内参基因
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基因组内参基因基因组是生物体最基本的遗传结构,其中记录着特定生物体所有进化过程中积累的特有信息。
它构成了生物体的遗传因子,负责控制和调节其生长发育、新陈代谢、受累过程和表型变化等等。
在基因组中有一类重要的基因,即参基因。
参基因(reference gene),也称为标准基因,指的是一种在不同器官、不同时间、不同处理条件下,表达量稳定的基因。
其主要作用是用来提供参照,和其他基因比较,检测后者表达改变的幅度和方向。
因此,参基因对于生物学实验的结果及解释起着重要的作用。
参基因的特性是在不同的生物系统中,表达量稳定。
其表达量的变化率处于某一范围之内,可以作为参考,用于比较两个器官或细胞的差别或差异。
它在植物、动物、微生物的基因组中都有广泛的应用,其表达量的变化稳定性是引物扩增法中质量控制的重要指标。
参基因的筛选主要是从基因组中全局进行搜索,从数量上而言,参基因通常是少数几十个,通常是在多个细胞类型中表达量相对稳定的基因,通常具有普遍的生物学功能、高度特异的表达模式与组织特异的表达模式。
另外,它们还应具有低的表达变异以及较低的标准偏差。
参基因的选择及应用是一个复杂的问题,它受多种因素的影响。
例如,运用的技术,研究对象的器官或细胞类型;它们的状态(活细胞和死细胞);它们是否已受外界刺激等等。
因此,选择参考基因时,必须考虑研究对象的生物特征。
基因组内参基因的发掘有很多思路,包括对拟南芥基因组的全基因组测序的历史数据分析,利用新一代测序技术,不同生物样本的复杂性分析,借助量子计算等。
在基因组内参基因的发现和筛选上,将更多地应用分子生物学和计算机科学的知识,以及多学科之间的交叉合作。
参基因可以作为基础基因,为生物体的统一解读提供参照。
未来,参基因将成为基因组研究、转录组研究、蛋白质组研究和体外实验等领域的重要工具。
它能够帮助我们更深入地理解基因表达调控机制,实现基因组信息的有效分析,从而发掘更多的生物学信息、寻求有效的新药物目标。
内参基因摘要:内参基因是一类在基因表达研究中被广泛应用的基因,它们在细胞中的表达不受外界条件和实验干扰的影响,并在分析基因表达水平时被用作参照基因。
本文将介绍内参基因的定义、特点和选择方法,并讨论其在基因表达研究中的重要性和应用前景。
第一部分:引言内参基因是指在特定细胞或组织中表达稳定且没有明显变化的基因,它们的表达水平被广泛应用于基因表达研究的标准化和比较。
与实验条件和处理无关,内参基因在基因表达分析过程中能提供一个相对稳定的参照点,从而减小实验误差。
在过去的几十年中,内参基因已成为基因表达研究中不可或缺的重要因素。
第二部分:内参基因的特点1. 表达稳定性:内参基因的表达水平相对稳定,不受外界条件和实验干扰的影响。
这使得内参基因成为一个可靠的参照标准。
2. 丰度适中:内参基因的表达水平应适中,既不能太高,也不能太低。
如果表达水平过高,会导致内参基因的扩增曲线过早饱和,影响定量结果的准确性。
3. 表达均匀性:内参基因的表达在不同样本中应该是均匀的。
这意味着在不同组织或条件下,内参基因的表达水平不会发生明显的变化。
第三部分:内参基因的选择方法内参基因的选择是基因表达研究中的一个关键环节。
目前常用的方法包括基于文献综述、生物信息学分析和实验验证等。
以下是一些常用的内参基因选择方法:1. 综合评估:通过综合考虑内参基因的表达稳定性、丰度适中性和表达均匀性等因素,从候选基因中筛选出最适合的内参基因。
2. 基因表达稳定性分析:利用统计学方法,比较多个候选内参基因的表达数据,选取具有最小变异的基因作为内参基因。
3. 基因表达数据库:利用公开的基因表达数据库,比如GEO数据库和TCGA数据库,分析不同基因在不同样本中的表达水平,选择表达稳定的基因作为内参基因。
4. 实验验证:通过逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)或实时定量PCR等技术,验证候选基因的表达稳定性和适用性。
