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实验动物学实验课图示1

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实验动物学实验课图示1

实验动物学实验课图示1

（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
大鼠（Rat )
大鼠应用于生理学、药理学、免疫学，内分泌学、神经 生理、营养学、传染病、肿瘤和肝外科等的研究。
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
豚鼠（Guinea pig )
常用于免疫学、微生物学、传染病学、听觉生理、实验性 坏血症等研究。
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
品红（红色）—为十位数．
（二）耳缘打孔法：适于做长期实验用。 （三）刺数钳烙印法：适用于长期或慢性实验的大动
物编号。
（四）号牌法：用于大动物实验。
（三）动物的编号
•
染色法
4 40 7 10 70 1
2
5
8
20
50
80
3
6
9 30 60 90
•
挂牌法
图3-2-8小鼠背部的编号方法
（四）大、小鼠的给药方法： 小鼠的给药方法：
常用于基础医学、药理、毒理学、实验外科学、行为学、 肿瘤学等方面研究
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
猪(Pig)
常应用于皮肤烧伤、肿瘤学、免疫学、心血管及糖尿病、遗 传性和营养性疾病、移植、外科手术等方面的研究
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
猴(Monkey)
主要用于传染病学、 药 理学 和 毒 理学 、 生 殖生 理 、 口腔 医 学 ）营 养 、 代谢 、 行 为学 和 高 级神 经 活动研究及老年病、 器 官移 植 、 眼科 、 内分泌病和畸胎学、 肿瘤学
[实验目的 ： 实验目的]： 实验目的
通过大鼠、小鼠的抓取固定、性别辨认、灌胃、注射、采血、 麻醉、标记、安乐死、动物剖检、脏器摘除与检查等实际操作，掌握 大、小鼠动物实验的基本操作技术。

动物学试验：实验一 显微镜使用、生物绘图、原生动物观察

动物学试验：实验一 显微镜使用、生物绘图、原生动物观察
实验一
显微镜使用、生物绘图、 原生动物观察
实验须知
按时、按指定位置就坐、倾听讲解 预习 独立实验、实验报告实事求是 轮流值日打扫实验室 不得迟到早退，实验成绩计入考试成绩
课程考试70%，实验操作和实验报告30%
实验报告和生物学绘图
目的要求、实验内容 不同于美术绘图 实事求是 用HB或2H铅笔描绘和注字 只可用线或点表示 图名称在图下方，结构名称注在
动鞭亚纲无色鞭毛虫
作业 绘图： 草履虫结构图，注明名称。 草履虫已发出刺丝的状态。
1). 制片 (1) 取一滴草履虫液于载玻
片中央; (2) 用牙签蘸少许洋红粉末
掺入草履虫液滴中,混匀; (3) 加少量棉花纤维,再加
盖玻片。
2). 观察 (1) 低倍镜下找一被棉花纤
维阻挡, 口沟未受到压迫； (2) 高倍镜下观察食物泡的
形成。
其他原生动物
肉足纲变形虫
纤毛纲钟形虫
纤毛纲聚缩虫
鞭毛纲 眼虫
图的右侧（两侧）
图 草履虫
显微镜使用
右手握镜臂，左手托镜座 插上电源插座 旋转物镜转换器，低倍镜 安放标本片 调焦和观察 显微镜复原
显微镜使用
青蛙表皮 平滑肌（蛙胃）
原生动物
一、实验目的 1、熟悉草履虫形态结构。 2、认识和理解原生动物的单个细胞是一 个完整的能独立生活的有机体。 3 、认识一些原生动物。
呼吸 运动 营养 排泄 生殖 应激
表膜：弹性薄膜，布满纤毛 刺丝泡：与表膜垂草履虫的形态结构与运动 草履虫的应激性实验：剌丝泡的发射 食物泡的形成
草履虫 临时装片
草履虫临时装片
1）少量棉花纤维撕松放在载玻片中央； 2） 一滴草履虫培养液于棉花纤维之间； 3） 加盖玻片，用吸水纸吸去多余的水

