家兔动脉血压的神经和体液调节
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家兔动脉血压的神经与体液调节一.实验目的采用直接测量和记录动脉血压的急性实验方法,观察神经和体液因素对动脉血压的调节作用,并分析作用机制。
二.关键词家兔动脉血压;神经调节;体液调节三.引言心血管活动主要受神经、体液和自身调节。
神经调节一般是通过反射(reflex)的形式实现的,包括压力感受性反射 (baroreceptor reflex)、心肺容量感受性( cardiopulmonary receptor) 反射、化学感受性 (chemoreceptor) 反射等,通过改变交感及副交感传出神经的紧张性活动,调节心血管机能;体液调节则涉及肾素-血管紧张素系统(RAS)、肾上腺素和去甲肾上腺素、加压素、内皮缩血管因子(EDCF)、内皮舒血管因子(EDRF)、激肽、前列腺素(PGs)等多个方面。
本实验将通过观察血压和心率来反映心血管活动的变化。
血液充盈、心脏射血和外周阻力是形成血压的基本因素,上述调节机制可通过作用于上述3个方面,调节动脉血压。
四.实验材料家兔,氨基甲酸乙酯,肝素,NE,Ach,动脉夹,血压换能器,电刺激连线,生物信号采集处理系统。
五.实验步骤1 取家兔 1只,称重为3.1kg,用20%氨基甲酸乙酯15.5ml给家兔耳缘静脉缓慢注射麻醉,将家兔仰卧固定于兔手术台上。
2 剪去颈部被毛,切开颈部皮肤6~7cm,钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘,用玻璃分针仔细分离左侧减压神经和迷走神经,穿细线备用。
用玻璃分针分离两侧颈总动脉,各穿一线备用。
3 用肝素注射将三通管内气泡排尽且动脉插管内充满肝素,关闭三通管。
4 颈总动脉插管在左颈总动脉远心端结扎,近心端用动脉夹夹住,并在动脉下面预先穿一细线备用。
用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口,将动脉插管向心方向插入颈总动脉,扎紧固定。
打开动脉夹。
5 实验观察5.1启动生物信号采集系统,调零后除去动脉夹,血液由动脉冲入动脉插管,微机生物信号采集处理系统开始采样记录数据,并在屏幕上显示血压波动曲线;5.2;用动脉夹夹闭右侧颈总动脉5~10s,观察血压变化;5.3以中等强度(5v~10v),频率为30Hz,波宽为2ms的连续电脉冲刺激右侧减压神经,观察血压变化。
家兔动脉血压的神经和体液调节•目的本实验采用直接测量和记录动脉血压的急性实验方法,观察神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
•材料和方法实验对象:家兔实验仪器:血压换能器、生物信号采集处理系统、常用手术器械、手术台、注射器、铁架台、秤、动脉插管、三通管、动脉夹、电刺激连线实验药品和试剂:氨基甲酸乙酯、肝素、去甲肾上腺素、乙酰胆碱实验方法:1、实验系统连接及参数设置:血压换能器固定在铁支柱上,高度与心脏处于同一水平面。
压力换能器的输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
RM6240设置动脉血压调节,压力换能器与三通管连接,排空压力传感器腔内的空气,关闭直管与侧管。
再在直管上连接动脉插管,从直管的三通管向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水,使之充满液体。
2、手术准备2.1、家兔称重后,将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入,注意观察家兔的反应。
待麻醉后,将家兔仰卧固定于兔手术台上,先后固定四肢及兔头。
2.2、剪去家兔颈部的毛,沿颈部正中线作一长5~7cm的切口,暴露并游离气管。
在气管肌肉深面分离一侧迷走神经,减压神经,两侧颈总动脉,并在其下穿线备用。
2.3、颈总动脉插管;在左侧颈总动脉远心端结扎,近心端用动脉夹夹住。
用眼科剪作“v”形切口。
动脉插管向心的方向插入颈总动脉,用棉线结扎固定。
打开动脉夹。
3、实验观察3.1、启动记录按钮,除去动脉夹,可见血液有动脉冲入动脉插管,微机生物信号采集处理系统开始记录血压数据,并在屏幕上显示血压波动曲线。
3.2、用动脉夹夹闭右侧颈总动脉5~10s,观察血压变化。
3.3、以中等强度(5~10V),频率为30Hz,波宽为2ms的连续电脉冲刺激减压神经,观察血压变化。
用两根细线在该神经中部两处结扎,在两结扎间将神经剪断,分别刺激减压神经中枢端和外周端,观察血压变化。
3.4、将右侧迷走神经结扎,在结扎处的上端切断该神经,以中等强度(5~10V),频率为30Hz,波宽为2ms的连续电脉冲刺激其外周端,观察血压变化。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验目的:1.掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法。
