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哈茨木霉菌的用法
1.生物防治：哈茨木霉菌被广泛应用于农业领域中的生物防治项目。
它可以对抗各种植物病原菌，如根腐病菌、霜霉病菌和灰霉病菌等。
其利用菌丝产生的竞争性和抑制性物质可以抑制病原菌的生长和繁殖。
通常的使用方法是将哈茨木霉菌通过土壤喷洒、种子处理或灌根处理的方式引入土壤中，以达到生物防治的效果。
2.有机肥料的辅助分解：哈茨木霉菌可以分解有机质和植物残渣，促进土壤中有机质的分解和转化。
通过使用哈茨木霉菌，可以加速有机肥料的分解速度，提高养分释放速度和有效性。
一般的用法是在有机肥料施用前将哈茨木霉菌与有机肥料混合，然后施入土壤中。
3.生物钝化：哈茨木霉菌可以用作生物钝化剂，用于分解和降解土壤中的有机污染物和残留农药。
哈茨木霉菌通过分泌多种酶类和代谢产物来降解有机污染物，将其转化为无害的物质。
一般的用法是将哈茨木霉菌通过喷洒、灌根或土壤施用的方式引入受污染的土壤中，以加速有机污染物的降解过程。
4.提高植物生长和抗逆性：哈茨木霉菌通过产生一系列的植物生长激素和生物活性物质，可以促进植物的生长和发育，并提高植物对逆境条件的抵抗能力。
可以通过在种子处理、灌根或土壤施用的方式，将哈茨木霉菌引入植物根际，以增强植物的生长和抗逆性。
总的来说，哈茨木霉菌具有广泛的应用潜力，并且在农业领域的生物防治、有机肥料分解、有机污染治理和植物生长促进等方面具有重要的用途。
通过不同的用法和施用方法，可以充分发挥哈茨木霉菌的作用，提高
农作物产量和质量，改善土壤质量，减少化学农药的使用，以促进可持续农业的发展。
胡琼，刘茂泉(杭州万向职业技术学院，杭州310023） 摘要：木霉是生物防治中一种有效的拮抗菌和促生菌。
综述了近20年木霉对多种植物促生作用的研究进展，分析了木霉对各种土传病原菌的生防效果。
探讨了木霉生防对象、范围及分离生境等方面的变化和延伸，并对其可继续发展的前景进行了展望。
关键词：生物防治；木霉菌；促生 中图分类号：S482 文献标志码：A 文章编号：1006-0413(2019)07-0478-05 1.1.1 番茄 自2006年吴利民等用不同浓度的木霉发酵液处理番茄种子来研究其对番茄的促生作用，众多关于木霉对番茄促生的研究被开展。
最新如2018年报道哈茨木霉菌剂浸种、灌根处理等不同的处理方式对番茄植株均有较好的促生作用。
1.1.2 黄瓜 Yedidia 等观察到在无菌水培养条件下，经哈茨木霉菌83诱导处理的黄瓜总是比未经处理的黄瓜长得大，而长枝木霉T6水分散粒剂对黄瓜促生效果可提高35%以上。
郭现坤、冯程龙、谷祖敏等陆续就木霉对黄瓜的促生作用发表相关文章。
1.1.3 辣椒 1992年Cheti 等较早发现，用泥土或糠作为基质的哈茨木霉菌株T-203培养物在刺激辣椒生长方面比以孢子悬浮液作为种子包衣剂有更明显的效果，暗示泥土或糠给T-203提供了丰富的养分来源。
较新的研究如2017年赵兴丽等认为钩状木霉能够在辣椒植株木霉菌促生与拮抗作用研究进展 木霉(Trichoderma)属于真菌中的半知菌亚门丝孢纲丝孢目黏孢菌类。
自1794年Persoons 第一个对木霉进行描述，随后根据形态特征被分为绿色木霉(T.virid)、哈茨木霉（T.harzianum）等共11个群。
1932年，Windling 发现木素木霉可寄生于多种植物病原真菌内，随后报道发现木霉至少对18个属29种病原真菌在体外或体内表现有拮抗作用，以哈茨木霉的使用较为广泛。
此外，木霉还被认为是一种广泛应用的新型促生剂。
1.促生作用研究 木霉菌对植物促生机制主要集中在以下几方面：能够产生植物生长调节剂、提高植物养分利用率、影响植物根际微生态、诱导植物产生抗性。
哈茨木霉菌的用法(二)哈茨木霉菌的用法什么是哈茨木霉菌？哈茨木霉菌（Trichoderma harzianum）是一种常见的拮抗性真菌，被广泛应用于农业、园艺和生物制剂中。
它具有很强的抗菌能力，可以对抗多种病原菌，对植物生长和健康起着重要作用。
哈茨木霉菌的用法以下是哈茨木霉菌的一些常见用法及详细讲解：1. 生物防治哈茨木霉菌被广泛应用于农业领域，作为一种生物防治剂，用于防治作物病害。
其抗菌能力可以对抗多种病原菌，如白粉病、灰霉病和根腐病等。
在使用上，可以将哈茨木霉菌制剂喷洒在受感染的作物上，有效控制病害的发生和蔓延。
2. 促进植物生长哈茨木霉菌可以通过产生一些有益的代谢产物，促进植物生长和发育。
它产生的激素样物质和酶类可以增加植物的营养吸收能力，提高植物的抗逆性，增加作物产量。
因此，在农业生产中，可以将哈茨木霉菌制剂用作生长调节剂，促进植物健康生长。
3. 有机肥料堆制哈茨木霉菌可以对有机质进行降解分解，促进有机肥料的堆肥过程。
它分解有机质时产生的酶类可以加速有机物的分解，提高有机肥料的肥效。
因此，在农业和园艺领域，可以将哈茨木霉菌用作有机肥料的添加剂，提高土壤质量和作物养分吸收能力。
4. 生物修复哈茨木霉菌具有一定的生物修复能力，可以降解和清除一些有害物质，如农药残留和污染物。
它通过产生特定的酶类，能够将有机污染物分解为无害或较低毒性的物质，减少环境污染对生态系统的影响。
因此，在环境治理方面，哈茨木霉菌也被广泛应用于污染土壤和废水的修复。
