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神经干动作电位的引导实验报告神经干动作电位的引导实验报告引言：神经干动作电位（N1）是一种被广泛应用于神经科学研究中的电生理信号。
它是大脑对外界刺激做出反应时产生的一种特殊电位，能够提供关于感知、认知和运动等神经活动的重要信息。
本实验旨在通过对被试者进行视觉刺激，观察和记录N1的变化，来探讨神经活动与认知过程之间的关系。
实验设计：本实验采用单盲、交叉设计，共招募了20名健康成年被试者（10男性，10女性）。
被试者在实验前接受了详细的说明和知情同意，并被告知实验的目的和过程。
实验材料：实验中使用的材料包括：电脑、视觉刺激软件、脑电图（EEG）采集设备、触发器和眼动仪。
实验过程：每位被试者均被要求坐在舒适的座椅上，头部被固定在脑电图采集设备上。
实验开始前，被试者进行了简单的眼动校准。
实验过程中，被试者需要盯着电脑屏幕上的十字标记，同时观看一系列视觉刺激。
这些刺激包括不同颜色和形状的图案，以及一些文字和数字。
每个刺激呈现时间为200毫秒，间隔时间为500毫秒。
数据采集与分析：实验过程中，我们使用脑电图采集设备记录被试者的脑电信号。
同时，我们还使用眼动仪记录被试者的眼动轨迹。
脑电信号和眼动数据被实时传输到计算机上进行存储和分析。
数据分析的主要方法包括：1. 神经干动作电位（N1）的提取：通过对脑电信号进行滤波和平均化，我们可以提取出N1的波形特征。
2. 眼动数据的分析：通过分析眼动数据，我们可以了解被试者在不同刺激条件下的注意力分配和眼球运动情况。
3. 统计分析：通过使用统计学方法，我们可以比较不同刺激条件下的N1幅值和潜伏期，并探讨其与认知过程的关系。
结果与讨论：经过数据分析，我们观察到在不同刺激条件下，被试者的N1幅值和潜伏期存在显著差异。
例如，当被试者观看红色图案时，N1幅值较大，潜伏期较短；而在观看蓝色图案时，N1幅值较小，潜伏期较长。
这表明神经活动与颜色刺激之间存在一定的关联性。
此外，眼动数据的分析结果显示，被试者在观看不同刺激条件下的眼球运动模式也存在差异。
神经干动作电位的引导实验报告一、实验目的1、学习并掌握神经干动作电位的引导方法。
2、观察神经干动作电位的基本特征，包括双相动作电位和单相动作电位。
3、了解刺激强度、刺激频率对神经干动作电位的影响。
二、实验原理神经干由许多神经纤维组成，在神经干的一端给予电刺激，产生的兴奋会沿着神经纤维传导。
由于不同神经纤维的兴奋性和传导速度不同，因此记录到的神经干动作电位是由多个神经纤维动作电位复合而成的。
动作电位是指可兴奋细胞在受到刺激时，细胞膜电位在静息电位的基础上发生的一次快速、可逆、可传播的电位变化。
在神经纤维上，动作电位表现为“全或无”的特性，即刺激强度达到阈值时，动作电位产生，且幅度不随刺激强度的增加而增大。
当在神经干的一端给予刺激时，兴奋会向两端传导，在记录电极处可记录到双相动作电位。
如果将两个记录电极之间的神经干损伤，兴奋只能通过未损伤的部位向一个方向传导，此时记录到的是单相动作电位。
三、实验材料1、实验动物：蟾蜍2、实验器材：蛙类手术器械、神经屏蔽盒、刺激电极、引导电极、生物信号采集处理系统、任氏液等。
四、实验步骤1、制备蟾蜍坐骨神经干标本破坏蟾蜍的脑和脊髓，将其仰卧固定在蛙板上。
从脊柱的下部开始，沿脊柱两侧剪开皮肤，分离肌肉，暴露脊柱。
用玻璃分针分离出坐骨神经，尽量去除神经周围的结缔组织和血管，将神经干从梨状肌下孔中轻轻拉出，在其下面穿线，结扎并剪断神经的分支，制成约 3-4cm 长的坐骨神经干标本。
将标本放入装有任氏液的培养皿中备用。
2、连接实验装置将神经干标本置于神经屏蔽盒内，用棉花蘸取任氏液保持标本湿润。
刺激电极连接刺激输出端，引导电极连接信号输入端，接地电极接地。
