标本采集、运送标准操作规程
- 格式:ppt
- 大小:178.00 KB
- 文档页数:30
临床检验标本采集、运输、保存操作规程临床检验标本采集、运输和保存操作规程第一章体液标本的采集、运输和保存操作规程一、尿液标本的采集、运输和保存尿液标本的采集、运输和保存是临床检验中非常重要的一环。
尿液干化学测定的检查项目包括尿液比重、pH值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖和抗坏血酸等。
同时也需要检测尿液有形成份,如红细胞和白细胞形态等。
此外,还需要检测24小时尿总蛋白、尿肌酐和尿尿酸等。
二、脑脊液标本的采集、运输和保存脑脊液标本的采集、运输和保存也是非常重要的。
在采集脑脊液标本时,需要注意消毒和无菌操作。
运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。
三、浆膜腔积液标本的采集、运输和保存浆膜腔积液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。
四、分泌物标本的采集、运输分泌物标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温。
五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温。
六、标本的采集、运输和保存标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。
七、前列腺液标本的采集、运输和保存前列腺液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。
八、粪便采集、运输和保存粪便采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。
第二章血液一般检验的标本采集、运输和保存操作规程一、未梢血标本采集未梢血标本采集需要注意消毒和无菌操作。
尿液标本采集和运送标准操作规程(SOP)
一、采集时机
宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。
二、采集方法
(一)清洁中段尿
1、女性:采样前用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液等冲洗外阴,用手指分开阴唇,弃其前段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。
2、男性:采样前用肥皂水或0.05%-0.1%的聚维酮碘(碘伏)溶液等消毒液清洗尿道口,擦干后上翻包皮,弃其前段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。
(二)导尿管尿
1、直接导尿法:使用0.05%-0.1%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒会阴局部,用
导尿管直接经尿道插入膀胱,先弃其前段尿液约15ml,再留取中段尿液10-20ml于
无菌容器内。
2、留置导尿管法:医院内尿路感染中,临床最常用此法。
采集前先夹住导尿管,采集时则松管弃其前段尿液,使用0.25%-0.5%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位,使用无菌注射器斜刺入导尿管(从采样口或靠近尿道的导尿管管壁)抽取10-20ml尿液于无菌容器内。
三、标本运送:
标本采集后及时送检并接种,室温下保存时间不应超过2 h(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存)。
如果不能及时运送或接种,应4℃冷藏,但保存时间也不应超过8h。
四、注意事项
1、不应从集尿袋中采集尿液。
2、尿液中不应加防腐剂或消毒剂。
3、若尿液培养前患者曾使用抗菌药物,应反复多次送检。
4、多次采集或24h尿不应用于尿液培养。
5、除非进行流行病学调查,不应对长期留置导尿管患者常规进行尿液培养。
6、培养结果应结合临床表现、菌落计数以及微生物种类等,进行综合判断。
血培养标本采集和运送标准操作规程目的:1.检查血液中是否有细菌存在。
2.确定血液中存在的菌种,可作为用药治疗的依据。
3.做抗生素的敏感试验。
4.确定患儿病情的进展程度。
用物准备:1.血液培养瓶。
2.检验单。
3.治疗盘:10ml/2ml无菌空针筒、一次性无菌针头数枚、无菌棉签、络合碘、酒精棉球、无菌干棉球、止血带、清洁手套。
采血时机:1.尽可能在抗菌药物使用前;2.对已经使用抗菌药物的病人,最好在下次用药前采集;3.寒战和发热初起时采血可提高培养阳性率,心内膜炎(持续性菌血症)例外;4.怀疑血流感染时应尽早采血,不要强调体温超过39℃才抽血,而错过时机。
步骤:1.核对患儿信息与检验信息2.核对、评估患者(1)了解患儿病情(2)评估患者局部皮肤及血管情况3.洗手,戴口罩,建议戴手套4.备齐用物并携至患儿床单位5.核对患儿,并向患儿家属解释6.协助患儿采取舒适姿势,并露出适宜的采血部位(1)通常选肘部头静脉、贵要静脉、正中静脉(2)切忌在静滴抗生素的静脉处采血7.取出空针及针头备用8.用止血带在采血部位上方5cm(新生儿2~3 cm)左右处扎止血带,并请患儿握拳。
9.消毒(1)用75%酒精消毒皮肤(以采血点为中心,螺旋式用力由内到外直径达5cm以上)60秒。
(2)用碘酊消毒皮肤30秒。
