动物生理学实验讲义
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三. 实验内容实验一生理学实验的基本操作技术1. 目的要求1.1 掌握生理学实验的基本操作技术。
1.2 了解生理学实验的常用仪器。
2. 实验器材手术器械、刺激器、四通道生理记录仪、换能器等。
3. 实验内容了解生理学实验中常用的手术器械及其用途,学习活体解剖技术;了解生理学实验的常用仪器(刺激系统、探测系统、生理信号的显示采集与处理系统)及其用途。
实验二坐骨神经——腓肠肌标本的制备1. 目的要求1.1掌握蛙类动物双毁髓的实验方法。
1.2 掌握坐骨神经——腓肠肌标本的制备方法。
2. 动物与器材蟾蜍、常用手术器械。
3. 实验内容学习蛙类动物双毁髓的实验方法,制备有兴奋性的坐骨神经——腓肠肌标本并检测其兴奋性。
实验三刺激强度与肌肉收缩的关系1. 目的要求1.1 初步掌握神经——肌肉实验的电刺激方法及肌肉收缩的记录方法。
1.2 初步掌握刺激器、四通道生理记录仪、换能器的使用方法。
2. 动物与器材蟾蜍、手术器械、刺激器、四通道生理记录仪、换能器。
3. 实验内容观察刺激强度与肌肉收缩反应的关系并分析,学习刺激器、四通道生理记录仪、换能器的使用方法。
实验四骨骼肌收缩的总和与强直收缩1. 目的要求1.1 掌握神经——肌肉实验的电刺激方法及肌肉收缩的记录方法。
1.2 掌握刺激器、四通道生理记录仪、换能器的使用方法。
2. 动物与器材蟾蜍、手术器械、刺激器、四通道生理记录仪、换能器。
3. 实验内容观察刺激频率与肌肉收缩反应的关系并分析,学习刺激器、四通道生理记录仪、换能器的使用方法。
实验五血红蛋白含量的测定1. 目的要求掌握测定血红蛋白含量的基本方法——比色法。
2. 实验器材采血针、血红蛋白计、0.1mol/L盐酸溶液、一次性20µl定量毛细采血管、滴管、玻璃棒、75%酒精棉、蒸馏水。
3. 实验内容用比色法测定人体血红蛋白含量。
实验六血细胞的计数1. 目的要求学习红细胞、白细胞的人工计数方法。
2. 实验器材采血针、红白细胞稀释液、一次性20µl定量毛细采血管、滴管、玻璃棒、75%酒精棉、显微镜等。
动物生理学授课教案第一章绪论第一节动物生理学的研究内容和意义一、动物生理学的研究内容(一)概念:是研究动物体正常生命活动及其规律的科学。
(二)分类:整体生理学器官和系统生理学细胞和分子生理学三、动物生理学的研究方法(一)慢性动物实验方法:在无菌条件下对健康动物进行手术,暴露所研究的器官(如消化道各种造痿手术)或破坏某器官(切除内分泌腺等),然后在接近正常生活的条件下观察所暴露器官的某些功能,观察摘除或破坏某器官后产生的功能紊乱等.(二)急性实验法1.在体实验法(活体解剖实验法in vivo):从活的或刚死的动物身上切离要研究的器官(如小脑蛙心等)或组织(如肌肉强直收缩)放在人工环境中,使其在短时间内保持生理功能以便进行实验研究.2.离体实验法(离体器官实验法in vitro):将动物麻醉或破坏大脑(无菌条件下)进行手术,暴露要研究的器官或组织,以便进行实验观察。
第二节机体功能与内环境一、生命活动的基本特征(一)新陈代谢(metabolism ):新陈代谢是指机体主动地与环境进行物质和能量交换,以及机体内部物质和能量的转变转移过程。
(二)兴奋性(excitability):一切活组织或细胞,当其周围环境条件迅速改变时,有产生动作电位并发生反应的能力或特性,称为兴奋性。