3、调节实验参数打开生物信号采集处理系统，选择合适的采样频率和增益。
设置刺激参数，包括刺激强度、刺激波宽、刺激频率等。
4、引导神经干动作电位给予神经干单个刺激，观察并记录双相动作电位。
逐渐增加刺激强度，观察动作电位的幅度变化，确定阈值和最大刺激强度。
神经干动作电位的引导实验报告实验目的，探究神经细胞的动作电位在外部刺激下的变化规律，以及观察不同刺激条件下神经细胞的兴奋传导过程。
实验原理，神经细胞的动作电位是由于细胞膜上的离子通道在受到刺激时打开或关闭而产生的瞬时电压变化。
在实验中，我们将通过外部刺激来引导神经细胞产生动作电位，并记录其变化过程。
实验材料，小鼠脑组织切片、电极、药物溶液、振荡器、示波器等。
实验步骤：1. 将小鼠脑组织切片置于培养皿中，加入含氧气的培养液，使其细胞得到充分的氧气供应。
2. 将电极插入脑组织切片中，通过振荡器提供外部刺激，观察神经细胞的反应。
3. 在不同条件下，如改变刺激频率、强度或加入药物溶液，记录神经细胞动作电位的变化情况。
实验结果：1. 在低频刺激条件下，神经细胞的动作电位较为平稳，幅度较小，频率较低。
2. 随着刺激频率的增加，神经细胞的动作电位幅度逐渐增大，频率也随之增加，表现出兴奋传导的特征。
3. 加入药物溶液后，观察到神经细胞动作电位的变化受到抑制或增强，进一步说明了外部环境对神经细胞的影响。
实验结论：通过本次实验，我们观察到了神经细胞在不同刺激条件下动作电位的变化规律，以及外部环境对其兴奋传导的调控作用。
这为进一步研究神经细胞的生理活动和神经递质释放机制提供了重要的实验基础。
实验意义：神经细胞的动作电位是神经信号传导的基础，了解其变化规律对于理解神经系统的功能和疾病机制具有重要意义。
本次实验为进一步探究神经细胞兴奋传导机制提供了重要的实验数据和参考。
实验局限性：本次实验仅使用小鼠脑组织切片进行观察，实验结果可能受到切片保存条件、细胞状态等因素的影响，对于活体神经细胞的动作电位变化仍需进一步研究。
总结：神经细胞的动作电位是神经信号传导的重要基础，通过外部刺激可以引导神经细胞产生不同的电位变化。
本次实验结果为进一步研究神经细胞兴奋传导机制提供了重要的实验数据和参考，对于神经系统的功能和疾病机制具有重要意义。
实验一神经干动作电位的引导,兴奋传导速度及不应期的测定神经干动作电位、传导速度及不应期的测定【目的和原理】神经纤维的兴奋表现为动作电位的产生和传导，神经纤维上传导的动作电位通常称为神经冲动。
在神经细胞外表面，已兴奋部位带“负电”，未兴奋部位带“正电”，用引导电极引导出此电位差，输入到示波器，则可记录到动作电位的波形。
本实验用细胞外记录法，可引导出坐骨神经的复合动作电位。
神经纤维兴奋的标志是产生一个可以传导的动作电位，它依局部电流或跳跃传导的方式沿神经纤维传导。
其传导速度取决于神经纤维的直径、内阻、有无髓鞘等因素，可用电生理学方法来记录和测量。
神经纤维在一次兴奋过程中，其兴奋性可发生周期性变化，包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期。
本实验主要目的是学习电生理仪器的使用方法，掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。
掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法，通过调整条件刺激和测试刺激之间的时间间隔，来测定坐骨神经干的绝对不应期。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验器材和药品】蛙类手术器械一套、电子刺激器、示波器(或计算机实时分析系统)、神经屏蔽盒、任氏液。
【实验步骤】1(制备坐骨神经——胫、腓神经标本操作方法详见3(8。