医学实验动物学实验一大、小鼠给药、采血、麻醉和解剖

医学实验动物学实验一大、小鼠给药、采血、麻醉和解剖
《医学实验动物学》 实验课
实验一 大鼠和小鼠给药、 采血、麻醉和解剖
实验目的
1.掌握大小鼠常用给药方法和采血技术 2.掌握大小鼠的麻醉方法和解剖步骤 3.熟悉大小鼠的解剖 结构
小鼠的抓取和固定(1)
小鼠的抓取和固定(2)
注意点
抓取小鼠时动作要迅速，要轻 防止被小鼠转过头咬，抓其颈后皮肤要
多 万一被咬，应立即挤出血液，清水冲洗
大鼠的抓取与固定(1)
大鼠的抓取与固定(2)
大鼠的抓取与固定(3)
一、小鼠灌胃（给药方法之一）
将实验小鼠徒手固定 灌胃针从嘴角处插入口腔内，紧贴咽
后壁插入食道（1ml注射器，深度大 约为3cm） 推动针管给药（生理盐水） 注意不要插入气管，不要抓的太紧以 致小鼠窒息死亡
安全采血量：小鼠0.3ml;大鼠：2ml!
大鼠心脏采血
五、大鼠大体解剖观察及绘图
1.按0.1ml/10g体重，将SD大鼠用3.5% 水合氯醛腹腔注射麻醉。 2.腹部朝上固定于解剖板。 3. 用10cm剪刀从下腹部向上剪开皮肤， 打开腹腔，观察腹腔内脏器，观察大鼠肝 脏时特别注意大鼠无胆囊。 4. 用14cm剪刀打开胸腔，观察胸腔脏器。 5. 根据大体解剖所见，绘图。
麻醉剂：麻醉药为3.5%水合氯醛，剂量 按大鼠体重0.1ml/10g，200g的大鼠 为2ml。
四、大鼠心脏采血
右下腹腔麻醉（麻醉药为3.5%水合氯醛，剂 量按0.1ml/10g)
待其麻醉后，仰卧位固定在解剖板上 胸骨左侧，腋窝平行线下2-3肋骨间，大鼠心
搏动最强处斜行刺入（1ml注射器） 缓慢抽动针管采血 取血量多时采用（同样适用于小鼠）
最大灌胃量：小鼠1ml;大鼠：8ml!
尾静脉
二、小鼠尾静脉注射（给药方法之二）

《实验动物学教程》课件

《实验动物学教程》课件
实验动物的饲料种类与特点
介绍不同种类的实验动物饲料，如干饲料、半干 饲料、湿饲料等，以及它们的特点和使用方法。
3
实验动物的饲养标准与饲料配方
介绍实验动物的饲养标准，以及如何根据饲养标 准制定合理的饲料配方，以确保实验动物的健康 和生长。
实验动物的环境与设施
实验动物的环境因素
01
介绍温度、湿度、气流、噪声等环境因素对实验动物的影响，
必要性原则
只有在无法使用其他替代方法的情况 下，才可使用实验动物进行科学研究 。
科学性原则
在实验过程中，应遵循人道主义原则 ，尊重动物生命和权利，不得进行虐 待和残忍行为。
05
实验动物学的发展趋势与展 望
实验动物学的发展历程与现状
实验动物学发展历程
实验动物学自20世纪初开始发展， 经历了科学实验、生物学研究、医学 研究等阶段，目前已经形成了较为完 善的学科体系。
以及如何为实验动物提供适宜的环境。
实验动物的笼具与笼具的清洁与消毒
02
介绍实验动物的笼具种类和特点，以及如何进行笼具的清洁与
消毒，以确保实验动物的健康和舒适。
实验动物设施的类型与特点
03
介绍不同类型的实验动物设施，如开放式设施、屏障式设施等
，以及它们的特点和使用范围。
03
实验动物的应用研究
实验动物在药物研究中的应用
人工智能与实验动物学
人工智能技术在实验动物学中具有广阔的应用前景，如智 能监测、数据分析等，将有助于提减少和优化
在科学研究中，应尽量使用替代品 、减少实验动物数量、优化实验方 案，以减轻动物痛苦和减少资源消 耗。
仁慈与公正
对待实验动物应仁慈、公正，遵循 人道主义原则，不得进行虐待和残 忍行为。

