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第1篇一、目的为确保样本在分装过程中的准确性和安全性，防止样本污染和交叉污染，特制定本操作规程。
二、适用范围本规程适用于本实验室所有样本的分装操作。
三、操作步骤1. 准备工作1.1 检查分装设备是否处于正常工作状态，包括分装机、吸液管、分液管、试剂瓶等。
1.2 检查样本容器是否清洁、干燥，避免样本污染。
1.3 检查样本信息标签是否清晰、准确，包括样本编号、样本类型、采集时间等。
2. 吸液管安装2.1 根据样本容器大小，选择合适的吸液管，并剪裁至适宜长度。
2.2 将吸液管带固定螺纹套口的一端旋紧到分装机吸液管接口上。
3. 分液管安装3.1 将分液管通过其一端的固定螺帽固定到分装机正面水平接口处。
3.2 确保分液管插紧后再旋紧螺帽，避免分液过程中分液管脱落。
4. 试剂瓶安装4.1 通过分装机底部的螺纹接口，将试剂瓶安装到分装机上。
4.2 如试剂瓶口径与分装机接口不匹配，可使用配套的螺纹转换接头进行转接。
5. 分装准备5.1 将收集容器放置在分装机下方，确保容器底部与分装机底座紧密接触。
5.2 调整分装机上的定量刻度拨盘至所需的分液容量。
6. 分装操作6.1 将吸液管插入样本容器，吸取所需分液量的样本。
6.2 将吸液管移至收集容器上方，缓慢而匀速地向上拉活塞，将样本吸入收集容器内。
6.3 缓慢而匀速地压下活塞，将样本分入收集容器内，避免产生气泡。
7. 分装完成7.1 分装完成后，检查收集容器内样本量是否准确，确保样本分装均匀。
7.2 将收集容器上的样本信息标签贴好，并妥善保存。
8. 清洁与保养8.1 分装操作完成后，及时清洁分装机、吸液管、分液管等设备。
8.2 定期检查分装机性能，确保设备正常运行。
四、注意事项1. 操作过程中，应佩戴防护用品，如手套、口罩等，避免样本污染。
2. 操作前，应熟悉分装设备的使用方法和注意事项。
3. 分装过程中，注意观察分装机运行状态，确保样本分装准确。
4. 严格遵循操作规程，避免人为错误。
微生物实验室实验样本安全操作规程
为确保微生物实验室实验样本的安全，防止实验中可能出现的
偶然事故和人为疏忽，制定以下操作规程:
1. 实验室入口严格管控，必须佩戴实验室工作服和手套进入。
2. 实验室内应保持整洁，禁止存放过多杂物，确保通道畅通，
防止燃气泄漏等事故。
3. 实验室内温度、湿度、压力等应定期检查，确保仪器设备正
常工作。
同时，对于实验室内存在的生化、放射、毒性等危险性物质，应定期进行检测、调整，确保符合安全标准。
4. 实验过程中，应佩戴防护眼镜、口罩等装备，严禁在实验室
内吃饭、喝水。
5. 实验前要仔细阅读实验手册，对于操作规程不熟悉的，应向
其他工作人员请教；实验当天要对所需化学品和试剂品质进行检查。
6. 实验完成后，试剂品应专门分类保存，避免交叉污染。
对于
有毒物品，要求采用专用存放，并标明危险性质。
7. 实验室存放的微生物菌种应进行分门别类、专人管理，并定
期消毒，杜绝交叉污染。
8. 实验完成后应及时清理化学药品、毒性物品等残留物，消毒杀菌，保持清洁卫生。
注意：禁止将实验室的化学试剂及细菌菌株带离实验室。
如有违反，严肃追究责任。
（以上规程为基础框架，实验室也应按照自身特点进行针对性的补充和完善。
）。
微生物分离鉴定步骤
微生物的分离和鉴定是微生物学研究中非常重要的步骤，它可
以帮助我们了解微生物的种类和特性。
通常，微生物的分离和鉴定
包括以下步骤：
1. 样品收集，首先需要收集来自环境、生物体表面或其他来源
的微生物样品。
这可能涉及到采集土壤、水样、食品、空气或生物
体组织等样品。
2. 稀释和接种，将样品进行适当的稀释，然后在培养基上进行
接种。
这有助于分离出单一的微生物菌落，以便进行后续的鉴定。
3. 培养，接种后，将培养皿放入恒温培养箱中进行培养。
不同
类型的微生物可能需要不同类型的培养条件，如温度、氧气含量等。
4. 分离，在培养一段时间后，可以观察到菌落的形成。
选择单
一的菌落，进行分离培养，以获得纯培养物。
5. 形态学特征观察，观察微生物的形态学特征，包括细胞形态、大小、颜色等，可以初步了解微生物的特征。
