石蜡切片免疫组织化学染色
- 格式:docx
- 大小:16.64 KB
- 文档页数:2
石蜡切片免疫组织化学操作流程一、组织获取(本实验室多做脑组织,所以以脑组织为例)1.动物麻醉:所用麻醉药物(水合氯醛水溶剂)剂量为350mg/kg动物体重,常用麻醉药物浓度为5%、6%、7%、10%(麻醉浓度越大,动物进入麻醉时间越短,但麻醉致死率相应较高,本人使用7%浓度,若注射位置正确,约3min进入麻醉状态);动物麻醉后,将其固定于灌流操作平台,仰卧位;2.动物灌流手术:以胸骨剑突为起点,沿左右两侧肋下缘剪开老鼠皮肤至腋下,再次以剑突为起点,剪开皮下肌肉层,沿同样方向剪开肌肉至腋下,避免伤到内部脏器,剪破膈膜,沿左右两侧剪断胸骨,用止血钳夹住剑突向上翻转,充分暴露心脏;用弯镊分离心脏表面黏膜;左手持止血钳轻夹起心脏,倾斜一定角度,使心尖方向与升主动脉尽量位于同一直线上,右手持灌流针,沿直线所在所在角度由左心室进针,将灌流针直接插入升主动脉(可挑动灌流针于升主动脉内观察是否正确插入,此方法操作不熟练易插错血管或是直接刺穿心脏——或者直接将灌流针插入左心室,但前方法灌流效率较高);固定器械(器械松动或是位置变化会严重影响灌流质量,有时会因为器械位置的变动直接将心脏牵扯下来导致灌流失败,应给与充分注意)3.动物灌流:C57小鼠25-30g左右,灌流开始,可见右心耳充盈,用剪刀剪开,便于血液流出:吊瓶灌流——以生理盐水50-100ml快速冲洗血液,持续最好不要超过5min(时间过长会导致脑组织降解),待无明显血迹流出后换用4%多聚甲醛进行灌流,约100-150ml,灌流速度不宜过快,约10min,固定液较充分的固定组织;注射器灌流——生理盐水50ml快速推注,后换用4%多聚甲醛50ml缓慢推注。
灌流成功的标志——灌流开始,可见肝脏颜色迅速变浅,随着灌流进行,肝脏颜色逐渐变为乳黄色或是白色;换用4%多甲固定液后小鼠全身痉挛抽搐,组织僵硬。
4.开颅取脑:根据实验取材位置的不同,分为不同的取脑方式:应注意需要的组织区域,避免取脑过程中损坏,多从小脑后方依次向前剥离颅骨,获取脑组织(在颅骨剥开后,应注意脑膜的存在,因为会发生脑膜将皮层割裂损伤的情况)5.脑组织修块:将多余脑组织去除,便于固定充分均匀,应留出试刀或找平的部分多余组织(本人实验中因需要海马组织,故修块时沿大脑皮层后边缘切除多余小脑,人字缝前约2.5-3mm切除前脑部分)6.固定过夜:将修块完成的脑组织,浸泡于4%多聚甲醛中,固定过夜,通常不要超过18小时(固定时间越长,组织抗原损失越严重,呈数量级损失),一般控制在12小时以内为宜二、组织石蜡包埋7.组织梯度脱水透明:将过夜固定的脑组织取出置于包埋窗内,并用铅笔做好相应标记,自来水流水冲洗约10min,去除残留的杂质成分,进行梯度酒精脱水(注意:不同的组织类型,同组织类型不同组织块大小所需的每阶段脱水时间不同,需根据自身需要进行简单摸索;若盲目脱水透明,脱水透明过头,会使组织脆性增加,切片时全为粉末状,无法成形;脱水透明不够,会使组织与蜡块分离,无法获取平整组织切片)本实验中,组织样本为脑组织,组织修块后所进行的脱水流程如下:自来水冲洗完成→50%乙醇 25min→70%乙醇 25min→80%乙醇 25min→90%乙醇 25min →95%乙醇I 10min→95%乙醇II 15min→无水乙醇I 10min→无水乙醇II 15min→二甲苯I 15min→二甲苯II 15min8.