130118;3.动物生产及产品质量安全教育部重点实验室,长春130118;4.吉林省梅花鹿高效养殖和产品开发技术工程研究中心,长春130118;5.吉林农业科技学院,吉林132101)2024,32(2):131-138Abstract: Specifi c primers were designed according to the Mink circovirus (MiCV) cap gene sequence and synthesized for development of a SYBR Green II real-time fl uorescence quantitative PCR. The results showed that the method had a good linear relationship in the template concentration range of 1.0×106 copies/μL to 1.0×101 copies/μL and the correlation coefficient was 0.9983. This detection method also had no amplifi cations for AMDV , PCV2, MEV , CDV and PRV . The intra-assay and inter-assay CV were less than 2%. The lower limit of recombinant positive plasmid was 1.0×101 copies/μL, which was 100 times more sensitive than the conventional PCR. In addition, the lower limit of detection for DNA of positive samples was 2.38×10-2 pg/µL, which was 1000 times more sensitive than the conventional PCR. Samples were collected from minks, foxes, raccoon dogs and environmental resources on some fur animal farms in Jilin provinceSHENG Chenyan 1, MA Baoyi 1, LI Jianming 2, GONG Qinglong 1, LIU Fei 1, SHI Kun 2, SUN Zhibo 5,LIU Yi1, LENG Xue 2, DU Rui 2,3,4(1. College of Animal Science and Technology, Jilin Agricultural University, Changchun 130118, China; 2. College of Chinese Medicine Materials, Jilin Agricultural University, Changchun 130118, China; 3. Key Laboratory of Animal Production and Product Quality Safety of Ministry of Education, Changchun 130118, China; 4. Jilin Provincial Engineering Research Center for Efficient Breeding and Product Development of Sika Deer, Changchun 130118, China; 5. Jilin Agricultural Science and Technology University, Jilin 132101, China)· 132 ·中国动物传染病学报2024年4月水貂圆环病毒(Mink circovirus, MiCV)是2014年新发现的一种圆环病毒[1],水貂感染该病毒后,表现为食欲不佳、精神倦怠、被毛粗乱、腹泻等[2],且容易引起其他疾病的混合感染[3]。
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实训水貂阿留申病检疫
实训目的:
了解水貂疫病实验室诊断技术,掌握水貂阿留申病的检疫方法。
实训内容:
碘凝集试验
实训条件:
塑料毛细采血管,1.5mL离心管,离心机,4℃冰箱,洁净玻璃板,白纸,笔,尺,棕色瓶,玻璃棒,碘制剂等。
实训方法
1.血清的采集
将水貂保定,用塑料毛细管在水貂趾尖采血,将管两端烧融封口,放20℃~30℃环境静置1h,再放4℃冰箱18h~20h,析出血清后加入0.5mL或1.5mL离心管中,3000转/分钟离心5min,取上清液备用。
2.碘制剂的配制
取碘化钾4.0g,用少许蒸馏水溶解,再加入碘2.0g,最后加蒸馏水至30ml充分溶解,置于棕色瓶中备用。
3.操作
取一块洁净玻璃板,放在划有3厘米×3厘米小格的白纸上面,每块板可检50~100份血清,取血清一滴放在玻璃板小格内,再取碘溶液一滴,用玻璃棒混合。
4.判定
1~2min内出现棕色大凝集块判为阳性;均匀浑浊呈棕褐色无凝集块判为阴性。
思考题:
1.水貂血清如何制备?在此过程中应注意哪些事项?
2.如何做好水貂阿留申病的检疫计划?
3.简述水貂阿留申病检疫的方法以及应注意的事项?
