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细胞表面间接免疫荧光染色细胞表面间接免疫荧光染色是一种常用的细胞学实验技术，用于研究细胞表面蛋白的分布和表达。
该技术通过标记特定抗体，利用荧光染料对其进行可视化，从而在显微镜下观察和定位特定抗原在细胞表面的分布情况。
本文将详细介绍细胞表面间接免疫荧光染色的原理、步骤和应用。
一、原理细胞表面间接免疫荧光染色的原理基于免疫反应。
首先，需要选择与目标抗原特异性结合的一对抗体，其中一种抗体被称为一抗，另一种抗体被称为二抗。
一抗是直接与目标抗原结合的抗体，而二抗则与一抗结合。
一般情况下，一抗是小鼠或兔子产生的，而二抗是针对小鼠或兔子IgG的抗体。
二、步骤1. 细胞固定：将待染色的细胞固定在载玻片上，常用的固定剂包括甲醛、乙醛和冰乙酸。
2. 渗透：为了提高染色抗体的进入细胞的能力，需要对固定的细胞进行渗透处理。
一般使用0.1% Triton X-100或0.5% Tween 20进行渗透。
3. 阻断：为了防止非特异性结合，需要对细胞进行阻断处理。
常用的阻断剂包括牛血清白蛋白（BSA）和羊血清。
4. 一抗孵育：将合适浓度的一抗溶液加到载玻片上，与细胞孵育。
一抗与目标抗原结合后，可以利用荧光标记的二抗进行可视化。
5. 二抗孵育：将荧光标记的二抗溶液加到载玻片上，与一抗结合。
常用的荧光标记物有荧光素（FITC）、罗丹明（Rhodamine）和碳氰菲（Cy5）等。
6. 洗涤：将载玻片进行洗涤，去除未结合的抗体。
7. 封片：将载玻片倒置在抗褪色剂中，然后用封片胶封住玻片边缘，使样品不受空气氧化。
三、应用细胞表面间接免疫荧光染色广泛应用于生命科学领域，尤其在细胞生物学和免疫学研究中发挥重要作用。
具体应用包括：1. 细胞表面蛋白定位：通过荧光染色，可以观察和定位特定蛋白在细胞表面的分布情况，如受体、通道蛋白等。
2. 细胞凋亡检测：细胞表面间接免疫荧光染色可以用于检测细胞凋亡相关标志物，如细胞色素C和半胱天冬酶-3等。
3. 免疫细胞分型：通过特定抗体的染色，可以对免疫细胞进行分型，如T细胞、B细胞、巨噬细胞等。
实验三、间接免疫荧光法检测血清中抗核抗体一、实验目的：1、掌握免疫荧光法的原理。
2、掌握免疫荧光法检测过程中避免非特异荧光干扰的方法。
二、实验原理：间接免疫荧光技术是利用荧光抗体标记第二抗体检测未知抗原或未知抗体（第一抗体）的方法。
以检测人血清抗核抗体（ANA）为例。
病人血清中ANA（Ab）能与各种系细胞核成分（Ag）特异性结合，此种结合的Ab（IgG型）能与荧光标记的羊抗人IgG（二抗）结合，在荧光显微镜下，细胞核显示荧光，提示血清中ANA的存在。
三、试验材料：0.1M，pH6.8PBS；小白鼠，待测血清，对照血清（阴性血清），羊抗人IgG荧光抗体、滴管、试管、孵箱、荧光显微镜等。
四、实验步骤：1、小鼠断颈处死取肝，NS漂洗，剪取肝横断面印片于玻片上，左右各一处，自然干燥；滴加无水乙醇固定，室温凉干；2、左右印片处分别盖上一片小纸片，分别滴加阳性血清和阴性血清各1滴，37℃30′；3、去除纸片，PBS冲洗1min×3次，吸干水分；4、左右印片处分别盖上一片小纸片，并滴加荧光标记羊抗人IgG（二抗）各1滴，37℃305、去除纸片，PBS漂洗1min×3次，吸干水分；6、荧光显微镜镜检。