组织浸蜡:在进行二甲苯透明开始的时候,将石蜡用沸水融化,置于60度烘箱内备用(此过程中应注意将盛放石蜡的烧杯上口封闭,避免水分溅入;根据组织块的数目准备合适体积的石蜡液体,以组织块完全浸没其中为宜);将透明完成的组织块,尽量沥干多余二甲苯,迅速转入1号烧杯的石蜡液体内(避免包埋窗内产生气泡,气泡若围绕组织块会影响浸蜡过程),依次将所有组织块迅速转入其中,要求组织块要全部浸没在石蜡中,流程如下:1号石蜡2h→2号石蜡2h→3号石蜡2h在每个阶段的浸蜡过程中,可根据时间安排适量的延长浸蜡时间,但尽量不要减少时间9.组织块包埋:包埋前,准备沸水备用;清理干净包埋槽备用;包埋开始时,将装有组织块的烧杯浸入沸水中,防止在包埋过程中,烧杯中的石蜡凝固,具体操作如下:1)用镊子夹取包埋槽在酒精灯预温,控制包埋槽的温度不要过高;2)将烧杯内的石蜡倒入包埋槽内,液面高度刚好没过包埋槽两侧平台3)取出浸泡的组织块,用小镊子过火后夹取组织块放置在包埋槽的凹陷处中心部位,根据切片要求摆放位置,注意在放置过程中避免组织块下面接触包埋槽底部的位置产生气泡,通常在放置前,可将组织块浸没在凹槽内的石蜡中翻滚,使其各面均匀接触石蜡液体,然后放置在正确的位置(此时假如包埋槽预温过高,则会导致组织块在接触槽底面后异常干燥,在整个蜡块凝固后会在干燥处出现凹洞,不利于石蜡块的长期保存);4)将包埋窗轻轻放置在包埋槽的平台上面,尽量保证两侧高度相同,此时槽内之前的石蜡会浸没部分包埋窗的格栏,静置1-2min(避免倒入热的液体石蜡后,石蜡从包埋窗的边缘流出);5)静置后,石蜡表面会出现凝固表层,此时再用烧杯中的石蜡填充包埋窗的凹陷处以及靠近边缘的条状凹洞,液面稍高于包埋窗边缘(靠近边缘的条状凹洞一定注意填充石蜡,关乎整个蜡块凝固后与包埋窗结合的紧密程度;石蜡凝固后体积会缩小,避免因液面过低导致的后期包埋窗内部支撑不够)6)静置至少30min,可将包埋后的蜡块从包埋槽内分离(注意分离时,应先清理包埋槽四周的多余石蜡,露出包埋窗与包埋槽接触的边缘,然后从一个角将蜡块撬离包埋槽)三、石蜡切片10.准备工作:蜡块的修整——将组织周边的石蜡在保留操作位置的情况下尽量去除(1-减少石蜡块切面与刀片的接触面积,便于受力均匀,易切出完整切片;2-石蜡切面与刀片接触面积小,会减少刀片接触到蜡块中坚硬杂质的几率,增加刀片的使用寿命;3-接触长度减少,可增加刀片使用次数,通常情况下至少多使用1次)准备器材:40度恒温水浴(温度控制在40-42之间的恒温状态,此温度可使蜡片较长时间保持切片形态,温度较低切片不易展开,温度较高,切片会在短时间内融化,易造成组织变形)切片刀片、包被载玻片、弯镊、毛刷、铅笔、切片盒冰盒(通常情况不需要,在组织脱水透明严重,切片呈粉末状态时,可用冰块冰敷石蜡切面,在短时间内可改善切片表面状态,能够帮助切出3-5片完整切片,只有在前期处理出问题时才使用进行一定程度挽救)切片大致流程:1)安装刀片;将蜡块固定于切片机上,调整蜡块表面与刀片距离,矫正蜡块表面与刀片切线平行;2)调整切片模式为trim-10um进行表面找平,并观察切片状态,调整蜡块角度,使切片左右对称,同时注意观察目标区域出现位置;3)切片调平,并出现合适目标区域,调整切片模式为sect-5um进行切片,获取所需组织切片样本;4)将完整合适的切片,夹取至水浴锅内摊平,左手持载玻片,右手持弯镊辅助,将切片贴于载玻片中,放置在水浴锅边缘进行干燥并做好相应标记;5)将干燥完成切片,按照样本分类放置在一起收于切片盒中备用6)切片完成,清理清片机;剩余组织蜡块,需要在切面表面均匀涂抹融化的石蜡,避免组织块直接与空气接触(不进行封闭,会使组织块在长期的暴露过程中,含水量发生变化,易于与支撑蜡块分离,造成后续再次切片困难)7)切片盒中切片,干燥后可在室温下长期放置,推荐切片完成后及时进行后期组织染色或组织免疫化学孵育。