1。
水貂阿留申病毒荧光定量PCR检测方法的建立及初步应用张秀丽;于慧娟;徐超;张桉潮;宋兴超;郝俊伟;赵家平;杜锐【期刊名称】《中国畜牧兽医》【年(卷),期】2014(41)9【摘要】根据水貂阿留申病毒(Aleutian mink disease virus,AMDV)基因序列(GenBank登录号:NC_001662.1)设计1对特异性引物,通过对荧光定量PCR反应条件的优化,建立了检测AMDV的SYBR GreenⅠ荧光定量PCR方法,该方法的灵敏度达10拷贝/μL,≥102拷贝/μL具有良好的特异性和重复性.同时利用该方法对8份疑似AMDV血清进行检测,结果6份阳性,阳性率为75%.本研究为水貂阿留申病的鉴别诊断及净群根除奠定了技术基础.【总页数】5页(P1-5)【作者】张秀丽;于慧娟;徐超;张桉潮;宋兴超;郝俊伟;赵家平;杜锐【作者单位】吉林农业大学,吉林长春130118;中国农业科学院特产研究所,吉林长春130122;文登市泽库畜牧兽医工作站,山东文登264413;中国农业科学院特产研究所,吉林长春130122;吉林农业大学,吉林长春130118;吉林正大实业有限公司,吉林长春130033;中国农业科学院特产研究所,吉林长春130122;吉林农业大学,吉林长春130118;中国农业科学院特产研究所,吉林长春130122;吉林农业大学,吉林长春130118【正文语种】中文【中图分类】Q78【相关文献】1.猪瘟兔化弱毒荧光定量PCR检测方法的建立及初步应用 [J], 邓力;张彦明;李维维;杨幼聪;谭晓妮2.水貂阿留申病毒、肠炎病毒与犬瘟热病毒多重PCR检测方法的建立与应用 [J], 马芹;王元智;闫文卓;赵丽丽;陈洪岩;陆涛峰3.水貂阿留申病毒纳米PCR检测方法的建立与初步应用 [J], 杨瑞梅;张传美;张洪亮;单虎4.基于B细胞表位肽的水貂阿留申病毒抗体ELISA检测方法的建立及其在流行病学调查中的应用 [J], 孙殿钢;雷连成;黄盼盼;刘洪涛;杨柳枝;刘建方;冯新;孙长江5.水貂阿留申病毒VP2基因TaqMan荧光定量PCR检测方法的建立与应用 [J], 闫文卓;陆涛峰;周洁;赵丽丽;陈洪岩因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
ICS11.220B 41 DB1301 石家庄市地方标准DB 1301/T 295—2018水貂种群阿留申病对流免疫电泳检测操作规程2018-07-31发布2018-08-20实施前言本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。
本标准由石家庄市藁城区质量技术监督局提出。
本标准起草单位:石家庄市藁城区华泽畜牧业发展有限公司、石家庄市农林科学研究院。
本标准主要起草人:刘洁、任二军、刘进军、李伟、韩学良、荣敏、周建颖、周俊会、邢立民。
水貂种群阿留申病对流免疫电泳检测操作规程1 范围本标准规定了水貂种群阿留申病的检测时间及对流免疫电泳检测方法。
本标准适用于石家庄市水貂养殖场水貂阿留申病的检测。
2 规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。
凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。
凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
SN/T 2847-2011 水貂阿留申病检疫技术规范DB13/T 717-2005 水貂饲养管理技术规程DB1301/T 238-2017 水貂阿留申病碘凝集试验操作规程3 检测时间检测时间按表1进行。
表1 检测时间和检测种群4 血样采集按照DB1301/T 238-2017中3.2的规定执行。
