小鼠胚胎心肌细胞的分离及电生理特性
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分离小鼠原代心肌细胞与大鼠原代细胞分离有所不同方法:1、所有器械(四把镊子两把剪刀)放在75%酒精中浸泡6 h以上。
2、用PBS溶液(过滤灭菌)配制0.075%胰酶20mL备用(胰酶原液0.25%,6ml原液可以稀释至20ml)。
3、新生(1天)乳小鼠15-20只,器械在酒精灯上灼烧消毒备用。
4、准备两个冰盒,在其中一个冰盒中放两个平皿,皿内盛放PBS溶液(无色),把灼烧后的一把镊子倒插在该冰盒中(用于涮洗心脏)。
另一个冰盒中同样放两个平皿,其一放PBS溶液,其二放1 mL0.075%胰酶,同样把灼烧后的一把镊子和一把剪刀(用于剪碎心脏)倒插在该冰盒中,所剩的两把镊子和一把剪刀灼烧后倒置用于解剖,切勿污染。
5、乳鼠两只一组处死消毒取样,方法:将其轮流放入装有75%酒精的烧杯中6 s即可。
6、从胸骨下端开始向上解剖乳鼠,剪至颈部,打开胸腔,挤出心脏,用镊子取心脏心室部分放入第一个成有PBS溶液的平皿中,速度越快越好,以保持心肌细胞的活性。
7、待取完所有心脏后,在冰盒中使用冰盒中的镊子涮洗和挤压心脏以尽量除去心脏中的血液,置于冰盒中的另一个平皿中,继续洗去血液,若有心脏上存有心房则用镊子拔去,可使用第二个冰盒中的镊子,依次放入第三个皿(第二个冰盒)中洗净。
8、将洗净的心脏放入第四个放有1 mL 0.075%胰酶的平皿中,将皿倾斜,使心脏全部浸入胰酶的平皿中,将皿倾斜,使心脏全部浸入胰酶中,用剪刀剪碎心脏后,吸入所剩的149mL胰酶中4 ℃消化24h。
9、消化24h后,吸出11mL胰酶,加入9 mL0.1%的胶原酶Ⅱ(此时浓度为0.05%,配胶原酶需用0.2 μm滤器过滤),将18 mL的细胞液装入高压过的小烧杯中,加入磁力棒,在磁力搅拌器上搅拌30 min,温度维持在34-35 ℃左右,120 rpm。
10、配制两种培养液,DMEM-F12 10%FBS,DMEM-F12 15%FBS Brdu(10 mg/mL的Brdu母液,在DMEM-F12 15%FBS中每20mL加67μL,心肌细胞对Brdu的耐受性较其他细胞高,以保护心肌细胞减少其他细胞主要是成纤维细胞的污染)。
原代乳小鼠心肌细胞的分离培养及鉴定*程阔菊,黄河,杜智勇,李洪,杨天德△【摘要】目的建立原代乳小鼠心肌细胞的培养方法,评价心肌细胞的存活状况并鉴定心肌细胞纯度。
方法应用胰酶联合胶原酶共同消化3d内C57乳小鼠心脏,台盼蓝染色判断心肌细胞存活率,α-actin免疫荧光染色鉴定心肌细胞纯度。
结果利用3d内乳鼠心脏可成功培养原代小鼠心肌细胞,台盼蓝染色显示细胞存活率大于95%,α-actin免疫荧光染色显示心肌细胞纯度达95%以上。
结论严格控制实验条件,可成功培养高存活率和高纯度的小鼠心肌细胞。
【期刊名称】重庆医学【年(卷),期】2013(000)022【总页数】3【关键词】乳小鼠;心肌细胞;分离;纯化;培养;鉴定各种基因敲除及转基因小鼠已广泛应用于心血管疾病动物模型的建立,已为心血管疾病机制的研究作出了巨大贡献。
体外心肌细胞培养作为一种体外实验研究模型,可以排除神经、体液的干扰而独立地从细胞和分子水平研究心血管疾病的发生、发展机制,但由于小鼠心肌细胞的分离和培养比较困难,所以一直限制了医学科研工作者在细胞生物学水平上对心血管疾病方面的深入研究。
本实验室在以往的经验基础上,摸索出了一套成熟可行、简单可靠的小鼠心肌细胞培养方法,获得的心肌细胞存活率高且纯度高。
本文对此培养方法做一简单介绍,并对其中的关键影响因素做详细的探讨。
1 材料与方法1.1 材料1.1.1 实验动物1~3d龄野生型C57新生乳鼠,SPF级,由第三军医大学实验动物中心提供,合格证号:SCXK(渝)2007-0003。
1.1.2 主要仪器与试剂显微眼用镊、眼科剪、显微镊、显微剪(上海医疗器械有限公司),器械使用前清洗干净并经高压灭菌(121℃,20min)。
二氧化碳培养箱、倒置显微镜(OLYMPUS)、超净工作台(苏净安泰)、低温台式离心机(Sigma)。