2.观察神经和体液因素改变对家兔动脉血压调节的影响,并分析该些因素的作用机制。
实验材料:对象:家兔;试剂:氨基甲酸乙酯,肝素,去甲肾上腺素,生理盐水;仪器:RM6240生物信号采集系统,手术剪1把,眼科剪1把,止血钳,镊子,电刺激连线,兔手术台,注射器及针头,血管插管,动脉夹,血压换能器,铁架台,婴儿秤,输液装置,照明灯,有色丝线,纱布;实验方法:实验装置与连接:①将压力换能器固定于铁支架上,使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平面上。
然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。
②压力换能器的另一端与三通管相连。
三通管的一个接头将与动脉插管相连。
在将动脉插管插入左颈总动脉前,先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连,旋动三通管上的开关,使动脉插管与注射器相通,推动注射器,排空动脉插管中的气体,使动脉插管内充满肝素溶液,然后关闭三通管。
仪器调试:在“实验”菜单中选择“循环——兔动脉血压调节”。
双击一通道,调节增益、采样参数,使基线归零,令图形位于屏幕中央,便于观察。
麻醉固定:家兔称重后,将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入,注意观察家兔的反应。
待麻醉后,将家兔仰卧固定于兔手术台上,先后固定四肢及兔头。
手术:剪去家兔颈部的被毛,切开颈部皮肤5~7cm,钝性分离颈部肌肉,暴露颈部气管和血管神经鞘,用玻璃分针仔细分离右侧右侧的主动脉神经和迷走神经,分别穿过一不同颜色的丝线备用。
用玻璃分针分离两侧颈总动脉和右侧颈外静脉,各穿两线备用。
动脉插管:在左颈总动脉的近心端夹一动脉夹,然后结扎其远心端(保留此结扎线头),在动脉夹与结扎之间一般应相距2cm以上。
在结扎端的下方用眼科剪作一斜口,向心脏方向插入动脉插管,用已穿好的丝线扎紧插入管尖嘴部分稍后处(注意此处务必扎紧),并以远心端丝线将插管缚紧固定,以防插管从插入处滑出。
实验 14 家兔动脉血压的神经、体液调节【目的与要求】1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法2 观察神经,体液因素对心血管活动的影响【基本原理】高等动物的动脉血压是相对稳定的。
这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。
此反射即可使升高的血压下降,又可使降低的血压升高,故有血压缓冲反射之称。
家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察其作用。
本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来。
【动物与器材】家兔,手术台,常用手术器械,止血钳,眼科剪,支架,双凹管,气管插管,动脉插管,三通管,动脉夹,计算机采集系统,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸乙酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000)【方法与步骤】1、实验仪器的准备打开计算机采集系统,接通压力传感器。
从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。
2、连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。
上侧管供制压时排除管内空气使用。
先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。
然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器的上方支管,并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。
继续向三通管内推注,同时观察显示器上压力变化。
当加压到120mmHg 时既可关闭三通管。
观察压力是否变化,如果压力下降,则需要检查液导系统的漏液原因,并重新制压。
实验15 家兔动脉血压的神经与体液调节王上(浙江中医药大学 2012级针灸推拿七年制1班3组,2022)一、实验目的本实验采用直接测量和记录动物血压的急性实验方法,观察神经核体液因素对动脉血压的调节作用。
二、摘要目的本实验采用直接测量和记录动脉血压的急性实验方法,观察神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
方法应用液导系统直接测定动脉血压,并使用计算机采集系统记录封闭的液导系统传递到压力传感器的压力变化。
改变神经和体液因素,记录压力的变化,通过记录的曲线分析不同的神经体液因素对心血管活动的影响。
