植物细胞色素P450基因的异源表达系统研究进展

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型的氧化反应, 在植 物生命活动中有重要功能 , 其研究一 直受到重视 。 自 1990 年第一个植物 P450 基因成功克隆以来, 到 2002 年年底 , 已有 600 多个 P450 基因被克隆 , 有 100 多个基因在细 菌、 酵母、 杆状病毒昆虫细胞等异源表达系统中成功表达并鉴定了功能 。拟对植物 P450 的大肠 杆菌 、 酵母 、 杆状病毒昆虫细胞表达系统的特点进行比较, 对在各表达系统中成功表达并进行了 功能鉴定的植物 P450 进行归纳, 并对目前植物 P450 异源表达的现状和应用进行概述 。 关键词 细胞色素 P450 氧化酶 酵母表达系统 大肠杆菌表达系统 杆状病毒介导的昆虫细 胞表达系统 细胞色素 P450 氧化酶( 简称 P450) 是一类具有 多种催化功能含血红素的氧化酶系, 植物 P450 在 植物体内具有重要的功能 , 可以催化许多初级和次 级代谢反应。反应底物包括脂类、 苯丙烷类、 黄酮 类、 萜类、 生物碱类、 生氰糖苷等内源性化合物以及 包括农药、 除草剂等在内的外源物质。由于植物组 织中存在许多干扰 P450 研究的因素 , 如叶绿体和 其他血红素蛋白光吸收的干扰 , P450 类型较多而 相对含量较少, 其纯化十分困难, 使植物 P450 的分 离及重组这些膜结合酶系的工作进展有限。早期 植物 P450 反应大多是根据光可逆转 CO 抑制以及 诱导剂与抑制 剂辅助实验来 鉴定, 只有 少数植物 P450 的活性在分子水平上得到了证明。随着分子 生物学的发展 , 克隆 P450 基因并测定它们的生物 化学功能已成为植物 P450 研究的核心。目前, 植 物 P450 基因克隆及表达研究进展很快, 数据库不 断更新 , 截至 2002 年底 , 已定名的植物 P450 约有 600 多个 , 分属于 54 个家族 ( http: drnelson. utmem. edu cytochrome P450. html) 。 当某一全长未知功能的 P450 cDNA 被克隆后, 一个适合该 P450 cDNA 表达系统的建立就成为鉴 定 P450 的重要条件。目前, 具有酶催化活性的植 物 P450 蛋白已经成功地在细菌、 酵母和杆状病毒 介导的昆虫细胞表达系统中得到表达。现以苎烯 3 羟化酶( CYP71D12) 和苎烯 6 羟化酶 ( CYP71D18) 为例 , 谈谈这 3 种表达系统的使用。 薄荷属环化单萜类有较大商业价值 , 其链烯前 体 4S 苎烯的立体选择性羟化反应是由苎烯羟化酶 催化形成的。苎烯 6 羟化酶最先从留兰香油腺微 粒体中纯化得到, 根据该酶的部分氨基酸序列设计 合成引物克隆得到 500bp 左右的核苷杆状病毒为载体将其导入昆虫 Sf 9 细 胞进行功能表达研究, 表达产物被证实是 C6 羟化 酶。表达系统进行功 能研究后证实其表达产物为 C3 羟化酶。氨基酸序 列分析推断 C6 羟化酶与 C3 羟化酶都是细胞色素 P450 单加氧酶 , 均有一个典型的氨基 末端膜结合 域, 与微粒体蛋白的天然定位一致。重组羟化酶及 其编码基因的研究结果有助于正确理解细胞色素 P450 蛋白与底物的 结合催化, 构成了 一个分析细 胞色素 P450 蛋白结构 功能关系的模式系统 。 杆状病毒介导的昆虫细胞虽然适于 P450 苎烯 羟化酶 cDNA 的表达和功能鉴定, 但该系统比较繁 琐, 且 蛋 白 质 表 达 水 平 较 低。 此 后 不 久, Haudenschild 等建 立了 相应 的大 肠杆菌 和酵 母系
[ 1]
收稿日期 : 2003 03 25 目 ( 2001AA234021)
修回日期 : 2003 05 14
* 国家自然科学基金资助项目 ( 20172071) , 国 家 863 计划资助项 * * 通讯作者 , 电子信箱 : chengkd@ imm. ac. cn
第7 期

等 : 植物细胞色素 P450 基因的异源表达系统研究进展
[ 4]
1
酵母表达系统
目前 , 在异源表达系统中表达并得到功能鉴定
