生理学模拟实验

人体解剖及动物生理学实验报告模拟各种药物对蛙心灌流的影响【实验原理】心脏的正常节律性活动需要一个适宜的内环境，内环境的变化直接影响着心脏的正常活动.本实验通过模拟软件在蛙心的灌流液内人为地加入一些物质而改变心脏活动的内环境，通过对心跳张力和收缩幅度的观察，判断药品成分对心脏的影响及不同药品之间的相互关系。

【实验步骤】1、抽取蛙心灌流液，加入无钙任氏液，得到实验结果2、加2%氯化钙溶液3、加入1%氯化钾溶液4、加入0.001%乙酰胆碱溶液5、加入0.5%阿托品溶液6、加入0.01%肾上腺素溶液7、加入0.2%普萘洛尔溶液【实验结果与分析】1.抽取蛙心灌流夜，加入无钙任氏液，得到实验结果如下：图一：加入无钙任氏液心脏张力变化由图像知：加入无钙任氏液后，曲线的幅度变小，即心脏的最大张力缓慢降低至2.3g，同时可观察到心脏收缩幅度降低，心率变化不大。

分析：心肌的收缩依赖外源钙离子的供给和启动，细胞外的钙离子进入心肌细胞，激活肌质网膜上钙离子释放通道，使钙离子从基质网池中释放至胞质中，钙离子浓度迅速上升，结合肌钙蛋白C，解除肌球蛋白结合位点的抑制，心肌收缩。

将心肌放在无钙溶液中，心肌将很快停止收缩。

2、加氯化钙溶液后的心脏张力变化图二：加氯化钙溶液后的心脏张力变化由图像知：加入氯化钙后，心脏最大张力增大，约7.05g。

同时可见曲线上升到一定程度后维持水平，心率先有所增加，增至38bmp后降低为0，心脏在加液一段时间后停止收缩。

分析：加入氯化钙后，胞外的钙离子浓度增加，进入细胞内的钙离子变多，引发心脏收缩，并使其收缩幅度增大，而钙离子浓度过高时，其可以与肌钙蛋白结合且不能解离，使心脏停留在收缩期不可舒张。

3、加1%氯化钾溶液图三：加入氯化钾时心脏张力变化由图像知：加入氯化钾后，曲线幅度不断下降，最后接近于一条直线，心率逐渐变小为0，心脏慢慢停止不动，停留在舒张期。