(三)适应性(adaptation):当环境发生改变时,机体或其部分组织的机能与结构也将在某种限度内随之改变,以求与所在环境保持动态平衡,机体的这种能力称为适应性。
(四)生殖(reproduction):是个体生长发育到一定阶段时可产生相似的另一新个体的过程。
二、体液与内环境(一)体液:包括细胞内液和细胞外液。
(二)内环境:细胞外液是细胞生存的环境,又是细胞与外界环境之间进行物质能量交换的媒介,称之为内环境。
稳态:内环境的化学成分和理化特性保持相对恒定的生理学现象称为稳态。
稳态的生理意义:(1)稳态的新陈代谢的必要保证。
温度、PH值影响酶的活性,水溶液渗透压影响物质交换。
动物生理学实验指导书实验一基本生理实验操作——蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备(2学时)[实验目的]学习生理学实验基本的组织分离技术;学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法;了解刺激的种类。
[实验原理]蛙类的一些基木生命活动和生理功能与恒温动物相似,若将蛙的神经-肌肉标木放在任氏液中,其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激,可在神经和肌肉上产生一个动作电位,肉眼可看到肌肉收缩和舒张-•次,表明神经和肌肉产牛了-•次兴奋。
在牛理学实验屮常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性;刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等,制备坐骨神经腓肠肌标木是生理学实验的一项基木操作技术。
[实验对象]蟾赊或蛙[实验药品]任氏液、食盐、1% H2SO4滤纸[仪器与器械]普通剪刀、手术剪、眼科蹑(或尖头无齿银)、金属探针(解剖针)、玻璃分针、蛙板(或玻璃板)、蛙钉、细线、培养皿、滴管、锌铜弓(或电了刺激器)、酒精灯。
[实验方法与步骤](一)标木制备1.破坏脑脊髓:左手持蛙,用食指下压吻端,拇指按压背部,使蛙头前俯;右手食指沿两鼓膜」[沖向后触摸,触及一凹陷处,即枕骨大孔。
用蛙针由凹陷处乖直刺入枕骨大孔,再向前伸入颅腔,捣毁脑;向后插入椎管,捣毁脊髓。
或把铁剪刀插入口裂,沿两眼后缘剪去头,再以蛙针捣毁脊髓。
待蛙四肢肌肉紧张性完全消失,即表示脑和脊髓己破坏完全。
2.剪除躯干上部及内脏:在腋部用铁剪刀剪断脊柱,将头、前肢和内脏一并弃去,仅保存一段脊柱和后肢。
脊柱的两旁可见坐骨神经从。
3.剥皮:先剪去肛门周I韦I皮肤,然后用左手捏住脊柱断端,右手捏住断端边缘皮肤,向下剥掉全部后肢皮肤。
标本放入盛有林格液的小烧杯中,将手及用过的器械、蛙板洗净,以免皮肤分泌物污染神经-肌肉标本。
若标本系电生理实验用则禁止撕皮,需用剪刀剪断皮F 结缔纟R织来分离皮肤。
4.分离标本为两部分:沿脊柱正中线将标本均匀地分成左右两半,分别作进一步剥制。
