转基因动物制备的方法的

转基因动物方法简介动物转基因办法简介转基因动物就是基因组中含有外源基因的动物。

它是根据预先的设计，通过细胞融合、细胞重组、遗传物质转移、染色体工程和基因工程技术将外源基因导入精子、卵细胞或受精卵，再以生殖工程技术，有可能育成转基因动物。

原核显微注射法（原核期细胞：受精卵的两个核未融合时期的细胞）目前最常用的转基因动物生产办法，又称DNA显微注射法，即通过显微操作仪将外源基因直接用注射器注入受精卵，利用外源基因整合到DNA中，发育成转基因动物。

其创始人是Jaenisch和Mintz 等。

Gordon等和Palmiter等先后通过此办法获得转基因动物。

此办法目前应用较普遍，现在的转基因动物讨论大都是在Palmiter等办法的基础上有所改进而举行的。

王敏华(1996)报道用显微注射法转移抗瘟病毒核酸酶基因，获得了转基因兔。

KrimPenfort运用体外培养胚胎再施用显微注射法获得了转基因牛这种办法的特点是外源基因的导入整合效率较高，不需要载体，直接转移目的基因。

它可以直接获得纯系（应当也不一定，如上述鱼的状况），所以试验周期短。

但需要贵重精密仪器，技术操作较难，并且外源基因的整合位点和整合的拷贝数都无法控制，易造成宿主动物基因组的插入突变，引起相应的性状转变，重则致死外源基因整合到受体基因组的时机，将打算转基因动物是否发育成嵌合体，如整合发生在第一次卵裂前，即发生在DNA合成的S期，外源基因将随染色体的分别匀称的分布到每一个细胞，得到的转基因动物是纯合体，反之，得到的将是嵌合体。