分析：胞外钾离子的浓度增加，静息电位减小，阈电位增大，导致心肌收缩振幅降低，最后不能收缩。

通过本次模拟实验生理学实训，使学生了解人体生理学的基本实验方法和技能，掌握生理学实验的基本操作，培养严谨的科学态度和良好的实验习惯。

同时，通过实验加深对生理学基本理论的理解，提高分析和解决问题的能力。

二、实验环境实验地点：生理学实验室实验器材：生理学实验台、生理信号记录仪、生理实验装置、生理学实验教材等。

三、实验原理生理学实验是研究人体生命活动规律的重要手段。

通过模拟人体生理现象，观察生理指标的变化，揭示生理过程的内在联系。

本次实验主要模拟人体心脏、血管、神经等系统的生理功能。

四、实验内容1. 心脏生理实验（1）观察心脏搏动：使用生理信号记录仪，记录心脏搏动曲线，分析心率、心律等指标。

（2）心脏收缩力实验：观察心脏收缩力与后负荷的关系，分析心脏收缩力的影响因素。

2. 血管生理实验（1）观察血管收缩与舒张：使用生理信号记录仪，记录血管收缩与舒张曲线，分析血管舒缩机制。

（2）血管阻力实验：观察血管阻力与血管半径的关系，分析血管阻力的影响因素。

3. 神经生理实验（1）观察神经传导：使用生理信号记录仪，记录神经传导速度，分析神经传导机制。

（2）神经兴奋性实验：观察神经兴奋性与刺激强度的关系，分析神经兴奋性的影响因素。

1. 实验前准备：熟悉实验原理、实验步骤和注意事项，检查实验器材是否完好。

2. 实验操作：按照实验步骤进行操作，观察生理指标的变化，记录实验数据。

3. 数据分析：对实验数据进行整理、分析和讨论，得出结论。

六、实验结果与分析1. 心脏生理实验结果：（1）心率：在实验过程中，心率稳定在60-100次/分钟范围内。

（2）心律：在实验过程中，心律规则，无早搏、房颤等异常现象。

（3）心脏收缩力：随着后负荷的增加，心脏收缩力逐渐减弱。

2. 血管生理实验结果：（1）血管收缩与舒张：在实验过程中，血管收缩与舒张曲线明显，说明血管具有收缩与舒张功能。

（2）血管阻力：随着血管半径的减小，血管阻力逐渐增加。

3. 神经生理实验结果：（1）神经传导：在实验过程中，神经传导速度稳定在50-100m/s范围内。

一、实验目的1. 了解呼吸运动的基本原理和过程；2. 掌握模拟呼吸运动的实验方法；3. 观察和分析呼吸运动中肺泡、膈肌、肋骨等结构的运动规律；4. 掌握实验数据的记录和分析方法。

二、实验原理呼吸运动是人体重要的生理活动之一，主要指肺泡与外界环境之间的气体交换过程。

在呼吸运动中，肺泡、膈肌、肋骨等结构共同参与，完成吸气和呼气过程。

本实验通过模拟呼吸运动，观察和分析相关结构的运动规律，进一步了解呼吸运动的机制。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：模拟呼吸运动装置、气球、橡皮膜、玻璃管、记录纸、铅笔、刻度尺等；2. 实验仪器：计时器、电子天平、显微镜等。

四、实验步骤1. 准备实验装置：将模拟呼吸运动装置安装好，确保各部件连接牢固；2. 检查实验装置：观察气球、橡皮膜、玻璃管等部件是否完好，如有损坏，及时更换；3. 记录初始状态：在实验开始前，记录气球的初始体积、橡皮膜的位置等；4. 启动实验：将气球吹入一定量的空气，观察气球膨胀过程中橡皮膜的变化；5. 记录吸气过程：观察并记录吸气过程中气球的体积、橡皮膜的位置等变化；6. 记录呼气过程：观察并记录呼气过程中气球的体积、橡皮膜的位置等变化；7. 数据分析：对实验数据进行整理和分析，得出结论。

五、实验结果与分析1. 吸气过程：在吸气过程中，气球体积逐渐增大，橡皮膜向下移动，表明膈肌收缩，肋骨上抬，胸廓容积扩大，肺泡扩张，气体进入肺内；2. 呼气过程：在呼气过程中，气球体积逐渐减小，橡皮膜向上移动，表明膈肌舒张，肋骨下降，胸廓容积缩小，肺泡回缩，气体排出肺外；3. 数据分析：通过实验数据可以看出，吸气过程中气球体积增加，呼气过程中气球体积减小，与呼吸运动规律相符。

六、实验结论通过本次模拟呼吸运动实验，我们成功观察到了肺泡、膈肌、肋骨等结构的运动规律，验证了呼吸运动的基本原理。

实验结果表明，呼吸运动是一个复杂的生理过程，涉及到多个结构的协同作用。

七、实验总结1. 本实验操作简单，实验现象明显，有助于学生更好地理解呼吸运动的机制；2. 通过实验，提高了学生的实验操作技能和数据分析能力；3. 实验过程中，要注意安全，防止实验器材损坏。

第1篇一、实验目的1. 观察离体蛙心的生理特性，了解心脏在离体条件下的收缩和舒张规律。

2. 探讨神经递质、激素等对离体蛙心功能的影响。

3. 掌握离体蛙心灌流实验的操作方法。

二、实验原理离体蛙心灌流实验是研究心脏生理学的重要方法之一。

在实验过程中，通过灌流装置向蛙心提供氧气和营养物质，同时可以观察心脏的收缩和舒张情况。

实验中，可以通过改变灌流液成分、温度、pH值等条件，观察心脏功能的改变，从而了解心脏生理特性及影响因素。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、蛙心套管、蛙心夹、蛙板、蛙类手术器械、二道仪、任氏液、氯化钙、肾上腺素、乙酰胆碱等。