的 P450 蛋白约有 100 个 , 包括多个植物 P450 家族, 有 50 个以上的植物 P450 成功地在酵母系统中表 达并进行了功能鉴定 , 其中第一个成功在酵母系统 表达的植物细胞色素 P450 是 CYP71A1 。表 1 汇 集了目前已发表的在酵母中成功表达的例子。 植物 P450 在酵母系统中的表达水平存在很大 的差异 , 表达水平差异的主要原因可能与 P450 酶 的稳定性不同及载体 有关。如 cDNA 的非翻译区 可能抑制转录和翻译。在许多可供选择的不同系 列载体中如 PYeDP, PGY, PYES 等 , PYeDP 系列是 最常用的植物 P450 酵母表达载体 , 可产生高表达 的 P450 蛋白。这一系列载体有的采用磷酸甘油激 酶的组成型启动子, 有的采用 GAL10 CYC1 半乳糖 可诱导启动子, 它可通过改变介质中葡萄糖和半乳 糖的量来调控 P450 蛋白的表达水平。在植物 P450 表达中广泛使用的是酵母株 W( N) 及其系列 , 也有 使用 AH22 株进行 表达。这些株系的 差别主要在 [ 4] 于标记和突变有所不同 。 因酵母内源性 CPR 可以支持电子向植物 P450 传送, 酵母表达系统本身可望实现植物 P450 的催
中 第 23 卷第 7 期
国 生




志 2003 年 7 月
CHINA BIOTECHNOLOGY
植物细胞色素 P450 基因的异源表达系统研究进展
涂 朱 平 程克棣
** 北京 100050) ( 中国医学科学院中国协和医科大学药物研究所 卫生部天然药物生物合成重点实验室
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摘要
细胞色素 P450 氧化酶是一类具有多种催化功能含血红素的氧化酶系 。由于参与多种类[ 3]源自34中国 生





第 23 卷
表 1 在酵母表达系统成功实 现功能鉴定的植物 P450
P450 亚家族 CYP51 CYP71A1 CYP71A10 CYP71A11 CYP71B7 CYP71C1 CYP71C2 CYP71C3 CYP71C4 CYP71D12 CYP71D18 CYP71D20 CYP73A1 CYP73A3 CYP73A5 CYP73A10 CYP73A11 CYP73A15 CYP73A30 CYP73A31 CYP75A1 CYP76B1 CYP76B6 CYP78A1 CYP79B2 CYP81B1 CYP81B2 CYP84A1 CYP85A1 CYP86A1 CYP88A1 CYP93A1 CYP93B1 CYP93B2 CYP93B6 CYP93C2 CYP94A1 CYP94A5 CYP98A3 CYP98A6 CYP701A3 CYP725A1 催化活性 酶的名称 obtusifoliol 14 脱甲基酶 对 氯 N 甲基苯胺 脱甲基酶 苯基脲类羟化酶 N 脱甲基酶 苯基脲类羟化酶 N 脱甲基酶 7 乙氧香豆素或 7 乙氧基试卤灵脱乙基酶 HBOA 合酶 吲哚灵 2 one 羟化酶 HBOA N 羟化酶 吲哚灵 2 one 合酶 ( ) 4S 苎烯 3 羟化酶 ( - ) 4S 苎烯 6 羟化酶 5 表 马兜玲烯 1, 3 双氧酶 反式肉桂酸 4 羟化酶 反式肉桂酸 4 羟化酶 反式肉桂酸 4 羟化酶 反式肉桂酸 4 羟化酶 反式肉桂酸 4 羟化酶 反式肉桂酸 4 羟化酶 反式肉桂酸 4 羟化酶 反式肉桂酸 4 羟化酶 类黄酮 3 , 5 羟化酶 7 乙氧香豆素脱乙基酶 牛儿醇 10 羟化酶 月桂酸 12 羟化酶 转换色氨酸为吲哚 3 乙醛肟 脂肪酸链内羟化酶 参与绿麦隆的代谢 阿魏酸 5 羟化酶 油菜类固醇 6 氧化酶 脂肪酸 羟化酶 ( C16 ) 植物种名 Triticum aestivum Persea ameri cana Glyci ne max Ni coti ana tabacum Arabidopsis thali ana Zea mays Zea mays Zea mays Zea mays M entha piperita M entha spicat a Ni coti ana tabacum H elianthus tuberosus Medicago sativa Arabidopsis thali ana Petroseli num crispum Glyci ne max Phasedus vulgaris Li thosperum erythrorhizon Li thosperum erythrorhizon Petunia hybrida H elianthus tuberosus Cantharanthus roseus Zea mays Arabidopsis thali ana H elianthus tuberosus Ni coti ana tabacum Arabidopsis thali ana