5 对流免疫电泳检测5.1 材料准备5.1.1 仪器电压和电流分别为5V~600V和4mA~600mA的电泳仪、宽度25cm的电泳槽、分析天平、PH计。
5.1.2 设备DB1301/T 295—2018微波炉、100mm×100mm×2mm的玻璃板、直径3mm的打孔器、10uL加样器、50mL塑料刻度试管、50mL 量筒、1000mL量筒、150mL三角瓶、1000mL烧杯、10cm×10cm的双层医用纱布、医用砂轮、胶头滴管、镊子、10uL枪头、水平尺、玻璃板支架。
5.1.3 试剂水貂阿留申病诊断抗原、标准阳性血清、浓盐酸、琼脂糖(分析纯)、三羟甲基氨基甲烷(Tris)、巴比妥、巴比妥钠、三级水。
附录A水貂阿留申病毒荧光PCR检测方法的实验室规范
A.1 实验室设置要求
实验室设置要求如下:
——实验室分为三个相对独立的区域:样本制备区、反应混合物配置区和检测区;
——工作区域须有明确标记,避免不同工作区域内的设备、物品混用;
——每一区域须有专用的仪器设备
——整个实验过程中均须使用无RNA酶的一次性耗材,用到的玻璃器皿使用前须250 ℃干烤4 h以上,以彻底去除RNA酶;
——各区域的一起设备须有明确标记,以避免设备物品从各自的区域移出,造成不同的工作区域间设备物品发生混淆;
——进入各个工作区域严格遵循单一方向顺序,即只能从样本制备区、扩增反应混合物配置区至检测区;
——在不同的工作区域应使用不同颜色或有明显区别标志的工作服,以便于鉴别;离开工作区时,不得将各区特定的工作服带出;
——实验室清洁时应该样本制备区、扩增反应混合物配置区至检测区的顺序进行;
——不同的实验区域应有其各自的清洁用具以防止交叉污染。
A.2 工作区域仪器设备配置
A.2.1 样本制备区
样本制备区需配置如下仪器设备:
——2℃~8℃冰箱;
——-20℃冰箱;
——高速台式冷冻离心机(4℃,12000r/min);
——混匀器;
——微量加样器(0.1μL~10μL,5μL~20μL,20μL~200μL,200μL~1000μL);
——可移动紫外灯(近工作台面)。
A.2.2 检测区
检测区需配置如下仪器设备:
——荧光PCR仪(配计算机);
——移动紫外灯;
——打印机。
A.3 各工作区域功能及注意事项
A.3.1 样本制备区
样本制备区的功能及注意事项如下:
——样本的保存,核酸提取、贮存及其加入至扩增反应管在样本制备区进行;
——避免在本区域内不必要的走动。
可在本区域内设立正压条件以避免邻近区的气溶胶进入本区造成污染。
为避免样本间的交叉污染,加入待测核酸后,必须立即盖严含
反应混合物的反应管;
——用过的加样器吸头必须放入专门的消毒(例如含次氯酸钠溶液)容器内。
实验室桌椅表面每次工作后都要清洁,实验材料(原始样本、提取过程中样本与试剂的混合
液等)如出现外溅,必须作清洁处理并作出记录;
——对实验台适当的紫外照射(254 nm波长,与工作台面近距离)适合于灭活去污染。
工作后通过移动紫外线灯管来确保实验台面的充分照射。
A.3.2 反应混合物配置区
反应混合物配置区功能及注意事项如下:
——试剂的分装和反应混合液的制备在本区进行;
——用于标本制备的试剂应直接运送至反应混合物配置区,不能经过检测区,在打开含有反应混合液的离心管或试管前,应将其快速离心数秒;
——在整个本区的实验操作过程中,操作者必须戴手套,并经常更换。
工作结束后必须立即对工作区进行清洁。
本工作区的实验台表面应可耐受诸如次氯酸钠等的化学物
质的消毒清洁作用。
实验台表面用可移动紫外灯(254nm波长)进行照射。
A.3.3 检测区
检测区的功能及注意事项如下:
——PCR扩增及扩增片段的分析在本区内进行;
——本区注意避免通过本区的物品及工作服将扩增产物带出。
为避免气溶胶所致的污染,应尽量减少在本区内的走动;
——完成操作及每天工作后都必须对实验台面进行清洁和消毒,紫外照射方法与前面区域相同。
如有溶液溅出,必须处理并作出记录。
本区的清洁消毒和紫外照射方法同
前面区域。