动物生理学实验指导书生理学实验指导目录实验一神经生理实验1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备1.2 神经干动作电位引导 1.3 神经传导速度的测定实验二血液生理实验2.1 红细胞计数 2.2 红细胞渗透脆性试验实验三循环生理实验之蛙心起搏点及心肌特性3.1 蛙心起搏点 3.2 心肌特性实验四循环生理实验之蛙心灌流 4.1 蛙心灌流实验五循环生理实验之动脉血压的直接测定及其影响因素5.1 动脉血压的直接测定及其影响因素实验六消化生理实验7.1 胃肠运动的直接观察 7.2 小肠吸收和渗透压的关系 7.3 离体肠段运动描记实验七泌尿生理实验8.1 尿的分泌及其影响与调节实验八泌尿、循环、呼吸生理综合实验(综合计划 07级)实验九肌肉生理实验9.1 阈刺激、阈上刺激与最大刺激 9.2 肌肉的单收缩9.3 肌肉的强直收缩和收缩总和实验一神经生理实验年月日星期1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备目的和原理:蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似,它的离体组织所需要的生活条件又比较简单,易于控制和掌握,因此在实验中常用蟾蜍或蛙坐骨神经腓肠肌标本来研究神经肌肉的一般生理,如:神经干动作电位引导、神经传导速度测定、肌肉收缩的机能等。
实验对象:蟾蜍或蛙实验器材和药品:中式剪子,眼科剪,眼科镊,蛙板,玻璃分针(玻璃勾),探针,锌铜弓,培养皿,大头针,棉花,线,任氏液,纱布等。
实验方法:1、破坏脑脊髓取一只蟾蜍或蛙,用自来水冲洗干净。
保定好,用探针从枕骨大孔垂直刺入,然后向前刺入颅腔,左右搅动捣毁脑组织,再向后刺入脊椎管捣毁脊髓。
此时蟾蜍四肢松软,呼吸消失,表示脑脊髓破坏完全。
2、剪除躯干上部及内脏,提起蟾蜍的背部,在骶髂关节水平以上0.5-1.0厘米处剪断脊柱(见图),用左手捏住蟾蜍骶髂关节以下的脊柱,使蟾蜍头与内脏自然下垂,右手持中式剪刀,沿脊柱两侧剪除皮肤肌肉和一切内脏(注意勿损伤坐骨神经),仅留骶尾联合以下的后肢、骶骨、脊柱及由它发出的坐骨神经。
动物生理学讲义第一部分归纳一、机体的功能与环境1、动物体内所含的液体称为体液,约占体重的 60%,细胞外液被称为机体的内环境,约占体液的 1/3 。
2、各种物质在不断变换中达到相对平衡,即动向平衡状态,称为稳态。
二、机体功能的调治1、生理功能的调治方式包括:神经调治、体液调治、自己调治2、神经调治的基本过程是反射(reflex )。
反射:是指在中枢神经系统的参加下,机体对内外环境变化产生的有规律的适应性反响,结构基础是反射弧 ( 感觉器、传入迷经纤维、神经中枢、传入迷经纤维、效应器 )第二部分细胞的基本功能1、细胞的愉悦性和生物电现象[1]静息电位:静息电位是指细胞未受刺激时,存在于膜内外两侧的电位差。
体系: K+ 在浓度差作用下向细胞外扩散,并滞留在细胞表面面形成向内的电场,当达到电 - 化学平衡时, K+ 净流量为零。
所以,能够说静息电位相当于 K+ 外流形成的跨膜平衡电位[2]动作电位:是细胞碰到刺激时静息膜电位发生改变的过程。
体系:当细胞受刺激而愉悦时,膜对 Na+ 通透性增大,对 K+ 通透性减小,于是细胞外的 Na+ 便会顺其波度梯度和电梯度向胞内扩散,致使膜内负电位减小,直至膜内电位比膜外高,形成内正外负的反极化状态。
当促使 Na+ 内流的浓度梯度和阻拦 Na+ 内流的电梯度,这两种拮抗力量相等时, Na+ 的净内流停止。
所以,能够说动作电位的去极化过程相当于 Na+ 内流所形成的电 - 化学平衡电位。
[3]细胞碰到刺激后能产生动作电位的能力称为愉悦性;在体内条件下,产生动作电位的过程称为愉悦。
愉悦性时期①绝对不应期②相对不应期③超常期④低常期[4]阈值:引起细胞愉悦或产生动作电位的最小刺激强度称为阈值,该刺激强度的值则称为刺激的阈值。