Lycopersicon esculentum Arabidopsis thali ana Arabidopsis thali ana Glyci ne max Glycyrrihiza echinata Gerbera hybrids Glyci ne max Glycyrrihiza echinata Vicia sativa Ni coti ana tabacum Arabidopsis thali ana Li thosperum erythrorhizon Arabidopsis thali ana Taxus cus pidata 羟化酶 ( C18 ) 羟化酶 ( C18 ) 参考文献 Biochem Biophys Res Commun, 1997, 130( 2) : 381~ 385 Plant Physiol , 1992, 100: 1976~ 1980 PNAS , 1999, 96: 1750~ 1755 Plant Biotech, 1998, 15( 4) : 173~ 176 Arch Biochem Biophys, 1997, 34( 1) : 104~ 111 M ol G en Genet, 1995, 246: 100~ 109 M ol G en Genet, 1995, 246: 100~ 109 M ol G en Genet, 1995, 246: 100~ 109 M ol G en Genet, 1995, 246: 100~ 109 Arch Biochem Biophys, 2000, 379( 1) : 127~ 136 Arch Biochem Biophys, 2000, 379( 1) : 127~ 136 Arch Biochem Biophys, 2001, 393( 2) : 222~ 235 Eur J Biochem, 1994, 222: 843~ 850 Arch Biochem Biophys, 1993, 305( 2) : 509~ 515 Plant Physiol , 1997, 113( 3) : 755~ 763 Plant Physiol , 1999, 119( 1) : 49~ 56 M ol G en Genet, 1998, 258, 315~ 322 Plant Mol Biol, 1999, 39( 6) : 1079~ 1090 Plant Cell Report , 2001, 20: 655~ 662 Plant Cell Report , 2001, 20: 655~ 662 Nature, 1993, 366: 276~ 279 Plant J, 1998, 14( 1) : 111~ 120 Biochemist ry, 38: 6093~ 6103 Biosci Biotech Biochem, 2000, 64( 8) : 1696~ 1701 J Biol Chem, 2002, 275: 33712~ 33717 J Biol Chem, 1998, 273( 13) : 7260~ 7267 Plant Biotechnology, 1998, 15( 4) : 173~ 176 PNAS , 1999, 96( 18) : 10045~ 10050 PNAS , 1999, 96( 4) : 1761~ 1766 Biochem Biophys Res Commun, 1998, 243( 3 ) : 688 ~ 693 Biochem Biophys Res Commun, 1998, 243( 3 ) : 688 ~ 693 FEBS Lett , 1998, 432( 3) : 182~ 186 Plant J, 1999, 20( 5) : 611~ 618 Plant J, 1999, 20( 5) : 611~ 618 Plant Cell Physiol, 2000, 42( 12) : 1338~ 1344 Nat Biot ech, 2000, 18: 208~ 212 Biochem J, 1998, 332, 583~ 589 Eur J Biochem, 2001, 268( 10) : 3083~ 3090 Plant Physiol , 2002, 130( 1) : 210~ 220 FEBS Lett , 2002, 514( 2- 3) : 219~ 224 Plant Physiol , 1999, 119: 507~ 510 PNAS , 2001, 98( 4) : 1501~ 1508