结果夹闭对侧颈动脉10s和静脉注射去甲肾上腺素可以使家兔动脉血压升高;刺激完整减压神经、减压神经中枢端、迷走神经外周端、注射乙酰胆碱使家兔血压降低;刺激减压神经外周端不影响家兔血压。
结论家兔动脉血压受到神经和体液的调节。
刺激减压神经、减压神经中枢端、迷走神经外周端、注射Ach可使血压降低,夹闭对侧颈动脉10s 和注射NE则使血压升高,刺激减压神经外周端不影响家兔血压。
三、关键字去甲肾上腺素、肝素、乙酰胆碱、减压神经、动脉血压四、引言动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
正常情况下,人和高等动物的心血管活动在神经、体液因素的调节控制下,保持相对稳定,动脉血压相对恒定。
改变神经、体液因素的影响,则可观察到动脉血压的相应变化。
在动物实验中,可利用动脉插管直接测量动脉血压,通过液体导联系统和压力传感器,将动脉血压的变化在计算机采集系统中描记下来。
五、实验材料和方法材料:家兔;血压换能器,生物信号采集处理系统;氨基甲酸乙酯,肝素,去甲肾上腺素,乙酰胆碱方法:2.1实验系统连接及参数设置血压换能器固定于铁支柱上,高度与心脏处于同一水平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
仪器参数:RM6240系统:点击“实验”菜单,选择“兔动脉血压调节”,仪器参数:时间常数为直流,滤波频率100Hz,灵敏度12kPa,采样频率800Hz,扫描速度2s/div。
家兔动脉血压的神经体液调节实验结果与分析1. 观察正常血压曲线:调节扫描速度与增益,可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。
有时可以观察到血压曲线随呼吸变化,心搏为一级波,呼吸波为二级波。
然后将扫描速度调慢,观察正常血压曲线。
分析:如图所示,呼吸波为大波,心波为大波上的小波。
兔子的正常心跳为每分钟180~250 下,正常呼吸次数为每分钟30~60 次,因此心波频率较高,而呼吸波频率较低。
该曲线表明,血压的变化受到心率与呼吸的共同影响,在心率与呼吸的共同作用下,血压呈稳定的变化,处于动态平衡中。
2. 夹闭对侧颈总动脉(10-15s):轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线,用动脉夹夹闭(于夹闭前记录动脉通畅时的血压曲线),观察并记录血压变化。
出现变化后即取下动脉夹,记录血压的恢复过程。
分析:如图所示,当夹闭对侧颈总动脉时,血压迅速下降,松开动脉夹后,血压上升而恢复正常。
夹闭对侧颈总动脉,血液无法流通,同时心搏出的血液使血压上升,刺激血管壁的压力感受器,神经冲动经传递到达效应器,使心室射血量下降,从而降低血压。
松开动脉夹,对血管壁上的压力感受器的刺激消失,神经冲动停止传递,血压恢复正常。
3. 刺激另一侧减压神经(主动脉神经):使刺激输出端连接保护电极,轻轻提起主动脉神经上的备用线,小心地将神经置于保护电极之上。
记录对照血压曲线后,再用中等强度的连续电脉冲信号(可设为10V,40Hz)通过保护电极刺激神经10~20s。
血压出现明显下降后,即可停止刺激,并待血压恢复。
如果血压并不下降,可调整刺激强度或刺激频率再进行刺激。
任何刺激都无效时,则表示此神经并非主动脉神经。
需要重新辨认神经 2 后再行实验。
分析:如图所示,刺激减压神经后,血压下降。
减压神经能使血压下降,刺激减压神经后,其将神经冲动传递到效应器,使心射血量下降,从而使血压下降。
由于该刺激是人为的且是一次性的,因此刺激消失后血压即恢复正常。
家兔动脉血压的神经、体液调节【目的要求】1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法。
2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响。
【基本原理】在正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的,其中以颈动脉窦-主动脉弓减压反射尤为重要。
此反射既可在血压升高时降压,又可在血压降低时升压,故有血压缓冲反射之称。
家兔的减压神经在解剖上独成一支,易于分离和观察其作用,为实验提供了有利条件。
本实验是应用液导系统直接测定动脉血压的。
即由动脉套管、输液管及水银检压计相互连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统。
将动脉套管插入动脉内,动脉内的压力及其变化,可通过密闭的液导系统传递压力,反映在水银检压计上,由水银面的上下活动记录血压波动曲线。
此外,也可通过压力换能器将压力变化转换为电信号,间接地用生理记录仪记录。
【动物与器材】家兔、手术台、常用手术器械、止血钳、眼科剪、电动双记纹鼓与杠杆或生理记录仪与压力换能器、电子刺激器或生理多用仪、电磁标、双凹夹、气管插管、动脉套管、动脉夹、水银检压计、水银、保护电极、照明灯、纱布、棉球、丝线、注射器、生理盐水、3.8%柠檬酸钠、20%氨基甲酸乙酯、肝素(300单位/ml)、肾上腺素(1∶10000)、乙酰胆碱(1∶10000)。