实验动物学第一章PPT课件

实验动物学第一章PPT课件
观察记录
对实验动物的生长、繁殖和行为等进行观察和记录，以便分析实验结果。
饲养方式
根据实验需求选择适当的饲养方式，如笼养、群养或散养等。
实验动物的饲养和护理
03
CHAPTER
实验动物的伦理和福利
实验动物伦理的概念和原则
实验动物伦理
是指在实验动物研究中，遵循人道主义原则，尊重实验动物的福利和生命价值，避免对实验动物造成不必要的伤害和痛苦。
在毒理学研究中，实验动物被用于研究化学物质、物理因素等对生物体的危害和毒性作用。
实验动物在科学研究中的应用
小鼠和大鼠是最常用的实验动物，因为它们容易饲养、繁殖快、基因型丰富，且与人类具有一定的相似性。
豚鼠和兔在免疫学和药理学研究中较为常用，而犬和猴则更多地用于模拟人类疾病的研究。
常见的实验动物包括小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬、猴等，每种动物都有其独特的生物学特性和应用领域。
对于违反实验动物伦理原则的行为，应依法依规进行处理，追究相关责任人的责任。
03
02
01
实验动物伦理审查和监管
04
CHAPTER
实验动物在生物医学研究中的应用
实验动物在生物医学研究中的作用
实验动物是生物医学研究的重要工具，为人类疾病的研究、预防和治疗提供了有力支持。
通过实验动物的研究，可以模拟人类疾病的发生和发展过程，深入了解疾病的机制，为药物研发和治疗方法提供依据。
实验动物模型的建立和应用需要遵循严格的伦理和法律规定，确保动物的福利和保护。
03
实验动物在药物研发中的应用有助于加速新药的研发进程，提高新药的成功率和安全性。
01
实验动物是药物研发过程中必不可少的工具，用于测试新药的疗效和安全性。
02

实验动物学实验报告图文

实验动物学实验报告图文

实验动物学课程实验报告实验内容:1. 小鼠的基本实验操作2. 小鼠皮肤移植试验、睾丸(或卵巢摘除术3. 豚鼠和兔的一般操作技术4. 大鼠实验的基本操作5. 大鼠性周期观察和大鼠急性肺水肿模型建立6. 小鼠无菌取胎术7. Beagle犬的一般操作和沙鼠、金黄地鼠、裸小鼠的特性实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓取和固定、性别鉴定、编号、去毛、给药、采血、麻醉、处死,尤其是染色法编号、灌胃、眼球摘除法采血、腹腔注射、脊椎脱臼法处死。

二、实验动物:昆明小鼠4只(2雌2雄三、实验步骤1、抓取和固定2、性别鉴定3、编号(染色法4、去毛(脱毛剂法5、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射6、采血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法7、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉8、处死:脊椎脱臼法、过量麻醉9、解剖:9.1 生殖系统:9.1.1雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明9.1.2雌性:双角子宫、卵巢9.2 肾上腺、胰腺、胆囊、甲状腺四、实验结果1、抓取和固定:抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。

2、性别鉴定:观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。

雄性:距离长,毛发密(和其他部位一样;雌性:距离短,毛发稀疏。

3、编号:3.1染色法:3.1.1用苦味酸(黄色在小鼠背面染色3.1.2逆毛发生长方向染色,自毛根开始3.1.3可编1-10号(10号为不编号3.2去毛:脱毛剂:8% Na2S,自毛发根部涂抹3.3 给药:3.3.1 灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针, 紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0.5ml3.3.2 注射给药:3.3.2.1腹腔注射:3.3.2.1.1从下腹部的两侧进针3.3.2.1.2进针时针与腹部成45°。

动物实验技术PPT课件

不同种系的实验动物对相同因素的刺激反 应既有共同性的一面，也存在一些特殊反应， 同样的刺激对一些动物敏感，但对另外一些动 物可能不敏感。因此在实验研究中选用那些有 特殊反应、对实验研究敏感的动物作为实验对 象，也是保证实验成功的重要因素。
38
（三）标准化原则
标准化原则是指动物实验中选择与课题 研究的目的、内容、水平相匹配的标准化 的实验动物。只有选用经微生物、寄生虫 学、遗传学、环境及营养控制的标准化实 验动物，才能排除生物因素、遗传因素、 环境及营养因素对实验结果的干扰。
50
2、购入动物时，应向供应单位及时索取 动物的遗传背景、微生物背景、质量合格 证、动物的年龄、体重等资料。
51
3、购入动物时，无论运输距离的远近，都 应考虑运输环境的温度、湿度、饮食以及 途中污染和窒息死亡等问题。
52
4、购入清洁级以上的动物，应采用带有空 气过滤膜的无菌运输罐或带过滤帽的笼盒 运输，严格检查其密封状况。
7
动物实验技术：
研究动物实验所需的各种条件、方法、 技术，以保证取得科学的、完整的、先进的实 验结果。
8
动物实验的要求..
1、科学性 2、经济性 3、伦理性
9
科学性要求
标准化的动物 标准化的实验条件 标准化的操作规程
10
经济性要求
动物的选择 实验方法的选择
11
伦理性要求
动物福利 3R原则
12
22
(二) 常用动物外科手术器械
（三）手术器械的消毒 1、煮沸灭菌法、 2、 高压蒸气灭菌法 3、化学药品灭菌法。
23
（四）敷料、手术巾、手术衣、帽、口 罩的消毒
24
五. 手术人员的准备 为了保证无菌手术的进行,手术人

