药理学实验常用仪器操作技术

药理学实训教学大纲课程名称：药理学实验学时：34学时一、课程性质与任务本课程是楚雄医药高等专科学校药学专业三年制专科必修专业课。

药理学实验教学不仅是药理学理论教学的补充，而且是培养学生思维、锻炼学生技能的实践性课程。

其目的是使学生所学的基本理论和基本知识通过实验使得到进一步理解和验证，培养学生严肃的科学态度和严谨的科学作风。

其任务是通过实验课使学生掌握研究药理学的基本实验技能和实验方法，为将来的工作和科研奠定基础，使之具有从事新药开发、理论研究和药学服务等工作所必备的实验技能。

1.熟悉血浆半衰期（t1/2）的临床意义。

2.了解用比色法测定水杨酸钠血浆浓度和计算其半衰期的方法。

1.观察乙酰胆碱和阿托品对离体肠平滑肌的作用。

实训六苯巴比妥钠的抗惊厥作用（一）实验学时：1学时（二）实验类型：验证性实验（三）实验目的和要求观察苯巴比妥钠的抗惊厥作用，并联系其临床应用。

1.熟悉家兔耳静脉注射法和体温测量法。

2.观察氯丙嗪的镇静安定作用。

（一）实验学时：2学时（二）实验类型：验证性实验（三）实验目的和要求1.学习小白鼠的捉拿方法及腹腔注射法2.观察麻醉性镇痛药哌替啶与非麻醉性镇痛药罗通定的镇痛效应。

（五）实验内容开启PL-200热刺痛仪、测每只小白鼠给药前的痛阈值、给药、观察、计算1．熟悉离体蛙心标本的制作。

（一）实验学时：2学时（二）实验类型：验证性实验（三）实验目的和要求1．观察呋塞米的利尿效果。

2．分析呋塞米的利尿作用原理，并联系其临床应用。

（四）编组：6人/组（五）实验内容1．选择公兔背位固定。

2．插导尿管、给药、尿液收集，结果分析并写出实验报告。

（六）实验原理呋塞米是一种高效能利尿药，主要作用与肾脏髓袢升支粗断皮质部和髓质部，抑制Na＋－K＋－2Cl－共转运系统，影响尿液的浓缩和稀释功能，产生强大的利尿作用，可排除大量近似与等渗的尿液。

此外，可明显增加肾皮质血流量，增加尿流率。

临床上主要用于急性肾功能衰竭的治疗、脑水中、严重的心性、肾性水肿及加速毒物排泄等。

药理学实验一药理学实验基础及基本技能训练【实验目的】熟悉注射器、灌胃针头的构造、规格和主要用途。

学会正确使用注射器及灌胃针头；学常用实验动物的捉持和给药方法；学会实验动物给药量的计算。

【实验对象】小白鼠【实验器材】注射器、灌胃针头、鼠笼、棉签。

【实验药品】生理盐水、碘伏。

【实验步骤】1．多媒体示教实验动物的捉持及给药方法：（实验原理1）（1）捉持法用右手提起鼠尾，将其放于粗糙面（如鼠笼）上。

右手向后拉鼠尾，使其固定在粗糙面上。

此时应趁其不备迅速用左手拇指和食指捏住小鼠双耳及头颈部皮肤。

然后，翻转小鼠使其腹部向上平卧于掌心中，用无名指和小指压住鼠尾并固定于手中（2）给药法①灌胃法（ig）：左手捉持小鼠，头部向上，颈部拉直。

右手持配有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，与食管成一直线，然后沿上颚轻轻插入食管，如插入无阻力、小鼠无挣扎、呼吸无异常、口唇无发绀等现象，即可注入药液。