2(连接装置(见图8-1-1)。
3(准备仪器:(1)刺激器:调节刺激器各项参数:刺激方式连续刺激，频率16Hz，刺激强度0.5v，波宽0.1ms。
调节延迟使动作电位的图像位于示波器荧光屏的中央。
(2)示波器:灵敏度:1,2mv/cm，扫描速度:1,2ms/cm，引导电极输入到示波器的“AC”端，双边输入，刺激器的“同步输出”接示波器“外触发输入”，触发选择设置为“同步触发”。
4(观察项目:屏蔽盒S1 S2 R1 R2 R3 R4N输出上线下线刺示激波器器图8-1-1 神经干动作电位引导装置图(1)测量单、双相动作电位的潜伏期、时程和振幅，填入下表:时程振幅潜伏期动作电位格毫秒格毫伏格毫秒第一相双相动作电位第二相(2)测算动作电位的传导速度:V=S/?t (米/秒)式中:S为R1到R3的神经干长度，以米为单位。
4神经干动作电位的引导及神经兴奋传导速度的测定西安交通大学医学院教案, 引导蟾蜍坐骨神经动作电位，并观察其基本波形（包括双相和单相动作电位）。
, 学习和掌握神经干动作电位传导速度测定的原理和方法。
, 学习和掌握蟾蜍坐骨神经-腓神经标本制备方法。
, 复习讲解神经干动作电位和神经纤维动作电位的区别、神经干动作电位形成的过程及神经干兴奋传导速度的测定原理等。
, 制备坐骨神经—腓神经标本。
, 引导单、双相动作电位及测定兴奋传导速度。
, 神经干双相动作电位的形成机制。
, 兴奋传导速度的测定原理。
【】1. 引导蟾蜍坐骨神经动作电位，并观察其基本波形（包括双相和单相动作电位）。
2. 学习和掌握神经干动作电位传导速度测定的原理和方法。
3. 学习和掌握蟾蜍坐骨神经-腓神经标本制备方法。
【】动作电位是神经细胞兴奋的客观标志，当神经纤维或神经干受到有效刺激时，必然会产生可传导的动作电位，也称为神经冲动。
由于神经干动作电位是许多单根神经纤维动作电位的复合，所以它的特征不同于单根神经纤维的动作电位。
本实验采用离体细胞外记录法，记录神经干兴奋时两个记录电极之间的电位变化。
动作电位可沿神经纤维进行双向传导，其传导速度取决于纤维直径、内阻、有无髓鞘等因素。
通过测定动作电位传导的距离和时间，可算出动作电位在神经纤维上的传导速度。
【】1. 动物蛙或蟾蜍。
2. 试剂和药品任氏液3. 装置和器材计算机、蛙类手术器械、神经屏蔽盒、直尺、圆规、培养皿。
【】1. 神经干动作电位的引导1）制备坐骨神经-腓神经标本制备方法与制备坐骨神经-腓肠肌标本基本相同，只是当把坐骨神经游离至膝关节后，在腓肠肌一侧继续分离腓神经至足趾，用线结扎，并在结扎线远端剪断。
将制备好的坐骨神经-腓神经标本浸入盛有任氏液的培养皿内备用。
2）将神经标本置于神经屏蔽盒的电极上。
将神经的近中枢端置于刺激电极一侧，外周端置于记录电极侧。
3）进入BL-410生物信号采集、处理系统，单击菜单栏中实验项目，在肌肉、神经实验中选择神经干动作电位的引导。
一目的要求：1．学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2．学习并掌握蛙类坐骨神经干标本的制备方法。
3．学习电生理学实验方法。
4．观察蟾蜍坐骨神经干复合动作电位的波形，了解其产生的基本原理。
二基本原理：神经干在受到有效刺激后，可以产生动作电位，标志着神经发生兴奋。
如果在神经干另一端引导传来的兴奋冲动，可以引导出双相的动作电位，如在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏，则引导出的动作电位即为单相向动作电位。
神经细胞的动作位是以”全或无”方式发生的。
坐骨神经干是由很多不同类型的神经纤维组成的，所以，神经干的动作电位是复合动作电位。
复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的变化而变化的。