动物学实验(一)


1）无性生殖（横二分裂）
2）有性生殖（接合生殖）
（二）其它原生动物

1．绿眼虫 首先注意眼虫培养液的

颜色及分布情况，然后用滴管吸取 颜色较深部位的液体做临时玻片观 察。绿眼虫前端钝圆，后端尖，略 呈梭形，其表膜具有很多斜纹、身 体绿色。将光线尽量调暗，有时可 见虫体前端有一根鞭毛，不断摆动。 绿眼虫前端有一凹陷为胞口（沟 道），向后连一膨大的储蓄泡（裸 藻泡）。在储蓄泡一侧有一红色眼 点。细胞核位于虫体中央或稍后端。 胞质中充满椭圆状的叶绿体（不同 种的眼虫叶绿体的形状不同）。
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
利什曼原虫（黑热病，五大寄生虫病之一）。 第一寄主人或其它家畜（内脏巨嗜细胞），第 二寄主白蛉子（消化道）。
其 它 水 中 常 见 的 原 生 动 物
四、作业
绘草履虫放大详图，并标出各结构名称。
1．形态构造
1．外形 运动 表膜与纤毛 内外质与刺丝泡 胞口与胞咽 伸缩泡和收集管 细胞核 2．生殖 换草履虫分裂生殖装片，观察其无性分 裂方式，注意其虫体变化既细胞核分裂 情况。 换草履虫接合生殖装片，观察其有性生 殖方式，注意其结合部位。
2、草履虫生殖装片观察

（二）其它原生动物

3．锥虫 观察锥虫示范片。锥虫寄生在脊椎动物血液中，但不侵入血细
胞中。虫体微小，在显微镜下观察可见红细胞间的虫体呈柳叶状。虫体 中央有一椭圆形的核，体后端有一基体。鞭毛从基体发出，沿着身体前 行到达体前端才游离出来，成为一根独立的鞭毛。鞭毛与身体相连的部 分是由原生质延伸所形成的波动膜。思考波动膜的功用？
（二）其它原生动物

2．变形虫
用吸管吸取标本液底部沉积物表面液体，做成临时玻 片在低倍镜下寻找。由于变形虫虫体透明，需将显微镜光线调暗，虫体 在低倍镜下呈浅蓝色，无固定形状，运动缓慢。找到变形虫后换高倍镜， 并随时移动玻片跟踪观察。 变形虫体表面有一层质膜。细 胞质可分为外层较透明无颗粒 的外质和里面多颗粒的内质。 在内质中分布有大小不一的食 物泡以及一个扁盘形的细胞核。 伸缩泡较透明，位于内质中。 要特别注意变形虫运动方式及 伪足的形成情况。