小牛血清、DMEM/F12、胰酶、胶原酶Ⅱ(GIBCO),BrdU-溴脱氧尿苷(Sigma),青霉素、链霉素(华美生物工程公司),anti-α-actinin(Millipore),组织固定液(Alphelys),Triton X-100(Amresco),SlowFade Gold antifade reagent with DAPI(Invitrogen),Alexa goat anti-mouse IgG(H+L)(Invitrogen)。
豚鼠心肌细胞分离方法及电生理特性的观察宋建国;侯月梅【摘要】目的:建立膜片钳实验室单个心肌细胞的分离方法和膜片钳技术平台.方法:采用酶解法分离豚鼠心室肌细胞;在膜片钳全细胞模式下记录不同基础刺激周长时的动作电位以及L-型钙电流、延迟性整流钾电流.结果:酶解法分离豚鼠心室肌可以得到90%的存活细胞;豚鼠的单个心室肌细胞静息电位为(-74.0±2.2)mV,基础刺激周长1 000 ms时复极90%的动作电位时程(APD90)为(313.2±20.72) ms;APD90和复极50%的动作电位时程(APD50)均随着基础刺激周长的延长而延长.L-型钙电流峰值电流密度为(-7.36±1.10)pA/pF,0.1 mmol/L verapamil灌流后为(-1.22±0.49 )pA/pF,100 μmol/L CdCl2灌流后内向电流消失;延迟性整流钾电流密度为(4.88±0.96)pA/pF,2 μmol/L Dofetilide灌流后降低为(3.48±0.37)pA/pF.结论:酶解法分离的豚鼠心室肌细胞可以满足膜片钳实验的要求,此膜片钳技术可作为更深入电生理研究的平台.【期刊名称】《新疆医科大学学报》【年(卷),期】2007(030)005【总页数】5页(P490-493,497)【关键词】膜片钳;单个心室肌细胞;动作电位;离子电流【作者】宋建国;侯月梅【作者单位】新疆医科大学第一附属医院心功能科,新疆,乌鲁木齐,830054;新疆医科大学第一附属医院心功能科,新疆,乌鲁木齐,830054【正文语种】中文【中图分类】R-332;R33膜片钳技术的成熟应用已经有20多年的历史,通过所谓的“膜片钳”的特殊电极,同时实现电压钳和电流钳的功能,通过对跨膜电压和电流的控制,既可以记录全细胞的宏电流,也可以监测单个通道的微观电流,达到研究离子通道乃至细胞的电生理特性的目的,是心脏电生理和生物膜特性研究中的一项重要的工具[1]。
成年小鼠心脏干细胞的体外分离及表型鉴定邓文文;赵然尊;龙仙萍;石蓓【摘要】目的建立稳定的小鼠心脏干细胞(cardiac stem cells,CSCs)分离方法,并对体外培养的CSCs进行生物学特性鉴定.方法选用健康成年CD1小鼠,在无菌条件下取心脏并剪碎,并用Ⅱ型胶原酶和胰蛋白酶反复消化,采用差速离心法去除混合细胞悬液中的心肌细胞,结合免疫磁珠分选法纯化c-kit+ CSCs后,进行流式细胞仪表面标记鉴定.结果酶消化法和磁珠分选法结合成功分离并纯化了成年小鼠c-kit+ CSCs.磁珠分选前,流式细胞仪表面标记鉴定c-kit+ CD34-CSCs为4.62%;经磁珠分选后c-kit+ CD34-CSCs可达70.23%.结论酶消化法结合磁珠分选法能成功分离纯化成年小鼠c-kit+ CSCs,且能用于后续体外培养.体外培养时c-kit+ CSCs相对于其它表型标记的心脏干细胞更加稳定,具有较强的扩增能力.相对于心脏组织块培养法,酶消化法可在短期内获得高纯度的c-kit+ CSCs,更有助于心脏干细胞相关信号通道的体外实验研究.【期刊名称】《遵义医学院学报》【年(卷),期】2013(036)005【总页数】5页(P406-409,412)【关键词】心脏干细胞;细胞分离;酶消化法;磁珠分选法;小鼠【作者】邓文文;赵然尊;龙仙萍;石蓓【作者单位】遵义医学院附属医院心血管内科,贵州遵义563099;遵义医学院附属医院心血管内科,贵州遵义563099;遵义医学院附属医院心血管内科,贵州遵义563099;遵义医学院附属医院心血管内科,贵州遵义563099【正文语种】中文【中图分类】R541在成年哺乳动物的心脏组织内,心脏干细胞数量较少,分离较为困难[1]。
而临床治疗需要大量的CSCs,这就使得CSCs的临床应用受到极大的限制。
迄今为止,CSCs的分离方法甚至不能完全满足CSCs的相关研究。