6. 生理生化特性测试，进行一系列生理生化特性测试，如对不同营养物质的利用、酶活性、氧气需求等，以进一步了解微生物的特性。
7. 分子生物学鉴定，利用分子生物学方法，如16S rRNA序列分析，可以对微生物进行更精确的鉴定，包括确定其属种和种的分类位置。
以上是常规的微生物分离和鉴定步骤，通过这些步骤可以全面地了解微生物的特征和分类位置。
值得注意的是，不同的微生物可能需要不同的鉴定方法，有时可能需要结合多种手段进行鉴定，以确保鉴定结果的准确性。
正文内容：1. 培养基和试剂的制备和保存1.1 培养基的制备- 确保实验室用水质量符合要求，执行水质监测。
- 配制培养基时，按照配方的比例准确称量和混合各种成分。
- 制备后的培养基要经过高温高压灭菌处理，并记录相关信息。
1.2 试剂的准备与保存- 确保试剂的纯度和质量。
- 试剂的保存应遵循相应的储存条件，如低温、干燥、避光等。
2. 微生物实验室的清洁和消毒2.1 实验台面和设备的清洁- 实验结束后，及时清洁实验台面和设备，移除残余的微生物和污渍。
- 使用合适的清洁剂和消毒剂，遵循正确的清洁和消毒程序。
2.2 垃圾处理和废弃物管理- 将实验室生活垃圾与实验废弃物分类投放，遵循垃圾分类和废物管理的要求。
- 在实验室内配备明显的废弃物容器，并定期清理和更换。
3. 生物安全操作和防护3.1 实验室内的个人防护- 实验室工作人员应穿戴实验室指定的个人防护装备，包括实验服、手套、口罩等。
- 定期检查和更换个人防护装备，确保其完好无损。
3.2 操作台上的生物安全柜使用- 使用生物安全柜操作时，按照正确的使用方法进行操作。
- 养生物安全柜使用后，要及时清洁和消毒。
4. 微生物实验的准备和操作4.1 实验准备- 在进行微生物实验前，要仔细阅读实验方案和相关文献，了解实验目的和操作步骤。
- 准备所需的培养基、试剂、设备等，并确认其完整性和有效期。
4.2 微生物实验操作- 操作前要洗手并戴好手套，保持操作台面的清洁。
- 严格按照实验方案的指导进行操作，确保实验过程的准确性和可重复性。
- 实验过程中注意观察实验样品的变化，并记录相关数据和观察结果。
5. 实验数据记录和结果分析5.1 数据记录- 在实验过程中，实验人员要及时、准确地记录实验数据和观察结果。
- 记录的数据要清晰可辨，并加以正确的标注和注释，以便后续的数据分析和结果验证。
5.2 结果分析与总结- 在实验完成后，仔细整理和分析实验数据，得出结论并进行结果的可靠性评估。
微生物实验室操作规程
1、实验前必须充分预习，对每次实验的目的、要求、原理、方法、实验步骤等应做到心中有数。
2、实验时不得高声谈笑和来回走动，以保证实验室的安静和实验的正常进行；禁止在室内饮食、吸烟或用嘴湿润标签、铅笔等。
3、严格按操作规程细心实验，认真观察并做好实验记录。
对需连续培养，观察的实验，应每次记好观察现象和结果，以便分析。
认真进行各项实验，严格掌握无菌技术。
各个实验用品按指定地点存放，如吸过菌液的吸管、毛细滴管、用过的玻片、L形棒等放入固定容器，不要乱放在桌面上或冲洗水槽中。
4、使用显微镜或其他仪器时，要切实按操作规程进行操作，凡属操作不当损坏者，需照价赔偿。
节约水电，节省药品、材料。
所有物品用完放回原处。
5、实验中需进行培养的微生物，应表明班级、组别、菌名及处理方法，按指定地点培养。
6、实验时遇有试管或瓶不慎打破，皮肤破损或菌液入口等意外，应立即报告指导教师，及时处理，不得隐瞒。
7、每次实验完，应清洗仪器，擦净桌面，放好物品，清洁实验室，实验用过的菌种及培养基应集中进行灭菌处理。
8、实验后，应洗净手、关水电、关门窗，方可离开。
实验室中的菌种及物品，未经许可，不得带出。
9、应实事求是写好每次实验报告。
实验报告要简洁、准确、清楚。
微生物标本采集操作规程美国临床实验室标准化委员会（NCCLS）1 概述临床通常将正常人喉以上部位称之为上呼吸道，上呼吸道定植有大量的正常菌群，而气管以下包括气管、支气管和肺泡称下呼吸道，通常无菌。
下呼吸道分泌物经过上呼吸道排出时常受该处的正常菌群的污染。
下呼吸道感染包括急性气管-支气管炎、慢性支气管炎急性发作、支气管扩张继发感染及肺实质感染（肺炎、肺脓肿）等。
病原体有细菌、病毒、衣原体、支原体、真菌、立克次体和原虫等。
上呼吸道感染临床诊断一般不难。