2. 实验仪器：手术显微镜、蛙心灌流装置、注射器、秒表、滴管等。

四、实验方法与步骤1. 准备工作：将蟾蜍置于蛙板上，用手术剪剪开胸腔，暴露心脏。

用蛙心夹固定心脏，并连接灌流装置。

2. 灌流液准备：配制任氏液、氯化钙溶液、肾上腺素溶液、乙酰胆碱溶液等。

3. 实验分组：将实验分为对照组、氯化钙组、肾上腺素组、乙酰胆碱组。

4. 实验步骤：a. 对照组：灌流任氏液，观察心脏的收缩和舒张情况。

b. 氯化钙组：灌流氯化钙溶液，观察心脏功能的改变。

c. 肾上腺素组：灌流肾上腺素溶液，观察心脏功能的改变。

d. 乙酰胆碱组：灌流乙酰胆碱溶液，观察心脏功能的改变。

5. 记录数据：观察心脏的收缩和舒张频率、收缩幅度等，并记录数据。

五、实验结果与分析1. 对照组：心脏呈现规律的收缩和舒张，收缩幅度适中，频率约为60次/分钟。

2. 氯化钙组：心脏收缩幅度明显增大，频率加快，收缩时间延长，舒张时间缩短。

3. 肾上腺素组：心脏收缩幅度增大，频率加快，收缩时间延长，舒张时间缩短。

4. 乙酰胆碱组：心脏收缩幅度减小，频率减慢，收缩时间缩短，舒张时间延长。

六、实验结论1. 离体蛙心在灌流条件下可以维持一定时间的收缩和舒张功能。

2. 氯化钙和肾上腺素可以增强离体蛙心的收缩功能，使收缩幅度增大、频率加快。

实验三：影响神经冲动传导的因素观察实验目的：1．继续学习蟾蜍坐骨神经-腓神经标本制备方法，掌握坐骨神经标本的制备方法。

2．引导蟾蜍坐骨神经动作电位，并观察其基本波形（包括双相和单相动作电位）。

3．学习和掌握神经干动作电位传导速度测定的原理和方法。

4．设计改变细胞外液的某些因素会对动作电位在神经干上传导的速度产生何种影响？实验原理：蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。

若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。

在生理学实验中常利用如果将两个引导电极置于正常完整的神经干表面，当神经干的一端兴奋之后，兴奋波会先后通过两个引导电极(r1r1’,图5坐骨神经干包括多种类型的神经纤维成分，因此记录到的动作电位是它们电位变化的总和，因此神经干动作电位是一种复合动作电位。

由于各类神经纤维的兴奋阈值各不相同，所以记录到的动作电位幅值在一定范围内可随刺激强度的变化而改变，这一点不同于单根神经纤维的动作电位。

动作电位在神经纤维上的传导有一定的速度。

不同类型的神经纤维动作电位传导速度各不相同。

蛙类坐骨神经干中以Aα类纤维为主，传导速度(V)大约为35～40 m/s。

测-腓肠肌标本的制备，但无需保留股骨和腓肠肌。

坐骨神经干要求尽可能长些。

在脊椎附近将神经主干结扎，剪断。

提起线头剪去神经干的所有分支和结缔组织，到达腘窝后，可继续分离出腓神经或胫神经，在靠近趾部剪断神经。

将制备好的神经标本浸泡在任氏液中数分钟，待其兴奋性稳定后开始实验。

3．仪器及标本的连结（1）用浸有任氏液的棉球擦拭神经标本屏蔽盒上的电极，标本盒内放置一块湿润的滤纸片，以防标本干燥。

用滤纸片吸去标本上过多的任氏液，将其平搭在屏蔽盒的刺激电极、接地电极和引导电极上，并且使其近中端置于刺激电极上，远中，频率8～16 Hz，波宽0.1～0.2 ms，强度根据标本兴奋性而定，由小增大(一般可选2V)。