石蜡切片免疫组化步骤1.石蜡切片放置在60℃恒温箱中烘烤120分钟。
2.脱蜡和水化:二甲苯(20min)→二甲苯(20min)→无水乙醇(10min)→95%乙醇(10min)→90乙醇(10min)→80%(10min)4.抗原修复:柠檬酸钠缓冲液95度,10分钟. (枸橼酸三钠3g枸橼酸0.4g然后加水到950毫升左右,然后用NaOH或HCI调pH值6.0,最后定容在1000ml)5. PBS浸洗2次各5min6.加3%H2O2孵育5min(室温或37度,避光)。
肝组织过氧化物酶含量高。
需增加浓度或增长时间。
蒸馏水洗2minx3次8.pbs-曲拉通通透(pv法不需要)9.与二抗种属一致的血清封闭非特异位点。
(pv法不需要)9.滴加一抗4℃过夜10.PBS浸洗3次各5min11.滴加二抗室温或37℃孵育30min12.PBS洗3次各5min15.DAB显色5~20min,自来水充分涮洗16.苏木素复染2~3min,自来水充分涮洗17.氨水反蓝,过蓝可用盐酸酒精分化2s,自来水充分涮洗.用稀氨水返蓝,自来水里加几滴稀氨水,就行了,返蓝时间5分钟左右,就很好看了;淡氨水有人用50ml自来水+三四滴的氢氧化铵;18.脱水、透明80%(5min)→90%(5min)→95%(5min)→100%(5min)→ 100%(5min)→二甲苯(10min)→二甲苯(10min)19.封片:中性树脂,加盖玻片(组织部位切勿残留小气泡),自然晾干二、操作流程1、脱蜡和水化脱蜡前,应将组织芯片放在60℃恒温箱中烘烤2h以上,然后按以下流程进行:二甲苯Ⅰ(1h)、二甲苯Ⅱ(30min)、100%酒精(30min)、95%酒精(15min)、70%酒精(15min)、50%酒精(15min)、蒸馏水(15min)2、3%H2O2,室温封闭5~10分钟,消除内源性过氧化物酶的活性。
3、甩去H2O2,蒸馏水洗2min×3次。
石蜡切片免疫组化及免疫荧光染色方法
一、石蜡切片免疫组化技术
石蜡切片免疫组化方法是一种流行的染色技术,它利用抗原特异性抗
体结合抗原将一种特定蛋白质标记出来,然后对组织交叉剥离切片进行染色,得到对特定抗原的特异性染色,进而可以测定组织中其中一蛋白质的
分布情况及其表达水平。
石蜡切片免疫组化方法主要分为热稳定抗原抗体
保护法、热稳定化学法和抗原保护法三种。
1.热稳定抗原抗体保护法
热稳定抗原抗体保护法又称抗原连接法,它是最常用的一种免疫组化
技术,依赖高温对抗原的特殊保护作用。
其原理是经过化学固定的组织切片,在石蜡上产生隆起;然后用高温阳性抗体(双抗体)将抗原完全覆盖,并产生痕迹,这样便可清楚地观察抗原的分布情况;此外,在有抗原保护
的条件下,抗原保护的组织切片可以用客体抗体染色。
2.热稳定化学法
热稳定化学法是一种特殊的抗原保护法,也是最常用的石蜡免疫染色
技术。
1.接蒸馏水1L2.PBST配置:PBS :Tween20=1000:1 (PBS 2000mL-其中用1000mL配PBST)3.30%的过氧化氢配成3%的过氧化氢(200ml)4.配DAB 第二天配(1滴:1000ul)5.一抗稀释(当天用当天配)第一天1.烤片:石蜡切片,烘烤箱内60度,3到5小时(目的使组织与玻片牢固结合)2.脱蜡:二甲苯(10min×3)3.复水:无水乙醇5min×3,然后95%,75%,50%乙醇各5min。