五、实验结果：荧光显微镜下观察：细胞核发黄绿色荧光为阳性染色细胞，不发荧光为阴性；抗原片中出现阳性染色细胞为ANA 阳性，否则为阴性；阳性待检血清可作进一步稀释后测定效价。
（均质型）细胞核呈均匀一致的荧光(斑点型)细胞核内呈现斑点状荧光六、实验讨论：1、注意事项：1）制作核抗原片（印片）不宜太厚；2）滴加的血清或荧光抗体要充分盖满抗原片；3）荧光抗体孵育时要注意避光;4）染色后的片子应及时镜检，不宜放置过久。
5）注意各步骤的漂洗要充分。
2、临床意义：1）总的ANA检测在临床诊断与鉴别诊断中是一个极为重要的筛选试验。
绝大多数自身免疫性疾病均可呈阳性。
ANA阳性者进一步检测各亚类ANA抗体对明确诊断、临床分型、病情观察、预后及治疗评价有重要意义。
间接免疫荧光法间接免疫荧光法(Indirect Immunofluorescence Assay,IFA)是一种常用的特异性检测技术，也是最常见的检测技术之一，可以用于检测抗原分子的特异性结合。
一、IFA的原理：在IFA技术中，使用两种不同的抗体，分别与检测抗原结合，以形成双重抗原抗体复合物，再用夹带抗体获得体外的特异性检测反应；其中，一种抗体称作抗体，另一种抗体称作夹带抗体，具有特定免疫能力，可以将抗原抗体复合物与另外特定抗原进行特异性结合，获得所需的检测反应，而后将夹带抗体对抗原抗体复合物设定与荧光探针结合，从而实现特异性检测。
二、IFA的操作步骤：1、样品处理：将抗原进行均质处理，获得悬浮液。
2、抗体处理：将样哮抗体在恒温下进行稀释，然后添加到抗原悬浮液中，放置回温处理反应，补充抗体，使抗原与抗体完全结合形成复合物。
3、夹带抗体处理：将夹带抗体加入复合物，在恒温下进行反应，以获得抗原/夹带抗体复合物，从而实现特异性检测。
4、荧光标记：将荧光探针与夹带抗体完全结合，使抗原/夹带抗体复合物呈现特定的荧光，从而实现特异性检测。
5、检测：利用适当的仪器检测复合物的活性，并完成IFA的检测。
三、IFA的应用：IFA可以直接用于病毒、细菌、植物、动物等微生物抗原的检测，也可以用于检测抗原蛋白、血清病原体等，具有一定的临床实用价值。
1、应用于病原体鉴定：通过将IFA进行优化，可以对人体和动植物病原体进行识别、诊断和鉴定，给临床实践带来重要的参考价值；2、应用于鉴定疾病：IFA还可以用于检测某种疾病的免疫检测，例如常见的疾病，如流感病毒、登革热病毒、结核分枝杆菌、沙眼衣原体、病毒性肝炎慢性病毒、HIV/AIDS等；3、应用于临床诊断：IFA可以用于对各种疾病进行鉴别诊断和检测，例如：癫痫、睑缝螨虫病、先天性心脏病、脑外膜炎、肺炎、病毒性心肌炎等疾病；4、应用于药物开发：可以在药物研究和开发中应用此技术，以研究对病原生物体或抗原分子的特异性作用，使药物开发进程更加准确、可靠；五、IFA技术优势：1、IFA是一种精确度高、特异性能强的检测技术，可实现灵敏性检测，快速和实时检测，有效提高疾病的检测效率；2、IFA有较强的合并性，可以同时结合不同的抗体，能够更好地检测抗原分子特异性反应；3、IFA具有较低的污染风险，实验中没有生物体的接触，可以有效地控。
间接免疫荧光法原理
间接免疫荧光法是一种常用的免疫学实验技术，用于检测目标物质在样品中的表达和定位。
它基于特定抗体与目标物质结合的原理，利用荧光标记的二抗来识别和定位特定抗体的位置。
该方法的步骤如下：
1. 准备样品：收集需要检测的样品，如细胞、组织或体液。