细菌学检验能明确感染病原及药敏结果，有助于疾病治疗、流行病学调查和医院感染的监测。
2 物品准备与申请2.1 领取清洁痰盒，推荐到采购办领取专门痰盒。
请拿检验申请单到病房二楼细菌室登记领取。
细菌室周一到周六上午正常上班。
其他时间如中午、夜班、节假日请到生化室联系。
2.2 填写检验申请单。
用钢笔填写，字迹清楚，填写完整。
填写内容包括：患者姓名、性别、年龄、科别、病区、床号、住院号、临床诊断、送检目的、申请医生及送检时间。
3采集指征痰液标本是临床微生物学检验最常见的的标本，但不是下呼吸道感染的最佳标本。
有下列体征之一，应进行痰培养：（1）咳嗽咳嗽咳痰是下呼吸道感染最常见的症状。
（2）咯血包括泡沫血痰、鲜血和痰中带血等。
（3）呼吸困难呼吸急促或哮喘，常伴有胸痛。
（4）发热伴白细胞增高尤其是中性粒细胞或CRP明显增高。
（5）胸部影像学检查提示有感染可能。
4采集方法4.1 自然咳痰法以晨痰为佳，采集标本前应用清水、冷开水漱口或用牙刷（不用牙膏）清洁口腔和牙齿，有假牙者应取下假牙。
尽可能在用抗菌药物之前采集标本。
用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入痰盒中，标本量应≥1ml。
咳痰困难者可用雾化吸入加温至45°C的10% NaCl水溶液，使痰液易于排出。
对难于自然咳痰患者可用无菌吸痰管抽取气管深部分泌物。
4.2 支气管镜采集法、防污染毛刷采集法、环甲膜穿刺经气管吸引法、经胸壁针穿刺吸引法和支气管肺泡灌洗法，均由临床医生按相应操作规程采集，但必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染。
微生物实验室样本分离操作规程标本处理、检验与结果报告：1)拭子、分泌物标本标本涂于普通血平板、麦康凯平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则报告未培养出普通致病细菌。
2)尿液标本取5ml 尿液,3000 转/分离心5 分钟，取离心沉淀物，接种环取样涂于普通血平板、麦康凯平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则报告未培养出普通致病细菌。
3)引流液标本3000 转/分离心5 分钟，取离心沉淀物，接种环取样涂于普通血平板、麦康凯平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则报告未培养出普通致病细菌。
4)痰液或咽拭子标本无菌接种环可疑处采样涂于普通血平板、麦康凯平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则报告未培养出普通致病细菌。
5)粪便或肛拭子等肠道标本以无菌接种环桃取可疑处标本涂于普通血平板、麦康凯平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则报告未培养出普通致病细菌。
6)留置针头、小导管等标本标本置无菌管中，加入增菌液2ml，35℃温箱培养48 小时观察培养液有无混浊，采样涂于普通血平板、麦康凯平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则报告未培养出普通致病细菌。
真菌培养阴性操作程序1、仔细查对标本标签与检验单是否正确，标本质量是否合格，若收检标本与检验单查对正确，标本质量合格则进行接收检验，否则查找原因并在有关记录本上记录。
微生物检测操作规程《微生物检测操作规程》一、目的微生物检测操作规程旨在规范微生物检测实验的操作流程，确保检测结果的准确性和可靠性。
二、适用范围本规程适用于实验室内进行微生物检测实验的操作人员，包括但不限于食品、医药、环境等领域的微生物检测。
三、操作流程1. 实验前准备（1）检查所需物品和设备的完整性和清洁度；（2）准备好所需的培养基、培养皿、移液器等实验用品；（3）佩戴实验服和手套，保持操作环境清洁。
2. 样品处理（1）按照标准操作程序采集样品，并确保准确记录样品信息；（2）样品处理前进行必要的预处理，如稀释、离心等。