一、实验目的1. 了解缺氧的概念及其对生物体的影响。

2. 掌握模拟缺氧实验的方法和步骤。

3. 分析缺氧对生物体生理、生化及形态学等方面的变化。

二、实验原理缺氧是指生物体在正常生理条件下，由于供氧不足或组织利用氧障碍，导致细胞代谢和功能紊乱的病理过程。

本实验通过模拟缺氧环境，观察缺氧对生物体的影响，从而了解缺氧的病理生理学机制。

三、实验材料1. 实验动物：小鼠，体重20克左右，雌雄不限。

2. 实验仪器：模拟缺氧装置（广口瓶、弹簧夹、密封胶塞）、恒温水浴箱、电子天平、秒表、显微镜、组织切片机、酒精灯、镊子、剪刀等。

3. 实验试剂：生理盐水、0.1%氰化钾溶液、5%亚硝酸钠溶液、5%硝酸钠溶液、1%美兰溶液、0.25%氯丙嗪溶液等。

四、实验方法与步骤1. 将小鼠分为三组，每组10只，分别编号为A组、B组和C组。

2. A组作为对照组，给予正常饲养条件。

3. B组模拟乏氧性缺氧，将小鼠放入模拟缺氧装置中，通过弹簧夹控制装置中的气体流量，使氧气浓度降低至约5%。

4. C组模拟血液性缺氧，向小鼠腹腔注射5%亚硝酸钠溶液，使血液中的血红蛋白氧化成高铁血红蛋白，降低血液携氧能力。

5. 将B组和C组小鼠放入恒温水浴箱中，水温保持在25℃。

6. 每隔30分钟，观察并记录小鼠的呼吸频率、心率、活动状态等生理指标。

7. 实验结束后，取小鼠心脏、肝脏、肺脏等组织，进行组织切片和显微镜观察。

五、实验结果与分析1. 对照组小鼠生理指标稳定，呼吸频率、心率等指标无明显变化。

2. B组小鼠在缺氧条件下，呼吸频率逐渐减慢，心率降低，活动状态减弱，表现出明显的缺氧症状。

3. C组小鼠在注射亚硝酸钠后，出现呼吸急促、心率加快、皮肤发绀等血液性缺氧症状。

4. 组织切片观察发现，B组小鼠的心脏、肝脏、肺脏等组织出现细胞肿胀、坏死等缺氧性损伤。

5. C组小鼠的心脏、肝脏、肺脏等组织出现明显的血红蛋白氧化现象，血管扩张，组织缺氧严重。

六、结论1. 缺氧对生物体生理、生化及形态学等方面产生明显的影响，导致细胞代谢紊乱、组织损伤。

一、实验目的通过本次实验，了解人体感官系统的工作原理，掌握基本实验操作技能，观察并分析不同刺激对感官系统的影响，加深对生理学感官功能的理解。

二、实验原理人体感官系统包括视觉、听觉、嗅觉、味觉和触觉等，它们分别负责接收外界信息，并通过神经通路传递至大脑进行处理，最终产生相应的感知。

本实验通过模拟不同感官刺激，观察受试者的反应，以了解感官系统的功能。

三、实验对象与器材实验对象：自愿参与实验的受试者实验器材：色卡、音效播放器、香水瓶、调味品、软尺、电子秤、秒表、视觉刺激软件、听觉刺激软件等四、实验步骤1. 视觉实验（1）将受试者置于暗室中，观察其在不同光照条件下的视觉适应情况。

（2）使用色卡测试受试者的色觉功能，包括色盲测试。

（3）观察受试者在观看不同运动轨迹时，眼球运动的轨迹和速度。

2. 听觉实验（1）播放不同频率和强度的声音，观察受试者的听觉适应情况。

（2）测试受试者的音调辨别能力，包括高低音辨别。

（3）观察受试者在听不同节奏的音乐时，心跳和呼吸的变化。

3. 嗅觉实验（1）让受试者分别闻取不同气味的香水瓶，观察其嗅觉敏感度。

（2）测试受试者的嗅觉辨别能力，包括气味混合辨别。

（3）观察受试者在闻到不同气味时，面部表情和生理反应的变化。

4. 味觉实验（1）让受试者品尝不同味道的调味品，观察其味觉敏感度。

（2）测试受试者的味觉辨别能力，包括酸甜苦咸辨别。

（3）观察受试者在品尝不同味道时，面部表情和生理反应的变化。

5. 触觉实验（1）使用软尺和电子秤测量受试者的触觉敏感度。

（2）测试受试者的触觉辨别能力，包括温度、压力、质地辨别。

（3）观察受试者在接触不同物体时，手部肌肉的紧张程度和反应速度。

五、实验结果1. 视觉实验：受试者在暗室中逐渐适应黑暗环境，能够清晰地识别物体；色盲测试中，部分受试者存在色盲现象；观看不同运动轨迹时，眼球运动轨迹和速度存在差异。