【方法与步骤】1.实验装置(1)水银检压计法记录血压的实验装置1)水银检压计是一个有刻度标记的“U”形玻璃管,管内装有水银。
在管的一端水银面上加一浮标。
浮标上有伸出管外的铝丝,铝丝上垂直装置杠杆与笔尖。
管的另一端有两个侧管:下侧管通过输液管连接塑料三通管,再连动脉套管;上侧管供制压时排除管内空气使用。
当动脉套管插入动脉后,其压力变化使水银面及浮标上下活动。
笔尖便在鼓面上记录出压力曲线。
按图4-14装好水银检压计与两个电磁标,上电磁标连电子刺激器,作刺激记录;下电磁标接记时装置,作时间记录。
注意:①水银检压计之零点应与心脏在同一水平;②三只笔尖应在同一垂直线上;③水银检压计在零位时,其笔尖应与作刺激记录的电磁标笔尖重叠于一点,这样,刺激记录的基线即代表血压的零线。
实验四家兔动脉血压的神经体液调节解读
实验四研究了家兔动脉血压的神经体液调节。
实验结果表明,神经体液调节对于家兔
动脉血压具有重要的影响作用。
神经体液调节是指人体中神经和内分泌相互作用的生理调节。
实验中,家兔动脉血压
受到了交感神经和副交感神经的调节。
交感神经兴奋会导致血压升高,而副交感神经的激
活会使血管扩张,降低血压。
实验中通过交感神经药物注射和交感神经阻滞剂的使用,可
明显改变家兔动脉血压水平。
同时,神经激素肾上腺素的注入也对动脉血压产生了显著的
影响。
肾上腺素是交感神经对心血管系统最主要的化学传递物质,其作用可以引起机体的
应激反应,使血压升高。
总之,神经体液调节是维持人体内环境稳定的重要机制,对于家兔动脉血压的调节具
有重要的作用。
而实验结果也表明,不同的药物或化学物质对于动脉血压的调节作用不同,各自发挥其特定的生理、病理作用。
因此,在临床上应该根据不同的情况加以选择和应用,以达到最佳的治疗效果。
实验报告家兔动脉血压的神经体液调节影响尿生成的因素实验目的:研究神经体液调节对家兔动脉血压的影响,进而探讨其对尿生成因素的调节作用。
实验原理:1.神经调节:交感神经系统通过释放去甲肾上腺素使血管收缩,增加血压;副交感神经系统通过释放乙酰胆碱使血管舒张,降低血压。
2.基础体液调节:对于维持水平衡和血压稳定至关重要的体液激素包括抗利尿激素ADH(抗利尿激素抗利尿激素是一类性质相似的多肽和蛋白质,主要起着催化性质,即提供酶活性),肾素-血管紧张素-醛固酮系统等。
实验步骤:1.适量家兔静脉注射心脏强心剂,将其置于无菌条件下,全麻状态下开腹。
2.暴露家兔肾上腺,切割交感神经以及副交感神经。
3.将家兔肾上腺泡灌注盐水,刺激副交感神经,观察其对血压的影响,并记录。
4.暴露尿路,测量家兔的尿液分泌量。
5.注射抗利尿激素ADH,继续记录家兔的尿液分泌量。
6.切割家兔肾上腺,观察其对血压的影响,并记录。
实验结果:1.切割副交感神经后,家兔动脉血压上升。
2.注射抗利尿激素ADH后,家兔尿液分泌减少。
3.切割肾上腺后,家兔动脉血压下降。
实验讨论:1.切割副交感神经导致家兔动脉血压升高,说明副交感神经对血管的舒张起到了抑制作用。
2.注射抗利尿激素ADH导致家兔尿液分泌减少,说明ADH对尿生成起到了抑制作用。
3.切割肾上腺导致家兔动脉血压下降,说明交感神经通过释放去甲肾上腺素使血管收缩,增加血压。
实验结论:神经体液调节对家兔动脉血压有重要的影响,并进而影响尿生成。
副交感神经通过释放乙酰胆碱使血管舒张,降低血压;抗利尿激素ADH对尿生成起到抑制作用;交感神经通过释放去甲肾上腺素使血管收缩,增加血压。
这些调节机制相互作用,维持了家兔体内的水平衡和血压稳定。
实验意义:通过研究神经体液调节对家兔动脉血压的影响,可以更深入地理解生物体内尿生成的调节机制。
这对于揭示机体水平衡和血压稳定的生理学机制,以及相关疾病的发生与治疗具有重要的理论和实践意义。
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告-
实验目的:
1. 掌握兔动脉血压的基本实验方法。
实验原理:
动物的血压需要靠神经和体液调节来保持相对稳定。
在正常情况下,兔的血压较为平稳,能够维持生物体正常的生理活动。
神经调节机制包括交感神经和副交感神经。
交感神经兴奋时,会使心率和收缩力增加,提高心输出量和组织灌注。
同时,交感神经还会使体表血管收缩,增加外周阻力,提高动
脉压。
副交感神经则对心脏和血管功能有抑制作用,使心率、收缩力和外周阻力下降,降
低动脉压。
此外,髓上皮素、雷诺二氏素、血管紧张素等血管紧缩素也参与了血压的调
节。
实验步骤:
1. 取好兔,先给其进行适应训练,使其心情稳定,减少干扰。
2. 用适当的器材测定兔的基础血压值。
3. 用肌肉注射机将肌肉注射液注射到兔身上。
4. 检测注射后的兔的血压和脉搏,观察神经体内物质对兔的影响。
实验结果:
在肌肉注射后,兔的血压和脉搏被明显影响。
注射高剂量肌肉注射液后,兔的血压和
脉搏迅速上升,表明高剂量肌肉注射液会通过神经调节机制提高兔的动脉压。
而注射低剂
量肌肉注射液后,兔的血压和脉搏出现下降,则说明低剂量的肌肉注射液会通过体液调节
机制将兔的动脉压降低。