结论哈茨木霉菌作为一种重要的拮抗性真菌，在农业、园艺和环境领域有着广泛的应用前景。
其生物防治、促进植物生长、有机肥料堆制和生物修复等用法，为农业可持续发展和环境保护提供了一种绿色、可持续的解决方案。
白菜根肿病的防治措施白菜根肿病是一种由真菌引起的病害，其主要症状为白菜根部出现肿胀，形成类似结核的病征。
这种病害会造成植株生长迟缓，叶片发黄，并且无法正常地吸收土壤中的水分和养分。
为了有效地控制白菜根肿病的发生和传播，需要采取一系列的防治措施。
首先，选择健康的种苗是预防白菜根肿病的关键。
在播种前，应该对种子进行消毒处理，以杀死携带病菌的种子表面。
同时，在选择种苗时，要注意选择无病菌的幼苗，避免将病菌带入田间。
其次，合理的土壤管理是控制白菜根肿病的重要措施之一、白菜在种植过程中需要保持适宜的土壤湿度和通气性。
过湿的土壤会使病菌繁殖迅速，因此要避免过度浇水。
此外，定期翻耕土壤，保持土壤的肥沃度和通气性，有助于减少病菌的滋生。
此外，病害防治中的轮作也是一种非常有效的方法。
通过种植非寄主植物，可以减少病菌对同一物种的侵害。
在选择轮作植物时，应优先选择不同科属的作物，避免同属或同科作物的连作，以减少病菌的传播。
在病害的防治过程中，喷施生物农药或化学农药也是一个重要的手段。
一些有效的生物农药，如拮抗真菌和植物生长调节剂，可以有效地抑制病菌的生长和繁殖。
而化学农药则可以快速地杀死病菌，控制病害的蔓延。
此外，在病害的防治过程中，农民还需要加强病害的监测和早期预警工作。
定期巡视田间，观察白菜的生长情况和病害症状，一旦发现疑似病害的情况，要及时采取措施进行处理。
同时，还可以使用一些化学试剂进行土壤和种子的消毒处理，以减少病菌的侵害。
总之，白菜根肿病的防治是一个综合性的工作，需要农民在种植管理中做好土壤管理、种苗选择和轮作等方面的工作。
同时，合理使用化学农药和生物农药，加强病害监测，早发现早处理，以最大限度地减少白菜根肿病的发生和传播。
只有采取综合措施，才能有效地保护白菜作物的生长，提高产量和质量。
㊀山东农业科学㊀２０２３ꎬ５５(９):１４８~１５３ＳｈａｎｄｏｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ㊀ＤＯＩ:１０.１４０８３/ｊ.ｉｓｓｎ.１００１－４９４２.２０２３.０９.０２０收稿日期:２０２２－１１－１９基金项目:国家重点研发计划项目(２０１８ＹＦＤ０２０１２０６－０６)作者简介:宋雨萌(１９９７ )ꎬ女ꎬ山东威海人ꎬ硕士研究生ꎬ主要从事蔬菜病害防治研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:２９３１４３２６６１＠ｑｑ.ｃｏｍ通信作者:罗兰(１９６５ )ꎬ女ꎬ陕西咸阳人ꎬ博士ꎬ教授ꎬ主要从事农药教学与研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:ｌｕｏｌａｎｃｈｉｎｅｓｅ＠１６３.ｃｏｍ青岛胶州大白菜根腐病病原菌鉴定及其生物防治宋雨萌ꎬ刘文杰ꎬ宗茂ꎬ罗兰(青岛农业大学植物医学学院/山东省植物病虫害绿色防控工程研究中心ꎬ山东青岛㊀２６６１０９)㊀㊀摘要:为明确青岛胶州大白菜根腐病的病原菌并对其进行生物防治ꎬ采用组织分离法㊁形态观察㊁分子生物学方法和盆栽法对其病原进行分离㊁鉴定与防效研究ꎮ结果表明ꎬ引起青岛胶州大白菜根腐病的病原为尖孢镰刀菌(Ｆｕｓａｒｉｕｍｏｘｙｓｐｏｒｕｍ)ꎮ哈茨木霉菌ＷＰ和枯草芽孢杆菌ＷＰ对盆栽大白菜根腐病的防治效果分别为６６.３２％和６５.０２％ꎬ两者可作为防治大白菜根腐病的生防菌剂ꎮ关键词:大白菜根腐病ꎻ尖孢镰刀菌ꎻ分子鉴定ꎻ生物防治中图分类号:Ｓ４３６.３４１.１＋９㊀㊀文献标识号:Ａ㊀㊀文章编号:１００１－４９４２(２０２３)０９－０１４８－０６ＩｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｏｎｔｒｏｌｏｆＰａｔｈｏｇｅｎＣａｕｓｉｎｇＣｈｉｎｅｓｅＣａｂｂａｇｅＲｏｏｔＲｏｔｉｎＪｉａｏｚｈｏｕｏｆＱｉｎｇｄａｏＳｏｎｇＹｕｍｅｎｇꎬＬｉｕＷｅｎｊｉｅꎬＺｏｎｇＭａｏꎬＬｕｏＬａｎ(ＣｏｌｌｅｇｅｏｆＰｌａｎｔＨｅａｌｔｈａｎｄＭｅｄｉｃｉｎｅꎬＱｉｎｇｄａｏＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ/ＳｈａｎｄｏｎｇＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇＲｅｓｅａｒｃｈＣｅｎｔｅｒｆｏｒＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ￣ＦｒｉｅｎｄｌｙＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＰｅｓｔＭａｎａｇｅｍｅｎｔꎬＱｉｎｇｄａｏ２６６１０９ꎬＣｈｉｎａ)Ａｂｓｔｒａｃｔ㊀ＩｎｏｒｄｅｒｔｏｍａｋｅｃｌｅａｒｔｈｅｐａｔｈｏｇｅｎｉｃｆｕｎｇｉｃａｕｓｉｎｇＣｈｉｎｅｓｅｃａｂｂａｇｅｒｏｏｔｒｏｔｉｎＪｉａｏｚｈｏｕｏｆＱｉｎｇｄａｏａｎｄｃａｒｒｙｏｕｔｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｃｏｎｔｒｏｌꎬｔｈｅｐａｔｈｏｇｅｎｗａｓｉｓｏｌａｔｅｄｂｙｔｉｓｓｕｅｓｅｐａｒａｔｉｏｎａｎｄｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄｂｙｍｏｒ￣ｐｈｏｌｏｇｉｃａｌｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎａｎｄｍｏｌｅｃｕｌａｒｂｉｏｌｏｇｙｍｅｔｈｏｄꎬａｎｄｔｈｅｃｏｎｔｒｏｌｅｆｆｅｃｔｗａｓｓｔｕｄｉｅｄｂｙｐｏｔｍｅｔｈｏｄ.