若遇阻力，应退回重插，以免插入气管引起小鼠死亡。

药液量一般为0.1～0.3ml/10g体重，每只不超过0.5ml （图1）。

②腹腔注射法（ip）：左手捉持小鼠，右手持注射器（选用5或6号注射针头），与腹壁呈45°角，自下腹部一侧向头端刺入腹腔。

进针时角度不宜太小，部位不能太高，刺入不能太深，否则会损伤内脏。

药液量一般为0.1～0.2ml/10g体重，每只不超过0.5ml（图2）。

③皮下注射法（sc）：可两人合作，一人用左手捏住小鼠头部皮肤、右手拉住鼠尾固定小鼠；另一人左手捏起小鼠背部皮肤，右手持注射器，将针头刺入背部皮下注入药液。

也可单人操作，按前法捉持小鼠，右手持注射器，针头沿右侧肋缘上穿入皮下，向前推至右前肢腋下部位，推入药液即可。

药液量一般为0.05～0.2ml/10g体重，每只不超过0.3ml。

④肌内注射法（im）：两人合作，一人固定小鼠，另一人将注射器针头刺入小鼠后肢外侧肌肉内注入药液。

药液量每腿不超过0.1ml。

郑州澍青医学高等专科学校教案（首页）灌胃、腹腔注射、皮下注射及尾静脉注射与小鼠相似。

静脉注射也可在麻醉下行舌下静脉注射。

3、家兔给药途径与方法灌胃：一人将兔身固定于腋下，一手固定兔头，另一手将开口器放入兔口。

另一人将胃管从开口器孔插入口内，再慢慢插入食道和胃(图39)。

为慎重起见，可将胃管外端放入水中，如无气泡，则可证实胃管在胃内。

灌胃量一般为10ml/kg。

如用兔固定盒，可由一人操作。

静脉注射：一人固定兔身和兔头，另一人在使兔耳边缘血管(耳缘静脉)扩张后，将针头从静脉末端刺入血管，左手拇指和食指固定针头和兔耳，右手注药(图310)。

注药量一般为2ml/kg，等渗液可达10ml/kg。

皮下、肌肉、腹腔注射与鼠类相似。

常用注药量分别为0.5、1.0、5.0ml/kg。

三、实验动物的处死方法颈椎脱位法：小白鼠和大白鼠：术者左手持镊子或用拇指、食指固定鼠头后部，右手捏住鼠尾，用力向后上方牵拉，听到鼠颈部喀嚓声即颈椎脱位，脊髓断裂，鼠瞬间死亡。

豚鼠：术者左手倒持豚鼠，用右手掌尺侧或木棒猛击颈部，使颈椎脱位迅速死亡。

断头、毁脑法：常用于蛙类。

可用剪刀剪去头部或用金属探针经枕骨大孔破坏大脑和脊髓而致死。

大鼠和小鼠也可用断头法处死，术者需戴手套，两手分别抓住鼠头与鼠身，拉紧并显露颈部，由助手持剪刀，从颈部剪断头部。

空气栓塞法：术者用50～100ml注射器，向静脉血管内迅速注入空气，气体栓塞心腔和大血管而使动物死亡。

使猫与家兔致死的空气量为10～20ml，犬为70～150ml。

大量放血法：鼠可用摘除眼球，从眼眶动静脉大量放血而致死。

如不立即死亡，可摘除另一眼球。

猫可在麻醉状态下切开颈三角区，分离出动脉，钳夹上下两端，插入动脉插管，再松开下方钳子，轻压胸部可放大量血液，动物可立即死亡。

对于麻醉犬，可横向切开股三角区，切断股动静脉，血液喷出；同时用自来水冲洗出血部位(防止血液凝固)，3～5min动物死亡。

采集病理切片标本宜用此法。

实验一药理学实验的基本技能一、实验动物的基本技能和实验技术基础1.实验动物的标记大、小鼠和白色家兔的标记常用3～5％黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。

常用的方法：1号 ---左前腿2号 ---左腰部3号 ---左后腿4号 ---头部5号 ---正中6号 ---尾根部7号 ---右前腿8号 ---右腰部9号 ---右后腿10号 ---不标记2.实验动物的捉持（大、小鼠）(1)小鼠的捉持用右手提起鼠尾，放在粗糙物（如鼠笼盖）上面，向后轻拉鼠尾；用左手拇指和食指捏住其两耳颈背部皮肤，将小鼠固定在掌中，使其腹部朝上，然后以无名指和小指夹住鼠尾或小鼠的左后肢。

（2）大鼠的捉持捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，并应动作轻柔。

用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。

图 1 小白鼠捉持法3、实验动物的给药方法（大、小鼠）（1）小鼠的给药方法灌胃（ig）：将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，压其头部，使口腔与食道成一直线，沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。

