发酵技术中的补料的控制
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发酵罐中补料分批发酵研究实验目的加深对培养方法的认识,了解补料分批续培养过程控制方法。
实验原理补料分批培养,是一种介于分批培养和连续培养之间的过渡培养方式,是在分批培养的过程中,间隙或连续地补加新鲜培养基的培养方法。
流加培养同时兼有间歇培养和连续培养的某些特点,其优点是,可使发酵系统中维持很低的底物浓度,减少底物的抑制或其分解代谢物的阻遏作用,不会出现当某种培养基成分的浓度高时影响菌体得率和代谢产物生成速率的现象。
菌种与培养基啤酒酵母培养基(g/L)葡萄糖20,酵母浸粉 5.0,KH2PO43.0,Na2HP041.0,MgSO41.0,pH 5.0。
流加的浓葡萄糖液质量浓度为25 g/100 ml。
保持培养基中糖的质量浓度在0.5 g/L,流加液的糖的质量浓度为25—30 g/100 m1。
实验方法流加培养前的准备工作在培养罐中加入去离子水,将温度传感器、除菌过滤器安装好,用硅橡胶管连接好取样口、流加液入口,不需要的接口全部封好。
橡胶管用弹簧夹夹住,排气口用一小段棉花塞好。
确认所有连接没有问题后,打开通风排气系统,检查是否有漏气、阻塞现象(轻轻堵住排气口,看其他地方是否漏气),确认正常。
种子培养自斜面菌种挑起一环啤酒酵母菌体。
接入装有50ml 培养基的250 ml三角瓶中,摇匀后,置于24℃培养箱培养36 h。
将上述培养好的液体种子接入用250ml三角瓶装的灭过菌的100ml液体培养基中,接种量10%,在24℃下培养36h。
流加培养培养罐中加入已调配好的培养基后,放在灭菌锅中灭菌121℃,20-30 min,葡葡糖和消泡剂分别同时灭菌。
培养罐取出后,开通冷却水进行冷却,同时开动搅拌器,通入无菌压缩空气以防产生负压,冷却到发酵温度25 ℃。
利用硅皮管将25 g/100m1葡萄糖液贮瓶和0.1 mol/L氨液贮瓶分别连接蠕动泵和培养罐上的入口,再将两个贮瓶上的排气口塞上棉花用弹簧夹夹住。
消泡剂贮瓶排气口塞上锦花。
发酵补料操作流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。
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线上的R2线圈失电,同时49534线上的R2继电器断开,则电机M停止。
此时该停止信号在控制室控制屏上同时出现声/光报警,提醒操作人员注意,从而达到设置此连锁的目的。
6 系统调试根据上述的逻辑控制原理及电气控制电路,在完成现场及控制室设备的安装及接线后,即可进行调试,在此项目中我们是分步进行调试的:611 首先调试逻辑电路在FOXBORO卡件安装前,先进行组态,即按我们要求分别在逻辑卡件2AX+DSS上进行,组态成我们所需要的:与门,或非门和或门(组态的方式在该卡件的说明书上有详细的说明,只需按上面的方法执行即可),安装到机柜后,按我们设计的逻辑电路接线。
在该工作完成后,在输入卡上模拟1和0信号,对照工艺要求的逻辑输出表,看输出结果是否与我们所要求的相符。
612 现场设备调试(1)现场设备流量开关为FCI公司的FL T93-L型一体化管道式流量开关,该流量开关在定货时即已按我们的要求进行了组态和设置,只需正确安装即可;如要改变设置,亦可按照说明书上的说明进行。
(2)低转速开关我们选用的是M ILL TRON ICS 公司的产品:由MPS-1小型化速度传感器,预放大板RMA和MPA-4报警板组成。
在上述设备安装完成后,现场主要是调整MPS-1探头的位置,即将探头与转动轴上凸处调到3mm—8mm即可;另外在MPA-4报警板上,我们将转速设置在10转/分左右,将延时时间设置在10秒左右,根据现场的实际情况,经多次调整,直至满足我们要求为止。