显微注射转基因的实践证实，受精卵DNA合成的S期是显微注射的相宜时机。

但因为整合需要一段时光，等目的基因整合至染色体后，受精卵早已分裂多次，故很难得到纯合体。

如鱼类在原肠胚早期才开头整合，而此时细胞已多值几千，此时转植基因在每个细胞内的整合状况不行能全都，所以第一代转基因鱼总是嵌合体。

哺乳动物受精卵的单细胞期阶段较长，还有可能得到纯合体的转基因动物。

转基因小鼠制备方法一、引言转基因小鼠是指通过基因工程技术将外源基因导入小鼠基因组中，使其表达或缺乏特定基因，从而研究基因功能、疾病模型等方面的动物模型。

转基因小鼠制备方法是实现转基因小鼠研究的重要步骤之一，本文将详细介绍转基因小鼠制备的一般步骤和常用技术。

二、转基因小鼠制备的一般步骤1. 选择目标基因和载体转基因小鼠制备的第一步是选择目标基因和适当的载体。

目标基因可以是外源基因、特定基因的突变体或基因敲除。

载体通常是带有选择标记（如抗生素抗性基因）和目标基因的质粒。

2. DNA构建在DNA构建过程中，首先需要将目标基因和选择标记基因插入到载体的适当位点上。

这可以通过限制性内切酶切割和连接、PCR扩增等方法实现。

构建完成后，需要进行酶切鉴定和测序确认。

3. 体外培养胚胎干细胞（ES细胞）转基因小鼠制备中常用的方法是利用ES细胞技术。

首先，从小鼠胚胎中获得内源性干细胞（ES细胞），并进行体外培养。

然后，将构建好的转基因载体导入ES细胞中，通过抗生素筛选获得带有目标基因的转基因ES细胞克隆。

4. 转基因小鼠制备转基因ES细胞的制备完成后，可以进行转基因小鼠的制备。

这一步骤通常有两种方法：内源性重组和外源性重组。

内源性重组是将转基因ES细胞注射到小鼠早期胚胎中，使其整合到小鼠的生殖细胞中，从而获得转基因小鼠。

外源性重组是将转基因ES细胞直接注射到小鼠的细胞团中，形成转基因胚胎，再将转基因胚胎移植到雌性小鼠子宫中，使其发育成为转基因小鼠。

5. 转基因小鼠鉴定转基因小鼠制备完成后，需要对其进行鉴定。

通常采用PCR、Southern blotting、Western blotting等分子生物学方法，检测转基因小鼠是否成功表达目标基因。

三、常用技术1. CRISPR/Cas9技术CRISPR/Cas9是一种新兴的基因编辑技术，可以实现高效、精确地对基因组进行编辑。

通过CRISPR/Cas9技术，可以直接在小鼠胚胎中进行基因编辑，从而制备转基因小鼠。

利用基因编辑技术制备转基因动物的步骤详解基因编辑技术是一种革命性的生物技术，可以针对动植物基因组进行精确的改造和编辑。

利用基因编辑技术制备转基因动物的过程可以分为以下几个步骤。

第一步：选择基因编辑工具基因编辑技术最常用的工具是CRISPR-Cas9系统。

CRISPR是一种天然存在于细菌中的防御机制，通过引入Cas9蛋白和合适的RNA序列，可以将Cas9蛋白导向到特定的目标位点上，由Cas9蛋白的核酸切割活性引发基因组的突变。

第二步：设计目标位点在制备转基因动物之前，需要确定需要编辑的目标基因和位点。

目标基因是指需要进行改造的基因，而目标位点是指基因组中需要敲除、替换或插入外源DNA 的具体位置。

通过分析目标基因的功能和调控机制，可以确定最合适的目标位点。

第三步：合成或构建基因编辑工具一旦确定了目标位点，就需要合成或构建基因编辑工具。

对于CRISPR-Cas9系统来说，需要合成目标位点特异性的RNA序列（sgRNA）并制备Cas9蛋白。

sgRNA的设计应考虑到其与目标位点的特异性配对，以及Cas9蛋白与sgRNA形成稳定复合物的效率。

第四步：基因编辑载体构建将基因编辑工具导入目标细胞需要利用载体进行传递。

载体是一种能够稳定地携带和传递基因编辑工具的DNA分子。

可以利用分子克隆技术构建适合目标细胞和目标基因编辑的载体。

第五步：转染或注射基因编辑载体将构建好的基因编辑载体转染或注射至目标细胞或受精卵。

其中转染是将载体通过化学物质或物理手段导入目标细胞，而注射则是直接将载体注入受精卵的质量或染色体。

第六步：筛选和验证编辑结果将转染或注射后的细胞或胚胎进行培养或转植至合适的宿主动物体内，随后通过对细胞或胚胎的分析，筛选出已经发生基因编辑的个体。

常用的筛选方法包括PCR、测序、蛋白质分析等。

第七步：繁殖和鉴定转基因动物成功筛选出发生基因编辑的个体后，需要进行进一步繁殖和鉴定。

通过鉴定转基因动物是否将所需编辑传递给其后代，可以确定基因编辑是否遗传稳定。

小鼠转基因技术流程ES细胞打靶在小鼠ES细胞中，利用同源重组原理（也就是核苷酸序列在两个相似或相同的DNA 分子之间交换的基因重组），获得带有研究者预先设计的遗传修饰的中靶ES细胞。

经过遗传修饰的ES细胞仍然保持分化的全能性，可以发育为嵌合体动物的生殖细胞，使得经过修饰的遗传信息经生殖系遗传，最终获得基因修饰小鼠模型。

发展至今，仍是最为经典、可靠的小鼠基因修饰或编辑技术。

目前南模生物可提供3种遗传背景的小鼠ES细胞：C57BL/6，129/S6，B6;129。

可用于获得以下类型小鼠模型：•基因敲除•条件性基因敲除•KO first•基因敲入•点突变•条件性点突变•定点基因过表达•人源化南模生物会对每个项目进行分析与评估，综合时间与风险因素从而选用最合适的技术（ES 细胞打靶或CRISPR基因编辑）。

联系我们，与南模生物的技术顾问讨论如何应用ES细胞打靶技术获得您的动物模型吧！利用ES细胞打靶技术获得小鼠模型的一般流程1.设计并构建同源重组载体2.将同源重组载体转入小鼠ES细胞中3.筛选并验证中靶的阳性ES细胞克隆4.将阳性ES细胞注射到小鼠囊胚腔中5.将注射后的小鼠囊胚移植到假孕母鼠子宫内6.获得并筛选验证阳性嵌合体小鼠F07.阳性F0通过与野生型小鼠或FLP小鼠交配获得F1代杂合子小鼠CRISPR基因编辑CRISPR / Cas9核酸酶系统需要两个组分：用于切割靶序列的Cas酶和与20个碱基对（bp）的靶序列结合指导RNA（sgRNA）。