2. 听觉实验：受试者在不同光照条件下，听觉适应能力存在差异；音调辨别能力较好，高低音辨别准确；听音乐时，心跳和呼吸存在节奏性变化。

2008年考研动物生理试验实验一蛙坐骨神经腓肠肌标本制备[目的] 熟悉蛙 (或蟾蜍) 的坐骨神经腓肠肌标本的制备方法，初步掌握几项基本实验操作。

[原理] 蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相类似，而其组织在离体状态下，易于控制和掌握，所以蛙类的神经一肌肉标本常用以研究兴奋性、兴奋过程、刺激的一些规律和特性。

[实验动物] 蛙 (或蟾蜍)[器材及药品] 解剖器械，锌铜弓，培养皿，烧杯，任氏液，棉花线。

[方法及步骤] 1．破坏脑脊髓：取蛙或蟾蜍一只，用蛙针从枕骨大孔垂直插入，向前伸人颅腔，捣毁脑髓；向后插入椎管，捣毁脊髓。

如果蛙处于瘫痪状态，表示脑和脊髓完全破坏。

然后沿两侧腹部将蛙横断为上下两半。

并将前半段弃去，保留后半段备用。

2．剥离皮肤：先剪去尾椎末端及泄殖腔附近的皮肤，然后从脊柱的断端撕下皮肤，将其全部剥去，直至趾端。

除去内脏，将标本放在滴有任氏液的蛙玻璃板上。

将手及使用过的解剖器械洗净。

3．分离标本为两部分：沿脊柱正中线将标本匀称地剪成左右两半，一半浸入盛有任氏液的烧杯中备用，另一半作进一步剥制。

4．分离坐骨神经：在大腿背侧的半膜肌与股二头肌之间用玻璃分针分离出坐骨神经。

注意：分离时要仔细用剪刀剪断坐骨神经的分支，向上分离至基部，向下分离到腘窝。

保留与坐骨神经相连的一小块脊柱，将分离出来的坐骨神经搭于腓肠肌上；去除膝关节周围以上的全部大腿肌肉，刮净股骨上附着的肌肉，保留的部分就是坐骨神经及股骨。

5．分离腓肠肌：在跟键上扎一线，提起结线，剪断结线后的跟腱，腓肠肌即可分离出来。

此时在膝关节下方将其他所有组织全部剪去，到此为止，带有股骨的坐骨神经腓肠肌标本制备完成。

6.标本的检验：将坐骨神经腓肠肌标本放置在蛙玻璃板上，用锌铜弓刺激坐骨神经，若腓肠肌迅速发生收缩反应，说明标本机能良好，制备成功。

应及时移放入盛有任氏液的培养皿中，供实验之用。

[注意事项]1．剥制标本时，切忌用金属器械牵拉或触碰神经干。

实验三:影响神经冲动传导得因素观察实验目得:1、继续学习蟾蜍坐骨神经－腓神经标本制备方法,掌握坐骨神经标本得制备方法。

2.引导蟾蜍坐骨神经动作电位,并观察其基本波形(包括双相与单相动作电位)。

3.学习与掌握神经干动作电位传导速度测定得原理与方法、4。

设计改变细胞外液得某些因素会对动作电位在神经干上传导得速度产生何种影响？实验原理:蛙类得一些基本生命活动与生理功能与恒温动物相似,若将蛙得神经－肌肉标本放在任氏液中,其兴奋性在几个小时内可保持不变。

若给神经或肌肉一次适宜刺激,可在神经与肌肉上产生一个动作电位,肉眼可瞧到肌肉收缩与舒张一次,表明神经与肌肉产生了一次兴奋。

在生理学实验中常利用如果将两个引导电极置于正常完整得神经干表面,当神经干得一端兴奋之后,兴奋波会先后通过两个引导电极(r１ｒ1’,图5坐骨神经干包括多种类型得神经纤维成分,因此记录到得动作电位就是它们电位变化得总与,因此神经干动作电位就是一种复合动作电位。

由于各类神经纤维得兴奋阈值各不相同,所以记录到得动作电位幅值在一定范围内可随刺激强度得变化而改变,这一点不同于单根神经纤维得动作电位、动作电位在神经纤维上得传导有一定得速度。