Ｔｈｅｒｅ￣ｓｕｌｔｓｓｈｏｗｅｄｔｈａｔＦｕｓａｒｉｕｍｏｘｙｓｐｏｒｕｍｗａｓｔｈｅｐａｔｈｏｇｅｎｃａｕｓｉｎｇＣｈｉｎｅｓｅｃａｂｂａｇｅｒｏｏｔｒｏｔｉｎＪｉａｏｚｈｏｕｏｆＱｉｎｇｄ￣ａｏ.ＰｏｔｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｖｅｒｉｆｉｅｄｔｈａｔｔｈｅｃｏｎｔｒｏｌｅｆｆｅｃｔｓｏｆＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａｈａｒｚｉａｎｕｍＷＰａｎｄＢａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓＷＰｏｎＣｈｉｎｅｓｅｃａｂｂａｇｅｒｏｏｔｒｏｔｗｅｒｅ６６.３２％ａｎｄ６５.０２％ꎬｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙꎬａｎｄｔｈｅｙｃｏｕｌｄｂｅｕｓｅｄａｓｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌａｇｅｎｔｓｆｏｒｐｒｅｖｅｎｔｉｎｇａｎｄｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇＣｈｉｎｅｓｅｃａｂｂａｇｅｒｏｏｔｒｏｔ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ㊀ＣｈｉｎｅｓｅｃａｂｂａｇｅｒｏｏｔｒｏｔꎻＦｕｓａｒｉｕｍｏｘｙｓｐｏｒｕｍꎻＭｏｌｅｃｕｌａｒｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎꎻＢｉｏｌｏｇｉｃａｌｃｏｎｔｒｏｌ㊀㊀大白菜起源于中国ꎬ是我国第二大蔬菜ꎬ在均衡市场供应㊁稳定蔬菜价格等方面具有重要作用[１]ꎮ大白菜因其含有多种维生素㊁矿物质及纤维素而具有保健作用[２]ꎮ胶州大白菜为我国地理标志农产品ꎬ青岛常年种植面积约为全市蔬菜总面积的１６％ꎬ因其具有独特品质而深受人们喜爱[３－４]ꎮ但随着大白菜种植面积增大和复种指数提高ꎬ生产中常常受到多种有害生物的危害ꎬ如霜霉病[５]㊁黑斑病[６－７]及根肿病[８－９]等ꎬ对大白菜生产造成严重的经济损失ꎮ大白菜根腐病是由多种病原菌侵染引起的土传真菌病害ꎬ对白菜产量造成很大影响ꎮ常见的病原菌有瓜果腐霉菌(Ｐｙｔｈｉｕｍａｐｈａｎｉｄｅｒｍａ￣ｔｕｍ)[１０]㊁芸薹腐霉(Ｐｙｔｈｉｕｍｂｒａｓｓｉｃｕｍ)[１１]和多种镰刀菌(Ｆｕｓａｒｉｕｍｓｐｐ.)[１２]ꎮ明确病原菌种类对其防治具有十分重要的意义ꎮ本试验对山东青岛胶州大白菜主要产区的根腐病病原菌进行分离㊁鉴定ꎬ研究生物药剂对其防治效果ꎬ为其绿色防治提供科学依据ꎮ１㊀材料与方法１.１㊀试验材料供试病样:大白菜根腐病病样于２０１９年１０月在青岛胶州西安家沟村大白菜研究所基地采集ꎬ带回实验室进行病原分离ꎮ供试培养基:马铃薯葡萄糖琼脂(ＰＤＡ)培养基(马铃薯２００ｇꎬ葡萄糖２０ｇꎬ琼脂粉１５~２０ｇꎬ蒸馏水１０００ｍＬ)ꎮ供试试剂:ＤＮＡ提取试剂盒㊁ＤＮＡＭａｒｋｅｒ(１００~２０００ｂｐ)㊁引物ＩＴＳ１和ＩＴＳ４㊁引物ＴＥＦ１和ＴＥＦ２㊁ＴａｑＤＮＡ聚合酶㊁ｄＮＴＰ等均为上海生工生物工程(上海)股份有限公司产品ꎮ供试大白菜品种为 胶白一号 ꎬ种子由青岛胶州大白菜研究所提供ꎮ供试药剂:３亿ＣＦＵ/ｇ哈茨木霉菌可湿性粉剂㊁１００亿ＣＦＵ/ｇ枯草芽孢杆菌可湿性粉剂均为美国拜沃股份有限公司产品ꎮ１.２㊀试验方法１.２.１㊀大白菜根腐病病原菌的分离与纯化㊀采用组织分离法对大白菜根腐病病菌进行分离[１３]ꎮ取发病的大白菜根部病块ꎬ用７５％乙醇处理３０ｓ㊁无菌水冲洗３次后吸干水分置于ＰＤＡ平板上ꎬ再放入２８ħ恒温培养箱中ꎬ待出现菌落后进行纯化ꎬ４ħ保存备用ꎮ对大白菜根腐病样本进行多次病原菌分离共获得两种分离物ꎬ分别编号为ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２ꎮ１.２.２㊀大白菜根腐病病原菌的形态学观察㊀将分离到的菌株接种到ＰＤＡ培养基上ꎬ置于２８ħ下培养７ｄꎬ观察菌落特征ꎮ挑取适量病原菌菌丝制片镜检ꎬ观察其分生孢子形态ꎬ参照文献[１４－１５]中的方法对分离到的病原菌进行形态鉴定ꎮ１.２.３㊀大白菜根腐病病原菌的分子生物学鉴定㊀利用上海生工生物工程(上海)股份有限公司ＤＮＡ快速抽提试剂盒对分离的病原菌进行基因组ＤＮＡ提取ꎬ并以此为模板进行ＰＣＲ扩增ꎮ引物为ＩＴＳ１(５ᶄ－ＴＣＣＧＴＡＧＧＴＧＡＡＣＣＴＧＣＧＧ－３ᶄ和ＩＴＳ４(５ᶄ－ＴＣＣＴＣＣＧＣＴＴＡＴＴＧＡＴＡＴＧＣ－３ᶄ)[１６]㊁ＴＥＦ１(５ᶄ－ＡＴＧＧＧＴＡＡＧＧＡＲＧＡＣＡＡＧＡＣ－３ᶄ)和ＴＥＦ２(５ᶄ－ＧＧＡＲＧＴＡＣＣＡＧＴＳＡＴＣＡＴＧＴＴ－３ᶄ[１７]ꎮＰＣＲ产物由上海生工生物工程(上海)有限公司测序ꎮ将获得的序列进行ＢＬＡＳＴｎ比对ꎬ根据比对结果选择同源性较高的序列及标准菌株ꎬ采用ＵＰＧＭＡ法运用ＭＥＧＡ７.