3. 培养和检测（1）按照操作规程在培养基上均匀涂布样品；（2）标注培养皿的信息，包括样品编号、培养基种类、培养温度等；（3）放置在适当的培养温度下培养一定时间；（4）观察培养皿的生长情况，记录培养时间和结果。
4. 结果分析（1）根据培养结果进行初步鉴定和计数；（2）必要时进行进一步的分离、鉴定和鉴定。
四、质控要求（1）实验操作人员应具备相应的微生物检测知识和技能，并接受相关的培训；（2）严格遵守操作规程，确保实验操作的准确性和一致性；（3）定期对实验室设备、试剂和培养基等进行检查和质量控制，确保其完好和有效。
五、记录和报告实验过程中产生的数据和结果应当及时记录，并进行审查和验证。
对于检测结果，应当制作详细的技术报告，包括检测方法、样品信息、结果分析和结论等内容。
六、实施本规程由实验室主管负责组织实施，并由实验室操作人员严格遵守。
七、附则本规程自发布之日起施行，如有变动将另行制定修订，并及时通知相关人员。
以上即为《微生物检测操作规程》的内容，希望广大实验室操作人员严格按照规程执行，确保微生物检测工作的准确性和可靠性。
微生物实验室使用规程第一篇：微生物实验室使用规程微生物实验室使用规程1、使用微生物实验室需申请、预约经批准的人员才可进入实验室工作区域。
2、在实验室工作时，必须穿着工作服，配戴合适的手套，不得穿露脚趾的鞋子。
3、禁止在实验室工作区域进食、饮水、吸烟、化妆和处理隐形眼镜。
4、实验室应保持清洁整齐，严禁摆放和实验无关的物品。
5、离开实验室前将防护服脱下。
在实验室内用过的防护服不得和日常服装放在同一柜子内。
6、发生具有潜在危害性的材料溢出时，请及时报告实验室负责人，以便进行相关的消毒工作。
7、在每天工作结束之后，都必须清除工作台面的污染。
8、微生物实验室配备有应急消毒室，所有微生物实验室的废弃物都应在应急消毒室进行初步消毒后才可带离实验室。
9、微生物实验室废弃物处理（1）锐器：皮下注射针头应完整地置于专用一次性锐器盒中按医院内医疗废物处置规程进行处置。
盛放锐器的一次性容器绝严禁丢弃于生活垃圾中。
（2）高压灭菌后重复使用的污染（有潜在感染性）材料：任何高压灭菌后重复使用的污染（有潜在感染性）材料必须在高压灭菌或消毒后进行清洗、修复。
（3）废弃的污染（有潜在感染性）材料：除了锐器按上面的方法进行处理以外，其他污染（有潜在感染性）材料在丢弃前均需消毒。
10、在处理完感染性实验材料和动物后，以及在离开实验室工作区域前，都必须洗手。
11、第一次使用实验室的仪器设备前，请仔细阅读使用说明书并在仪器管理人员的指导下进行操作。
仪器出现故障时请及时报告实验室负责人。
12、离开实验室前请确保水、电、门窗已关闭。
13、感谢您为保持实验室的整洁与生物安全所做出的努力，谢谢您的支持与合作。
第二篇：微生物实验室操作规范及其仪器的使用青岛辰和国际礼品制造有限公司实验室仪器使用规程目录一、微生物实验室操作规程 (2)二、无菌间使用规程 (3)三、传递窗使用规程 (4)四、净化工作台使用规范 (5)五、手提式高压灭菌锅使用规范 (6)六、全自动高压蒸汽灭菌器使用规程 (7)七、冰箱使用规程 (8)八、天平操作规程 (9)九、光学显微镜使用规范 (10)十、恒温干燥箱使用规程 (11)十一、恒温培养箱使用规范 (12)十二、霉菌培养箱使用规程 (13)十三、电子恒温水浴锅操作规程 (14)十四、真空干燥箱使用规程 (15)十五、PH计使用规程 (16)十六、糖度计的使用规程 (17)十七、pHS-3C型酸度计操作规程…………………………18-19十八、DDS-307型实验室电导率仪操作规程………20 1微生物实验室操作规程1、工作人员加强有菌观念，无菌操作。
分离获得某目标微生物的操作流程嘿，今天我们来聊聊如何分离获得某个目标微生物的步骤，听起
来是不是有点复杂？其实没那么难，跟着我来吧！
第一步呀，我们得准备好一切材料，像是什么培养基、试管之类的，哟，千万别忘了那些防护装备哦，安全第一嘛！然后呢，要找到
一个合适的地方，哦，最好是干净又干燥的地方，嘿，这样才不容易
搞错。
拿来一份我们要分离的样本，哎，一定要保证这个样本的新鲜度，太旧了可没啥意思哦。
嘿，把样本放在培养基上，轻轻地抹均匀，哇，这可是关键一步呀，太厚或太薄都会影响微生物的生长。