三动物与器材：蟾蜍、常用手术器械（手术剪、手术镊、金冠剪、眼科剪、毁髓针和玻璃分针）、蛙板、固定针、不锈钢盘、污物缸、粗棉线、任氏液、计算机生理信号处理系统、神经屏蔽盒。
四方法步骤：1．蟾蜍的单毁髓与双毁髓一手握住蛙或蟾蜍(可用纱布包裹蟾蜍躯干部)，背部向上。
用拇指压住蛙或蟾蜍的背部，食指按压其头部前端，使头端向下低垂; 另一手持毁髄针，由两眼之间沿中线向后触划，当触及到两耳中间的凹陷处(此处与两眼的联机成等边三角形)时，持针手即感觉针尖下陷，此处即是枕骨大孔的位置。
将毁髄针由凹陷处垂直刺入，即可进入枕骨大孔（图t-1）。
然后将针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以捣毁脑组织。
如毁髄针确在颅腔内，实验者可感到针尖触及颅骨。
此时的动物为单毁髓动物。
再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转冋后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。
彻底捣毁脊髓时，可看到动物的后肢突然蹬直，而后瘫痪如棉（图t-2），此时的动物为双毁髓动物。
如动物仍表现肢肌肉紧张或活动自如，必须重新毁髓。
操作过程中应注意使蟾蜍头部向外侧(不要挤压耳后腺)，防止耳后腺分泌物射入实验者眼内(如被射入，则需立即手生理盐水冲洗眼睛)。
2．坐骨神经干标本制备(1) 剥制后肢标本（图t-3）(2) 分离两后肢（图t-4）(3) 分离坐骨神经（图t-5）3．测定：阈刺激、最大刺激，打印不同刺激引起的动作电位重叠显示波形。
生理学实验指导（生物工程2012级3、4班用）实验一、神经干复合动作电位的引导【目的要求】1. 学习电生理实验方法。
2. 观察蛙坐骨神经干复合动作电位的波形，并了解其产生的基本原理。
【基本原理】神经干在受到有效刺激后，可以产生动作电位，标志着神经发生兴奋。
如果在神经干另一端引导传来的兴奋冲动，可以引导出双相的动作电位，如果在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏，则引导出的动作电位即为单相动作电位。
神经细胞的动作电位是以“全或无"方式产生的。
坐骨神经干是以由很多不同类型的神经纤维组成的，所以，神经干的动作电位是复合动作电位。
复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的变化而变化的。
【动物与器材】蟾蜍或蛙、常用手术器械、计算机采集系统、神经屏蔽盒、任氏液。
【方法与步骤】1. 制备蛙或蟾蜍坐骨神经干标本。
2. 将蛙的坐骨神经干标本置于屏蔽盒内的电极上，神经干的中枢端置于刺激电极一侧，从末梢端引导动作电位3. 实验观察与记录(1) 神经干兴奋阈值的测定刺激强度从0.1V开始，逐渐增加刺激强度，当刚刚出现动作电位时的刺激强度，即为神经干的兴奋阈值。
(2) 双相动作电位在刺激阈值的基础上逐渐加大刺激强度，可见动作电位的图形为双相，而且其幅值随刺激强度增大而加大。
当刺激增加到一定强度时，可见动作电位的幅值不再增大。
(3) 动作电位参数的测量用鼠标点击“快捷工具栏”的“观察”，移动鼠标，测出动作电位的一系列参数。
(4) 单相动作电位在两个引导点击之间损伤神经干标本，可使原来的双相动作电位的下相小时，变为单相；注意上相动作电位的图形有什么变化。
【注意事项】a) 实验过程中注意保持标本的活性良好，经常用任氏液湿润之。
b) 如果在显示窗上发现动作电位图形倒置，将引导电极位置交换即可实验二、反射时的测定与反射弧的分析【目的要求】1．学习测定反射时的方法。
2．了解反射弧的组成。
【基本原理】从皮肤接受刺激至机体出现反应的时间为反射时。