阈电位:从静息电位变为动作电位的这一临界值称为阈电位。
2、神经骨骼肌接头也叫运动终板。
第三部分血液一、血液的组成与理化特点1、血量及血液的基本组成成年动物的血量约为体重的 5%-9%,一次失血若不高出血量的 10%,一般不会影响健康,一次急性失血若达到血量的 20%时,生命活动将碰到明显影响。
《动物生理学》实验教学大纲1、课程属性:必修2、实验属性:非独立设课3、学时学分:总学时64、实验学时164、实验应开学期:第4学期5、先修课程:生物化学、动物学、鱼类学、动物解剖与组织胚胎学一、课程的性质与任务动物生理学实验是与《动物生理学》相配套的专业基础课,与理论课既互为补充,又相对独立。
动物生理学实验课的任务是:(1) 通过经典实验对学生进行《动物生理学》实验基本技能训练;掌握动物生理学实验的仪器、设备的基本操作,熟悉和掌握动物生理学实验的基本技术;(2) 通过基础性和综合性实验,达到训练学生的动手能力、观察、分析问题和归纳能力;(3) 通过设计性实验培养学生的创新精神、严谨治学和团队精神,以提高学生的综合素质;为后续课程学习打下坚实的基础二、实验目的与基本要求1.掌握动物生理实验常规仪器和基本实验技术的操作。
2.掌握动物生理学实验常用标本的制备和某些生理指标测定的方法。
3.掌握实验项目的基本原理,掌握和观察、记录实验结果和收集、整理实验数据、编辑实验曲线与图形的方法,学会结果分析与归纳,并能正确写出实验报告。
4.通过多个实验同时观察或综合性实验,进一步强化、规范实验操作,掌握实验方法;重点培养学生分析、综合和逻辑推理的能力。
5.学习和了解动物生理学研究性实验设计的基本方法和原则,能独立进行实验。
6.通过研究性实验设计的训练,促进学生的创新思维,使学生掌握实验设计的基本原理、原则;掌握撰写科学研究论文的基本方法,为今后进行科学研究打下良好的基础。
三、动物生理学实验课的要求实验前:1.自行阅读《动物生理学实验指导》中的有关内容,了解本次实验的目的、要求,充分理解本实验的原理,熟悉实验项目、操作步骤和程序,撰写预习实验报告。
2.预测本次实验的结果,对预测的结果三、实验考核方式及办法考核方式:考查;实验成绩评分办法:实验操作占40%,实验报告占40%,平时成绩占20%。
四、实验项目一览表动物生理学实验项目一览表序号实验项目名称实验类型实验要求适用专业学时12 33 4 56 生理实验常用器械的认识和基本手术方法的练习、坐骨神经-腓肠肌标本的制备骨骼肌生理特性蛙心起搏点的分析及期前收缩和代偿间歇血红蛋白含量的测定血型的鉴定人体动脉血压的测定及其影响因素人体心电图描记综合性验证性验证性验证性验证性验证性必做必做必做必做必做必做海洋渔业海洋渔业海洋渔业海洋渔业海洋渔业海洋渔业3333122五、实验项目的具体内容实验一生理实验常用器械的认识和基本手术方法的练习、坐骨神经-腓肠肌标本的制备1、本次实验的目的和要求认识动物生理学实验课的目的、要求和规程规则;了解并熟悉电刺激器、生理信号放大器和计算机处理系统的操作和使用方法。