如遇阻力，可将针头抽出再插，以免刺破食管或误入气管。

一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。

图 2 小白鼠灌胃法实验图 3 小白鼠腹腔注射法皮下注射（H或sc）：常在背部皮下。

轻轻捏起背部皮肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动则表明针尖位于皮下。

然后注入药液。

一般给药量为0.1～0.20ml/10g （体重）。

图 4 小白鼠皮下注射法腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm，一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。

肌内注射(im)：多注射于后肢股部肌肉，一般每侧不超过0.1ml。

尾静脉注射（iv）：将小鼠置于固定筒内，使尾部露在外面，用70％～75％的乙醇棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～59ºC温水中，待尾部左右侧静脉扩张后，左手拉尾，右手进针。

实验一药理学实验基本知识和技术实验目的：1、掌握基本操作，锻炼动手、动脑能力；2、更好地掌握药理学基本理论知识；3、培养科学思维。

实验内容：一、药理实验的基本目的与要求二、实验动物：1、动物的选择；2、动物的标记与捉拿、固定方法；3、动物的取血方法（尾尖、眼眶静脉丛、摘眼球、断头）；4、动物的给药方法（灌胃、腹腔、皮下、尾静脉）；5、动物的麻醉方法；6、动物的处死方法。

三、实验设计基本原则。

实验步骤：一、药理学实验的基本目的与要求药理学实验课在药理学教学中占有非常重要的地位。

药理学实验课的目的在于通过实验验证药理学的基本理论，加深理解与掌握药理学的基本知识和规律；也是了解获得药理学知识的科学途径。

同时，培养学生独立思考，独立工作，科学思维的能力；培养学生动手操作、分析问题和解决问题的能力；还应培养学生对科学工作的严肃的态度、严格的要求、严密的工作方法及实事求是的工作作风。

为了达到上述目的，要求做到下列事项：1. 实验前：预习实验内容并复习相关理论知识；2. 实验时：（1）实验分小组进行，实验前分工明确，实验时密切配合；（2）确定实验仪器、药品、动物与实验指导相符时，将实验器材妥善安排，正确装置、保管；（3）实验操作按步骤进行，仔细观察实验中出现的现象，实事求是地做好记录；（4）注意爱护动物、节约实验药品；（5）实验过程中保持实验室肃静、清洁。

3. 实验后：⑴各组同学将实验动物处死，实验台擦干净，将实验方盘送回准备室；⑵值日生搞好实验室卫生，将死亡动物送至指定场所；⑶整理实验结果，经分析思考作出结论，按要求写出实验报告，按时交给指导老师。

实验报告的书写1.题目2.目的3.原理4.材料：实验动物，器材，药品5.方法：用自己的语言简单扼要描述出来；6.结果：要求真实、清楚；7.讨论：将实验结果进行比较、分析；实验中有哪些不足之处；结果异常或失败的原因；8.结论：将实验结果进行归纳总结，应带有提示性质。

药理学实验须知一、明确药理实验的目的要求药理学实验课是药理学教学的一个重要组成部分。

它的目的任务一方面是验证理论，巩固并加强对理论知识的理解；另一方面是通过实验掌握研究药物作用的基本操作方法和技能，培养对科学工作严肃的态度，严肃的方法和严格的要求，培养根据客观实际分析问题和解决问题的能力，为今后进行科学研究，打下初步基础，以便为实现中西医药结合作出贡献。

药理实验包括进行实验操作(有些部分可进行病例讨论)、整理实验结果写出实验报告等环节。

为了提高实验效果，实验前应作好预习，明确本次实验目的、方法步骤和原理，做到心中有数，避免实验中出现忙乱和差错。

实验过程中要在教师指导下加强培养独力操作能力，克服对教师的依赖性。

通过实验操作要求在生理生化实验的基础上掌握固定动物和各种给药方法，掌握剂量换算和麻醉方法，学会观察记录主要生理生化指标，掌握注射器、天平、磅秤、二导生理记录仪、药理生理多用仪及描记装置等用法，掌握离体心脏、肠管、子宫和在体动物血压、呼吸及各系统药物的主要实验方法。

二、作好实验结果的处理药理实验结果有生理记录仪等记录的曲线、测量资料(如血压、心率、瞳孔大小、睡眠时间等测量的数据)和计数资料（如动物死活数、阴性和阳性反应数等数据）等几种。