０软件构建系统发育树ꎬ确定其分类地位ꎮ１.２.４㊀大白菜根腐病病原菌的致病性测定㊀采用土壤接种法进行致病性测定[１３]ꎮ先将分离到的菌株配成１ˑ１０７个/ｍＬ的孢子液ꎬ按每株５ｍＬ灌注到健康的大白菜幼苗根部ꎬ共接种５株ꎬ以无菌水为对照ꎬ２周后观察幼苗发病情况ꎮ对发病幼苗进行组织分离ꎬ与接种的菌株比对鉴定ꎮ１.２.５㊀大白菜根腐病的生物防治㊀采用盆栽法测定生防菌剂对大白菜根腐病的防治效果[１８]ꎮ用麦粒培养基分别培养ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２菌株ꎮ待其产孢后ꎬ用无菌水配成孢子悬浮液ꎮ采用灌根法按每杯接入１０ｍＬ浓度１０５ＣＦＵ/ｇ土孢子液(ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２各５ｍＬ)培育１ｄ后ꎬ将培育至２片真叶的白菜幼苗移栽至接种致病菌的小杯中(１株/杯)ꎬ用微生物杀菌剂哈茨木霉菌ＷＰ２００倍液和枯草芽孢杆菌ＷＰ５００倍液按每杯１０ｍＬ灌根ꎬ同时设不接枯萎病菌和只接枯萎病菌为阴性对照和阳性对照ꎮ每处理１０株ꎬ重复３次ꎮ正常管理ꎬ２０ｄ后调查各处理白菜幼苗的株高㊁根长㊁鲜重及发病情况并计算病情指数和防治效果[１９－２０]ꎮ病情指数(％)＝Σ(各级病株数ˑ相对级数值)/(调查总株数ˑ最高病级)ˑ１００ꎮ防治效果(％)＝(空白对照病情指数－处理病情指数)/空白对照病情指数ˑ１００ꎮ１.３㊀数据分析试验数据采用ＳＰＳＳ１７.０软件进行统计分析ꎬ用Ｄｕｎｃａｎ ｓ新复极差法进行差异显著性检验ꎮ２㊀结果与分析２.１㊀大白菜根腐病的田间发病症状大白菜根腐病苗期和成株期均可发病ꎮ发病初期ꎬ生长缓慢ꎬ叶片褪绿ꎬ后期整株萎蔫(图１Ａ)ꎬ似缺水状ꎮ病株与未发病株相比ꎬ须根少至无(图１Ｂ)ꎮ剖开根部ꎬ维管束变褐(图１Ｃ)ꎮ９４１㊀第９期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀宋雨萌ꎬ等:青岛胶州大白菜根腐病病原菌鉴定及其生物防治Ａ:田间症状ꎻＢ:根部症状ꎻＣ:维管束症状ꎮ图１㊀大白菜根腐病症状２.２㊀大白菜根腐病病原菌形态学鉴定菌株ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２接种到ＰＤＡ平板２８ħ培养７ｄ后ꎬ菌落直径均为４５ｍｍꎮＢＣＧＦ１菌落突起絮状ꎬ菌丝白色质密(图２Ａ)ꎻＢＣＧＦ２菌落浅粉略带紫色ꎬ菌丝较稀疏(图２Ｂ)ꎮ镜检可观察到小型㊁大型分生孢子和厚垣孢子ꎮ其中ꎬ大型分生孢子为弯月形或镰刀形ꎬ２~９个隔膜ꎬ多数为３个隔膜ꎬ大小为(２０.６~３６.５)μｍˑ(２.５~５.８)μｍ(ｎ＝２０)ꎬ见图２Ｃ㊁Ｄꎻ小型分生孢子多为单细胞ꎬ形状有卵形㊁椭圆形㊁肾形等ꎬ大小为(４.３~１０.２)μｍˑ(２.４~４.５)μｍ(ｎ＝２０)ꎮ分生孢子着生于从菌丝伸出的产孢细胞上(图２Ｅ㊁Ｆ)ꎮ厚垣孢子为圆形或卵圆形ꎬ壁光滑或有突起ꎬ绝大多数无色㊁少色ꎬ直径为３.５~９.８μｍꎮ根据病原菌的形态特征并结合相关文献[１４－１５]ꎬ初步鉴定菌株ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２均为镰刀菌(Ｆｕｓａｒｉｕｍｓｐｐ.)ꎮＡ㊁Ｃ㊁Ｅ分别为ＢＣＧＦ１的菌落㊁镜检和分生孢子形态ꎬＢ㊁Ｄ㊁Ｆ分别为ＢＣＧＦ２的菌落㊁镜检和分生孢子形态ꎮ图２㊀大白菜根腐病病原菌菌落与分生孢子形态特征０５１山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５５卷㊀２.３㊀大白菜根腐病病原菌分子生物学鉴定经测序ꎬ菌株ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２的ＩＴＳ序列分别为５４７ｂｐ和５４８ｂｐꎮ根据ＮＣＢＩ中ＢＬＡＳＴｎ比对结果ꎬ菌株ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２的ＩＴＳ序列与尖孢镰刀菌(Ｆｕｓａｒｉｕｍｏｘｙｓｐｏｒｕｍꎬ登录号为ＫＪ７７４０４１.１和ＭＦ４６０３６２.１)的序列相似度均为１００.００％ꎮ经测序ꎬ菌株ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２的ｔｅｆ序列分别为６５６ｂｐ和６７６ｂｐꎮ菌株ＢＣＧＦ１的ｔｅｆ序列与Ｆ.ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ(登录号为ＨＥ８０１５６５.１)的序列相似度为９９.３６％ꎬ菌株ＢＣＧＦ２的ｔｅｆ序列与Ｆ.ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ(登录号为ＨＥ８０１５６５.１)的序列相似度为９９.７０％ꎮ根据比对结果ꎬ下载与目标菌株相关的同源序列ꎬ利用Ｍｅｇａ７.