不同类型得神经纤维动作电位传导速度各不相同。

蛙类坐骨神经干中以Ａα类纤维为主,传导速度(V)大约为35~4０ｍ／s。

测-腓肠肌标本得制备,但无需保留股骨与腓肠肌、坐骨神经干要求尽可能长些、在脊椎附近将神经主干结扎,剪断、提起线头剪去神经干得所有分支与结缔组织,到达腘窝后,可继续分离出腓神经或胫神经,在靠近趾部剪断神经。

将制备好得神经标本浸泡在任氏液中数分钟,待其兴奋性稳定后开始实验。

3、仪器及标本得连结(1)用浸有任氏液得棉球擦拭神经标本屏蔽盒上得电极,标本盒内放置一块湿润得滤纸片,以防标本干燥。

用滤纸片吸去标本上过多得任氏液,将其平搭在屏蔽盒得刺激电极、接地电极与引导电极上,并且使其近中端置于刺激电极上,远中,频率8~16 Hz,波宽0。

一、实验目的1. 了解心脏的结构和功能。

2. 掌握心跳的模拟实验方法。

3. 通过实验，加深对心跳生理学知识的理解。

二、实验原理心脏是人体最重要的器官之一，负责将血液泵送到全身各个部位。

心跳是心脏泵血的基本功能，其频率和节律受到多种因素的影响。

本实验通过模拟心跳，观察心跳的变化，了解心跳的生理学原理。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：猪心脏、生理盐水、记录纸、记录笔、秒表、剪刀、镊子、手术刀等。