(3)控制回路的调试:此部分调试主要是检查线路及各个继电器之间的接线是否正常,同样的原理,我们模拟一个信号,看最终输出到MCC(马达控制中心)的信号是否正确,是否是我们所需要的逻辑输出。
(4)系统联调:由于在系统联调之前,我们均已做了一些相应的单调,因此在联调时,基本上没有出现什么问题,即使出现了一些问题,也是一点小问题,很快就解决了。
7 投运及验收目前该连锁系统已顺利通过了工艺的模拟验收,并已于3个月前投入运行,整个系统一直稳定可靠,达到和满足了当初工艺提出的要求。
一种提升阿卡波糖发酵水平的补料控制方法阿卡波糖是一种广泛应用于糖尿病治疗的药物,其生产过程中发酵环节至关重要。
本文将介绍一种提升阿卡波糖发酵水平的补料控制方法,以帮助提高生产效率和产品质量。
阿卡波糖发酵过程中,补料控制是影响发酵水平的关键因素之一。
以下是一种有效的补料控制方法,旨在提高阿卡波糖的发酵水平。
1.补料策略(1)分阶段补料:将发酵过程分为三个阶段,分别为诱导期、对数期和稳定期。
在不同阶段,根据微生物的生长需求和代谢特点,调整补料量和补料成分。
(2)控制补料速率:在发酵过程中,控制补料速率,使微生物在适宜的生长环境下进行代谢,提高阿卡波糖产量。
2.补料成分(1)碳源:以葡萄糖为主要碳源,根据发酵过程中微生物的消耗情况,适时补充葡萄糖,保持碳源浓度在适宜范围内。
(2)氮源:以酵母膏和蛋白胨为氮源,通过补料控制氮源浓度,满足微生物生长需求。
(3)磷酸盐:在发酵过程中,适当补充磷酸盐,以提高阿卡波糖的产量。
3.补料控制参数(1)溶氧:通过调节搅拌速度和空气流量,控制发酵罐内的溶氧浓度,使微生物在适宜的氧气环境下生长。
(2)pH值:监测发酵过程中的pH值,通过补料调整,保持pH值在适宜范围内。
(3)温度:控制发酵罐内的温度,使其在微生物生长的适宜范围内。
4.补料控制实施(1)自动控制系统:采用PLC控制系统,实现补料过程的自动化,提高补料的准确性和稳定性。
(2)传感器监测:安装溶氧、pH值、温度等传感器,实时监测发酵过程中的关键参数,为补料控制提供依据。
(3)数据分析:收集发酵过程中的数据,通过数据分析,优化补料策略,提高阿卡波糖的发酵水平。
通过以上补料控制方法,可以有效提高阿卡波糖的发酵水平,提高生产效率和产品质量。
发酵技术中的补料的控制补料分批发酵(fed-batch culture,FBC):又称半连续培养或半连续发酵,是指在分批发酵过程中,间歇或连续地补加一种或多种成分的新鲜培养基的培养方法,是分批发酵和连续发酵之间的一种过渡培养方式,是一种控制发酵的好方法,现已广泛用于发酵工业。
1 FBC的作用1)可以控制抑制性底物的浓度高浓度营养物抑制微生物生长:①基质过浓使渗透压过高,细胞因脱水而死亡;②高浓度基质能使微生物细胞热致死(themal death),如乙醇浓度达10%时,就可使酵母细胞热致死;③有的是因某种或某些基质对代谢关键酶或细胞组分产生抑制作用,如高浓度苯酚(3%~5%)可凝固蛋白;④高浓度基质还会改变菌体的生化代谢而影响生长等。
有的基质是合成产物必需的前体物质,浓度过高,就会影响菌体代谢或产生毒性,使产物产量降低。
如苯乙酸、丙醇(或丙酸)分别是青霉素、红霉素的前体物质,浓度过大,就会产生毒性,使抗生素产量减少。
有的底物溶解度小,达不到应有的浓度而影响转化率。
如甾类化合物转化中,因它们的溶解度小,使基质的浓度低,造成转化率不高。
采用FBC方式,可以控制适当的基质浓度,解除抑制作用,得到高浓度的产物。
2)解除或减弱分解代谢物的阻遏有些合成酶受到迅速利用的碳源或氮源的阻遏,如葡萄糖阻抑纤维素酶、赤霉素、青霉素等多种酶或产物的合成。
通过补料来限制基质葡萄糖的浓度,就可解除酶或其产物的阻遏,提高产物产量。
缓慢流加葡萄糖,纤维素酶的产量几乎增加200倍;将葡萄糖浓度控制在0.02%水平,赤霉素浓度可达905 mg/L;采用滴加葡萄糖的技术,可明显提高青霉素的发酵单位等。
这都是利用发酵技术解决分解代谢物阻遏的实际应用。
在植物细胞培养中,也采用该技术来提高产量。