呃，就得耐心等待啦，嘿，这个过程可是需要时间的，通常要一两天，看微生物们慢慢长大，真是让人期待呀！哎呀，有时还要定期观察一下，看看有没有其他的污染物，别让它们给我们捣乱了！
哟，终于到了收获的时刻！等微生物长得差不多了，就可以拿起接种环，小心翼翼地挑一挑你想要的那种，哎呀，别碰到别的呀，咱们要的可得清清楚楚呢！把它们转移到新的培养基上，再给它们创造一个舒适的小环境。
还得做些后续处理，嘿，别小看这个步骤，哇，它可是决定你微生物性状的重要一步呢！哎哟，记得记录下每个步骤的数据，待以后复查的时候能用得上。
就这样，咱们的目标微生物就分离出来啦！真是个开心的过程，哎呀，各位小伙伴们，有没有觉得其实做科学实验也是挺有趣的呢？。
微生物实验室样本分离操作规程
标本处理、检验与结果报告：
1)拭子、分泌物标本标本涂于普通血平板、麦康凯平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后
置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则
报告未培养出普通致病细菌。
2)尿液标本取5ml 尿液,3000 转/分离心5 分钟，取离心沉淀物，接种环取样涂于普通血平板、
麦康凯平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则
报告未培养出普通致病细菌。
3)引流液标本3000 转/分离心5 分钟，取离心沉淀物，接种环取样涂于普通血平板、麦康凯平
板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则
报告未培养出普通致病细菌。
4)痰液或咽拭子标本无菌接种环可疑处采样涂于普通血平板、麦康凯平板成原始线，再以无菌
接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则
报告未培养出普通致病细菌。
5)粪便或肛拭子等肠道标本以无菌接种环桃取可疑处标本涂于普通血平板、麦康凯平板成原始
线，再以无菌接种环画线分离后置35℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则
报告未培养出普通致病细菌。
6)留置针头、小导管等标本标本置无菌管中，加入增菌液2ml，35℃温箱培养48 小时观察培
养液有无混浊，采样涂于普通血平板、麦康凯平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置35
℃温箱培养。
培养第24、48 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至72 小时未见可疑菌落，则
报告未培养出普通致病细菌。
真菌培养阴性操作程序
1、仔细查对标本标签与检验单是否正确，标本质量是否合格，
若收检标本与检验单查对正确，
标本质量合格则进行接收检验，否则查找原因并在有关记录本上记录。
2、标本处理、检验与结果报告：
1)拭子、分泌物标本标本涂于TTC-沙保罗平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置25℃
温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第4 天未见可疑菌落，则
报告未培养出真菌。
2)尿液标本取5ml 尿液,3000 转/分离心5 分钟，取离心沉淀物，接种环取样涂于TTC-沙保罗
平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置25℃温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第4 天未见可疑菌落，则
报告未培养出真菌。
3)引流液标本3000 转/分离心5 分钟，取离心沉淀物，接种环取样涂于TTC-沙保罗平板成原始
线，再以无菌接种环画线分离后置25℃温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第4 天未见可疑菌落，则
报告未培养出真菌。
4)痰液或咽拭子标本无菌接种环可疑处采样涂于TTC-沙保罗平板成原始线，再以无菌接种环画