利用靶点特异性的sgRNA 指导 Cas9 核酸酶在基因组上的特定靶点进行DNA双链剪切。

通过非同源末端连接（NHEJ）可导致移码突变，实现基因敲除（KO）；通过同源重组修复（HR）可将外源片段整合到基因组指定位点（KI）。

CRISPR基因编辑技术的优势•与传统的基因打靶方法相比，大大缩短了研发周期。

•打破对小鼠遗传品系的限制，实现不同遗传背景或在已有基因修饰小鼠模型基础上的基因编辑。

转基因动物及其在医学中的应用转基因动物是指通过加减特定的DNA片段而改变了基因构成和性状的动物，也可以认为是指体内基因组中稳定地整合有外源基因的动物。

该项技术始于80年代初，很快便成为研究动物基因表达特性及其功能的重要手段，在基因表达的调控机制等方面的基础理论研究、家畜家禽的遗传性状改造、培育能为人类提供器官移植材料的家畜、培育人类疾病的模型动物、作为生物反应器主产工业和医学所需要的珍贵生物活性蛋白等方面被广泛应用。

本文主要对其在人类医学方面的应用现状及前景作以论述。

1 转基因动物的制备技术用以培育转基因动物的技术叫做转基因技术或基因转移。

其总体过程是：首先从某种动物分离目的基因或人工构建该目的基因，把该目的基因在体外进行重组和扩增，然后再把加工好的目的基因设法导入另一个同种或异种动物受精卵的原核内(或细胞质内)，使其稳定地整合到受体细胞的基因组中，最后使该受精卵发育成携带外源目的基因的个体，即产生了转基因动物。

目前常用的转基因技术主要有：1)原核内显微注射法是将在体外构建的目的基因，在显微操作仪下用极细的微吸管注射到处于原核时期的受精卵的原核中，让这种外源基因通过某种方式整合到受体细胞的基因组中去，以实现转基因的目的。

2)转染技术主要以RNA病毒或DNA病毒为载体，在体外将目的基因或连同启动子等序列一同重组到病毒的核酸载体上。

再让该病毒感染受精卵或胚胎于细胞，利用载体病毒具有主动整合到受体细胞基因组中去的特性，让其连同所携带的目的基因等也一同整合到受体细胞的基因组上去。

90年代后又出现了两种较新的方法，即基因剔除和基因楔入技术。

3)细胞载体技术主要使用胚胎干细胞(ES)作为操作对象。

胚胎干细胞是从哺乳动物早期胚胎的内细胞团中分离得到的一种二倍体细胞，可在体外培养并保持全能分化的潜能，一旦回复到适当的环境条件下即可形成胚系集落。

可以用转基因技术将外源目的基因转移到胚胎干细胞中，通过同源重组或转换的方法使外源基因整合到胚胎干细胞的基因组中。

1、转基因动物的制备原理，应用领域及存在的问题制备原理：是将改建后的目的基因用显微注射等方法注入实验动物的生殖细胞(或者床前胚胎细胞),然后将此受精卵(或者床前胚胎细胞)再植入受体动物的输卵管(或子宫)中,使其发育成携有外源基因的转基因动物。

应用领域：1、生产药用如：蛋白国际上首批转基因动物乳腺表达产品是抗凝血酶，葡萄糖苷酶以及第八凝血因子（1H）等。

我国科学家把乙肝病毒表面抗原基因注入家兔的受精卵中，获得了表达。

将能够控制产卵率的促卵素（+99B99@D）基因导入动物体内，有可能培育出具有高产卵率特性的转基因家畜。

2、动物抗病育种利用转基因技术有可能在较短时间内培育出常规方法不能或需长期培育才能育成的品种或种群。

如R9A786DBE等（(55S）将人的补体抑制因子——衰退加速因子，转移至猪胚中，有PQ头转基因猪表达。

3、改良动物生产性能Pursel等曾把牛的生长激素基因转入猪，其生长速度提高11%~14%；美国科学家培育的转基因鲁鱼可增产20%~40%4、作为人类器官移植的供体猪在解剖、组织及生理等方面与人类最为相近，其器官与人的器官大小相仿，并且容易饲养。