０软件构建系统发育树ꎮ系统发育分析结果表明ꎬ菌株ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２的ＩＴＳ序列与尖孢镰刀菌(Ｆ.ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ)在同一分支上ꎬ具有较高同源性ꎬ相似度１００％(图３Ａ)ꎮ菌株ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２的ｔｅｆ序列与尖孢镰刀菌Ｆ.ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ在同一分支上ꎬ具有较高同源性ꎬ相似度９９.３６％(图３Ｂ)ꎮ结合形态学特征ꎬ确定菌株ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２属于尖孢镰刀菌(Ｆ.ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ)ꎮＡ为ＩＴＳ序列ꎬＢ为ｔｅｆ序列ꎮ图３㊀菌株ＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２的系统发育树２.４㊀大白菜根腐病病原菌致病性测定采用土壤接种法进行致病性测定ꎮ大白菜栽培方式为草炭蛭石基质盆栽ꎮ接种５ｍＬ浓度１ˑ１０７个/ｍＬ的孢子菌悬液ꎬ以灌入等量无菌水为对照ꎮ接种７ｄ后开始发病ꎬＢＣＧＦ１和ＢＣＧＦ２均使大白菜幼苗发病ꎮ与未接菌植株相比较ꎬ初期表现为叶片萎蔫发黄ꎬ生长缓慢ꎬ严重的枯萎死亡(图４Ａ㊁Ｂ)ꎮ拔出还未死亡的病苗发现根部受害明显ꎬ根部发黑ꎬ须根很少(图４Ｃ)ꎮ未接菌植株根部ꎬ须根多且未变色(图４Ｄ)ꎮ发病症状与田间大白菜萎蔫病发病症状一致ꎮ从发病部位重新分离病原菌ꎬ得到的分离物与接种菌株形态学和基因序列相同ꎬ符合柯赫氏法则ꎬ证明所接菌株为大白菜根腐病的致病菌ꎮ２.５㊀大白菜根腐病的生物防治盆栽试验结果表明ꎬ生防菌剂对大白菜根腐病均有一定的防治效果ꎮ哈茨木霉菌和枯草芽孢杆菌ＷＰ灌根处理２０ｄ后ꎬ病情指数分别为３２.５６％和３３.８２％ꎬ均显著低于病原菌接菌对照处理的９６.６７％ꎬ清水对照未发病ꎮ哈茨木霉菌ＷＰ和枯草芽孢杆菌ＷＰ的防治效果分别为６６.３２％和６５.０２％(表１)ꎮ由此表明ꎬ上述两种生防菌剂对大白菜根腐病具有较好的防治效果ꎮ另外ꎬ经生防菌剂处理的大白菜幼苗鲜重㊁株高和根长与接种根腐病菌大白菜的幼苗差异显著ꎬ尤其是枯草芽孢杆菌ＷＰ对大白菜生长有一定的促生作用ꎬ其鲜重与未接菌幼苗和哈茨木霉菌ＷＰ处理差异显著ꎮ㊀㊀表１㊀生防菌剂对盆栽大白菜根腐病的防治效果生防菌剂病情指数/％相对防效/％株高/ｃｍ根长/ｃｍ鲜重/ｇ枯草芽孢杆菌ＷＰ５００ˑ３３.８２ｂ６５.０２６.８９ａ４.８６ａ１.０６ａ哈茨木霉ＷＰ２００ˑ３２.５６ｂ６６.３２６.０８ａ４.４７ａ０.７６ｂ接菌对照９６.６７ａ２.７８ｂ１.８４ｂ０.１４ｃ空白清水０.００ｃ６.４７ａ４.８７ａ０.７８ｂ㊀㊀注:同列数据后不同小写字母表示５％水平差异显著ꎮ１５１㊀第９期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀宋雨萌ꎬ等:青岛胶州大白菜根腐病病原菌鉴定及其生物防治Ａ为ＢＣＧＦ１的致病性ꎬＢ为ＢＣＧＦ２的致病性ꎬＣ为病株的根ꎬＤ为未发病植株的根ꎮ图４㊀土壤接种法测定苗期根腐病菌致病性３㊀讨论与结论本试验对分离自大白菜根腐病植株的病原菌进行显微形态学观察㊁分子生物学鉴定㊁接种验证和致病性测定ꎬ明确青岛胶州大白菜根腐病由尖孢镰孢菌(Ｆ.ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ)侵染引起ꎮ这一结论与闫文雪等报道的结果相符ꎬ而与山东济南及青岛白菜萎蔫病和根腐病是由瓜果腐霉菌(Ｐ.ａｐｈａｎｉ￣ｄｅｒｍａｔｕｍ)和芸薹腐霉(Ｐ.ｂｒａｓｓｉｃｕｍ)侵染引起的结论不同[１０－１１]ꎮ本试验结果对于该病害的防控具有十分重要的指导意义ꎮ镰刀菌是一种能够危害多种作物的病原真菌ꎮ研究发现ꎬ镰刀菌可侵染多种作物导致其发生枯萎死亡[２１]ꎮ枯萎病是大白菜生产中的一种重大病害ꎬ主要危害根部维管束组织ꎬ且产生真菌毒素造成整株枯萎死亡ꎬ严重影响产量和品质ꎬ严重制约着大白菜产业发展ꎮ目前生产上对枯萎病主要还是采用化学防治ꎬ但由于化学杀菌剂使用所致作物抗药性及环境污染等问题ꎬ生物菌剂愈来愈受到人们的关注[２２－２３]ꎬ其以诸多优势而在病害防治中被广泛应用ꎮ本试验结果表明ꎬ哈茨木霉和枯草芽孢杆菌ＷＰ对大白菜枯萎病具有较好的防治效果ꎬ相对防效分别为６６.３２％和６５.０２％ꎮ哈茨木霉和枯草芽孢杆菌ＷＰ处理的大白菜幼苗鲜重㊁株高和根长与接菌对照相比显著增加ꎬ枯草芽孢杆菌ＷＰ对大白菜鲜重的促生作用更优ꎮ该结论可为大白菜根腐病的绿色防控提供重要参考ꎮ参㊀考㊀文㊀献:[１]㊀张凤兰ꎬ于拴仓ꎬ余阳俊ꎬ等. 十三五 我国大白菜遗传育种研究进展[Ｊ].中国蔬菜ꎬ２０２１(１):２２－３２. 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哈茨木霉菌根部型根部病害防治专家/保根抗重茬哈茨木霉菌根部型是由美国拜沃股份有限公司采用世界先进的细胞质融合技术生产的活体微生物杀菌剂，主要用于防治蔬菜、中药材、水果、花卉等植物的根部病害和土传病害，同时可以解决因连作引起的重茬问题。