动物实验基本操作精品PPT课件


22.01.2020
实验动物中心 12
7．生物电、活性观察法 对动物体各种生物电用电生理记录仪进行观察记录，如心
电、肌电、脑电等； 对动物组织中各种活动物质用生物化学法测定，如各种酶，
激素等。
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实验动物中心 13
8．病理解剖学、组织学观察法
采用肉眼观察、光镜和电镜检查，来观察、分析动物各 种疾病时病理组织学改变。可从组织学的角度来探讨疾 病防治机理，近年来由于电子显微技术的进展，不仅可 以观察到病变时细胞内细胞器等亚细胞结构的变化，而 且也可以运用电子扫描方法对动物器官的微小结构进行 完整的表层观察。
实验如需长时间观察，可破坏其脑脊髓（观察神经系统反 应时不应破坏脑脊髓）或麻醉后用大头针固定在蛙板上。 依实验需要采取俯卧位或仰卧位固定。
22.01.2020
实验动物中心 20
（四）豚鼠的抓取固定方法
豚鼠较为胆小易惊，不宜强烈刺激和受惊，所以在抓取时， 必须稳、准和迅速。一般抓取方法是：先用手掌迅速扣住 鼠背，抓住其肩胛上方，以拇指和食指环握颈部，另一只 手托住臀部。固定的方式基本同大鼠。
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实验动物中心 33
五、实验动物被毛的去除方法
动物的被毛常能影响实验操作和结果的观察，因此实验中 常需去除或剪短动物的被毛。除毛的方法有剪毛、拔毛和 脱毛三种。
22.01.2020
实验动物中心 34
剪毛：固定动物后，用粗剪刀剪去所需部位的被毛。剪毛 时需注意以下几点：
⑴把剪刀贴紧皮肤剪，不可用手提起被毛，以免剪破皮肤； ⑵依次剪毛，不要乱剪； ⑶剪下的毛集中放在一个容器内，勿遗留在手术桌和操作
22.01.2020
实验动物中心 15
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医学实验动物学实验
— 实验三 大、小鼠的基本操作技术
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
1、蟾蜍（Toad）
雄蟾
婚垫
雄蟾
雌蟾
蟾蜍属两栖动物，常用于神经生理、肌肉生理、心脏生理， 微循环、水肿等实验。
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
小鼠（Mouse )
小鼠被广泛的用于生物学、医学、兽医学、生理学、遗传学、药理、 毒理、肿瘤、放射性、食品、生物制品等的科研、生产和教学。
（九）实验动物解剖及医学比较
方法步骤： （一）实验动物解剖以及器官摘除 1、动物处死：采用颈椎脱臼法或者过量注射麻醉药的方法将实验动物处死。 2、打开腹腔，辨认脏器：用手术刀打开腹腔，首先认识各个脏器的结构和位置（包 括胰腺、脾脏、胃肠、肝脏、肾上腺、肾脏、膀胱、卵巢、子宫、睾丸等）。然后摘 除各个脏器。摘除顺序如下：（1）胰腺；（2）脾脏；（2）胃肠；（4）肝脏；（5） 泌尿系统；（6）生殖系统。 3、打开胸腔，辨认脏器：用手术刀进一步打开胸腔，认识各个脏器的结构和位置 （包括胸腺、心脏、肺脏、气管、甲状腺等）。然后按顺序摘除各脏器。摘除顺序如 下：（1）胸腺；（2）心脏；（3）肺脏。 4、打开颈部，摘除甲状腺：（1）用剪刀或手术刀在颈部皮肤正中线上切开，可见到 皮肤下面的一对颌下腺及连在其上方的淋巴节，用镊子将其左右分开。 （2）颌下腺左右分开后暴露出肌层，将肌肉纵向分开，即可见到气管及附着在气管 上的1对甲状腺。 （3）用镊子将甲状腺峡部左右分开，从气管上剥离甲状腺，摘除两侧的甲状腺。 （二）实验动物医学比较 比较大鼠和小鼠各个脏器的结构，位置有何异同点。
[实验目的 ： 实验目的]： 实验目的
通过大鼠、小鼠的抓取固定、性别辨认、灌胃、注射、采血、 麻醉、标记、安乐死、动物剖检、脏器摘除与检查等实际操作，掌握 大、小鼠动物实验的基本操作技术。
[实验动物 ： 大鼠、小鼠 实验动物]： 实验动物 [材料与器材 ： 材料与器材]： 材料与器材
大、小鼠饲养盒（带面罩）、大鼠和小鼠手术固定台，常规手术 器械、大鼠灌胃针、小鼠灌胃针、lml注射器、5ml注射器、l0ml注射 器、烧杯、75％酒精及酒精棉，干棉球。生理盐水、20％乌拉坦溶液 （或3％戊巴比妥钠）、乙醚、新洁尔灭、3—5％苦味酸溶液、0.5％ 中性红•
动物标记编号 动物被毛去除方法 动物性别的辨别 动物的抓取和固定 动物常用给药方法 动物的麻醉方法 动物的采血方法 动物的处死方法 动物解剖以及医学比较
（一）动物的捉拿、固定 动物的捉拿、
•
蟾蜍
A
B