兔动脉血压的神经和体液调节是非常重要的,这些机制会对兔的血压和生理活动产生
很大的影响。
神经和体液调节机制是维持兔生命活动的重要手段,对于维持动物生命健康
有着至关重要的作用。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告引言:动脉血压是维持机体正常生理功能的重要指标之一,它受到神经和体液调节的影响。
为了深入了解家兔动脉血压的调节机制,我们进行了一系列实验。
本报告将详细介绍实验设计、方法、结果和讨论。
实验设计:我们选取了10只健康的家兔作为实验对象,随机分为两组。
一组为神经调节组,通过切断交感神经和迷走神经来观察其对家兔动脉血压的影响;另一组为体液调节组,通过注射不同浓度的盐水来模拟不同的体液调节状态,观察其对家兔动脉血压的影响。
方法:1. 神经调节组:在麻醉状态下,我们进行了交感神经和迷走神经的切断手术。
手术后,我们记录了家兔动脉血压的变化,并与术前进行对照。
2. 体液调节组:我们分别注射了低浓度盐水和高浓度盐水,模拟低血容量和高血容量状态。
在注射后,我们记录了家兔动脉血压的变化,并与注射前进行对照。
结果:1. 神经调节组:切断交感神经后,家兔动脉血压明显下降;切断迷走神经后,家兔动脉血压明显升高。
这表明交感神经和迷走神经对动脉血压有相反的调节作用。
2. 体液调节组:注射低浓度盐水后,家兔动脉血压下降;注射高浓度盐水后,家兔动脉血压上升。
这说明体液调节对动脉血压具有重要的调节作用。
讨论:1. 神经调节机制:交感神经的切断导致家兔动脉血压下降,这是因为交感神经释放的去甲肾上腺素能促使血管收缩,增加血压。
而迷走神经的切断导致家兔动脉血压升高,这是因为迷走神经能抑制心率和收缩力,从而降低血压。
2. 体液调节机制:低血容量状态下,体液调节机制会使血管收缩,增加血压;高血容量状态下,体液调节机制会使血管扩张,降低血压。
结论:家兔动脉血压的调节机制主要涉及神经和体液两个方面。
神经调节中,交感神经和迷走神经具有相反的作用;体液调节中,低血容量状态下血管收缩,高血容量状态下血管扩张。
这些调节机制的平衡对于维持动脉血压的稳定至关重要。
结语:通过本次实验,我们深入了解了家兔动脉血压的神经和体液调节机制。
实验⼗⼀-家兔动脉⾎压的神经、体液调节实验⼗⼀-家兔动脉⾎压的神经、体液调节实验⼗⼀家兔动脉⾎压的神经、体液调节介绍⼀、实验⽬的1.学习家兔颈部⼿术与分离主动脉神经的⽅法。
2.学习直接测定家兔动脉⾎压的急性实验的⽅法。
3.观察神经、体液因素对⼼⾎管活动的影响。
⼆、背景资料动脉⾎压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的⾎液供应和物质代谢是极其重要的。
正常情况下,⼈和⾼等动物的⼼⾎管活动在神经、体液因素的调节控制下,保持相对稳定,动脉⾎压相对恒定。
改变神经、体液因素的影响,则可观察到动脉⾎压的相应变化。
在动物实验中,可利⽤动脉插管直接测量动脉⾎压,通过液体导联系统和压⼒传感器,将动脉⾎压的变化在计算机采集系统中描记下来。
三、相关观察资料1.家兔正常动脉⾎压曲线2.分别刺激迷⾛、交感、减压神经,观察⾎压、⼼率等参数的变化3.分别注射去甲肾上腺素、⼄酰胆碱溶液,观察⾎压、⼼率等参数的变化四、实验假说1.正常家兔曲线呈现出两级波。
2.刺激迷⾛神经,平均动脉降低,脉压差升⾼,⼼率减慢。
3.刺激减压神经,平均动脉压降低,脉压差升⾼,⼼率变化不明显。
4.刺激交感神经,平均动脉压升⾼,脉压差升⾼,⼼率加快。
5.注射去甲肾上腺素,平均动脉压升⾼,脉压升⾼,⼼率加快。
6.注射⼄酰胆碱,平均动脉压降低,脉压升⾼,⼼率减慢。
实验材料和⽅法⼀、实验材料1.实验对象健康家兔1只2.实验试剂25%氨基甲酸⼄酯溶液,⽣理盐⽔,肝素(300 U/mL),去甲肾上腺素溶液(1:10000),⼄酰胆碱溶液(1:10000)、⽯蜡油3.⼿术器械兔箱,⼿术台,绳⼦,常⽤⼿术器械,⽌⾎钳,剪⽑剪,眼科剪,⽀架,双凹夹,动脉插管,三通管,动脉夹,玻璃分针,⼿术灯,纱布,棉球,棉线,注射器(1 mL, 20 mL)4.记录仪器RM6240多道⽣理参数记录仪,计算机采集系统,YP100⾎压换能器⽀架,三通管,保护电极⼆、实验步骤1.实验仪器的准备打开计算机采集系统RM6240,接通⾎压换能器从RM6240系统的“实验”中找出“循环实验”的“家兔⾎压的调节”,使显⽰器显⽰压⼒读数。
家兔动脉血压的神经与体液调节(一)实验项目:家兔动脉血压调节(二)实验目的:1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。
2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。
3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。
4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。