如果是组织样品，需要进行固定和切片处理；如果是细胞样品，需要将其培养在培养皿中。
2. 孵育样品：将样品与特定抗体共孵育，使特定抗体与目标物质结合。
这一步骤被称为一抗孵育，加强了对目标物质的识别和特异性。
3. 孵育引导二抗：将荧光标记的二抗与一抗结合。
这个二抗能够识别并结合到一抗上，从而引导荧光标记的二抗定位到目标物质附近。
4. 洗涤：洗涤样品，去除未结合的抗体和二抗，以减少背景噪音。
5. 荧光显微镜观察：将样品放置在荧光显微镜下观察，荧光显微镜可以激发荧光标记的二抗，使其发出可见光。
通过观察荧光信号的位置和强度，可以确定目标物质的存在和定位。
间接免疫荧光法的优点是灵敏度高、特异性好、可以同时检测
多个目标物质等。
它被广泛应用于生命科学研究和临床诊断中，如检测蛋白质、抗体、细胞标记和组织定位等。
96孔板间接免疫荧光实验步骤96孔板间接免疫荧光实验是一种常用的实验方法，用于检测特定抗原和抗体的结合情况。
以下是该实验的详细步骤，帮助您完成实验并获得准确的结果。
第一步：准备实验材料和试剂在进行实验前，确保准备好所需的试剂和材料，包括：1. 96孔板：用于进行实验的常用多孔板。
2. 抗原：待测物质，可以是细胞表面抗原、蛋白质、细菌等。
3. 抗体：具有高亲合力和特异性，用于与抗原结合。
4. 荧光标记的二抗：可以与抗体结合并发出荧光信号。
5. 缓冲液：用于稀释抗原和抗体的缓冲液。
第二步：包被抗原1. 取一小部分被测抗原，在适当的浓度下进行稀释。
2. 取出96孔板，并将稀释好的抗原加入孔中。
3. 在孔中加入适量的缓冲液，并在室温下静置一段时间，使抗原与孔壁结合。
第三步：阻断非特异性结合1. 弃去孔中的缓冲液。
2. 加入适量的蛋白质（如牛血清蛋白、羊血清蛋白等）作为阻断剂。
3. 在室温下静置一段时间，以防止非特异性结合。
第四步：加入抗体和二抗1. 弃去阻断剂，并用洗涤缓冲液洗涤孔中的抗原。
2. 加入适量的特异性抗体，并在室温下孵育一段时间，使其与抗原结合。
3. 弃去孔中多余的抗体，并用洗涤缓冲液洗涤孔中的抗原。
4. 加入适量的荧光标记的二抗，并在室温下孵育一段时间，使其与抗体结合。
第五步：荧光信号检测1. 弃去孔中多余的荧光标记的二抗，并用洗涤缓冲液洗涤孔中的抗原。
2. 加入适量的检测缓冲液以稀释孔中的荧光信号。
3. 使用荧光读板仪检测每个孔中的荧光强度。
4. 根据结果判断抗原和抗体的结合情况。
第六步：数据分析和结果解释对读取的荧光信号进行数据分析，比较不同孔中的荧光强度。
如果目标抗原与特异性抗体结合，荧光信号应相对较高。
通过对比各孔的荧光强度，可以得出抗原和抗体的结合程度以及目标物质的相对含量。
通过按照以上步骤进行实验，您可以获得准确的间接免疫荧光实验结果。
这种实验方法广泛应用于生物医学研究、诊断试剂的开发和药物筛选等方面。
间接免疫荧光试验步骤
间接免疫荧光试验(IFA)是一种用于检测抗体或抗原的灵敏方法。
以下是其基本步骤：
1.样品准备：根据待测样本类型（如贴壁细胞、悬浮细胞、组织等）
进行相应的处理。
对于贴壁细胞，需将洁净的盖玻片进行浸泡处理，并用无菌的镊子放置到培养皿中。
对于悬浮细胞，可以先进行固定步骤，然后将细胞滴加在载玻片上。
对于冷冻切片或石蜡切片，需进行相应的处理。
2.固定：固定是为了防止离体组织自溶和抗原扩散。
常用的封闭液
包括与二抗同一来源的血清、BSA或者是羊血清。
通透或固定后的样品需用PBS进行洗涤。