(3)用75%酒精脱碘(以采血点为中心,螺旋式用力由内到外直径达5cm以上)60秒。
10.根据需要抽取血样,放松止血带,以棉球压住针孔,并取出注射器。
11.若怀疑针头污染,需更换新的无菌针头。
如果进行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头。
或严格按厂商推荐的方法采血12.培养瓶消毒程序:用75%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞60秒(若使用含碘消毒剂消毒,必须彻底脱碘)13.用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面残余液体,排尽针头空气,然后注入血液,轻轻颠倒混匀以防血液凝固14. 脱手套,再次核对,确认采血时间并立即送检(采血后应立即送检,不能超过2小时。
临床试验检验标本采集及运输标准操作规程全文共四篇示例,供读者参考第一篇示例:一、前言临床试验是评价药物安全性和有效性的重要手段,而标本采集及运输是临床试验的重要环节之一。
合理的标本采集和运输操作规程对于保证临床试验数据的准确性和可靠性至关重要。
为了规范标本采集及运输工作,提高临床试验的质量,特制定本标准操作规程。
二、术语定义1. 临床试验:指对人体进行的药物安全性和有效性评价的研究。
2. 标本:指用于生化检测、药物浓度测定等分析的生物组织或体液。
3. 采集者:指从受试者身上采集标本的人员。
4. 运输者:指将标本从采集点送至检验点的人员。
三、采集操作规程1. 采集前准备(1)采集者应接受相关培训,了解采集标本的目的、方法和注意事项。
(2)采集器具应事先消毒,并准备好采集所需的标本管、采血针等工具。
(3)标本采集应在合适的环境中进行,保证采集者和受试者的安全和舒适。
2. 采集过程(1)根据临床试验方案要求,确保采集正确的标本类型和数量。
(2)遵循标本采集的标准流程,依次进行手部消毒、标本采集、采集管标记等操作。
(3)采血时应注意选择适当的采血部位和针头,避免造成受试者不必要的疼痛和伤害。
3. 采集后处理(1)采集完毕后,采集者应及时将标本管密封并标记好受试者信息。
(2)遵守标本储存和运输的规定,确保标本的稳定性和完整性。
1. 运输前准备(1)运输者应对标本进行分类和包装,确保标本的准确性和完整性。
(2)运输前应检查标本信息是否完整,并与采样者信息进行核对。
2. 运输过程(1)运输标本应选择符合要求的运输工具和容器,避免标本泄漏和污染。
(2)在运输途中应避免标本受到振动和温度变化,保证标本的稳定性和质量。
(3)运输者应妥善保管标本,避免与其他物品混杂,并遵守相关安全规定。
3. 运输后处理(1)标本送达检验点后,应立即进行登记和接收,确保标本信息准确无误。
(2)对标本进行处理时应遵守相关规程,确保标本能够及时送检并得到准确分析。
标本采集及运送制度〔一〕、各种标本采集:1、血液标本的采集依据化验单,认真核对患者身份。
釆血尽可能在上午7—9 点间进展。
病人采血前应禁食12 小时,以保证各类物质检验结果的恒定。
静脉采血时,除卧床病人,采血时一般取坐位,成人多用肘前静脉,肥胖者可用腕背静脉,婴幼儿常用颈静脉,偶用前肉静脉。
采血者要戴口罩,帽子,手套。
做到一人一巾一针一管,防止交义污染。
用一次性采血针由静脉采血,穿刺成功后应马上松开止血带,使用止血带的时间不应超过一分钟。
正在静脉输液者应停顿输液三分钟,从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。
消毒时,用络合碘拭子以静脉穿刺点为中心向外环状擦拭,消毒范围的直径至少为lcm。
需要全血或血浆,应将血液注入含有适当抗凝剂的真空采血管内,马上轻轻充分混匀。
需要血清标本,则直接将血液注入真空采血管内,待其凝固后分别血清。
2、尿液标本的采集一般以早晨第一次尿液作试验,其结果较为恒定牢靠。
采集时应避开月经血、及其他分泌物混入,容器务必清洁,必要时加防腐剂。
中段尿、导管尿等特别尿样的釆集一般III 医护人员行相关操作留取标本。
尿液标本应准时送检并在采集后2 小时内完成检验。
3、粪便标本采集宜颖,不行混有尿液,一般取指头大小,并取有病理成份的局部〔如脓血、粘液〕送检,外观无特别的从外表、深处及粪端多处取材,放于不吸水一次性干净专用盒内,检查阿米巴时应马上送检,并留意保温。
4、脑脊液标本的采集脑脊液一般由腰椎穿刺术取得,格外必要时也可由小脑髓池或脑室穿刺,收集于三支无菌管内,马上送检。
避开放置过久形成凝块、细胞破坏、葡萄糖分解、细菌溶解或死亡。
5>阴道分泌物标本的采集一般山妇科医师采集。
采集阴道分泌物标本前24 小时应避开性生活、盆浴。
应于各种治疗、检查前采集标本,避开阴道冲洗或上药,被检者在采样前2 小时不能排尿。
患者取膀胱截石位。
用阴道扩张器暴露宫颈,采样前,用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。
标本采集与送检原则标准操作程序
【目的】
正确采集和处理标本是实验室取得正确结果的前提,必须予以重视。
但对标本采集的方法和时间,标本的来源,实验室常不能加以控制,实验室人员有责任通过各种方式,指导医师和护士正确采集标本。
特制定以下原则,以便统一标准执行。
【该SOP变动程序】
本标准操作程序的改动,可由任一使用本SOP的工作人员提出,并报经下述人员批准签字:专业主管、科主任。
【基本原则】
1.送检报告单应注明被检人的姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源