(三)基本原理:动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定,动脉血压相对恒定。
动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
通过实验改变神经、体液因素或施加药物,观察动脉血压的变化,间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。
实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL、1mL)等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品1、夹闭颈总动脉血压升高,心跳加快。
这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢,是动脉张力感受器。
这个感受器位于兔颈总动脉的远心端,颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。
夹闭颈动脉后,远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降,传出神经冲动的频率减慢。
信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。
使心迷走紧张减弱,心交感和心缩血管紧张加强,作用于心脏,使心率加快,心输出量增加,血管收缩,血管外周阻力增加。
从而血压恢复性升高。
若血压下降过大,交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统,是静脉收缩,促进血液回心,使每博输出量增加。
2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合,使血管收缩,管径变小,外周阻力增加,从而使平均动脉压升高。
此外,去甲肾上腺素还可以使心率增加,心收缩力变大,因此血压升高。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告一、实验目的1、学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。
2、观察神经与体液因素对家兔动脉血压的调节作用。
二、实验原理正常情况下,动脉血压保持相对稳定,这种相对稳定是通过神经和体液因素的调节实现的。
神经调节主要通过交感神经和副交感神经对心血管活动进行调节。
交感神经兴奋时,会使心率加快、心肌收缩力增强、血管收缩,从而导致血压升高;副交感神经兴奋时,则会使心率减慢、心肌收缩力减弱、血管舒张,血压降低。
体液调节主要通过肾上腺素、去甲肾上腺素、血管紧张素等激素来调节血压。
肾上腺素和去甲肾上腺素能使心脏兴奋、血管收缩,导致血压升高;血管紧张素则通过收缩血管升高血压。
三、实验材料1、实验动物:健康家兔 1 只。
2、实验器材:哺乳动物手术器械一套、压力换能器、生物信号采集处理系统、动脉插管、注射器、丝线、纱布等。
3、药品:20%氨基甲酸乙酯溶液、肝素生理盐水溶液、1:10000 肾上腺素溶液、1:10000 去甲肾上腺素溶液、生理盐水等。
四、实验步骤1、麻醉与固定家兔称重后,由耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸乙酯溶液(5ml/kg)进行麻醉。
待家兔麻醉后,仰卧固定于手术台上。
2、手术操作(1)颈部正中切口:剪去颈部的毛,在颈部正中切开皮肤,分离皮下组织和肌肉,暴露气管。
(2)分离颈部血管和神经:在气管两侧,分别分离出右侧颈总动脉、迷走神经、减压神经和交感神经。
用玻璃分针小心分离神经和血管,避免过度牵拉和损伤。
在各神经和血管下穿线备用。
(3)动脉插管:在右侧颈总动脉远心端结扎,近心端用动脉夹夹住。
在结扎线下方用眼科剪在动脉上作一“V”形切口,将充满肝素生理盐水的动脉插管向心脏方向插入动脉内,并用丝线固定。
3、仪器连接将压力换能器与生物信号采集处理系统相连,调整好参数,使系统能准确记录动脉血压的变化。
4、观察项目(1)正常血压曲线:打开动脉夹,记录家兔正常的动脉血压曲线。
观察血压的波动情况,包括收缩压、舒张压和平均动脉压。
姓名*** 系年级********* 学号***********科目动物生理学实验同组者***、*** 日期***********家兔动脉血压的神经和体液调节【实验目的】1. 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。
2. 观察神经、体液因素对心血管活动的影响。
【实验原理】在正常生理状况下,人和高等动物的动脉血压(arterial blood pressure,ABP)是相对稳定的。
这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的,其中以颈总动脉-主动脉弓压力感受性反射尤为重要。
此反射既可使升高的血压下降,又可使降低的血压升高,故有血压缓冲反射之称谓。