3.封闭：封闭是为了减少一抗和二抗与非特异性位点结合，常使用
山羊血清作为封闭液。
4.一抗孵育：根据一抗的说明书，按照适当比例用一抗稀释液稀释
一抗，吸水纸吸尽封闭液后，每张玻片滴加稀释好的一抗并放入湿盒，4℃孵育过夜。
洗涤后回收一抗。
5.二抗孵育：滴加适当稀释的荧光标记的二抗溶液，使其完全覆盖
标本，置于有盖搪瓷盒内，保温一定时间。
取出玻片，洗涤后加一滴缓冲甘油以盖玻片覆盖。
6.观察：立即用荧光显微镜观察标本的特异性荧光强度。
待检标本
特异性荧光染色强度达“++”以上，而各种对照显示为(±)或(-)，
即可判定为阳性。
请注意，这些步骤仅是间接免疫荧光试验的基本流程，实际操作中可能需要根据具体情况进行调整。
如果对具体操作有疑问，建议咨询专业人士。
活细胞间接免疫荧光法1 转染细胞4h后，用PBST洗涤三次。
2 固定。
用置于-20℃预冷的甲醇进行固定，500 ul/孔，室温作用10 min。
用PBST洗涤三次。
3 封闭4 一抗加入1：100倍稀释的阳性血清（用1%的BSA稀释）200 ul/孔，37℃作用1h。
用PBST 洗三次5 二抗加入1：500稀释的Alexa fluor 488标记的羊抗鸡IgY(用1%的BSA稀释)，200uL/孔，37℃作用lh。
用PBST洗涤三次。
6 荧光显微镜下观察结果。
转染Vero 细胞4h后，用PBST洗涤三次，用置于-20℃保存的冷丙酮(丙酮：乙醇=2：3)进行固定，500uL/孔，室温作用10min。
用PBST洗涤三次，加入1：100倍稀释的ARV阳性血清200uL/孔，37℃作用lh。
用PBST洗涤三次，加入1：500稀释的Alexa fluor 488标记的羊抗鸡IgY，200uL/孔，37℃作用lh。
用PBST洗涤三次一．实验器材：1．器材：40孔塑料板、40孔板离心机、微量加样器、振荡器、盖玻片、荧光显微镜等。
2．试剂：单抗隆抗体（单抗）、荧光标记抗鼠免疫球蛋白、PBS（pH7.2-7.4）、甘油、叠氮钠（NaN3）等。
二．方法（微量法）1．将分离好的单个核细胞用PBS洗2次，1000rpm每次10分钟。
用含0.1% NaN3PBS调细胞浓度在0.5-1×108/ml（5000万-1亿/ml），加在40孔板上，每孔10ul，含5-10×105细胞，然后加入单抗（第一抗体）50ul（同时加入AB型血清5ul）振荡混匀，置4℃，至少30分钟。
2．用含0.1%NaN3的PBS洗一次，1000rpm离心3-5分钟弃上清。
3．加荧光标记抗鼠抗体（第二抗体）工作液20ul，混匀振荡置4℃/30分钟（时间不能超过）。
4．用含0.1%NaN3的PBS洗2次，方法同上，弃上清，加入含60%甘油的PBS5-10ul（依据所加细胞量而定）振荡均匀，点片，并加盖玻片。
免疫荧光间接法注意事项1. 引言1.1 什么是免疫荧光间接法免疫荧光间接法是一种常用的免疫学实验技术，在细胞生物学和分子生物学研究中具有重要的应用。
通过利用特异性的抗体与待检测的抗原结合，然后使用荧光标记的二抗来识别和定位目标蛋白或细胞结构，从而实现对目标分子的定量或定位分析。
这种方法具有灵敏度高、特异性好、操作简便等优点，因此被广泛应用于科研领域。
免疫荧光间接法的原理是基于免疫学的理论，利用抗体与抗原特异性结合的原理来实现对待检测分子的检测和定位，其灵敏度和特异性取决于抗体的选择和标记的二抗的性能。