及检验目的、抗生素使用情况,使实验室正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
2.尽量在抗生素使用前采集标本。
3.在采集血液、脑脊液、穿刺液等标本时,应严格无菌操作,避免杂菌
污染。
4.标本采集后应立即送到实验室,床边接种可提高病原菌的检出率。
5.以拭子采集的标本如咽拭子、伤拭子或肛拭子等,最好采用运送培养
基送检,应采用吸水性好、不宜干燥的材料取样。
6.混有正常菌群的标本,如痰、尿、伤拭子、不可置肉汤培养基送检。
7.盛标本容器需经灭菌处理,但不得使用消毒剂。
血培养标本采集和运送标准操作规程(SOP)一、采集血培养的重要指征:(一)发热(≥38℃)或低温(≤36℃)(二)寒战(三)白细胞增多(>10x109/L,特别有“核左移”,未成熟的白细胞增多)(四)粒细胞减少(成熟的多核白细胞<1x109/L)(五)血小板减少(六)皮肤粘膜出血(七)昏迷(八)多器官衰竭二、采血时机(一)尽可能在抗菌药物使用前;(二)对已经使用抗菌药物的病人,最好在下次用药前采集;(三)寒战和发热初起时采血可提高培养阳性率,心内膜炎(持续性菌血症)例外;(四)怀疑血流感染时应尽早采血,不要强调体温超过38℃才抽血,而错过时机。
三、血培养标本采集次数(一)留置深静脉导管且怀疑导管相关血流感染:1.希望保留深静脉导管者至少2套(1套血培养定义:从一个部位如静脉穿刺或静脉导管所获血液的培养,不论被接种在1个还是多个血培养瓶内)血培养,其中至少一套来自外周静脉,另一套从导管采集,两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟),并各自做好标记;2.决定拔除深静脉导管者从独立的2个外周静脉部位,无菌采集2套血培养,同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室(实验室采用Maki半定量平板滚动培养)(二)未留置深静脉导管或怀疑的BSl并非导管相关1.怀疑血流感染时,独立的外周静脉无菌采集2套血培养2.当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎和肾盂肾炎合并菌血症时,在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养,两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟),各自做好标记;3.对不明原因的发热、亚急性心内膜炎,抽取3套血培养;心内膜炎患者起始采集的3套血培养24小时内报告阴性,则继续采集2套血培养;(三)在采血2~5天内,无需重复做血培养,细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症除外。
四、皮肤消毒及采血步骤(一)皮肤消毒前,先检查血培养瓶有无损坏或超过保质期,用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞并干燥;(二)用2根安尔碘棉签,以穿刺点为圆心,以约5cm直径画圈进行皮肤消毒,作用时间至少30s。
病原微生物标本采集运送IMB standardization office【IMB 5AB- IMBK 08- IMB 2C】病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集,运送,保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要,为了准确检出病原菌,避免漏检与误诊,临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择,采集,运送,保存及处理的一般原则。
一、标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期,急性期,且必须在使用抗菌药物之前采集,确保病原菌的检出。
2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染,使病原菌与正常菌群混淆,造成临床误诊。
采集的标本应存放在无菌容器内,容器不能使用消毒剂处理,标本中也不能添加防腐剂,以免降低病原菌的检出。
3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。
4.适当的采集方法对于厌氧菌,需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的,用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物,室温保存,不能冷藏和冷冻。
5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌,防漏,应带有螺旋盖的容器内。
二、标本的运送1.标本采集后立即送检,若有延迟也应在2小时内送到实验室,否则会影响病原菌的检出,一般性的细菌培养标本若需延迟送检时,应置于4度冰箱保存,且不能超过24小时。
2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量,少量液体(小于1ml)或组织(小于1cm3)应在15~30分钟内送到实验室,较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时,厌氧培养标本原则上是床边接种,如延迟送检,需保存在厌氧运送培养基中,室温保存,不得超过24小时。