家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察其作用。
本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。
即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉内,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传递到压力传感器,并由计算机采集系统记录下来。
【实验材料】1.材料:家兔。
2.器具:兔体手术台,常用手术器械,剪毛剪,解剖刀,咬骨钳,止血钳,气管插管,动脉插管,三通管,动脉夹,压力传感器,计算机采集系统,照明灯,注射器,棉花,棉线,银丝电极(双电极)。
3.试剂:20﹪氨基甲酸乙酯,4﹪柠檬酸钠溶液,肝素钠溶液,生理盐水。
【实验步骤】(一)实验仪器的准备1. 打开计算机采集系统,接通压力传感器。
从控制界面的菜单“实验项目”中选取“循环实验”的“家兔血压的调节”条,或者直接将相应采集通道的模式调整为“压力”模式。
使图线显示压力读数。
2. 连接液导系统并制压将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。
上侧管供制压时排除管内空气使用。
先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。
然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器的上方支管,并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。
继续向三通管内推注,同时观察显示器上压力的变化。
当加压到120mmHg(1mmHg=1.33×102Pa)左右即可关闭三通管。
观察压力是否变化,如果压力下降,则需要检查液导系统的漏液原因,并重新制压。
调节血压显示器的灵敏度,使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显地反映出来。
将动脉插管端的导管内充满肝素钠溶液。
(二)动物准备1. 麻醉动物:取一只家兔,称重并剪去耳缘静脉上的被毛。
用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注20﹪氨基甲酸乙酯(5g/1kg体重)进行麻醉。
2. 固定与剪毛:将动物背位固定于手术台上,用剪毛剪将颈部手术野的被毛剪去,即可进行手术。
(三)手术1. 切开皮肤:一手的拇指和食指按住家兔颈部两侧,另一只手持手术刀,在紧靠喉咙下缘,沿颈部正中线作一长5~7cm的皮肤切口。
2. 分层分离肌肉:持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉,然后用止血钳将肌肉纵向打开一个小口,用止血钳将创口扩大,直至看见肌肉层下方的气管。
用止血钳向两侧拉开肌肉,暴露气管。
3. 气管插管:先在甲状腺后方的气管背面穿过一条棉线,并打一活结备用,然后在气管上方作一倒“T”型切口,将与气管口径相近的气管插管,沿向心方向插入气管,并扎紧备用线,将线固定于气管插管的分叉处,以防气管插管松脱。
4. 分离颈总动脉、神经:家兔颈部的神经、颈总动脉被结缔组织膜包在一起,形成血管神经束,位于气管两侧。
用弯头玻璃分针轻轻划开局部结缔组织束膜,仔细辨认3种神经与颈总动脉:颈总动脉呈红色,有波动,壁有较强的弹性;迷走神经最粗,有较好的韧性,色洁白,一般位于外侧;交感神经较细,略呈灰色,一般位于内测;主动脉神经最细,一般位于两神经之间。
在一侧颈总动脉下穿线,打一活结备用,分离同侧3根神经:用一玻璃分针将3根神经挑起,向外拉,使3根神经分开,用另一玻璃分针沿纵向先分开最细的2条神经(颈减压神经和颈交感神经),在分离最粗的神经(颈迷走神经),然后在3根神经下分别穿2条线分别打活结备用;在对侧分离出2~3cm长的颈总动脉,穿2条线,分别打活结,将2条线分别拉至分离出的动脉两端备用。
5. 动脉插管:首先用注射器吸1-2ml生理盐水,再吸100ul肝素钠溶液,从耳缘静脉注入肝素钠溶液,以防凝血。
然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。
方法如下:将动脉远心端的备用线尽可能靠头端结扎(务必扎紧,以防漏血),然后在另一备用线的向心端,用动脉夹夹闭。
轻轻提起动脉头端的结扎线,用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方,沿向心方向斜向剪开动脉上壁。
另一只手将准备好的动脉插管,顺势轻轻推进6-8mm,用备用线将动脉联通进入的插管扎紧,并将余线系在插管的固定侧支上,以免滑脱。
轻轻取下向心端动脉夹,可见动脉血与插管内液体混合,血液在小管内搏动。
再取下通向压力感受器的止血钳,此时显示器上出现血压的波动曲线。
【实验观察及结果】实验中所用到的实验动物体重2.6公斤,注射麻醉剂的量为13ml。