3)可以使发酵过程最佳化分批发酵动力学的研究,阐明了各个参数之间的相互关系。
利用FBC技术,就可以使菌种保持在最大生产力的状态。
随着FBC补料方式的不断改进,为发酵过程的优化和反馈控制奠定了基础。
发酵技术中的补料的控制补料分批发酵(fed-batchculture,FBC):又称半连续培养或半连续发酵,是指在分批发酵过程中,间歇或连续地补加一种或多种成分的新鲜培养基的培养方法,是分批发酵和连续发酵之间的一种过渡培养方式,是一种控制发酵的好方法,现已广泛用于发酵工业。
1FBC的作用1)可以控制抑制性底物的浓度高浓度营养物抑制微生物生长:①基质过浓使渗透压过高,细胞因脱水而死亡;②高浓度基质能使微生物细胞热致死(themaldeath),如乙醇浓度达10%时,就可使酵母细胞热致死;③有的是因某种或某些基质对代谢关键酶或细胞组分产生抑制作用,如高浓度苯酚(3%~5%)可凝固蛋白;④高浓度基质还会改变菌体的生化代谢而影响生长等。
有的基质是合成产物必需的前体物质,浓度过高,就会影响菌体代谢或产生毒性,使产物产量降低。
如苯乙酸、丙醇(或丙酸)分别是青霉素、红霉素的前体物质,浓度过大,就会产生毒性,使抗生素产量减少。
有的底物溶解度小,达不到应有的浓度而影响转化率。
如甾类化合物转化中,因它们的溶解度小,使基质的浓度低,造成转化率不高。
采用FBC方式,可以控制适当的基质浓度,解除抑制作用,得到高浓度的产物。
2)解除或减弱分解代谢物的阻遏有些合成酶受到迅速利用的碳源或氮源的阻遏,如葡萄糖阻抑纤维素酶、赤霉素、青霉素等多种酶或产物的合成。
通过补料来限制基质葡萄糖的浓度,就可解除酶或其产物的阻遏,提高产物产量。
缓慢流加葡萄糖,纤维素酶的产量几乎增加200倍;将葡萄糖浓度控制在0.02%水平,赤霉素浓度可达905mg/L;采用滴加葡萄糖的技术,可明显提高青霉素的发酵单位等。
这都是利用发酵技术解决分解代谢物阻遏的实际应用。
在植物细胞培养中,也采用该技术来提高产量。
3)可以使发酵过程最佳化分批发酵动力学的研究,阐明了各个参数之间的相互关系。
利用FBC 技术,就可以使菌种保持在最大生产力的状态。
随着FBC补料方式的不断改进,为发酵过程的优化和反馈控制奠定了基础。
发酵技术中的补料的控制
补料分批发酵(fed-batch culture, FBC :
又称半连续培养或半连续发酵,是指在分批发酵过程中,间歇或连续地补加一种或多种成分的新鲜培养基的培养方法,是分批发酵和连续发酵之间的一种过渡培养方式, 是一种控制发酵的好方法,现已广泛用于发酵工业。
1 FBC 的作用
1 可以控制抑制性底物的浓度
高浓度营养物抑制微生物生长:
①基质过浓使渗透压过高, 细胞因脱水而死亡;
②高浓度基质能使微生物细胞热致死(themal death ,如乙醇浓度达10%时,就可使酵母细胞热致死;
③有的是因某种或某些基质对代谢关键酶或细胞组分产生抑制作用, 如高浓度
苯酚(3%~ 5% 可凝固蛋白;
④高浓度基质还会改变菌体的生化代谢而影响生长等。
有的基质是合成产物必需的前体物质,浓度过高,就会影响菌体代谢或产生毒性, 使产物产量降低。
如苯乙酸、丙醇(或丙酸分别是青霉素、红霉素的前体物质,浓度过大,就会产生毒性,使抗生素产量减少。
有的底物溶解度小,达不到应有的浓度而影响转化率。
如甾类化合物转化中,因它们的溶解度小, 使基质的浓度低, 造成转化率不高。
采用FBC 方式,可以控制适当的基质浓度,解除抑制作用,得到高浓
度的产物。
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解除或减弱分解代谢物的阻遏
有些合成酶受到迅速利用的碳源或氮源的阻遏,如葡萄糖阻抑纤维素酶、赤霉素、青霉素等多种酶或产物的合成。
通过补料来限制基质葡萄糖的浓度,就可解除酶或其产物的阻遏,提高产物产量。
缓慢流加葡萄糖,纤维素酶的产量几乎增加200倍;将葡萄糖浓度控制在0.02% 水平, 赤霉素浓度可达905 mg/L ;采用滴加葡萄糖的技术,可明显提高青霉素的发酵单位等。