第四部分:内参基因的应用前景内参基因在基因表达研究中的应用前景广阔。
鼠李糖乳杆菌内参基因
鼠李糖乳杆菌内参基因是一种常用的内参基因,它在基因表达研究中具有重要的作用。
内参基因是指在实验中不受处理影响,表达稳定的基因,用于标准化实验结果,以消除实验误差。
鼠李糖乳杆菌内参基因的选择是基于其在不同条件下表达稳定的特性。
鼠李糖乳杆菌是一种革兰氏阳性菌,广泛存在于自然界中。
它是一种重要的乳酸菌,可以用于制作酸奶、酸乳等乳制品。
鼠李糖乳杆菌内参基因的选择是基于其在不同条件下表达稳定的特性。
研究表明,鼠李糖乳杆菌内参基因gyrB、rpoB、recA、atpD、ldh等在不同条件下表达稳定,可以作为内参基因使用。
在基因表达研究中,内参基因的选择非常重要。
如果选择不当,会导致实验结果的误差,影响实验的可靠性和准确性。
因此,在选择内参基因时,需要考虑多个因素,如基因表达稳定性、表达水平、特异性等。
鼠李糖乳杆菌内参基因的选择是基于其在不同条件下表达稳定的特性,可以保证实验结果的准确性和可靠性。
总之,鼠李糖乳杆菌内参基因是一种常用的内参基因,具有表达稳定的特性,在基因表达研究中具有重要的作用。
在选择内参基因时,需要考虑多个因素,以保证实验结果的准确性和可靠性。
小鼠常用内参基因
小鼠常用内参基因是进行实验研究时非常重要的工具,内参基因是一种用于标准化实验结果的参照基因,用于减少实验中因样本差异和反应效率的影响。
在小鼠实验中,常用的内参基因包括GAPDH、β-actin和18S rRNA等。
GAPDH(糖酵解酶)是一种广泛存在于细胞中的酶,参与细胞内的糖酵解代谢过程,同时也是常用的内参基因。
在小鼠实验中,GAPDH 的mRNA水平是相对稳定的,因此可以作为实验中的内参基因使用。
另一个常用的内参基因是β-actin(β-肌动蛋白),β-actin
是构成细胞骨架的主要成分之一,也是一种常用的内参基因。
在小鼠实验中,β-actin的mRNA水平也是相对稳定的,因此可以用来进行实验结果的标准化。
18S rRNA是小鼠细胞中的核糖体RNA,也是常用的内参基因之一。
18S rRNA的mRNA水平在细胞中是相对稳定的,因此可以用来进行实验结果的标准化。
除了上述几种常用的内参基因外,还有许多其他的内参基因可以用于小鼠实验中。
但无论选择哪种内参基因,都需要进行验证,确保其在实验条件下的稳定性和可靠性。
只有选择合适的内参基因,才能保证实验结果的准确性和可靠性。
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tert基因内参基因内参基因的特性内参基因是用于归一化基因表达水平的稳定基因,在不同实验条件下其表达水平保持相对恒定。
理想的内参基因应具备以下特性:表达稳定性:在不同的组织、发育阶段、实验条件和处理下,表达水平始终保持稳定。
物种保守性:在不同物种中具有相似的序列和功能,以确保跨物种比较的准确性。
检测范围:具有足够的检测范围,以量化不同样品中的基因表达水平。
扩增效率:与目标基因具有相似的扩增效率,以避免引入偏差。
tert基因作为内参基因tert基因(端粒酶逆转录酶)编码端粒酶催化亚基,负责维持真核细胞端粒的长度。
它被广泛用作内参基因,因为它具有以下优点:表达稳定性: tert基因在多种细胞类型和实验条件下表现出稳定的表达,使其成为可靠的内参。
物种保守性: tert基因在不同的哺乳动物物种中高度保守,这使其适用于跨物种研究。
检测范围: tert基因的表达水平在不同样品中通常处于中等范围,使其在各种实验中都适用。
扩增效率: tert基因的扩增效率通常与典型目标基因相似,这有助于确保定量分析的准确性。
其他可用内参基因除了tert基因,还有其他常用内参基因,包括:GAPDH(甘油醛-3-磷酸脱氢酶):一种在糖酵解中起作用的家政基因,具有稳定的表达水平。
ACTB(β-肌动蛋白):一种参与细胞骨架形成的结构蛋白,在多种细胞类型中具有可靠的表达。