动物生理学实验讲义陈海燕 樊晓丽编10-407丽水学院生态学院二○一七年二月目录第一部分 解剖生理学实验常用器械及溶液配制 11 手术器械及活体解剖技术 12 生理学常用实验仪器及用品 153 常用生理溶液的配制 22 第二部分 必做实验内容第一章 人体的运动系统实验1 人体全身骨骼和骨骼肌系统(基础性) 23 第二章 细胞的兴奋性与生物电现象实验2 牛蛙坐骨神经腓肠肌标本制备(基础性) 25 第三章 神经系统与肌肉系统实验3 不同刺激强度和频率对骨骼肌收缩的影响(基础性) 28 第四章 感觉器官实验4 瞳孔反射和视野盲点测定 31 第五章血液与循环系统实验5血型鉴定;血涂片的制作(基础性)34 实验6 蛙心搏动观察、心室期前收缩和代偿间歇实验(基础性) 36 第五章 呼吸系统实验7 家兔呼吸运动的调节(综合性)39 第六章 循环系统实验8 家兔动脉血压的神经-体液调节(综合性)42 附录 主要参考文献 46第一部分 解剖生理学实验常用器械及溶液配制第一节 手术器械及活体解剖技术生理学实验是以活的动物或人体作为观察对象和实验材料的。
在动物实验中,活体解剖技术对生理学实验的成败起着至关重要的作用。
在实验过程中,学生应着重于学习、掌握些操作技术,以提高自己的动手能力。
生理学实验方法虽然多种多样,但一般可分为离体实验法和在体实验法两类。
离体实验法是将要研究的器官或组织从活的或刚处死的动物体上取出,置于接近正常生理条件的人工环境中,以观察、研究其生理机能。
如离体心脏的灌流、离体肠段的活动以及用坐骨神经-腓肠肌标本等实验。
在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。
急性在体实验法是动物在麻醉或毁坏脑或脊髓的状态下,用手术的方法暴露某一器官,观察、研究其机能及变化规律。
如在体心脏活动的观察、肾脏泌尿机能的研究等。
只能在一定时间内进行观察研究,而且实验后动物不能存活。
慢性实验法是在特定条件下,以完整而清醒的动物为对象的实验方法,可以在较长的时间内,连续地反复观察动物的某一生理机能。
此法常需要先在动物体上施行某种无菌外科手术,如胃肠道瘘管术,或在机体的一定部位埋藏电极、或切除某一器官等,须待动物恢复健康后方可进行实验。
这种实验花费时间较长,动物需要特殊的护理,在基础生理学实验中较少安排。
一、手术器械及其用途(一)常用手术器械根据生理学实验的需要,常用手术器械包括手术刀、手术剪、金冠剪、手术镊、眼科剪、蛙类毁髓针、玻璃分针等。
1.手术刀主要用于切开皮肤或脏器。
常用手术刀为刀柄和刀片组合式,也有刀柄和刀片相连的。
根据手术的部位与性质,可以选用大小、形状不同的手术刀片。
常用的执刀方法有 4 种(1)执弓式这是一种常用的执刀方法,动作范围广而灵活,用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。
(2)执笔式此法用力轻柔而操作精巧,用于切割短小而精确的切口,如解剖神经、血管,作腹膜小切口等。
(3)握持式常用于切割范围较广、用力较大的切口,如切开较长的皮肤、截肢等。
(4)反挑式此法多使用刀口向弯曲面的手术刀片,常用于向上挑开组织,以免损伤深部组织。
2.手术剪主要用于剪皮肤或肌肉等粗软组织。
此外,也可用来分离组织,即利用剪刀的尖端,插入组织间隙,分离无大血管的结缔组织等。
手术剪分尖头剪和钝头剪。
其尖端还有直、弯之别。
生理学实验中常习惯于用弯型手术剪剪毛。
另外,还有一种小型手术剪叫眼科剪,主要用于剪血管或神经等柔软组织。
眼科剪也有直头与弯头之分。
正确的执剪姿势如图 1-4 所示,即用拇指与无名指持剪,食指置于手术剪的上方。
3.手术镊主要用于夹持或牵拉切口处的皮肤或肌肉组织。
眼科镊用于夹持细软组织。
手术镊有圆头、尖头两种,又有直头和弯头,有齿和无齿之别,而且长短不一,大小不等,可根据手术需要选用。