Ro sengard(1995)将人的补体抑制因子——衰退加速因子(hDA F)转移至猪胚中，有27头转基因猪表达hDA F。

存在的问题：转基因动物技术存在的主要问题是转基因动物成活率低，外源基因在宿主细胞组中的整合率很低，且外源基因的整合位点不可控制，已整合的外源基因很容易从宿主基因中消失，遗传给后代的概率也较低，外源基因有时不能表达或表达混乱，得不到预期的表型效应，且容易引起动物异常。

另外，转基因动物产品安全性问题及法规制定尚处于探索阶段。

2、《实验动物学与动物实验技术》在生物医学研究领域的地位与发展前景。

地位：1、实验动物学与动物实验技术是生物医学研究的重要基础实验动物和动物实验是医学研究的重要基础和手段。

在生物医学研究领域内，目前公认“AEIR”是进行生物医学突验研究所必需的四个基本条件。

转基因小鼠制备实验方法1、选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG(10 IU)。

2、 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG(0.8 IU)，并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠(2月龄以上)作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。

3、第二天上午9:00前观察供体、受体，有精栓者拿出备用。

受体笼拿出作好隔离措施。

4、10:30左右，断颈处死供体，手术取出整个输卵管，放入透明质酸酶~0.3mg/M2液中。

显微镜下，用镊子撕开输卵管壶腹部，受精卵随同颗粒细胞即一同流出。

5、仔细观察放在透明质酸酶M2液中的受精卵，当受精卵周围的颗粒细胞脱离时，将受精卵吸出，放入M2液中洗涤，最后放在M16液中放入5% CO2，37C0培养箱培养。

6、在显微镜下观察，挑选细胞饱满，透明带清晰，雄原核清晰可见的受精卵待用。

7、安装持卵针和注射针，使其末端平行于载物台，在凹玻片的中央滴入一滴M2液，覆盖石蜡油，移入待注射的受精卵。

DNA在注射针中的气泡应在先前全部弹走。

8、在高倍镜下，将注射针轻触持卵管，使DNA缓慢流出并控制其流量；反复吹吸受精卵，使其处于最佳位置，将注射针刺入受精卵的雄原核，直至看到原核膨大即退出。

将注射过的和未注射过的受精卵上下分开放置，不致于混搅，注射完毕后，放入5% CO2，37C0培养箱培养。

9、将受体麻醉，注射计量为1%戊巴比妥钠0.01ml/g，腹腔注射。

手术取出卵巢连接输卵管，用脂肪镊固定，在显微镜下找到输卵管开口。

吸取注射后经培养成活的受精卵，吸取方法是先吸一段较长的M2，吸一个气泡，然后吸取受精卵，尽量紧密排列，再吸一段液体，吸一个气泡，再吸一段液体，共四段液体三个气泡。

除较长的那段液体，其余的液体大致1cm 左右，气泡0.2cm左右。

将移植管口插入输卵管口，轻轻将移植管内的液体吹入，看到输卵管壶腹部膨大并清晰地看到三个气泡，即移植成功。

转基因动物的制作方法转基因动物啊，这可是个挺神奇的领域呢！要制作转基因动物，就好像是在给动物的生命之书进行改写。

咱先来说说最常见的一种方法吧，那就是显微注射法。

这就好比是一个超级精细的手术，科学家们要把含有特定基因的DNA片段，小心翼翼地注射到动物的受精卵里。

想象一下，那小小的受精卵就像是一个等待被雕琢的艺术品，而科学家就是那个技艺高超的雕刻师，要精准地把新的基因放进去，这可不是一般人能做到的呀！这过程得多小心，多细致啊，稍微有点偏差，可能就前功尽弃啦。