18S rRNA:一种核糖体RNA,其表达在不同组织和条件下通常保持稳定。
内参基因选择选择合适的内参基因至关重要,以确保基因表达分析的准确性和可靠性。
以下准则是内参基因选择的考虑因素:实验的具体要求和目标基因的特性。
组织类型和实验条件。
文献中已确定的可靠内参基因。
结论tert基因是常用的内参基因,具有表达稳定性、物种保守性、检测范围和扩增效率等优点。
它对于归一化不同实验条件下基因表达水平的分析至关重要。
然而,在选择内参基因时,应根据实验的具体要求和目标基因的特性进行仔细考虑。
肿瘤缺氧内参基因肿瘤缺氧是指肿瘤组织由于血液供应不足,导致细胞无法获得足够的氧气。
这种缺氧状态在肿瘤生长和发展过程中起着重要的作用。
在肿瘤缺氧的环境中,内参基因发挥着关键的调控作用。
内参基因是指在细胞内表达量相对稳定的基因,它们在细胞生物学研究中被广泛用作参考基因。
在肿瘤缺氧的环境中,内参基因可以帮助细胞适应缺氧的压力,调节相关基因的表达,从而影响肿瘤的发展进程。
研究发现,肿瘤缺氧会导致内参基因的表达发生变化。
一些内参基因在缺氧条件下表达量下降,而另一些内参基因则可能表达量增加。
这种变化可能会引起在研究中使用内参基因作为参照的误差,因此研究者需要选择合适的内参基因来准确评估目标基因的表达水平。
内参基因的选择应该考虑到其稳定性和在特定环境下的表达水平。
一些研究表明,在肿瘤缺氧的环境中,一些常规使用的内参基因,如GAPDH和β-actin,表达稳定性下降,不适合作为参考基因。
因此,研究者需要寻找新的内参基因来替代这些不适用的基因。
近年来,一些新的内参基因已经被提出,如HPRT、TBP和RPLP0等。
这些基因在肿瘤缺氧环境中的表达相对稳定,可以作为可靠的参考基因。
研究者可以通过实时荧光定量PCR等技术来检测这些内参基因的表达水平,从而准确评估目标基因的表达变化。
在研究肿瘤缺氧和内参基因的关系时,我们需要深入了解细胞内调控机制的细节。
了解细胞如何适应缺氧环境,如何调节基因的表达,对于揭示肿瘤发展的机制具有重要意义。
未来的研究可以进一步探索内参基因在肿瘤缺氧中的作用,寻找更准确、稳定的内参基因,为肿瘤治疗和预防提供更好的依据。
肿瘤缺氧是肿瘤生长和发展过程中的重要因素,而内参基因在肿瘤缺氧中的调控作用也不可忽视。
选择合适的内参基因可以准确评估目标基因的表达水平,帮助我们更好地理解肿瘤发展的机制。
未来的研究应该继续深入探索肿瘤缺氧和内参基因的关系,为肿瘤治疗提供更有效的策略。
内参基因筛选原理
内参基因是一种普遍存在于各种生物中的基因,其主要作用是参与细胞内基本代谢和生命活动过程。
在基因筛选中,内参基因往往被用作参照基因,以确保实验结果的准确性和可靠性。
内参基因筛选原理主要包括以下几个方面:
1. 选择稳定表达的基因:内参基因的表达水平应该相对稳定,
不受实验条件和处理影响,以确保筛选结果的可靠性和精度。
2. 确定表达水平:通过实时荧光定量PCR等技术,可以对内参
基因的表达水平进行定量分析,以确定其表达水平的稳定性和可靠性。
3. 比较不同内参基因的表达:在实验中,可以选择多个内参基因,比较其表达水平的差异和稳定性,以确定最适合的参照基因。
4. 优化实验条件:在实验中,应该尽可能控制各种因素的干扰,如反应体系、反应温度、酶浓度等,以确保内参基因的表达水平稳定、准确。
5. 验证筛选结果:在选择内参基因后,还需对其进行验证,以
确保其表达水平的稳定性和可靠性,避免在实验中产生误差和偏差。
总之,内参基因筛选的原理是通过选择稳定表达的内参基因,确定其表达水平的稳定性和可靠性,并优化实验条件,最终确定最适合的参照基因,以确保实验结果的准确性和可靠性。
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在相对定量中,内参基因的选择是非常关键的一步,因为它的表达量通常保持相对稳定,不会受到实验条件或因素变化的影响。
内参基因的选择通常取决于你的样本类型和实验设计。