(目的是利用乙醇的双溶性,使得切片跟后续的水溶性实验体系相容)4.自来水冲洗5min,蒸馏水浸泡5min5.抗原修复:热修复(目的是将抗原表位暴露,使得后续的一抗可以结合上去)。
①配置修复液:修复液主要有柠檬酸钠缓冲液(pH=6.0),EDTA(pH=8.0)和TE(pH=9.0)三种,其酸碱度不同,不同抗体的要求不同,要根据抗体和试剂的说明书来配;②高压锅:半锅抗原修复液,蒸汽鸣笛开始算时间,进行3min,5mim,10min,15min进行摸索时间(如果是电热锅从沸腾开始算时间,修复时间要久一些)。
煮完自然冷却。
6.洗涤:①蒸馏水5min,②PBST:3min × 2 ③ PBS:3min× 17.免疫组化笔画圈:切片置于湿润操作盒上。
(若要破膜的话,移液枪滴0.3%Triton溶液于标本上45min)8.淬灭(阻断):(目的去除内源性过氧化物酶),30%过氧化氢加蒸馏水配成3%溶液,切片浸泡15min。
9.洗涤:①PBST:3min × 2 ② PBS:3min× 110.生物素阻断,依次滴A,B剂切片浸泡,各10min,依次洗涤:①PBST:5min × 2 ,②PBS:5min× 111.封闭(目的为了减少二抗与组织的非特异蛋白结合,需用二抗来源的血清进行封闭)。
羊血清,移液枪。
石蜡切片病理、免疫组化及免疫荧光方案石蜡标本固定、脱水、包埋方法大鼠自心脏灌注4%多聚甲醛内固定1-2h后取材:取脑出血血肿处脑组织(厚度约3mm),置于塑料盒中并浸泡在4%多聚甲醛中固定,室温中固定时间12-48h,固定好的组织脱水前应流水冲洗30min-1h左右除去固定液,取固定好的脑组织标本脱水、包埋。
具体步骤按以下方法进行:此方法参考《组织病理学技术》周庚寅北京大学出版社 2006年⏹70%: 1h-2h⏹80%: 1h-2h⏹90%: 1h-2h⏹95%: 1h-2h⏹95%: 1h-2h⏹无水Ⅰ:30min-60min⏹无水Ⅱ:30min-60min⏹二甲苯及水水酒精 1:1混合液 30min⏹二甲苯Ⅰ:30min⏹二甲苯Ⅱ:30min⏹石蜡Ⅰ: 1h⏹石蜡Ⅱ: 1h⏹石蜡Ⅲ: 1h包埋:在病理科包埋方法基础上灵活改进:在包埋铁模具上进行,融蜡-放置组织于中央-扣包埋盒4℃冷却10min-撬蜡。
注意事项:1、固定液的种类:10%中性甲醛,4%的多聚甲醛最合适,在37°或室温中固定12-48h能很好保存抗原和抗体的反应能力,实验室用的更多的是在4℃冰箱中固定24h-3d。
有人建议中性甲醛40摄氏度固定2~3小时,流水冲洗20min-30min,这样可以缩短制片的时间。
2、熔蜡温度65 ℃左右;3、严格按照预定实验步骤进行,保证脱水及透明完全,透明后见云雾状说明脱水不完全,需退回无水酒精中返工。
4、经一级二甲苯透明后检查组织是否透明,二级二甲苯透明时间以具体时间而定。
5、注意及时更换梯度酒精及二甲苯(1月)。
组织石蜡切片摘自《免疫组织化学实验技术及应用》 P12 化学工业出版社20061.载玻片的处理:采用现成的APES处理过的硅化载玻片。
2.石蜡切片注意事项:1、用于免疫组化的蜡温应为56~58℃,切片水温为40℃左右,应先置于冷水中(冷水中可参入酒精有利快速展片-见相关方法),然后再移入热水中,这样可以使切片顺利展平;2、烤片时要注意:一般在62℃烤片30-60min,抗原较强的组织可在60摄氏度烤3~8h,抗原较弱的组织可于37℃的恒温箱内过夜;3、切片如需长期保存,可置于4℃或室温下,千万不可脱蜡后4℃保存,因脱蜡后失去了对抗原决定族的保护。