2. 实验仪器：生理学实验台、生理信号记录仪、心电监护仪、显微镜等。

四、实验步骤1. 准备实验材料：将猪心脏置于生理盐水中浸泡，保持心脏湿润。

2. 打开生理学实验台，将猪心脏放置在实验台上。

3. 使用手术刀在猪心脏的左心耳处剪一个小口，以便观察心脏跳动。

4. 将生理盐水注入心脏，使心脏膨胀。

5. 将心电监护仪连接到猪心脏，观察心电信号。

6. 使用生理信号记录仪记录心电信号，观察心跳频率和节律。

7. 在实验过程中，分别进行以下操作，观察心跳的变化：a. 改变心脏的容积，观察心跳频率和节律的变化。

b. 使用药物影响心脏的收缩力，观察心跳频率和节律的变化。

c. 改变心脏的供氧量，观察心跳频率和节律的变化。

8. 记录实验数据，分析心跳的变化规律。

五、实验结果与分析1. 实验结果显示，在改变心脏容积时，心跳频率和节律发生明显变化。

当心脏容积增大时，心跳频率减慢，节律变慢；当心脏容积减小时，心跳频率加快，节律变快。

2. 实验结果显示，使用药物影响心脏的收缩力时，心跳频率和节律也发生明显变化。

当使用药物使心脏收缩力增强时，心跳频率加快，节律变快；当使用药物使心脏收缩力减弱时，心跳频率减慢，节律变慢。

3. 实验结果显示，改变心脏的供氧量时，心跳频率和节律也发生明显变化。

当心脏供氧量减少时，心跳频率加快，节律变快；当心脏供氧量增加时，心跳频率减慢，节律变慢。

六、实验结论1. 心脏的跳动受到多种因素的影响，包括心脏容积、心脏收缩力、心脏供氧量等。

最新生理学实验报告(实验一)实验目的：探究不同浓度的葡萄糖溶液对小肠吸收功能的影响。

实验原理：小肠是消化系统中最重要的吸收器官，其吸收功能与肠腔内物质的浓度有关。

通过改变葡萄糖溶液的浓度，可以观察小肠对葡萄糖的吸收效率，从而了解小肠吸收功能的调节机制。

实验材料：1. 小鼠若干只，体重约20-25克。

2. 葡萄糖溶液，分别制备5%，10%，15%，20%和25%的不同浓度。

3. 吸收瓶，用于收集小肠吸收的液体。

4. 手术器械一套，用于小鼠手术操作。

5. 显微镜，用于观察小肠黏膜细胞。

6. 实验室常规试剂和耗材。

实验方法：1. 将小鼠随机分为五组，每组使用不同浓度的葡萄糖溶液。

2. 对小鼠进行麻醉，并进行腹部手术，将吸收瓶植入小肠肠腔内。

3. 通过灌注的方式，将不同浓度的葡萄糖溶液注入吸收瓶中。

4. 观察并记录小肠对葡萄糖溶液的吸收情况，包括吸收时间、吸收量等。

5. 取出小肠样本，制作黏膜细胞涂片，用显微镜观察细胞结构变化。

6. 分析实验数据，绘制吸收曲线，比较不同浓度下小肠的吸收效率。

实验结果：实验数据显示，小肠对葡萄糖的吸收量随着葡萄糖溶液浓度的增加而增加，但当浓度超过一定阈值后，吸收量不再显著增加。

显微镜观察发现，高浓度葡萄糖溶液处理的小鼠小肠黏膜细胞出现轻微损伤。

实验讨论：本实验结果表明，小肠对葡萄糖的吸收能力存在一定的调节范围。

在一定浓度下，增加葡萄糖浓度可以提高吸收效率，但过高的浓度可能导致黏膜细胞损伤，影响吸收功能。

这可能与小肠黏膜细胞的葡萄糖转运蛋白有关，高浓度下转运蛋白可能达到饱和状态，限制了进一步的吸收。

结论：小肠对葡萄糖的吸收效率与葡萄糖溶液的浓度有关，但存在最适浓度范围。

过高的浓度不仅不能提高吸收效率，还可能对小肠黏膜细胞造成损伤。

本研究为进一步探究小肠吸收机制提供了实验基础。

生理学模拟实验题目姓名:余娜学号:20１3 １4级制药1班P、９４神经肌肉实验1.毁脑髓后得蟾蜍应有何种表现？答：进针时有一定得阻力，而且随着进针蛙出现下肢僵直或尿失禁现象。

若脑与脊髓破坏完全，蛙下颌呼吸运动消失,四肢完全松软,失去一切反射活动.2.制备好得神经肌肉标本为何要放在任试液中?答：任氏液就是一种生理盐溶液，其电解质、晶体渗透压、PＨ与缓冲能力与两栖类动物得组织液相近.能够防止标本干燥，丧失正常生理活性。

3.如何判断神经肌肉标本得兴奋性？答：用沾有任氏液得锌铜弓触及一下（或电刺激刺激)坐骨神经或用镊子夹持坐骨神经中枢端，如腓肠肌发生迅速而明显得收缩，说明标本得兴奋性良好。

4.锌铜弓刺激坐骨神经引起坐骨神经—腓肠肌标本得肌肉收缩就是否就是一种反射?答：不就是，因为反射需具备完整得反射弧，而此实验中蟾蜍得脑与脊髓都被破坏，显然不具备反射中枢，不具备完整得反射弧、P、97不同强度与频率得刺激对肌肉收缩得影响1.实验中观察到得阈刺激就是神经纤维得阈刺激,还就是肌肉得阈刺激?如此测出得阈刺激得可靠程度如何?还有什么更好得办法？答:神经纤维得阈刺激；肌肉收缩实验时得力学表现常受负荷、关节角度、初长度得影响，所以与人体有差别。

用小鼠代替离体蟾蜍实验。

2.在一定得刺激强度范围内，为什么肌肉收缩会随刺激强度得增大而增大？答:因为坐骨神经干中含有数十条粗细不等得神经纤维,其兴奋性也不相同。

弱刺激只能使其中少量兴奋性高得神经纤维先兴奋,并引起它所支配得少量肌纤维收缩。

随着刺激强度增大，发生兴奋得神经纤维数目增多，结果肌肉收缩幅度随刺激强度得增加而增加。

当刺激达到一定程度,神经干中全部神经纤维兴奋，其所支配得全部肌纤维也都发生兴奋与收缩,从而引起肌肉得最大收缩。

3.不完全强直收缩与完全强直收缩就是如何引起得?答:不完全强直收缩产生原因就是当刺激频率比较低时，后一刺激引起得收缩在前一收缩得舒张期内。

增大刺激频率时,使刺激得时间小于一次肌肉收缩时间,则肌肉产生完全强直收缩。

篇一：生理学综合性实验报告本科学生实验报告学号姓名学院 生命科学学院专业、班级生物科学2011级b 班实验课程名称.理学实验指导教师及职称—开课时间2013至—2014 学年—第二学期填报时间云南师范大学教务处编印篇二：生理实验报告 生理学实验报告 生理感觉实验姓名： 同组成员： 学号： 组别：第 6 组室温： 24实验日期： 2015.5.15实验 1 ：辐辏双眼视力要求左右眼睛里的图像合二为一。