通常可以选择β-actin、GAPDH、18S rRNA等作为内参基因。
对于内参基因的引物设计,需要注意以下几点:
1. 引物长度和GC含量:引物长度通常在18-27bp之间,GC含量在40%-60%之间。
过长或过短的引物可能导致引物自身折叠或与非特异性模板结合,影响扩增效率。
2. 引物碱基:避免使用嘌呤(A)嘧啶(T)单链互补序列,以减少引物二聚体形成和非特异性扩增。
同时,应避免使用三级结构中的特定碱基序列,以减少非特异性扩增。
3. 引物设计原则:引物设计时应该考虑退火温度,考虑上下游引物的最佳互补区域。
避免使用邻近的GC四联体,以防止形成引物二聚体,降低引物的特异性。
在靠近3'端的碱基处选择能提高PCR扩增效率的碱基。
同时考虑引物二级结构的形成,以免影响扩增效率。
至于具体的设计步骤,一般包括以下步骤:
1. 根据内参基因的序列信息设计一对特异性引物。
2. 优化引物的长度、GC含量、退火温度等参数,确保引物的特异性。
3. 进行引物特异性验证,可以使用不同来源的样品进行预实验,观察特异性扩增情况。
4. 根据实验需求和样品性质,调整引物浓度和其他实验参数,进行后续实验分析。
以上信息仅供参考,如需了解更多信息,请查阅相关文献资料或咨询专业人士。
内参基因的概念 Document number:PBGCG-0857-BTDO-0089-PTT1998内参即是内部参照,它们在各组织和细胞中的表达相对恒定,在检测基因的表达水平变化时常用它来做参照物。
其作用是校正上样量、上样过程中存在的实验误差,保证实验结果的准确性。
借助检测每个样品内参的量就可以用于校正上样误差,这样半定量的结果才更为可信。
一般要选择一个在处理因素作用的条件下不会发生表达改变的基因作内参。
在进行基因研究的过程中,实时反转录 PCR也和传统的mRNA定量方法如 Northern b lot技术等一样, 要求使用参照基因以校正转录效率和 cDNA用量, 弥补制备过程中样本纯度和浓度的差别, 使不同样本之间目的基因的比较成为可能,以期获得真实可靠的结果。
大多数分析方法中这些差别可通过与内参照比较处理消除。
最普通的内参照是内源性参照基因,也叫管家基因。
管家基因:又称持家基因(house-keeping genes)生物体各类细胞中都表达,其产物是对维持细胞基本生命活动所必需的蛋白质编码的基因。
如微管蛋白基因、糖酵解酶系基因与核糖体蛋白基因等。
是为维持细胞基本生命活动所需而时刻都在表达的基因。
管家基因表达水平受环境因素影响较小,而是在个体各个生长阶段的大多数、或几乎全部组织中持续表达,或变化很小。
它的表达只受启动序列或启动子与RNA聚合酶相互作用的影响,而不受其他机制调节。
管家基因高度保守并且在大多数情况下持续表达,因此管家基因常被用于分子技术--多位点基因分析。
内参基因通常是各种看家基因,在细胞内组成稳定性表达,有助于保持细胞的功能。
理想的内参基因应该满足以下条件:1, 不存在假基因(Pseudogene),以避免基因 DNA的扩增; 2,高度或中度表达,排除低表达; 3,稳定表达于不同类型的细胞和组织(如正常细胞和癌细胞),而且其表达量是近似的,无显着性差别; 4,表达水平与细胞周期以及细胞是否活化无关;5, 其稳定的表达水平与目标基因相似;6, 不受任何内源性或外源性因素的影响,如不受任何实验处理措施的影响.近年来的研究发现:这些常用内参基因均存在缺陷,在不同类型的细胞和组织细胞增殖和器官发育的不同阶段体外培养各种实验条件等情况下它们的表达量通常变异较大。
何为内参基因
1、我记得常用的就是[color=magenta]GAPDH[/color](3-磷酸甘油醛脱氢酶)和actin,至于什么是内参,可以打个比方,比如我们要比较两个不一样大的西瓜的含糖量,不好直接比较,那就找他们都有的东西来比较,就拿西瓜子嘛,假设西瓜子是均匀分布的,而且随着西瓜的变大,糖分的增多,西瓜子也变多,那么这个西瓜子就可以作为内参了!
不知比方准确否,请高手指教,共同进步!