在实验中，需要注意一些关键因素，如样本处理、试剂及仪器选择、实验操作、数据分析和安全措施等。
通过严格遵循这些注意事项，可以确保免疫荧光间接法实验的顺利进行，并保证结果的准确性和可靠性。
【2000字】1.2 为什么需要注意事项在进行免疫荧光间接法实验时，需要特别注意一些事项，这是因为这种方法在生物学研究中扮演着非常重要的角色。
免疫荧光间接法是一种通过标记一种特定抗体来检测样品中特定蛋白质的方法，其原理是通过特异性抗体与特定抗原结合后，再通过荧光标记的二抗来实现信号的放大与检测。
这种方法通常用于检测蛋白质的表达水平、确定细胞的定位以及研究细胞间的相互作用等方面。
在实验过程中，如果没有按照正确的操作步骤进行，就会导致实验结果的不准确或是出现误差。
需要严格遵守一些注意事项，以保证实验的准确性和可靠性。
这些注意事项涉及到样本处理、试剂及仪器、实验操作、数据分析以及安全等方面，每一个环节都至关重要。
免疫荧光间接法的注意事项不仅仅是为了确保实验过程的顺利进行，更重要的是为了保证实验结果的准确性。
只有在遵守各项注意事项的前提下，我们才能得到可靠的实验结果，为科研工作提供有效的支持。
所以，我们必须认真对待免疫荧光间接法中的注意事项，以确保实验的顺利进行和结果的可靠性。
2. 正文2.1 样本处理注意事项在进行免疫荧光间接法实验时，样本处理是非常关键的一步，直接影响到实验结果的准确性和可靠性。
间接免疫荧光检测过程
嘿，咱今天就来讲讲那个间接免疫荧光检测过程哈。
记得有一次我在实验室里，要做这个检测。
那场面，就跟一场神秘的探险似的。
首先呢，咱得准备好样本，这就好比是要去探险得先找好装备一样。
把样本小心翼翼地放在玻片上，就好像给它找了个安稳的小窝。
接下来，就是加一抗啦。
这一抗就像是我们探险时的秘密武器，得准确地给它加到样本上，可不能有一点儿马虎。
然后呢，得让它好好地反应一会儿，这时候就感觉时间过得特别慢，就像等一个重要的消息一样焦急。
等了一阵子，就得把多余的一抗洗掉啦，就像把身上沾的灰尘洗掉一样。
接着，就是加二抗啦，二抗一加上，就好像给样本穿上了一件特别的外衣。
看着那些色彩慢慢显现出来，真的特别神奇。
再经过一系列的操作，最后在显微镜下观察，哇，那画面，就像打开了一个神奇的微观世界的大门。
看到那些荧光标记的地方，就像是找到了宝藏一样兴奋。
总之，这间接免疫荧光检测过程就像一场充满惊喜和挑战的旅程，每一步都得认真对待，才能最终看到那让人惊叹的结果呀。
这就是间接免疫荧光检测过程啦！。
间接免疫荧光法检测Ad-LMP2表达EBV-LMP2蛋白的活性
1 材料和仪器
293细胞
大鼠抗LMP2单克隆抗体
FITC标记山羊抗大鼠IgG抗体
荧光显微镜
2 检测方法
2.1 293细胞接种到24孔板中, 1.5~2.0×105个细胞/孔，37℃，5% CO2培养箱培养过夜，细胞生长成片。
2.2 每个细胞孔感染2.0×106VP供试品重组腺病毒，同时设置293细胞阴性对照孔。
37℃，5% CO2培养箱培养两天，细胞完全病变。
2.3 收集293细胞。
用PBS洗涤两次，重悬到100µlPBS缓冲液中，每孔10µl 涂于细胞片上，室温自然晾干。
2.4 将细胞片置于4℃丙酮中固定15分钟，PBS洗两次，室温晾干。
2.5 PBS浸泡10min，用PBS（含0.05%Triton-X100）浸泡通透25min。
2.6 用10%胎牛血清室温封闭40min。