要如实地准确地对观察到的数据及时加以记录，决不可想当然地用主要观想象或书本理论代替实验观察到的客观事实。

实验完毕对结果分别加以整理。

记录曲线要加以剪裁。

注明动物性别、体重、日期、实验题目、给药剂量等。

计数资料和测量资料应酌情列表或画图以便比较，使结果一目了解。

三、写好实验报告写实验报告是培养文字表达能力和概括综合分析问题能力的重要训练方法。

每次实验后要求用统—实验报告本写好报告，交负责教师评阅。

在实验报告中要求列出实验题目、实验方法和实验结果。

有时要对实验结果产生的原理或对实验结果异常的原因略加讨论。

讨论不可离开实验结果去抄书。

实验指导所列思考题或讨论题是为加深对实验的理解，如果与实验结果无关，不必写入实验报告。

药理学实验方法药理学实验方法第－讲实验动物的选择在药理学实验中，要根据实验目的，选择不同动物，常用动物有：１、青蛙和蟾蜍心脏（离体、在体）实验, 制备坐骨Ｎ－腓肠标本等。

２、小白鼠：药物初筛：镇痛、耐缺氧、抗肿瘤药物、LD５０测定、避孕药实验等。

３、大白鼠：抗炎作用，大白鼠踝关节肿胀实验，血压测量，胆管插管等。

长期性毒性试验。

４、豚鼠：对组胺敏感，并易于致敏，常用抗过敏药（平喘药、抗组胺药）实验。

离体心房、心脏、肠管实验等。

豚鼠对结核菌也敏感，也用于抗结核病药物实验。

5、兔：家兔易得，驯服，便于静脉注射和灌胃，常用于观察药物对心脏的作用和对CNS 的作用。

又由于其体温变化较敏感，也常用于体温实验及热原检查。

家兔也常用于避孕药实验。

6、猫：猫的血压比较稳定，具有咳咳嗽反射和呕吐动作。

因而常用于心血管药物实验和镇咳药、镇吐药实验。

7、狗：狗的血压比较稳定，常用于降压药、升压药和抗休克药实验。

狗比较容易驯服，最适用于慢性实验。

手术造瘘（胃、肠）以便观察药物对胃肠蠕动和分泌的影响。

此外，长期毒性实验也常用狗来进行。

* 附:给药途径及剂量限制1. 小白鼠（1）灌畏法:0.1～0.25ml／10g体重。

（2）皮下注射：0.1～0.3ml／10g体重。

（3）肌肉注射：0.2ml／每侧。

（4）腔注射：0.1～0.25ml／10g体重。

（5）静脉注射：0.05～0.1ml／10g体重。

1.大白鼠（1）灌畏法:2.0ml／10og体重。

<3.0ml/只。

（2）腔注射：0.1～0.25ml／10g体重。

第二讲实验动物的麻醉和处死一、各种实验动物的麻醉药物和麻醉方法1药理学实验方法1、乙醚乙醚为挥发性麻醉药。

常用于小动物（小鼠）的麻醉。

使用方法有：开放发和封闭法。

2、戊巴比妥钠戊巴比妥钠的作用稳定、麻醉持续时间中等(一次给药可维持作用2～4 hr)，一般实验均可使用。

常用其3% 溶液。

各种动物所用剂量如下：狗：30mg/kg，iv猫、兔：30～40mg/kg，iv或ip大鼠、小鼠：40～50mg/kg，ip3、乌拉坦乌拉坦的作用较弱，对呼吸的抑制作用小是其优点。

一、实验目的1. 了解小白鼠的生理结构和生理功能，为药理学实验提供动物模型。

2. 掌握小白鼠给药方法、采血技术及基本生理指标的测定方法。

3. 学习药理学实验的基本操作流程，提高实验技能。

4. 通过观察药物在小白鼠体内的作用，了解药物的药效学及药代动力学特点。

二、实验材料1. 实验动物：小白鼠2. 主要试剂：生理盐水、药物、生理盐水溶液、药物溶液3. 主要仪器：注射器、针头、试管、移液器、显微镜、电子天平、体温计、血压计等三、实验方法1. 小白鼠的观察与处理- 观察小白鼠的形态、行为、生理指标等，如体重、体温、呼吸、心率等。