通常,有齿镊主要用于夹持较坚韧或较厚的组织,如皮肤、筋膜、肌腱等;无齿镊主要用于夹持较细软的组织,如血管、粘膜等。
正确的执镊姿势如图1-5 所示,类似于执笔式,较为灵活方便。
4.金冠剪金冠剪尖端短粗,易于着力。
可用于剪皮肤、肌肉、内脏、骨髓以及结线等。
执剪姿势与一般手术剪相同。
5.毁髓针专门用来毁坏蛙类脑髓和脊髓的器械。
分为针柄和针部,持针姿势一般采用执笔式(图1-6)。
6.玻璃分针专用于分离神经与血管的工具。
尖端圆滑,直头或弯头,分离时不易损伤神经或血管。
玻璃分针尖端容易碰段,使用时要小心,如尖端破碎时会损伤组织,不可再使用。
持玻璃分针的姿势同执笔式。
(二)哺乳类动物用手术器械1.止血钳主要作用是分离组织和止血,不同类型的止血钳又有不同的用途。
执止血钳的姿势均与执剪刀的姿势相同(图 1-8)。
常用止血钳有以下三种。
(1)直止血钳分长短两种类型,又有有齿和无齿之别。
无齿止血钳主要用以夹住浅层出血点,以便止血,也可用于浅部的组织分离。
有齿止血钳主要用于强韧组织的止血,提起皮肤等。
(2)弯止血钳与直型的大同小异,也分长短两种,主要用于深部组织或内脏出血点的止血。
(3)蚊式止血钳(蚊嘴钳)此种止血钳头端细小,又叫小止血钳,适用于细嫩组织的止血和分离,不宜钳夹大块或坚硬组织。
2.持针器主要用于夹持缝针,缝合组织。
持针器的头端较短,口内有槽。
使用时,用持针器的尖端夹持缝针近尾端 1/3 处。
(图 1-9)。
3.咬骨钳主要用于咬切骨组织,如打开颅腔或骨髓腔等,咬骨钳分为剪刀式和小蝶式两种,前者适用于咬断骨质,后者适用于咬切骨片。
4.颅骨钻5. 缝针用于缝合各种组织。
缝针有圆针和三棱针两种,又有直型和弯型之别,而且其大小不一。
圆针多用于缝合软组织,三棱针用于穿皮固定缝合,弯针用于缝合深部组织。
6.动脉夹主要用于短期阻断动脉血流,如插动脉插管时使用。
二、活体解剖技术(一)动物的选择常用的实验动物有狗、猫、兔、大白鼠、小白鼠、豚鼠、鸽、鸭、蟾蜍或蛙等。
无论选用哪种动物,均需健康。
一般地说,健康的哺乳动物毛色光泽,两眼明亮、眼和鼻无分泌物、鼻端潮而凉、反应灵活、食欲良好。
健康的蛙或蟾蜍则皮肤湿润、喜爱活动,静止时后肢蹲坐、前肢支撑、头部和躯干挺起等。
动物种类的选择需根据实验内容而定,使其解剖和生理特点适合于预定实验的要求。
如研究主动脉弓减压神经传入冲动的作用时,常选用兔作为实验对象,因为兔的减压神经在颈部自成一束,与迷走神经伴行,易于寻找和分离。
在研究心脏特殊传导组织的电活动时,常选用狗的浦肯野氏纤维及兔的窦房结作为实验材料,因为狗的浦肯野氏纤维在心室内较为粗大,很容易解剖分离。
在生理学的研究中,特别是基础理论研究中,合理地选择实验动物,常常是实验成败的关键,但并非愈是高等动物愈好。
在选择实验动物时,应根据实验需要,因地制宜地加以考虑。
(二)动物的麻醉在慢性实验或急性在体实验中,施行手术之前必须将动物麻醉。
麻醉可使动物在手术或实验过程中减少疼痛,保持安静,保证实验的顺利进行。
麻醉剂的种类繁多,作用原理不尽相同。
除了麻痹中枢神经系统以外,还会引起其它生理机能的变化,因此,在应用时需根据动物的种类以及实验或手术的性质慎重加以选择。
麻醉必须适度,过深或过浅均会给手术或实验带来不良影响。
麻醉的深浅可从呼吸,某些反射的消失,肌肉的紧张程度和瞳孔的大小加以判断。
人们常用刺激角膜以观察角膜反射,夹捏后肢股部肌肉以观察其反应的简易方法了解动物的麻醉深度。