图3-2-1 青蛙(或蟾蜍)捉拿法
图3-2-2 青蛙(或蟾蜍)固定法
药物经皮肤吸收、局部作用或致敏 作用时间根据药物性质和要求定
（五）动物被毛的去除法
拔毛法 剪毛法 剃毛法 脱毛法
（六）实验动物的麻醉
常用麻醉药
氨基甲酸乙酯 氯醛糖 巴比妥类 乙醚 局部麻醉药
（六）实验动物的麻醉
1、腹腔注射麻醉： 20%乌拉坦为0.375 ml／100g体重 （0.00075mg／g体重）； 2、静脉注射麻醉：尾巴静脉。
（七）大、小鼠的采血方法
1、小鼠摘除眼球采血法： 2、大鼠的眼眶后静脉丛(窦) 采血法： 3、大鼠、小鼠尾静脉切割采血法 4、大鼠、小鼠断头采血法
（八）大鼠、小鼠的处死方法 的处死方法
1、颈椎脱臼处死法 2、断头处死法： 3、急性放血处死法： 4、过量麻醉处死法： 5、二氧化碳吸入法： 6、豚鼠、兔等：空气栓塞法 急性放血法 药物法
实验报告： 要求：认真写实验报告，内容包括： 1、试述各项实验操作的要点和关键技术 和注意事项； 2、实验总结—比较大鼠和小鼠各个脏器 的结构，位置有何异同点
1、大、小鼠经口灌胃给药 2、大、小鼠注射给药 （1）皮下注射给药：部位：颈背部的皮下。 1 （2）肌肉注射给药（很少） （3）静脉注射给药：尾巴中部静脉。 （4）腹腔注射给药：在下腹部靠近腹白线的 两侧进行。
（四）常用给药方法-1 常用给药方法经消化道给药法
灌胃给药法
图3-2-9 小鼠灌胃法
自动摄取法 喂药法 经直肠给药
（一）动物的捉拿、固定 动物的捉拿、
•
小鼠
图3-2-2小白鼠的捉拿法
（一）动物的捉拿、固定 动物的捉拿、
• •
大鼠、 豚鼠
A
B
图3-2-4 大鼠和豚鼠的捉拿和固定
•
家兔
图3-2-5 兔捉拿方法
（二）动物性别的辨别
小白鼠
雄 雌
•
图3-2-7 小鼠性别的特征
（三）实验动物标记编号的方法
（一）被毛染色法 1、单色涂染法；（3—5％苦味酸溶液，可染成黄色）。 2、双色涂染法：苦味酸（黄色）—为个位数；
胃管 开口器
图3-2-10 兔灌胃方法
（四）常用给药方法-2 常用给药方法注射给药法
皮下注射 腹腔注射
图3-2-11小鼠腹腔注射方法
（四）常用给药方法-3 常用给药方法8.5cm 3.5cm 1cm
图3-2-12 小鼠尾静脉注射法
注射给药法 静脉注射
图3-2-13 兔耳缘静脉注射法
（四）常用给药方法-4 常用给药方法涂布给药法
家兔(Rabbit )
常用于免疫学、肿瘤、实验生理学、生殖生理、遗传 性疾病等的方面的研究，制造生物制品。
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
猫（Cat）
猫的神经系统和循环系统较发达，与人很相似。常用于神 经、循环和呼吸方面的实验。
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
犬(Dog )
在以犬为 实验动物 的研究成 果中，只 有 应 用 Beagle 才 能被国际 公认。
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
大鼠（Rat )
大鼠应用于生理学、药理学、免疫学，内分泌学、神经 生理、营养学、传染病、肿瘤和肝外科等的研究。
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
豚鼠（Guinea pig )
常用于免疫学、微生物学、传染病学、听觉生理、实验性 坏血症等研究。
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
品红（红色）—为十位数．
（二）耳缘打孔法：适于做长期实验用。 （三）刺数钳烙印法：适用于长期或慢性实验的大动
物编号。
（四）号牌法：用于大动物实验。
（三）动物的编号
•
染色法
4 40 7 10 70 1
2
5
8
20
50
80
3
6
9 30 60 90
•
挂牌法
图3-2-8小鼠背部的编号方法
（四）大、小鼠的给药方法： 小鼠的给药方法：
常用于基础医学、药理、毒理学、实验外科学、行为学、 肿瘤学等方面研究
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
猪(Pig)
常应用于皮肤烧伤、肿瘤学、免疫学、心血管及糖尿病、遗 传性和营养性疾病、移植、外科手术等方面的研究
（一）实验动物的种类。 实验动物的种类。
猴(Monkey)
主要用于传染病学、 药 理学 和 毒 理学 、 生 殖生 理 、 口腔 医 学 ）营 养 、 代谢 、 行 为学 和 高 级神 经 活动研究及老年病、 器 官移 植 、 眼科 、 内分泌病和畸胎学、 肿瘤学