- 记录小白鼠的生理指标，为实验提供基础数据。

2. 给药方法- 口服给药：将药物与生理盐水混合，用注射器将药物溶液灌入小白鼠口中。

- 腹腔注射给药：将药物溶液用注射器注入小白鼠腹腔。

- 肌肉注射给药：将药物溶液用注射器注入小白鼠肌肉。

3. 采血技术- 采取小白鼠尾静脉血：将小白鼠尾部固定，用酒精消毒，用针头穿刺尾静脉，收集血液。

- 采取小白鼠眼眶静脉血：将小白鼠头部固定，用酒精消毒，用针头穿刺眼眶静脉，收集血液。

4. 生理指标测定- 体温测定：用体温计测定小白鼠的体温。

- 呼吸测定：观察小白鼠的呼吸频率和深度。

- 心率测定：用听诊器测定小白鼠的心率。

5. 药物作用观察- 观察小白鼠给药后的行为变化，如活动减少、呼吸加快、心率增快等。

- 测定小白鼠的生理指标变化，如体温、呼吸、心率等。

- 分析药物在小白鼠体内的药效学及药代动力学特点。

四、实验结果1. 小白鼠给药后，体温、呼吸、心率等生理指标发生明显变化。

2. 药物在小白鼠体内的药效学及药代动力学特点如下：- 药物在小白鼠体内的吸收速度较快，药物浓度在短时间内达到峰值。

- 药物在小白鼠体内的分布广泛，主要集中在肝脏、肾脏等器官。

- 药物在小白鼠体内的代谢速度较快，药物浓度在短时间内降低。

- 药物在小白鼠体内的排泄速度较快，主要通过尿液排泄。

药理学实验中常见的操作失误和防治措施【中图分类号】r96 【文献标识码】a 【文章编号】1672－3783(2012)07－0397－01【摘要】：药理学是医学教育的桥梁学科，药理学实验是药理学教学不可缺少的组成部分，对学习和掌握药理学知识具有重要作用。

总结药理学实验过程中常见的操作失误即可减少对学生造成的伤害，又可保证实验的准确性，也有助于培养学生严谨的工作态度，为将来的工作奠定基础。

【关键词】：药理学实验操作失误防治措施药理学作为医药学教育的一门桥梁学科，在医学基础理论与临床实践、医学与药学、医学各基础学科之间的联系及中西医药结合方面均起到重要的作用。

药理学是一门实验性学科，其理论来自生物实验，即观察药物对实验动物或人体作用而建立的一门学科。

因此，药理学实验是药理学教学不可缺少的组成部分，对学习和掌握药理学知识具有重要作用。

总结药理学实验过程中常见的操作失误即可减少对学生造成的伤害，又可保证实验的准确性，也有助于培养学生严谨的工作态度，为将来的工作奠定基础。

1 常见操作失误1.1 给错药物药理学实验是验证理论知识，每一次实验要用到相应的几种药物，学生由于粗心大意给药错误在实验中是较常见的。

例如在硫酸镁中毒及钙剂的解救实验中，就出现学生在做硫酸镁中毒模型中错误的把氯化钙先耳缘静脉注射入家兔体内，久等硫酸镁中毒不出现的情况。

1.2 给药剂量不准确药理学实验一般用到1ml、5ml、10m注射器等，在注射器使用过程中方法不正确易造成剂量误差，常见在给小白鼠注射时使用的1ml注射器内的气泡没排出，在药理实验中小白鼠所需剂量就很小，要求剂量一定要精确，较明显的气泡就已经造成很大的误差。

药理学实验给药剂量都是按照动物的体重给药，如果称重不准确，剂量就会计算错误，影响实验结果。

1.3 给药方法和给药途径不正确药理学实验中给药方法一定要正确，否则会引起实验动物的死亡或实验结果不正确。

小白鼠常见的给药方法是腹腔注射、背部皮下注射、灌胃等，小白鼠对脏器的损害非常敏感，如果腹腔注射位置太高损伤肝脏，灌胃损伤食管和肺组织都会引起小白鼠死亡或不出现实验结果。