这都是利用发酵技术解决分解代谢物阻遏的实际应用。
在植物细胞培养中,也采用该技术来提高产量。
3可以使发酵过程最佳化
分批发酵动力学的研究,阐明了各个参数之间的相互关系。
利用FBC 技术,就可以使菌种保持在最大生产力的状态。
随着FBC 补料方式的不断改进,为发酵过程的优化和反馈控制奠定了基础。
随着计算机、传感器等的发展和应用,已有可能用离线方式计算或用模拟复杂的数学模型在线方式实现最优化控制。
FBC 的优点:
①解除底物抑制、产物反馈抑制和分解代谢物的阻遏;
②避免一次投料过多造成细胞大量生长所引起的一切影响, 改善发酵液流变学性质;
③可提高发芽孢子的比例, 控制细胞质量;
④不需要严格的无菌条件, 产生菌不易老化变异,比连续发酵适用广泛。
2 补料内容
①能源和碳源;
②氮源;
③微量元素;
④诱导物;
3 补料的原则
原则:根据菌体生长代谢规律;
生产需要;
环境条件
方法:充足而不过量(少量多次或分批流加
4 补糖的控制
补糖时机
过早,刺激生长,加速糖利用;
过迟,所需能量跟不上。
如谷氨酸发酵在对数生长期的末期补料。
判断:培养基条件,菌种,发酵状况(残糖, pH ,菌形态等,在需要时加入;
举例:四环素, P203图10-14
补糖方式
连续流加:每次流加又可分为快速流加、恒速流加、指数速率流加和变速流
加。
少量多次间歇补入
大量少次补入
可与其他组分一起进行多组分补料。
以不引起发酵液成分剧烈波动为前提
补糖量——加入与消耗平衡,维持稳定的糖浓度;
例:
a 四环素发酵还原糖维持在0.8-1.2%
b 谷氨酸追加糖液发酵:在原工艺基础上, 加大接种量到10%,增加生物素用量达5μ g/L,减少初糖浓度(12%——7-8%尽快获得大量的生产型菌体,当菌体处在生长对数期后进入产酸期,糖浓度在2%左右时,连续流加糖液,维持2%左右的糖浓度。
优点:低浓度发酵,以利于生长和发酵;
总糖浓度达20%,产酸高。
补糖开始时,不但CRR 、OUR 大幅度提高,连RQ 也提高约10%,表明通过补糖不但提供了更多的碳源,而且随着体系内葡萄糖浓度提高,糖代谢相关酶活力也提高, 产能增加。
发酵中后期为保证产生次级代谢产物,有意使菌体处于半饥饿状态,在营养限制的条件下, 维持产生次级代谢产物的速率在较高水平。
5 补偿氮源及无机盐
流加尿素,一方面调节pH ,另一方面补氮。
谷氨酸发酵时,初次加入尿素量和补加量取决于菌种的脲酶活力强弱和耐尿能力。
脲酶活力低,耐尿素强,初次加入用量多2%,流加次数少脲酶活力强,耐尿素低,初次加入用量少0.6%,流加以少量多次好
6 补料的控制
流加操作控制系统分为有反馈控制和无反馈控制两类。
反馈控制系统是由传感器、控制器和驱动器三个单元所组成。
根据控制依据的指标不同,又分为直接方法和间接方法。
间接方法:以溶氧、pH 值、呼吸商、排气中CO2分压及代谢产物浓度等作为控制参数。
对间接方法来说,选择与过程直接相关的可检参数作为控制指标,是研究的
关键。
通气发酵利用排气中CO2含量作为FBC 反馈控制参数是较为常用的间接方法。
直接法:随着一系列技术障碍的克服,该法将会得到迅速普及。
反馈控制的FBC , 常常是依据个别指标来进行,在许多情况下,并不能奏效,尚需进行多因子分析。
FBC 还可采用“放料和补料” (withdraw and fill方法:发酵一定时间,产生了代谢产物后,定时放出一部分发酵液(可供提炼,同时补充一部分新鲜营养液,并重复进行。
维持一定菌体生长速率,延长发酵产物生产期,有利于提高产物产量,降低成本。
注意染菌。
如控制青霉素生产所用的葡萄糖流加的质量平衡法, 就是利用CO 2的反馈控制。
它是依靠精确测量CO 2的释放率CRR 和葡萄糖的流动速度,达到控制菌体的比生长速率和菌浓。
pH 值也可用作糖的流加控制的参数。
注意事项:
适宜料液比
无菌操作
碳氮平衡,经济合理。