有效成分：哈茨木霉菌菌株T-22防治对象：立枯病、猝倒病、根腐病、菌核病、枯萎病、白绢病等根部病害、土传病害以及连作引起的重茬问题。
作用机理：竞争作用：哈茨木霉菌进入土壤24小时后能迅速吸附到作物根部进行繁殖，T22的繁殖速度很快，是镰刀菌等病原菌的几倍以上，施到作物根部会快速繁殖，菌丝迅速把作物根部缠绕起来在根部形成保护层，把作物根部保护起来免受病原的侵入，并将附近病原菌寄生杀死。
重寄生作用：哈茨木霉菌能够对病原菌进行寄生，从病原菌菌丝中吸取营养，并杀死病原菌。
抗生素作用：哈茨木霉菌能够分泌抗生素和酶类，抑制病原菌生长。
植物生长调节作用：哈茨木霉菌与植物为共生关系，它能为根系提供生长所需营养和良好的生长环境，进而促进作物生长，提高作物产量。
诱导植物抗病性，启动植物的防御反应：哈茨木霉菌能够诱导寄主植物体内产生一系列的防卫反应，激发植物的防御体系，提高抗病性。
产品特性：Ø 发病前或发病初期使用，药效持续时间3个月。
Ø 在植物根围生长并形成“保护罩”，可有效杀死病原菌。
Ø 与植物根系共生，为植物提供生长所需营养，促进植物根系生长，增产效果明显。
Ø 作用方式复杂，不会产生抗性。
Ø 安全间隔期0天，美国有机产品认证（OMRI）。
Ø 可与化学药剂混合使用，不影响防治效果。
Ø 对环境耐受性强，可用于高盐碱地。
注意事项：本品为微生物杀菌剂，主要作用于根部，故施药时务必保证药液能充分浸到植物根系。
本品最佳使用时期为苗期，植物根系发病严重时与化学农药混合使用效果更加。
推荐使用方法与剂量：作物用药时期使用方法使用剂量番茄、黄瓜、辣椒等茄菜类苗期苗床喷淋每平米2-4克（每袋用于25-50平方米）移栽后灌根2000-3000倍，每株100-200毫升药液芹菜、香菜、菠菜等叶菜类苗期苗床喷淋每平米2-4克（温室苗床）喷雾后漫灌亩用量200克（大田）移栽时蘸根20-50倍（每袋兑水2-5公斤水）移栽后喷雾后漫灌亩用量200克（大田）西瓜、草莓、等藤本水果类苗期苗床喷淋每平米2-4克移栽后灌根1500-2000倍，每株200-300毫升药液蓝莓、龙柏、杉树等木本苗木类扦插时插条蘸根或直接浸入干粉中20-50倍（蘸根）移栽时灌根2000-3000倍，每株200-500毫升药液天南星、人参、三七、白术、贝母等中药材直播出苗后喷雾后漫灌亩用量200-300克移栽时蘸根或浸干粉20倍（蘸根）康乃馨、百合、兰花等花卉播种前种球浸泡（种球繁殖）20-50倍苗期苗床喷淋每平米2-4克移栽后灌根亩用量200-300克。
六种杀菌剂对哈茨木霉菌丝生长影响研究作者：曹秀荣董照锋任岗熊潇垚鹏徐艳来源：《西北园艺·蔬菜》2022年第04期摘要哈茨木霉极易侵染香菇、平菇、双孢菇、杏鲍菇、茶树菇、毛木耳、灵芝等多种食用菌的培养基质、菌种、菌丝和子实体，造成减产甚至绝收。
采用菌丝生长速率法分别测定戊唑醇、枯草芽孢杆菌、四霉素、春雷霉素、多抗霉素、多菌灵对哈茨木霉菌丝的抑制作用。
结果表明，戊唑醇抑制作用最强，其次是枯草芽孢杆菌、多菌灵和四霉素，春雷霉素和多抗霉素抑制作用相对较弱。
故而戊唑醇和枯草芽孢杆菌不能与哈茨木霉混合使用，多菌灵和四霉素不建议与哈茨木霉混合使用，春雷霉素和多抗霉素可与哈茨木霉联合使用以增强防效。
戊唑醇、枯草芽孢杆菌、多菌灵和四霉素对哈茨木霉抑制作用明显，可就其对木霉病害防治展开进一步研究。
关键词杀菌剂;哈茨木霉;抑菌率木霉（Trichoderma spp.）是广泛分布于土壤、植物残体、植物根围和叶围、海洋以及空气等环境中的一类真菌，对多种细菌和病原真菌有拮抗作用，已被作为生防制剂广泛应用于农业生产。
但木霉也因具有适应性强、繁殖速度快、为害期长等特性，极易侵染香菇、平菇、双孢菇、杏鲍菇、茶树菇、毛木耳和灵芝等多种食用菌的培养基质、菌种、菌丝和子实体，造成减产甚至绝收，为食用菌生产中的第一大竞争性杂菌。
其中，绿色木霉（Trichoderma viride）与哈茨木霉（Trichoderma harzianum）是相对优势菌种。
我们研究了戊唑醇、枯草芽孢杆菌、四霉素、春雷霉素、多抗霉素、多菌灵6种杀菌剂对哈茨木霉菌丝生长的影响，以期为哈茨木霉作为生防菌应用于农业生产时如何协调与生物防治、化学防治的矛盾，以及其作为食用菌生产中的竞争性杂菌时如何选择防治药剂提供参考。
1 材料与方法1.1 试验材料1）供试药剂。
430 g/L戊唑醇悬浮剂，盐城利民农化有限公司生产;100亿芽孢/g枯草芽孢杆菌粉剂，陕西绿顿作物科技有限公司生产;0.15%四霉素水剂，辽宁微科生物工程股份有限公司生产;2%春雷霉素水剂，绩溪农华生物科技有限公司生产;3%多抗霉素水剂，绩溪农华生物科技有限公司生产;40%多菌灵悬浮剂，江苏剑牌农化股份有限公司。
哈茨木霉菌养殖用途哈茨木霉菌是一种常见而重要的霉菌，它具有广泛的应用价值。
以下是该菌的一些养殖用途：1. 食品加工：哈茨木霉菌可以用于发酵豆制品、面食、饮料、酱料等食品的生产过程中。
它具有优良的蛋白质水解能力，能够将复杂的蛋白质分解为易于人体吸收的氨基酸和小肽。
此外，哈茨木霉菌还能产生多种酶，如淀粉酶、纤维素酶、脂肪酶等，可以提高食品的品质、营养成分和口感。
2. 生物肥料：哈茨木霉菌在分解有机废弃物、农林剩余物等方面有着重要的作用。