三、不同标本的采集,运送(一)血液标本采集,运送1.血培养指针征当患者出现:发热(大于38度)或低温(小于36度),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血,休克,多器官衰竭,血压降低,c反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,具备上述一种或几种体征时,临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养,对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前,及时做血培养。
临床试验检验标本采集及运输标准操作规程1. 引言1.1 背景介绍临床试验检验标本采集及运输标准操作规程是保证临床试验结果准确性和可靠性的重要环节。
背景介绍部分将简要介绍临床试验检验标本的重要性和研究意义,为了引出后续的正文内容。
临床试验检验标本是指用于临床试验和研究的生物学样本,包括血液、尿液、组织等。
这些标本所提供的信息对于诊断疾病、评估疗效、研究疾病机制等方面都起着至关重要的作用。
保证标本的采集、运输和储存符合标准操作规程至关重要。
临床试验检验标本的质量直接影响到临床试验结果的准确性和可靠性,而不规范的标本采集和运输过程可能导致标本变性、受污染、造成误差等问题,从而影响到试验结果的有效性和科学性。
建立临床试验检验标本采集及运输标准操作规程是非常必要的,可以保证标本的质量和完整性,提高临床试验结果的可信度和科学性。
通过本文的介绍,我们将深入探讨临床试验检验标本采集及运输标准操作规程的各个环节,帮助相关工作人员更好地掌握操作规程,确保临床试验工作的顺利进行和结果的准确可靠。
1.2 研究意义临床试验检验标本采集及运输标准操作规程的研究意义在于确保临床试验结果的准确性和可靠性。
标本采集和运输是临床试验中不可或缺的环节,其规范操作对于保证试验数据的真实性具有非常重要的意义。
标本的采集和运输过程如果不规范,可能会导致标本的变质或者污染,从而影响试验结果的准确性。
临床试验的目的是为了评估药物的安全性和有效性,而如果标本采集和运输不符合规范操作,就会使得试验结果失去可靠性,影响药物的评价和疗效判断。
遵守标本采集和运输规程可以提高临床试验的效率和准确性。
通过制定标准操作规程和严格执行,可以减少误操作和人为因素的干扰,确保试验数据的精准性和可信度。
规范的标本采集和运输流程也能够提升试验人员的操作技能和意识,保障试验工作的顺利进行。
2. 正文2.1 临床试验检验标本的定义临床试验检验标本是指在临床研究中采集的生物样本,通常包括血液、尿液、组织等。
医院痰标本采集与运送标准操作规程一、采集目的一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测,经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。
二、一般原则1.采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。
2.宜采集清晨第二口痰液。
3.对于普通细菌性肺炎,痰标本送检每天1次,连续2~3天。
不建议24 h内多次采样送检,除非痰液外观性状出现改变。
4.怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3天清晨痰液送检。
三、采集方法(一)自然咳痰法与雾化导痰法1.用物准备:无菌容器(盒)、生理盐水(250 ml 或500 m1)、化验单。
2.核对患者床号、姓名等。
3.无痰或痰量极少者可用3%~5%氯化钠溶液5 ml 雾化吸入约5 min后留取痰液。
4.如有可能,应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。
嘱咐患者留取前摘去牙托,清洁口腔,如刷牙后反复用生理盐水漱口;深吸气后用力自气管深部咳出痰液,置无菌容器内。
应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品,不应用纸巾包裹痰液。
(二)支气管镜法鼻或口腔插人支气管镜。
常用采集方法有经支气管镜吸引、支气管肺泡灌洗、防污染毛刷采样或防污染支气管肺泡灌洗等。
(三)经人工气道吸引法1.用物准备:负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器(试管)、化验单。
2.核对患者床号、姓名等。
3.将患者头部转向操作者一侧。
4.进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开,连接吸引器,调节吸引器至适宜负压(成人:40.0~53.3 kPa;小儿:<40.0 kPa)。
5.将一次性吸痰管外包装去除,戴手套持吸痰管试吸生理盐水,检查管道是否通畅。
6.折叠一次性吸痰管末端,插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度,放开吸痰管末端,轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出,即折叠一次性吸痰管退出,将一次性吸痰管与吸引器分离(使用人工呼吸机者,一次吸痰时间不超过15 s,吸痰前后需吸入高浓度氧气1~2 min)。