2、内参基因一般会选管家基因,是维持细胞基本代谢活动所必须的基因,在各组织和细胞中的表达相对恒定,如:GAPDH、Actin、18S rRNA等
3、内参基因,表达稳定,通常用的有GAPDH,beta-actin,18s rRNA等
内参即是内部参照,它们在各组织和细胞中的表达相对恒定,在检测基因的表达水平变化时常用它来做参照物。
其作用是校正上样量、上样过程中存在的实验误差,保证实验结果的准确性。
借助检测每个样品内参的量就可以用于校正上样误差,这样半定量的结果才更为可信。
一般要选择一个在处理因素作用的条件下不会发生表达改变的基因作内参。
4、半定量RT-PCR和qPCR都需要内参,简单的说内参就是在你的那个培养条件下恒定表达的某个基因。
做内参就是以内参引物PCR扩增该内参基因,看在你选定的几个时间点是不是都恒定表达,如果恒定才能说明你做PCR选的RNA(一部发RT-PCR)或cDNA(两步法RT-PCR)的量是等量的,这样比较你的目的基因的丰度才有意义。
内参是相对的,不是绝对的,因为内参基因有时会受到影响。
量PCR问题--绝对定量与相对定量有什么区别?
绝对定量的目的是测定目的基因在样本中的分子数目,即通常所说的拷贝数。
相对定量的目的是测定目的基因在两个或多个样本中的含量的相对比例,而不需要知道它们在每个样本中的拷贝数。
举例来说,如果研究项目中包括处理过的和未经处理的对照样本,通常可以将未经处理的样本指定为基准,规定其目的基因浓度为100%,将经处理的样本的定量结果除以对照样品的定量结果,就可以计算各个处理样本的基因含量相对于未处理样品的百分比。
绝对定量实验必须使用已知拷贝数的绝对标准品,必须做标准曲线。
相对定量可以做标准曲线,也可以不做标准曲线。
相对定量实验有两种方法:标准曲线法和CT值比较法。
如果使用标准曲线法,可以使用绝对标准品,也可以使用相对标准品,而且相对标准品在实验操作上更为简便易行。
相对标准品是只知道样品中DNA或RNA的稀释比例而不需要知道其分子数目的标准品,典型的做法是将一个已知pg数的样品做一系列梯度稀释。
CT值比较法是利用CT值与起始DNA浓度的对数成反比的数学关系,来计算不同样本之间的相对百分比,其计算公式是
绝对定量的数据易于理解,但是绝对标准品的制备和测定其DNA含量比较困难。
有许多商业性的标准品试剂盒供选购,可以解决这种困难。
相对定量的标准品容易在实验室里自己制备,但是数据处理比较麻烦,对实验数据的解释有一定难度。
定量PCR问题--标准曲线法相对定量的数据应该怎么处理?
假设实验的目标是研究药物处理后0、24、48小时IL-2基因在某种组织中的表达量的变化,所用的内对照是18S RNA基因。
IL-2和18S RNA的测定结果都是总RNA的pg数,数据的处理方法
见下表:
定量PCR问题--什么是CT值比较法?数据怎么处理?
CT值与起始DNA浓度的对数成反比:
如果(1)不同管之间的PCR反应效率相同;(2)这些PCR的反应效率接近100%,可以从上面的公式推出相对含量(X01/X02) = 2 -ΔΔCT
假设实验的目标是研究药物处理后0、24、48小时IL-2基因在某种组织中的表达量的变化,所用内对照是18S RNA基因。
IL-2和18S RNA的测定结果都是CT值,而没有通过标准曲线测定总RNA的pg数。
数据的处理方法见下表:
定量PCR问题--定量PCR基因表达的实验数据应该如何处理?
总的来说,有三个层次的校正是必须要做的。
首先,参比信号校正。
试剂中必须包含固定浓度的ROX,这样由于反应总体积的差异、所在孔的位置不同、试管壁的厚度差异、管盖透光性能的差异等所引起的荧光信号波动都能够被扣除,使数据真正反映PCR进程。
ROX校正能够极大地改进定量的精确度,提高重复管之间的数据重现性。
其次,内对照校正。
实验中加入样品基本上都是以体积为单位的,但是同样体积的不同样品很可能来自不同数目的细胞,所以将实验结果校正到每个细胞的含量是必要的。
方法是在定量目的基因(如IL-2)的同时定量一个内对照基因(如18S RNA基因),然后IL-2/18S。
内对照校正使不同样品的实验数据可以相互比较。
第三,计算相对于基准样品(Calibrator)的相对基因含量。
比如研究处理和未处理的、0小时和6小时的、正常和患病的之间的基因表达的差别,则需要计算处理/未处理、6小时/0小时、患病/正常。