线分离后置25℃温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第4 天未见可疑菌落，则
报告未培养出真菌。
5)粪便或肛拭子等肠道标本以无菌接种环桃取可疑处标本涂于TTC-沙保罗平板成原始线，再以
无菌接种环画线分离后置25℃温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第4 天未见可疑菌落，则
报告未培养出真菌。
6)留置针头、小导管等标本标本置无菌管中，加入增菌液2ml，35℃温箱培养48 小时观察培
养液有无混浊，采样涂于TTC-沙保罗平板成原始线，再以无菌接种环画线分离后置25℃温箱培
养。
培养第24、48、72 小时观察平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第4 天未见可疑菌落，则
报告未培养出真菌。
苛养菌培养阴性操作程序
1、仔细查对标本标签与检验单是否正确，标本质量是否合格，
若收检标本与检验单查对正确，
标本质量合格则进行接收检验，否则查找原因并在有关记录本上记录。
2、标本处理、检验与结果报告：
1)拭子、分泌物标本标本涂于普通血琼脂平板、巧克力(含V、X 因子)平板成原始线，再以无菌
接种环画线分离后置C02 缸，35℃温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第5 天未见可疑菌落，
则报告未培养出奈瑟氏菌、嗜血杆菌等苛养菌。
2)尿液标本取5ml 尿液,3000 转/分离心5 分钟，取离心沉淀物，接种环取样涂于普通血平板、
巧克力(含V、X 因子)平板成原始线，再画线分离后置C02 缸，35℃温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第5 天未见可疑菌落，
则报告未培养出奈瑟氏菌、嗜血杆菌等苛养菌。
3)引流液标本3000 转/分离心5 分钟，取离心沉淀物，接种环取样画线分离接种普通血平板、
巧克力(含V、X 因子)平板，置C02 缸，35℃温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第5 天未见可疑菌落，
则报告未培养出奈瑟氏菌、嗜血杆菌等苛养菌。
4)痰液或咽拭子标本无菌接种环可疑处采样涂于普通血平板、巧克力(含V、X 因子)平板原始线，
再画线分离后置C02 缸， 35℃温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第5 天未见可疑菌落，
则报告未培养出肺炎球菌、嗜血杆菌等苛养菌。
5)粪便或肛拭子等肠道标本以无菌接种环桃取可疑处标本涂于血平板、布氏血平板成原始线，
再分离画线后置于C02 缸，放入35℃温箱培养。
另取约1g 标本接种碱性蛋白胨水中，35℃温
箱培养24-72 小时，再转种高盐平板、中国兰平板、山梨醇麦康凯平板。
培养第24、48、72 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继续培养至第5 天未见可疑菌落，
则报告未培养出弧菌、螺杆菌等细菌。
6)留置针头、小导管等标本标本置无菌管中，加入增菌液2ml，35℃温箱培养48 小时观察培
养液有无混浊，采样转种血平板、巧克力(含V、X 因子)平板成原始线，再画线分离后置于C02
缸，35℃温箱培养。
培养第24、48、72 小时观察各平板上有否出现可疑菌落，若继
续培养至第5 天未见可疑菌落，
则报告未培养出奈瑟氏菌、嗜血杆菌等苛养菌。
抗酸培养阴性操作程序
1、仔细查对标本标签与检验单是否正确，标本质量是否合格，若收检标本与检验单查对正确，
标本质量合格则进行接收检验，否则查找原因并在有关记录本上记录。
2、标本处理、检验与结果报告：
液性引流标本(如腹水、尿液、CSF 等)直接离心留沉淀物，杂菌污染标本(如大便、痰等)取样置
无菌管，加入1N NaOH1ml 作用30 分钟，再加入1N HCl1ml 中和，3000 转/分钟离心5 分钟，
取沉淀物100μl 量接种罗氏培养基，置37℃温箱培养。
每星期观察一至两次培养基斜面，结果连续观察七个星期以上未发现有可疑菌落生长，报告未培
养出分枝杆菌。
支原体培养检验操作程序。