药理学实验详悉一、动物实验动物实验是根据研究目的，恰当地选用标准的符合实验要求的实验动物，在设计的条件下，进行各种科学实验、观察、记录动物的反应过程或反应结果，以探讨或检验生命科学中未知因素的专门活动。

动物实验是人类生存和发展的必要手段。

动物实验方法是进行动物实验时的各种实验手段、技术、方法和标准化操作程序。

也探讨实验动物科学中的减少、替代、优化问题。

实验动物的选择：首先应从生物医学研究的目的和实验要求来选择实验动物，进而考虑实验动物是否容易获得、是否经济、是否容易饲养。

一切实验动物应具有个体间的均一性，遗传的稳定性和容易获得三个基本要求。

标准化原则：根据对实验质量的要求选择标准化的实验动物。

动物实验中选择和使用与研究内容相匹配的标准化的实验动物标准化动物：是指遗传背景明确或来源清楚的，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，模型性状显著且稳定的动物。

在精确试验中，鉴于动物体内外的微生物和寄生虫会干扰试验的结果，最好选择无菌动物或悉生动物，至少也应SPF级动物。

规格化原则：选择与实验要求一致的动物规格。

实验动物年龄与体重一般呈正相关性，可按体重推算年龄。

一般来说，实验动物年龄、体重应尽可能一致，相差不得超过10%。

不同性别的动物对同一药物的敏感程度是有差异的，如实验无特殊要求应选择雌雄各半做实验，以避免因性别差异所造成的结果误差。

特殊的生理状态下，如发情、妊娠及哺乳期，机体对实验的反应性发生改变。

★实验动物的选择应用应注意有关国际规范：GLP、SOP、“3R”（Replacement替代 Reduction减少 Refinement优化）(一)实验动物：系指遗传背景明确、来源清楚、对其携带的微生物、寄生虫实行控制，经科学方法人工培育用于科学实验的动物。

(二)实验动物的分类方法1、按遗传学控制分类*近交系：杂种动物经过相当于20代全同胞兄弟单纯连续繁殖，各条染色体上的基因趋于纯合，品系内个体差异趋于零。

液质联用法在药理学实验教学中的应用蒲妍池发布时间：2023-02-21T08:50:23.612Z 来源：《新潮·建筑与设计》2022年8期作者：蒲妍池[导读] 药理学是以生理学、解剖学、生物化学、病理学、病理生理学、微生物学、免疫学等多门课程作为基础，探讨药物与机体(包括病原体)的相互作用及作用规律的学科，是医药院校基础课的核心课程之一，更是连接医学和药学、基础医学和临床医学的桥梁学科。

药理学是一门以实验为基础的学科，药理学实验教学是药理学教育的重要组成部分。

近年来，高等院校鼓励培养创新型人才，重视学生科研与创新思维的培养，并一定程度地开展药理学实验的改革探索。

药理学实验课程的建设与改革已是势在必行，这将有利于培养学生创新意识，提高药学综合素养，从知识、技能、方法和意识等方面，为未来长远的发展做好充分准备。

（重庆交通职业学院重庆江津区 402247）摘要：药理学是以生理学、解剖学、生物化学、病理学、病理生理学、微生物学、免疫学等多门课程作为基础，探讨药物与机体(包括病原体)的相互作用及作用规律的学科，是医药院校基础课的核心课程之一，更是连接医学和药学、基础医学和临床医学的桥梁学科。

药理学是一门以实验为基础的学科，药理学实验教学是药理学教育的重要组成部分。

近年来，高等院校鼓励培养创新型人才，重视学生科研与创新思维的培养，并一定程度地开展药理学实验的改革探索。

药理学实验课程的建设与改革已是势在必行，这将有利于培养学生创新意识，提高药学综合素养，从知识、技能、方法和意识等方面，为未来长远的发展做好充分准备。

关键词：液质联用法；药理学；实验教学；应用引言如何在实验教学中培养学生的科研思维，培养学生的创新实践能力，各高校在教学中一直都在积极努力地不断探索。

在实验教学中，对学生创新能力的培养也是适应国家创新型人才培养的需要。

以往各院校在药理学实验教学改革方面都进行了积极地探索与实践，并取得了丰硕的成果，如虚拟实验教学、多媒体的应用、以问题为基础的教学法（problem-basedlearning，PBL）、分阶段教学、研发药理学综合性、设计性实验等。