石蜡制片法(用于免疫组织化学,HE染色)实验原理:HE染色是一种以形态为基础,结合应用化学技术对组织、各种细胞进行染色的实验技术,用于研究组织细胞的生理、病理和化学结构。
基本原理:去氧核糖核酸(DNA)两条链上的磷酸基向外,带负电荷,呈酸性,很容易与带正电荷的苏木精碱性染料以离子键结合而被染色。
苏木精在碱性溶液中称蓝色,所以细胞核被染成蓝色。
伊红Y是一种化学合成的酸性染料,在水中离解成带负电荷的阴离子,与蛋白质的氨基正电荷的阳离子结合使胞浆染色,细胞浆、红细胞、肌肉、结缔组织、嗜伊红颗粒等被染成不同程度的红色或粉红色,与蓝色的细胞核形成鲜明对比。
伊红是细胞浆的良好染料。
石蜡制片法是将材料经固定、脱水、透明、浸蜡后包埋在石蜡里面进行切片的方法。
此法适用范围,制片手段完备,能将材料切成极薄的片子(可切至2-8微米左右),并能制成连续的片子,这是其它制片法难以达到的,因此在光学显微镜的制片技术上它是最常用的一种方法。
除了一些经不住石蜡切片法中所应用的各种药剂处理的材料不能应用石蜡切片以外,一般的材料都可以用此法制片,但有制作时间较长,操作过程复杂以及材料易发硬或发脆等缺点。
该法多采用旋转式切片机进行切片。
石蜡制片操作程序如下:(一)材料的采集与分割采集材料应根据制片的目的和要求而定,材料要有代表性,无病虫害或其它损伤,如要观察病理解剖,则要取病斑、病症部位。
采下的材料应立即放在标本箱或湿布包起来带回实验室进行分割固定(如有条件也可在试验地采集后进行分割固定)。
为使固定液能迅速的渗透材料,材料要进行分割。
分割时动作要迅速,以防材料萎蔫。
分割块的大小,宜小不宜大,一般不超过1cm3,分割后立即杀死固定。
(二)杀死与固定利用药剂迅速把细胞杀死,以保持材料本来的状态和结构。
常用的固定有F.A.A固定液、卡诺固定液等。
将固定液放在具塞小瓶中,投入材料,盖好瓶盖。
用F.A.A固定液固定,时间至少24小时。
F.A.A固定液既是良好的固定剂,也是保存剂,因此材料可长期保存在固定液中备用。
1.冰冻切片是免疫组织化学染色中最常用的一种切片方法。
其最突出的优点是能够较完好地保存多种抗原的免疫活性,尤其是细胞表面抗原更应采用冰冻切片。
新鲜的组织及已固定的组织均可作冰冻切片。
冰冻时,组织中水份易形成冰晶,往往影响抗原定位。
一般认为冰晶少而大时,影响较小,冰晶小而多时,对组织结构损害较大,在含水量较多的组织中上述现象更易发生。
冰晶的大小与其生长速率成正比,而与成核率(形成速率)成反比,即冰晶形成的数量愈多则愈小,对组织结构影响愈严重。
因此,应尽量降低冰晶的数量。
Fish认为冰冻开始时,冰晶成核率较慢,以后逐渐增加,其临界温度为-33。
C,从-30。
C降至-43。
C之间,成核率急剧增加达1018,然后再减慢。
基于上述理论可采取以下措施减少冰晶的形成。
(1)速冻,使组织温度骤降,缩短从-33。
C43。
C的时间,减少冰晶的形成。
其方法有二:①干冰-丙酮(酒精)法:将150-200ml丙酮(酒精)装入小保温杯内,逐渐加入干冰,直至饱和呈粘稠状,再加干冰不再昌泡时,温度可达-70℃C,用一小烧杯(50-100ml)内装异戊烷约50ml,再将烧杯缓慢置入干冰丙酮(纯酒精)饱和液内,至异戊烷温度达-70℃时即可使用。
将组织(大小为1cm×0.8cm×0.5cm)投入异戊烷内速冻30-60s后取出,或置恒冷箱内以备切片,或置-80℃低温冰箱内贮存。