2.6 细胞孔使用1：20 PBS稀释抗体，置于湿盒中，37℃孵育1小时。
PBS洗8~9遍，保持湿润。
2.7 覆盖1：40稀释的FITC标记（PBS稀释）的羊抗大鼠IgG，置于湿盒中，37℃孵育30分钟。
PBS洗8~9遍，室温晾干。
(如用PBS有颗粒沉淀)
2.8 伊文氏蓝负染5分钟。
超纯H2O洗3遍，室温晾干。
2.9 50%甘油封片。
2.10 显微镜下观察照相。
3 结果判定
显微镜下观察阴性对照孔细胞呈红色，供试品孔细胞可以看到明显的绿色荧光，即判定为阳性。
检测结果应为阳性。
注：1、每一步均需晾干，细胞浓度可以比较高。
2、水洗效果要好，无盐粒子颗粒。
3、丙酮固定过夜效果较好。
PBS稀释。
当然最好用封闭液直接稀释，再加一点TritonX100效果好。
培养液成分太多了。
而且固定之后细胞都死了，用培养液没什么意义，只要保证其pH等条件适合就好了。
抗体说明书上都会有推荐的稀释倍数。
上网查一下，有很多protocol。
一般一比几百到一万都有，依抗体而定。
可以4度过夜，这样染色效果好。
二抗一般较便宜，一般1：50到1：200多。
Jdzhangwenjun525@
1. 直接免疫荧光法测抗原
（1）基本原理
将荧光素标记在相应的抗体上，直接与相应抗原反应。
其优点是方法简便、特异性高，非特异性荧光染色少。
缺点是敏感性偏低；而且每检查一种抗原就需要制备一种荧光抗体。
此法常用于细菌、病毒等微生物的快速检查和肾炎活检、皮肤活检的免疫病理检查。
（2）试剂与仪器
λ磷酸盐缓冲盐水（PBS）：0.01mol/L，pH7.4
λ荧光标记的抗体溶液：以0.01mol/L，pH7.4的PBS进行稀释
λ缓冲甘油：分析纯无荧光的甘油9份+ pH9.2 0.2M碳酸盐缓冲液1份配制
λ搪瓷桶三只（内有0.01mol/L，pH7.4的PBS 1500ml）
λ有盖搪瓷盒一只（内铺一层浸湿的纱布垫）
λ荧光显微镜
λ玻片架
λ滤纸
λ37℃温箱等。
（3）实验步骤
①滴加0.01mol/L，pH7.4的PBS于待检标本片上，10min后弃去，使标本保持一定湿度。
②滴加适当稀释的荧光标记的抗体溶液，使其完全覆盖标本，置于有盖搪瓷盒内，保温一定时间（参考：30min）。
③取出玻片，置玻片架上，先用0.01mol/L，pH7.4的PBS冲洗后，再按顺序过0.01mol/ L，pH7.4的PBS三缸浸泡，每缸3-5 min，不时振荡。
④取出玻片，用滤纸吸去多余水分，但不使标本干燥，加一滴缓冲甘油，以盖玻片覆盖。
⑤立即用荧光显微镜观察。
观察标本的特异性荧光强度，一般可用“+”表示：
（-）无荧光；（±）极弱的可疑荧光；（+）荧光较弱，但清楚可见；（++）荧光明亮；（+ ++ ++++）荧光闪亮。
待检标本特异性荧光染色强度达“++”以上，而各种对照显示为（±）或（-），即可判定为阳性。
（4）注意事项
1)对荧光标记的抗体的稀释，要保证抗体的蛋白有一定的浓度，一般稀释度不应超过1：20，抗体浓度过低，会导致产生的荧光过弱，影响结果的观察。
2)染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化，染色时间可以从10 min到数小时，一般30 min已足够。
染色温度多采用室温（25℃左右），高于37℃可加强染色效果，但对不耐热的抗原（如流行性乙型脑炎病毒）可采用0-2℃的低温，延长染色时间。