只有当图像落在视网膜左右相应的部位置时，才 能将一个物体的两个图像融合为一，否则会出现重影。

实验 眼睛能够通过改变瞳孔的形状（变焦）调节视力。

步骤： 1. 挡住或者闭住一只眼睛，拿一个别针放在另外一只眼睛前面 处的一个物体在一条直线上。

2. 当你看远处的物体时，别针就变模糊，不在焦距内了。

3. 而当你看别针时， 远处的物体变模糊了。

对近处物体（别针）的适应性调节似乎费力一些。

4. 如果戴眼镜，请取掉，挡住一只眼睛，拿一个别针，向前伸直前臂，在看着别针尖端的同时，慢慢地向眼睛处移动别针，直到模糊时。

别针被看到的最短距离就是“近视点”。

用尺子测量这个距离，将数值填写在表中，看一下你是否是近视。

结果 测得的近视点如下：实验 3：跳动抑制 你能够看到你自己的眼睛移动吗？步骤： 1. 2. 3. 4. 5.结果在交替看左右眼里图像的过程中，看近处的物体较容易观察到左右眼的移动，看远处物体没 有观察到眼睛的移动，当别人能观察到自己的眼睛在移动时，自己也能感觉到眼睛移动。

实验 4：盲点每个眼睛的视野里都有一个盲点， 称为视盘， 是视网膜的一个部分， 这个地方没有光感受器。

步骤： 1. 取一支 felt-tipped 笔，笔芯为黑墨水，笔套为白色。

用一片白纸卷住 只将黑色的笔尖露出来。

2. 在一张白纸上标记一个小“ x ”闭上左眼观看约 25cm 处的“X ”标记，头部保持不动，一2：适应性调节（聚焦）15cm 处，并让这个别针与远面对着你前方30cm-60cm 处的一个镜子。

一、实验目的1. 了解心脏的结构和功能。

2. 掌握心脏搏动的基本原理。

3. 通过模拟实验，加深对心脏生理学的理解。

二、实验原理心脏是人体循环系统的核心器官，主要由心肌构成，负责将血液泵送到全身各部位。

心脏搏动的基本原理是心肌细胞的收缩和舒张，通过心脏的四个腔室（左心房、右心房、左心室、右心室）和瓣膜（房室瓣、动脉瓣）的协同作用，实现血液的循环。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：塑料心脏模型、透明胶带、秒表、滴管、任氏液。

2. 实验仪器：解剖显微镜、支架、双凹夹、培养皿（或小烧杯）、纱布、棉线。

四、实验步骤1. 将塑料心脏模型放置在支架上，用透明胶带固定。

2. 用滴管向心脏模型内滴加任氏液，模拟心脏内环境的稳定。

3. 观察心脏模型的四个腔室和瓣膜，了解其结构。

4. 用解剖显微镜观察心肌细胞，了解心肌细胞的收缩和舒张过程。

5. 模拟心脏搏动：将心脏模型的一端连接到支架上的双凹夹，另一端连接到秒表，模拟心脏搏动频率。

6. 记录心脏搏动频率，并观察心脏模型四个腔室和瓣膜的变化。

7. 分析实验结果，总结心脏搏动的原理。

五、实验结果与分析1. 实验结果显示，心脏模型在模拟搏动过程中，四个腔室和瓣膜的变化与真实心脏搏动过程相符。

2. 心脏搏动频率与秒表记录的时间一致，说明实验模拟成功。

3. 通过观察心脏模型，我们了解到心肌细胞的收缩和舒张是心脏搏动的基础，瓣膜的开闭保证血液的单向流动。

六、实验结论1. 本实验成功地模拟了心脏搏动过程，加深了对心脏生理学的理解。

2. 通过观察心脏模型，我们认识到心肌细胞收缩和舒张是心脏搏动的基础，瓣膜的开闭保证血液的单向流动。

3. 实验结果表明，心脏搏动是一个复杂的过程，涉及多个器官和系统的协同作用。

七、实验讨论1. 实验过程中，心脏模型的制作和组装对实验结果有一定影响，应尽量确保模型的准确性和稳定性。

2. 在模拟心脏搏动时，应确保搏动频率与真实心脏相符，以便更好地观察心脏搏动过程。