②液氮法:将组织块平放于软塑瓶盖或特制小盒内(直径约2cm),如组织块小可适量加OCT包埋剂浸没组织,然后将特制小盒缓缓平放入盛有液氮的小杯内,当盒底部接触液氮时即开始气化沸腾,此时小盒保持原位切勿浸入液氮中,大约10-20s组织即迅速冰结成块。
取出组织冰块立即置入-80℃冰箱贮存备用,或置入恒冷箱切片机冰冻切片。
(2)将组织置于20%-30%蔗糖溶液1~3天,利用高渗吸收组织中水分,减少组织含水量。
影响冰冻切片的因素较多,因此,技术难度较大,选择好的冰冻切片机是保证切片质量的关键。
免疫组化的原理及实验步骤一免疫组化的原理免疫组化是利用抗原与抗体特异性结合的原理,通过化学反应使标记抗体的显色剂(荧光素、酶、金属离子、同位素) 显色来确定组织细胞内抗原(多肽和蛋白质),对其进行定位、定性及定量的研究,称为免疫组织化学。
二免疫组化的实验步骤固定1.浸入式:将组织样本直接放入固定液(4%的多聚甲醛等固定液)内,4℃浸泡2小时,不超过12小时2. 灌注式:主要适用于脑部组织,用从心室灌注生理盐水排空血管中血液后灌注固定液切片1.石蜡切片:(1) 使用从低浓度到高浓度的乙醇使组织脱水;(2)将组织浸入二甲苯中透明;(3)在溶蜡箱中,组织被石蜡包埋;(4)将包埋好的蜡块冷却后固定于切片机上,切成薄片,并将薄片贴于玻片上;(5)用二甲苯脱蜡并重新从高到底浸泡乙醇;注意:石蜡切片制备好后还需要进行抗原修复以解开被甲醛交联的抗原决定簇上的氨基或羧基,常用方法有微波热修复,煮沸热修复,酶消化方法2. 冰冻切片:将固定的组织放入液氮或干冰-丙酮中迅速冷却,然后切片机切片,并将片贴于玻片上封固1.防止脱片,可以使用树脂胶或多聚赖氨酸进行黏附。
2.避免内源性过氧化酶的影响,可以用3%双氧水处理15min,(针对用过氧化酶标记的抗体)3.避免内源生物素的影响,可以鸡蛋清或卵白素进行封闭;4.避免非特异性染色,可以用二抗来源的血清进行封闭染色1.滴加稀释后的一抗,4℃过夜,PBS或者脱脂牛奶洗5min 3次;2.滴加稀释后的二抗,37℃孵育30min,PBS或者脱脂牛奶洗5min 3次;显色:选择与二抗配套的显色系统,进行反应,PBS终止反应后,用苏木素村然胞核,乙醇梯度脱水,二甲苯透明,中性树胶封片,37℃干燥48小时,显微镜下观察。
华中农业大学动物科技动物医学院HE染色与免疫组织化学染色实验报告1实验目的及意义1.1了解石蜡切片的制作过程1.2 掌握HE染色与免疫组织化学染色的基本原理以及染色方法1.3 熟悉HE染色与免疫组织化学染色后的读片知识2 实验方法及步骤2.1 石蜡切片制作及HE染色步骤2.1.1取材与固定:从人或动物新鲜尸体上取下组织块(一般厚度不超过0.5厘米)投入预先配好的固定液中(10%福尔马林)使组织、细胞的蛋白质变性凝固,以防止细胞死后的自溶或细菌的分解,从而保持细胞本来的形态结构。
2.1.2脱水透明:一般用由低浓度到高浓度酒精作脱水剂,逐渐脱去组织块中的水份。
再将组织块置于既溶于酒精,又溶于石蜡的透明剂二甲苯中透明,以二甲苯替换出组织块的中酒精,才能浸蜡包埋。
2.1.3浸蜡包埋:将已透明的组织块置于已溶化的石蜡中,放入溶蜡箱保温。
待石蜡完全浸入组织块后进行包埋:先制备好容器(如折叠一小纸盒),倒入已溶化的石蜡,迅速夹取已浸透石蜡的组织块放入其中。
冷却凝固成块即成。
包埋好的组织块变硬,才能在切片机上切成很薄的切片。
2.1.4切片前的准备工作:先将包埋的每块组织周围过多的石蜡切去,四周留约2mm的石蜡块,块两边必须切成平行的直线。