低温染色过夜较37℃30 min效果好的多。
3)为了保证荧光染色的正确性，首次试验时需设置下述对照，以排除某些非特异性荧光染色的干扰。
①标本自发荧光对照：标本加1-2滴0.01mol/L，pH7.4的PBS。
②特异性对照（抑制试验）：标本加未标记的特异性抗体，再加荧光标记的特异性抗体。
③阳性对照：已知的阳性标本加荧光标记的特异性抗体。
如果标本自发荧光对照和特异性对照呈无荧光或弱荧光，阳性对照和待检标本呈强荧光，则为特异性阳性染色。
4)一般标本在高压汞灯下照射超过3min，就有荧光减弱现象，经荧光染色的标本最好在当天观察，随着时间的延长，荧光强度会逐渐下降。
2.间接免疫荧光法测抗体
（1）基本原理
染色程序分为两步，第一步，用未知未标记的抗体（待检标本）加到已知抗原标本上，在湿盒中37℃保温30min，使抗原抗体充分结合，然后洗涤，除去未结合的抗体。
第二步，加上荧光标记的抗球蛋白抗体或抗IgG抗体。
如果第一步发生了抗原抗体反应，标记的抗球蛋白抗体就会和已结合抗原的抗体进一步结合，从而可鉴定未知抗体。
（2）试剂与仪器
λ磷酸盐缓冲盐水（PBS）：0.01mol/L，pH7.4
λ缓冲甘油：分析纯无荧光的甘油9份+ pH9.2 0.2M碳酸盐缓冲液1份配制。
λ荧光标记的抗人球蛋白抗体：以0.01mol/L，pH7.4的PBS进行稀释。
λ搪瓷桶三只（内有0.01mol/L，pH7.4的PBS 1500ml）
λ有盖搪瓷盒一只（内铺一层浸湿的纱布垫）
λ荧光显微镜
λ玻片架
λ滤纸
λ37℃温箱等。
（3）实验步骤
1)滴加0.01mol/L，pH7.4的PBS于已知抗原标本片，10min后弃去，使标本片保持一定湿度。
2)滴加以0.01mol/L，pH7.4的PBS适当稀释的待检抗体标本，覆盖已知抗原标本片。
将玻片置于有盖搪瓷盒内，37℃保温30min。
3)取出玻片，置于玻片架上，先用0.01mol/L，pH7.4的PBS冲洗1-2次，然后按顺序过0. 01mol/L，pH7.4的PBS三缸浸泡，每缸5min，不时振荡。
4)取出玻片，用滤纸吸去多余水分，但不使标本干燥，滴加一滴一定稀释度的荧光标记的抗人球蛋白抗体。
5)将玻片平放在有盖搪瓷盒内，37℃保温30min。
6)重复操作3。
7)取出玻片，用滤纸吸去多余水分，滴加一滴缓冲甘油，再覆以盖玻片。
8)荧光显微镜高倍视野下观察，结果判定同直接法。
（4）注意事项
1)荧光染色后一般在1h内完成观察，或于4℃保存4h，时间过长，会使荧光减弱。
2)每次试验时，需设置以下三种对照：
①阳性对照：阳性血清+荧光标记物
②阴性对照：阴性血清+荧光标记物
③荧光标记物对照：PBS+荧光标记物
3. 已知抗原标本片需在操作的各个步骤中，始终保持湿润，避免干燥。
4. 所滴加的待检抗体标本或荧光标记物，应始终保持在已知抗原标本片上，避免因放置不平使液体流失，从而造成非特异性荧光染色。
For immunof luorescence analysis, cells were grown on coverslips, fixed in 4% paraformaldehyde for 20 min, and permeabilized with 0.5% Triton X-100 (Sigma) in PBS for 15 min, both at room temperature.。