它可以有效分解植物纤维素和木质素，将废弃物转化为有机肥料，提高土壤的肥力，促进植物的生长。
此外，哈茨木霉菌还可以合成多种植物生长所需的维生素和植物激素，对植物的营养吸收和生长发育有促进作用。
3. 生物杀虫剂：哈茨木霉菌能分解多种有害昆虫的外壳和内脏，对害虫起到有效的控制作用。
其产生的酶可以溶解昆虫外壳的角蛋白和几丁质，破坏昆虫的保护壳，使其死亡。
此外，哈茨木霉菌还能分解害虫体内的有毒物质，减少其对农作物的损害。
4. 环境修复：哈茨木霉菌具有降解有机污染物的能力，可以用于环境修复和废物处理。
它可以分解苯、甲苯、二苯甲酮等有机化合物，将有机污染物转化为无机物或无害的物质，减少对环境的污染。
5. 药物生产：哈茨木霉菌可以合成多种药物和生物活性化合物。
例如，它可以产生青霉素、庆大霉素等抗生素，用于药物的生产和治疗感染性疾病。
此外，哈茨木霉菌还可以产生一些具有抗氧化、抗肿瘤、降血压等活性的化合物，用于医药和保健品的研发。
6. 生物能源：哈茨木霉菌可以分解废弃物和植物纤维素，产生乙醇、生物柴油等可再生能源。
利用菌生产的生物能源，可以减少对化石燃料的依赖，降低碳排放，保护环境。
在以上这些应用领域中，哈茨木霉菌的养殖技术和筛选优良菌株的研究成为关键，目前已有一些相关的研究正在进行中。
随着科学技术的发展和深入研究的进行，相信哈茨木霉菌的养殖用途还将进一步扩展，并为我们的生活和产业带来更多的益处。
哈茨木霉菌对大白菜的促生作用及对根肿病的防治效果作者：马赛宋雨萌罗兰来源：《山东农业科学》2020年第05期摘要：为明确哈茨木霉菌对大白菜的促生作用及对根肿病的防治效果，本试验采用盆栽法，分别设置不同浓度的哈茨木霉菌（0.75×106、1.50×106、3.00×106 CFU/mL）、50%氟啶胺悬浮剂（对照药剂，250 mg/L）、清水（空白对照，CK）处理，测定不同处理对白菜根肿病的防治效果及对大白菜生长的影响。
结果表明，经哈茨木霉菌处理的大白菜出苗率与CK无显著差异，根长、单株鲜重均显著高于CK，株高明显高于CK。
哈茨木霉菌浓度为1.50×106、3.00×106 CFU/mL时，对白菜根肿病的病株防效分别为70.80%、71.11%，病指防效分别为84.95%、85.26%，与对照药剂差异不显著;哈茨木霉菌浓度为0.75×106 CFU/mL时，对白菜根肿病的病株和病指防效分别为50.47%、62.49%，显著低于其它处理。
综上，哈茨木霉菌对大白菜具有防病和促生作用，建议使用浓度为1.5×106 CFU/mL以上。
关键词：哈茨木霉菌;白菜根腫病;防治效果;促生作用中图分类号：S482.2+92 文献标识号：A 文章编号：1001-4942（2020）05-0110-03Abstract Growth-promotion and control effect of Trichoderma harzianum WP against Chinese cabbage clubroot were studied through pot test. The treatments were designed as 0.75×106，1.50×106 and 3.00×106 CFU/mL of Trichoderma harzianum WP， 250 mg/L of fluazinam SP and water （CK）. The results showed that germination rate of Chinese cabbage under the treatments of T. harzianum WP was not different from that of CK; root length and fresh weight per plant were significantly higher， and plant height was obviously higher compared CK. The stem control effects of T. harzianum WP to Chinese cabbage clubroot were 70.80% and 71.11%， and the control effects based on disease index were 84.95% and 85.26% at the concentration of 1.50×106 and 3.00×106CFU/mL， respectively， which were not significantly different from fluazidime. The control effects of 0.75×106 CFU/mL based on plants and diseased index were 50.47% and 62.49%， which were significantly lower compared the other treatments. In conclusion， T. harzianum had better control effects against Chinese cabbage clubroot and could promote the growth of Chinese cabbage. The concentration over 1.5×106 CFU/mL was recommended.Keywords Trichoderma harzianum; Chinese cabbage clubroot; Control effect; Growth-promotion白菜根肿病是由芸薹根肿菌（Plasmodiophora brassicae）侵染引起的一种土传真菌病害[1]，在我国西南、东北和华东地区发生较为严重，给十字花科蔬菜生产造成了严重威胁[2]。