还有一种方法叫体细胞核移植法。

这就好像是给动物来了一次“换核大变身”。

把含有目的基因的细胞核取出来，放到另一个去掉细胞核的卵细胞里，然后让这个新的组合发育成一个完整的个体。

这多神奇啊，就像是给动物来了一次彻底的改造，让它拥有了原本没有的特性。

另外呢，还有基因编辑技术。

这就像是有一把神奇的剪刀，可以在动物的基因上精准地进行剪切和粘贴。

把不好的基因剪掉，把好的基因放进去，让动物变得更符合我们的期望。

不过啊，制作转基因动物可不是随随便便就能成功的。

这需要大量的实验和研究，需要科学家们花费无数的时间和精力。

而且，这中间还可能会遇到各种各样的问题和挑战呢。

就说那注射的过程吧，稍有不慎可能就会损伤到受精卵，那可就全白费啦。

还有啊，转基因动物也会引发一些争议呢。

有人会担心它们会不会对环境造成影响，会不会带来一些意想不到的后果。

这就像是打开了一个潘多拉的盒子，谁也不知道里面到底会跑出什么东西来。

但是呢，咱也不能因为有争议就不研究啦。

转基因动物在很多方面还是有很大用处的呀。

比如说在医学研究上，可以用它们来模拟人类的疾病，帮助我们找到更好的治疗方法。

在农业上，也可以让动物长得更快、更健康，为我们提供更多的食物。

总之呢，转基因动物的制作方法是一门高深的学问，需要科学家们不断地探索和创新。

虽然有挑战和争议，但也有着无限的可能。

我们要以一种开放和谨慎的态度来看待这个领域，让它为我们的生活带来更多的好处。

绪论1.细胞培养与组织培养：属于体外培养，是指生物细胞和组织在离体条件下的生长和增值。

细胞的离体培养称为细胞培养，组织的离体培养称为组织培养。

2.细胞融合：又称细胞杂交，是指两个或两个以上的细胞融合形成一个细胞的过程。

3.细胞核移植：是利用显微镜操作技术将细胞核与细胞质分离，然后再将不同来源的核与质重组，形成杂合细胞的过程。

4.干细胞：是动物体内具有分化潜能、并能自我更新的细胞，分为胚胎干细胞和组织干细胞。

5.转基因动物：是通过基因工程技术将外源的目的基因导入受体动物染色体内，外源基因与动物基因整合后随细胞的分裂而扩增，在体内表达并能稳定地遗传给后代的动物。

第一章1.细胞工程实验室与其他一般实验室的区别：要求保持严格无菌环境、避免微生物及其他有害因素的影响。

2.细胞工程能进行的六方面工作：无菌操作、培养、制作、清洗、消毒灭菌处理和储藏。

3.植物细胞工程实验室特殊的设置：光照条件的培养箱、试管苗需要温室和移植驯化室。

4.细胞工程实验室通用的仪器设备：超净工作台、二氧化碳培养箱、倒置显微镜、电热干燥箱、水纯化装置、低温装置、高压蒸汽消毒器。

5.实验室的生物安全分为p1，p2 ，p3 和p4四个生物安全等级，其中P4生物安全实验室等级最高。

第二章1.清洗的主要目的是清除培养器皿中的杂质和微生物等影响细胞生长的成分。

2.细胞培养过程中主要使用两类消毒方法:物理灭菌法法和化学消毒法。

物理法灭菌法：a.紫外线法适用于无菌室或超净工作台的台面等大面积消毒。

紫外线照射工作台面的距离不应超过1.5cm,照射时间以30min左右为宜。

（注意：紫外灯关闭5min后方可进入使用）b. 湿热消毒:适用于含有不耐热成分的培养基和试剂的消毒，为121.3℃，20min .（注意点：加足水、排尽气、气压降到0时才能打开盖）c.干热消毒法:适用于消毒玻璃仪器，160℃以上，并保持90~120min，以杀死细菌和芽孢 d.过滤除菌：是将液体或气体用微孔薄膜过滤,薄膜0.22~0.45um直径。

建立转基因动物有哪几种途径
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本文概述：目前虽然没有食用转基因动物，转基因动物在医学上有重要作用。