将玻片擦洗干净后均匀涂抹薄薄的一层蛋白甘油,放置冰箱备用。
2.1.5切片与贴片:将预冷的蜡块固定于切片机上,调节切片厚度为6微米,切成薄片。
切下的薄片往往皱折,放到加热的水中烫平,再贴到载玻片上,放45℃恒温箱中烘干。
2.1.6 脱蜡至水华中农业大学动物科技动物医学院二甲苯Ⅰ20分钟,二甲苯Ⅱ20分钟,无水乙醇3分钟,95%酒精3分钟,80%酒精3分钟,70%酒精3分钟,自来水洗5分钟,依次按上述顺序加入相应试剂并作用相应时间。
2.1.7染色:苏木素液7分钟,自来水洗5分钟,1%盐酸溶液分化30秒,自来水洗5分钟,1%氨水返蓝10秒,自来水洗20分钟,95%酒精3分钟,1%伊红酒精溶液2分钟,依次按上述顺序加入相应试剂并作用相应时间。
石蜡制片法(用于免疫组织化学,HE染色)发布日期:2008-10-27 热门指数:6172 收藏石蜡制片法是将材料经固定、脱水、透明、浸蜡后包埋在石蜡里面进行切片的方法。
此法适用范围,制片手段完备,能将材料切成极薄的片子(可切至2-8微米左右),并能制成连续的片子,这是其它制片法难以达到的,因此在光学显微镜的制片技术上它是最常用的一种方法。
除了一些经不住石蜡切片法中所应用的各种药剂处理的材料不能应用石蜡切片以外,一般的材料都可以用此法制片,但有制作时间较长,操作过程复杂以及材料易发硬或发脆等缺点。
该法多采用旋转式切片机进行切片。
石蜡制片操作程序如下:(一)材料的采集与分割采集材料应根据制片的目的和要求而定,材料要有代表性,无病虫害或其它损伤,如要观察病理解剖,则要取病斑、病症部位。
采下的材料应立即放在标本箱或湿布包起来带回实验室进行分割固定(如有条件也可在试验地采集后进行分割固定)。
为使固定液能迅速的渗透材料,材料要进行分割。
分割时动作要迅速,以防材料萎蔫。
分割块的大小,宜小不宜大,一般不超过1cm3,分割后立即杀死固定。
(二)杀死与固定利用药剂迅速把细胞杀死,以保持材料本来的状态和结构。
常用的固定有F.A.A固定液、卡诺固定液等。
将固定液放在具塞小瓶中,投入材料,盖好瓶盖。
用F.A.A 固定液固定,时间至少24小时。
F.A.A固定液既是良好的固定剂,也是保存剂,因此材料可长期保存在固定液中备用。
卡诺固定液穿透力强,固定较小材料一般1~6小时即可,最多不超过24小时。
因卡诺固定液不能做保存剂,所以固定后要用95%、85%酒精浸洗,每级约20min.,然后保存在70%的酒精中备用。
(三)脱水脱水的目的是除去组织中的水分,便于透明、浸蜡、包埋等步骤的进行,因为这些程序中所用的药品都不能与水混合,所以必须脱水。
常用的脱水剂为酒精。
脱水过程应缓慢进行,不能操之过急或时间过长,以免组织变硬变脆或发生收缩现象。
免疫组织化学
又叫免疫细胞化学,按照失踪物可以分为免疫荧光和免疫酶等,免疫酶法;按照二抗与过氧化物酶结合的方式又分为SP法,ABC法(传统的结合方法)等(不同的试剂盒可能会开发出不同的结盒方式);根据染色步骤又可以分为直接法和间接法等。
目的:定位细胞或者组织中的抗原以及对抗原表达的相对定量
对照设置:阳性对照(用已知抗原阳性的组织或者细胞同待检标本一同染色,排除假阴性)阴性对照(用于排除假阳性,一般只使用空白对照(不加一抗或者用PBS代替),)石蜡切片免疫组织化学酶法染色步骤及原理
【酶法的优缺点:相比荧光标记,标本可以长期保存,普通光镜就可以操作,而且比荧光更加敏感,苏木素复染可以与形态学观察结合,对于石蜡切片更加合适;缺点是无法对两个抗原同时定位】