目前主要有两种方法用于分离鼠和人CSCs,一种是酶消化法[2],另一种是原代组织贴壁培养法[3]。
分离小鼠原代心肌细胞与大鼠原代细胞分离有所不同方法:1、所有器械(四把镊子两把剪刀)放在75%酒精中浸泡6 h以上。
2、用PBS溶液(过滤灭菌)配制0.075%胰酶20mL备用(胰酶原液0.25%,6ml原液可以稀释至20ml)。
3、新生(1天)乳小鼠15-20只,器械在酒精灯上灼烧消毒备用。
4、准备两个冰盒,在其中一个冰盒中放两个平皿,皿内盛放PBS溶液(无色),把灼烧后的一把镊子倒插在该冰盒中(用于涮洗心脏)。
另一个冰盒中同样放两个平皿,其一放PBS溶液,其二放1 mL0.075%胰酶,同样把灼烧后的一把镊子和一把剪刀(用于剪碎心脏)倒插在该冰盒中,所剩的两把镊子和一把剪刀灼烧后倒置用于解剖,切勿污染。
5、乳鼠两只一组处死消毒取样,方法:将其轮流放入装有75%酒精的烧杯中6 s即可。
6、从胸骨下端开始向上解剖乳鼠,剪至颈部,打开胸腔,挤出心脏,用镊子取心脏心室部分放入第一个成有PBS溶液的平皿中,速度越快越好,以保持心肌细胞的活性。
7、待取完所有心脏后,在冰盒中使用冰盒中的镊子涮洗和挤压心脏以尽量除去心脏中的血液,置于冰盒中的另一个平皿中,继续洗去血液,若有心脏上存有心房则用镊子拔去,可使用第二个冰盒中的镊子,依次放入第三个皿(第二个冰盒)中洗净。
8、将洗净的心脏放入第四个放有1 mL 0.075%胰酶的平皿中,将皿倾斜,使心脏全部浸入胰酶的平皿中,将皿倾斜,使心脏全部浸入胰酶中,用剪刀剪碎心脏后,吸入所剩的149mL胰酶中4 ℃消化24h。
9、消化24h后,吸出11mL胰酶,加入9 mL0.1%的胶原酶Ⅱ(此时浓度为0.05%,配胶原酶需用0.2 μm滤器过滤),将18 mL的细胞液装入高压过的小烧杯中,加入磁力棒,在磁力搅拌器上搅拌30 min,温度维持在34-35 ℃左右,120 rpm。
10、配制两种培养液,DMEM-F12 10%FBS,DMEM-F12 15%FBS Brdu(10 mg/mL的Brdu母液,在DMEM-F12 15%FBS中每20mL加67μL,心肌细胞对Brdu的耐受性较其他细胞高,以保护心肌细胞减少其他细胞主要是成纤维细胞的污染)。
小鼠心肌切片描述小鼠心肌切片描述引言:小鼠心肌切片是一种常用的实验方法,用于研究心脏疾病、药物筛选和心肌细胞功能等方面。
本文将详细描述小鼠心肌切片的制备过程和切片的形态学特征。
一、材料与方法1. 实验动物:使用12-16周龄的雄性C57BL/6小鼠。
2. 心脏采集:通过颈部剪开皮肤和颈动脉,注射适量的异氟醚进行全身麻醉,然后迅速取出心脏。
3. 心脏固定:将心脏迅速置于冰冷的PBS缓冲液中,并用注射器注入PBS缓冲液进行灌洗,以去除血液。
4. 心脏包埋:将固定好的心脏放入OCT复合剂中,并迅速冷冻至-80°C保存。
二、切片制备1. 切片设备准备:将冷藏好的OCT包埋组织块取出,放在-20°C环境下静置5分钟,使其变硬。
2. 切片装置准备:将冷冻组织块放入切片装置中,调整切片角度和厚度。
3. 切片过程:使用冷冻切片机,将心肌组织块切成30-50μm的薄片,收集在含有PBS缓冲液的离心管中。
4. 心肌切片保存:将收集好的心肌切片置于PBS缓冲液中,并尽快进行下一步处理。
三、形态学特征1. 组织结构:小鼠心肌切片呈现典型的心肌细胞排列方式,具有明显的纤维结构。
心肌细胞之间紧密相连,形成纵横交错的网状结构。
2. 细胞形态:小鼠心肌细胞呈长条状,具有分支和突起。
细胞内可见明显的横纹和线粒体等器官结构。
3. 组织染色:常用荧光染料如荧光素酶或达科西亚染色可以标记特定蛋白质或核酸分子,用于研究不同类型的心肌细胞或标记特定信号通路。
四、应用领域1. 心脏疾病研究:通过小鼠心肌切片可以观察心脏组织的形态和结构变化,研究心脏病理生理过程,如心肌纤维化、心肌细胞凋亡等。
2. 药物筛选:使用小鼠心肌切片可以评估药物对心肌细胞功能的影响,如钙离子调节、离子通道活性等,为新药开发提供参考。
3. 心肌细胞功能研究:通过小鼠心肌切片可以进行电生理实验,如整体细胞膜电位记录和钙离子成像等,研究心肌细胞的电活动和收缩功能。