人们做实验，器官移植都需要转基因动物。

那么建立转基因动物有哪几种途径呢？下面和小编一起了解下吧。

生活中虽然没有食用转基因动物，人们做实验，器官移植都需要转基因动物，转基因动物在医学上有起着重要作用。

那么建立转基因动物有哪几种途径呢?下面和小编一起了解下吧。

建立转基因动物三种常用的转基因方法：
显微注射法是直接将重组DNA分子以微注射的方式导入单细胞卵的原核中，再将它植入假孕母鼠。

大约20%的微注射胚胎能够将外源基因整合到染色体基因上组上;大多数的转基因的动物能够将整合的基因传给后代，建立起转基因鼠系。

逆转录病毒感染法是用高滴度的、携带外源基因的重组逆转录病毒感染发育早期的胚胎，再将感染病毒后的胚胎植入假孕母鼠，以产生转基因的动物。

逆转录病毒的整合并不影响宿主DNA序列的重排，感染的复数容易调整，每个卵大约有10次整合的机会。

病毒染色体还能提供一个TAG分子，加速覆盖部位的迅速克隆。

这些特征使逆转录病毒转基因法用于研究随机突变。

从ES细胞到转基因动物是从哺乳。

制备转基因动物的方法制备转基因动物的方法有很多，以下是一些常见的方法：1. 显微注射法：这是最早的动物转基因技术，通过显微镜将目的基因注射到受精卵细胞的原核内，使目的基因与胚胎基因组融合。

该方法的优点是可靠性高、重复性好、整合效率高，导入基因片段的大小和类型不受限制，转基因可以稳定遗传。

但缺点是导入基因整合的随机性和不可见性可能导致基因表达不稳定和插入突变。

成功应用该方法的例子包括美国科学家Hammer等在1985年获得的转基因兔、绵羊和猪，以及我国朱作言院士等在1985年成功获得的世界上首例转基因鱼。

2. 精子载体法：将精子与目的DNA进行预培养，使精子具有携带目的基因进入卵子的能力，再让精子与卵子结合，该基因被整合到受精卵的DNA中。

该方法的优点是不需要显微注射操作，不会对胚胎造成损伤，整合率高，成本低，不需要对动物进行胚胎移植手术处理等。

但成功率不高、效果不稳定，有待科研人员进一步探索和改进。

成功应用该方法的例子包括1989年意大利Lavitrano等首次报道利用精子载体法获得转基因鼠，以及1996年意大利Sperandio科研小组报道的采用该方法生产转基因牛和猪。

3. 逆转录病毒感染法：利用逆转录病毒作为载体，将目的基因整合到受体细胞的DNA中。

该方法的优点是效率高、操作简单、成本低，在转基因动物生产中应用广泛。

但缺点是插入突变的可能性大、外源基因表达量不稳定。

4. 胚胎干细胞介导法：将目的基因导入胚胎干细胞，通过将胚胎干细胞注入受体胚胎以生产转基因动物。

该方法的优点是整合效率高、可遗传给后代、可进行种间转基因操作等。

但缺点是技术难度高、操作复杂、胚胎干细胞建系不易等。

5. 细胞核移植法：通过将已转染的外源基因的体细胞核移植到受体细胞的卵母细胞中，以生产转基因动物。

该方法的优点是可获得转基因动物的高纯合子、可进行种间转基因操作等。

但缺点是技术难度高、操作复杂、成功率低等。

这些方法各有其优缺点，在转基因动物生产中有着不同程度的应用。

转基因动物模型的制作步骤及方法
(1)复制方法主要采用转基因技术建立该模型。

(2)模型特点目前已制备成功的PD遗传模型主要有α-synuclein转基因小鼠和转基因果蝇。

高表达人类α- synuclein的转基因小鼠具有PD的部分特征，如纹状体DA神经末梢丢失，在胞浆有α-synuclein 和ubiquitin阳性的包涵体形成，运动功能障碍。

这些转基因小鼠包涵体与人类Lewy小体有差别，主要表现在缺乏纤维样结构特征。

有时在细胞核内也可见到包涵体，这与人类PD明显不同。

一些转基因小鼠只有包涵体形成和运动功能障碍但无DA能神经元变性，这些小鼠脑干运动神经元病变更明显。

还有一个现象是野生型与突变型转基因小鼠病理改变基本一样。

α- synuclein转基因果蝇具备PD的一些重要特征，包括DA能神经元缺失，神经细胞内包涵体形成，运动功能障碍等。

由于果蝇的遗传规律研究较透彻加上寿命较短，这一模型对了解某些新蛋白在PD发病机制中的作用有重要价值。

(3)比较医学多数PD为散发，遗传因素不起主要作用。

在PD人群中家族性PD占少数的病例，其遗传因素起关键作用，目前至少已发现两个家族性PD致病基因，包括α-synuclein和Park in。

可表达与PD发病有关的野生或突变基因的转基因动物，可作为PD遗传模型，用于相关致病基因的致病机制、环境因素与遗传因素的相互作用等方面的研究。