1.脱蜡至水
1)二甲苯Ⅰ15min,二甲苯Ⅱ15min
【为了有更好的脱蜡效果,在脱蜡之前可以在烤箱中烤上半个小时】2)无水乙醇Ⅰ15min,无水乙醇Ⅱ15min
3)3%过氧化氢—甲醇溶液,30min
【过氧化氢的目的是消除内源的过氧化氢酶,否则会造成非特异性染色】4)95%乙醇5min
5)80%乙醇5min
6)自来水清洗5min
7)蒸馏水冲洗5min
2.抗原修复:用0.01M的枸橼酸缓冲液(即柠檬酸盐缓冲液)将切片全部浸泡,液面尽可
能高,与微波炉中进行抗原修复,低火预热10min左右,至小沸后维持小沸5~7min,中间要随时观察,切记液体流出造成切片干燥
【不同的抗原,修复的方法不同,最好按照一抗的说明书进行;原理:由于甲醛使蛋白质发生交联,在氨基酸分子间形成亚甲基桥,而造成大部分的抗原结合位店封闭,后来有人发现在酸碱溶液中煮沸组织可以使交联打开,从而拜托了抗体只能用于冰冻切切片的局面】
3.冷却40min左右,(冷却到室温),蒸馏水洗三遍,PBS洗三遍
4.血清封闭:10%FBS封闭20min
【抗体是带有丰富电荷的大分子,而细胞中有很多物质可以与其非特异性结合,造成假阳性或者影响实验结果,封闭是利用非特异的血清中的抗体成分与组织进行非特异性结合反应】
【不可以使用与一抗同一种属来源的血清】
5.加一抗:滴加相应浓度的一抗湿盒中温室孵育30min,4℃过夜
【至少在室温孵育半个小时,有条件的话可以37℃孵育(不耐热的抗原不可以),或者直接4℃过夜,可能不同的抗体可以使用不同的孵育方式,按照说明书推荐的时间即可,工作量大的话可以摸索一下时间】
【抗体的稀释浓度直接影响染色的效果,使用一抗之前按照一抗说明说摸索最佳染色浓度,最好可以做一下阳性切片不同抗体浓度的对比染色】
【阴性对照染色与实验组的不同:不加一抗】
6.次日晨从冰箱中取出湿盒,恢复室温30min
7.PBS洗三遍
【不同的抗原分开洗】
8.滴加相应的二抗室温孵育30min
【标记的二抗具有广谱性,能与种属上相同的所有动物的球蛋白结合,因为抗体的种属特异性,所以二抗必须用一抗同种动物的血清球蛋白来免疫其他动物进行制备】
9.DAB染色
【3,3′-二氨基联苯胺,辣根过氧化物酶的显色底物,产生不溶于水,醇,二甲苯的棕色沉淀】
【DAB溶液的配制:100ml PBS加50mg的DAB,充分搅拌后用滤纸过滤,使用前加两滴(大约50 l)30%的过氧化氢(过氧化物酶与过氧化氢作用产生游离氧,后者使无色的供氢体DAB氧化为棕褐色沉淀定位于过氧化物酶所在部位)】
【DAB致癌,小心操作】
【显色时要在显微镜下观察,控制显色时间,到出现特异性染色较强而本底着色较浅时即可冲洗;DAB显色时间很短(如几秒或几十秒)就出现很深的棕褐色,这很可能说明你的抗体浓度过高或抗体孵育时间过长,需要下调抗体浓度或缩短你的抗体孵育时间;
此外,若很短时间就出现背景很深,还有可能你前面的封闭非特异性蛋白不全,需要延长封闭时间;DAB显色时间很长(如超过十几分钟)才出现阳性染色,一方面可能说明你的抗体浓度过低或孵育时间过短(最好一抗4℃过夜);另一方面就是封闭时间过长。
】
10.自来水洗
11.蒸馏水洗
12.苏木素复染核
【配制:20ml的苏木素+80ml的蒸馏水,用滤纸过滤】
【核被染成蓝色,以便定位分析】
13.自来水洗
14.蒸馏水洗
15.脱水至二甲苯
1)80%乙醇5min
2)95%乙醇3min
3)无水乙醇Ⅰ5min
4)无水乙醇Ⅱ5min
5)二甲苯Ⅰ10min
6)二甲苯Ⅱ10min
16.封片。