适宜的麻醉状态是呼吸深慢而平稳,角膜反射与运动反应消失,肌肉松弛。
1.常用麻醉剂的种类及用法麻醉剂可分为局部麻醉剂和全身麻醉剂两种。
局部麻醉剂常用 0.5-1.0% 盐酸普鲁卡因或 2%盐酸可卡因作皮肤或粘膜表面麻醉。
在生理实验中,多采用全身麻醉剂,如挥发性的乙醚、氟烷和非挥发性的巴比妥类、氨基甲酸乙酯等,以下分别加以介绍。
(1)乙醚(ether)是一种呼吸性麻醉剂,适用于各种实验动物。
在用乙醚麻醉猫、兔、或鼠类时,可将动物放在特制的玻璃钟罩内,同时放入浸有乙醚的脱脂棉,动物在吸入后的15-20min 开始发挥作用。
在麻醉狗时,可用特制的麻醉口罩套在动物嘴上,慢慢将乙醚滴在口罩上进行麻醉。
麻醉时需注意动物的保定。
乙醚对呼吸道有刺激粘液分泌的作用,为防止呼吸道堵塞,可用硫酸阿托品(0.1-0.3mg/kg 体重)皮下或肌肉注射。
乙醚麻醉易于掌握,比较安全,作用时间短,麻醉后容易苏醒;但要专人管理麻醉,以防过早苏醒或麻醉过量。
(2)戊巴比妥纳(pentobarbital sodium)适用于各类实验动物。
常配制成 5%的水溶液,一般由静脉或腹腔注射。
戊巴比妥钠作用开始快,一次给药的麻醉有效时间约 2-4h,不需要特殊照顾。
如在实验中需要补充注射时,可再由静脉注射 1/5 剂量,仍可维持 1-2h。
在麻醉过量时,可产生严重的呼吸和循环抑制,导致动物的死亡。
(3)硫喷妥纳(pentothal sodium)为淡黄色粉末,水溶液不稳定,一般需使用前配制,常用浓度为 2.5-5%,静脉注射,不宜作皮下或肌肉注射。
静脉注射后作用较快,但苏醒也快,麻醉时间较短,一般约1.5h。
实验过程中可重复注射,以维持麻醉的深度。
(4)氨基甲酸乙酯(ethyl carbamate)又名乌拉坦或脲酯。
氨基甲酸乙酯易溶于水,常用浓度为 20-25%。
适用于多数动物:狗、猫、兔多用静脉或腹腔注射,鸟类多用肌肉注射,蛙类用皮下淋巴囊注射。
(5)氯醛糖(chloralose)溶解度较小,常用浓度为 1%,使用前须加热促其溶解,但不可煮沸。
常采用静脉或腹腔注射,可维持麻醉状态 3-4h。
与氨基甲酸乙酯合并常用于电生理实验中。
非挥发性麻醉剂使用简便,维持时间较长,实验中无需专人照管,麻醉深度也较易掌握,因此为大多数实验室采用。
其缺点是苏醒缓慢。
2.麻醉剂的给药途径及方法非挥发性麻醉剂的给药途径为注射给药法,主要有静脉、腹腔、肌肉、皮下和淋巴囊注射。
分述如下:(1)静脉注射常用静脉注射麻醉狗、兔。
狗在麻醉前必须妥善保定,特别是生狗,以防伤人。
保定的方法多为捆绑狗的嘴鼻部。
即用粗棉带从下颌绕到上颌打一结,然后绕向下颌再打一结,再将棉带引至头后,在颈部背面打第三结,最后再打一活结(图 1-10)。
另外,也可用特制的长柄大铁钳将狗颈部钳住,钳夹后将钳头固定于墙角或地面,此时头部不能自由活动,但不影响呼吸。
狗最常用于注射和采血的静脉为前肢内侧的头静脉和后肢小腿外侧的小隐静脉。
注射前需在注射部位剪毛,用手握压静脉向心端处,使血管充血膨胀。
将注射针头顺血管方向先刺入血管旁的皮下,然后再刺入血管,此时可见回血。
注射者一手固定针头,一手缓缓进行推注(图 1-11)。
兔静脉注射兔的常用部位为耳缘静脉。
兔耳的外缘血管为静脉,中央的血管为动脉。
注射前最好将动物放入兔体固定箱内,使兔头露于箱外,以防注射时挣扎。
先除去注射部位的被毛,用左手食指和中指夹住耳缘静脉近心端,使其充血(亦可用动脉夹夹住),并用左手拇指和无名指固定兔耳。