白菜根肿病菌为专性寄生菌，传染性强、传播速度快、传播途径多、防治难度高。
其休眠孢子具有极强的抗逆性，可以在土壤中存活10年左右[3]，给病害防控造成极大困难。
目前，采用轮作和选用抗病品种等措施不能有效防治该病害，大白菜生产中仍以化学药剂防治为主，这不仅导致病原菌抗药性增强，也对环境、人类及动物健康带来潜在风险。
开发和利用微生物制剂和生物农药是进行绿色防治的有效方法，也是提升农产品质量的重要手段。
木霉菌（Trichoderma）是一类在自然界中分布广泛的生防真菌，是土壤微生物的重要群落之一，常见于土壤、植物残体、植物根围和叶围等环境中[4，5]。
木霉菌有哈茨木霉、康宁木霉、深绿木霉等种类。
研究发现，木霉菌能够显著提高马铃薯、烟草和红萝卜的发芽率、出苗率及干重，且对蔬菜具有促生效应[6];并且对水稻纹枯病、辣椒疫病、番茄立枯病、猝倒病和灰霉病均具有较好的防治效果[7-10]，但目前尚未见其用于根肿病防治的报道。
本试验采用盆栽法，研究哈茨木霉菌对大白菜根肿病的防治效果，以期为其应用于大白菜生产提供参考。
1 材料与方法1.1 试验材料供试大白菜品种为精品早熟5号，市场购买。
供试土样采自山东省青岛市胶州张应镇西安家沟村白菜根肿病严重发生地块。
土壤理化性状：有机质含量15.80 g/kg、碱解氮63.12 mg/kg、有效磷23.19 mg/kg、速效钾69.40 mg/kg，pH值为5.7。
1.2 试验药剂3×108 CFU/g哈茨木霉菌可湿性粉剂（以下简称哈茨木霉菌WP），美国拜沃股份有限公司产品;50%氟啶胺悬浮剂（以下简称氟啶胺SC），日本石原产业株式会社产品。
1.3 试验设计与方法试验设计不同浓度（0.75×106、1.50×106、3.00×106 CFU/mL）的哈茨木霉菌WP，50%氟啶胺SC（使用浓度为250 mg/L），以及清水空白对照（CK）处理。
采用盆栽法，将采自根肿病严重发生地块土样装盆（直径20 cm），每盆播种15粒大白菜种子，各处理播前将200 mL 药剂拌入盆内0～5 cm土层中，剩余药剂（400 mL）于播后分2次灌入盆中，每隔7 d灌药一次。
于末次灌药后10 d统计出苗数，计算出苗率，测定株高、根长、鲜重等指标[12]，并调查植株发病情况，计算发病率、病情指数及防效。
参照孔宪迪等[11]的分级标准，结合实际情况可将根肿病分为4级：0级，根系生長正常，根部无任何肿瘤;1级，主根肿大，肿大部分直径<0.5 cm;2级，主根肿大，0.5 cm≤肿大部分直径<1.0 cm;3级，主根肿大，1.0 cm≤肿大部分直径<1.5 cm;4级，主根肿大，肿大部分直径≥1.5 cm。
发病率（%）=发病株数/调查总数×100;发病指数=∑（各级病株数×相对级数值）/（调查总株数×4）×100 ;防效（%）=（对照病指或发病率-处理病指或发病率）/对照病指或发病率×100。
1.4 数据分析采用 Microsoft Excel 2007 和 DPS 6.5 软件进行数据处理及统计分析。
利用Duncan’s 新复极差法进行方差分析。
2 结果与分析2.1 哈茨木霉菌对大白菜的促生作用由表1可以看出，与CK相比，哈茨木霉菌WP处理的大白菜出苗率均无显著差异。
但哈茨木霉菌WP处理的大白菜根长、单株鲜重均显著高于CK，株高也明显高于CK。
氟啶胺SC 处理的大白菜出苗率、株高、根长、单株鲜重均显著低于CK。
表明哈茨木霉菌对大白菜有明显的促生效应，氟啶胺则抑制大白菜生长。
2.2 哈茨木霉菌对大白菜根肿病的防效由表2可以看出，当哈茨木霉菌WP浓度为1.50×106、3.00×106 CFU/mL时，病株防效分别为70.80%、71.11%，病指防效分别为84.95%、85.26%，与氟啶胺SC的防效相当，无显著差异。
而哈茨木霉菌WP浓度为0.75×106 CFU/mL的防效与氟啶胺SC差异显著。
表明，较高浓度的哈茨木霉菌对大白菜根肿病有较好的防治效果。
3 讨论与结论白菜根肿病是大白菜上的重要病害，严重影响大白菜的产量与质量。
绿色防控措施是提高蔬菜品质的主要措施。
木霉菌是一种重要的生防菌，对多种植物病原细菌和真菌具有拮抗作用。
哈茨木霉菌对番茄上的灰霉病、立枯病、猝倒病等也有良好的防治效果[9，10]。
本试验结果表明，哈茨木霉菌对大白菜生长具有良好的促进作用，经过拌土和灌根能较好防治白菜根肿病发生，使用浓度在1.50×106 CFU/mL以上为宜。
此外，本次试验扩大了哈茨木霉菌WP的应用范围，并发现氟啶胺SC对大白菜的出苗率及生长均有一定的抑制作用，故不宜在育苗期使用，这与刘刚[13]的研究结果相似。
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