(1)观察正常血压曲线:调节扫描速度与增益,可明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩、舒张压的度数。
有时可以观察到血压曲线随呼吸变化,心搏为一级波,呼吸波为二级波。
然后将扫面速度调慢,观察正常血压曲线。
心脏跳动呼吸波图1 正常血压曲线结果分析:此时观察到家兔血液波动的收缩压约为100mmHg,舒张压约为80mmHg。
由于插管处血液轻微渗漏,可能会使血压的值略有降低。
在血压曲线上,可清楚分辨心脏跳动波和呼吸波。
(2)刺激迷走神经:使刺激输出端连接保护电极,轻轻提起迷走神经上的备用线,小心地将神经置于保护电极之上。
纪录对照血压曲线后,再用中等强度的连续电脉冲信号通过保护电极刺激神经。
血压出现明显下降后即可停止刺激(如果血压下降很快、很低,应立即停止刺激),并待血压恢复。
图2 刺激迷走神经对血压的影响结果分析:刺激迷走神经后,血压迅速下降,且频率变慢,说明迷走神经具有减压以及降低心脏活动的作用。
停止刺激后,血压渐渐恢复到初始值。
(3)分别刺激迷走神经中枢端和外周端:双结扎迷走神经后(务必扎紧),从两结扎线之间剪断神经。
记录对照血压后,同法分别刺激神经的中枢端和外周端,观察并记录血压变化。
图3 刺激迷走神经中枢端对血压的影响图4 刺激迷走神经外周端对血压的影响结果分析:刺激迷走神经中枢端与外周端都能引起减压反射。
是因为:迷走神经为自主神经,刺激外周端时,能够引起效应器官的反应,如血压降低、心率变慢;刺激中枢端时,也可以通过中枢神经系统后,传至外周端,产生效应。
(4)刺激交感神经:用同样的方法刺激交感神经,观察血压曲线是否有变化。
结果分析:在实验过程中,无论如何刺激交感神经,血压曲线都无明显变化。
原因:刺激交感神经使心脏的活动加强,血压应该有一定程度上升,然而交感神经对血压进行的是微调,变化并不明显,因此很难记录到血压曲线的变化。
在实验中,并未剪断主动脉神经,分别刺激中枢端和外周端。
(5)刺激主动脉神经(减压神经):用同样的方法刺激主动脉神经,观察血压曲线是否有变化。
结果分析:在实验过程中,无论如何刺激主动脉神经,血压曲线都无明显变化,说明刺激的并非主动脉神经,或主动脉神经受到了损坏,神经冲动的传导受到阻断,失去了其生理活性。
经查阅资料得知:刺激主动脉神经会导致血压下降。
原因:当电刺激主动脉神经时:主动脉神经传入冲动增多,使心迷走中枢兴奋、心交感中枢抑制、缩血管中枢抑制,使迷走神经传出冲动增加,交感神经传出冲动减少,而至心率减慢、心收缩力减弱、小静脉舒张,回心血量减少,心输出量减少,外周阻力降低,最终导致血压下降。
由于刺激完整的主动脉神经,血压曲线无明显变化,在实验中,并未剪断主动脉神经,分别刺激中枢端和外周端。
后来得知:刺激整体主动脉神经,血压曲线无明显变化,并不代表分别刺激中枢端和外周端,血压曲线不会出现变化。
很遗憾,实验结果缺少了部分实验结果。
(6)闭气:纪录对照血压曲线后,用棉花堵住气管插管的两个开口,观察并记录血压曲线变化。
当血压明显上升时,打开气管插管的开口,并记录血压的恢复过程。
图5 O2含量减少对血压的影响结果分析:阻塞呼吸后,血压虽略有升高,且出现了血压的周期性搏动。
分析出现这一现象的原因为:阻塞呼吸后,血液中O2的含量下降,CO2的含量增加,***导致血压升高。
由于阻塞呼吸,家兔呼吸困难,身体出现规律性挣扎,因此对血压造成了周期性的影响。
(7)生理盐水对血压的影响:纪录对照血压曲线后,用20ml注射器,从而缘静脉注入15-20ml 生理盐水,观察并记录血压变化及恢复曲线。
图6 注射生理盐水后血压的变化结果分析:注射生理盐水后血压有一定程度的升高,过一段时间后恢复到正常水平。
原因为:注射大量生理盐水后,血管内液体的量增加,循环血量增加,血压出现一定程度的上升,刺激压力感受器,引起减压反射,使血压最终恢复到正常水平。
(8)按压颈动脉窦:纪录对照血压曲线后,用手指按压颈动脉窦(下颌下方内侧),观察并记录血压变化。
当血压明显下降时,则停止按压,待血压恢复。
(如果血压反而升高,说明按压的是血管,需要重新寻找按压位置)。
图7 按压颈动脉窦后血压的变化结果分析:按压颈动脉窦后,血压由正常状态下的收缩压100mmHg,舒张压为80mmHg,下降到收缩压80mmHg以下,舒张压60mmHg以下。
是因为:在外界压力刺激下,颈动脉窦压力感受器感受到压力的上升,并引起减压反射,致使血压降低。
解除外在压力后血压逐渐恢复到正常值。
(9)夹闭对侧颈总动脉:轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线,用棉线结扎(于结扎前纪录动脉通常时的血压曲线),观察并记录血压变化。
图8 结扎颈总动脉对血压的影响结果分析:结扎一侧颈总动脉后,动脉中的血量减少,血压降低,导致同侧的颈动脉窦压力感受器感受到的压力减小,引起增压反射,导致家兔血压升高:由正常状态下的收缩压100mmHg,舒张压80mmHg,升高到收缩压120mmHg,舒张压100mmHg。
一段时间后,收缩压和舒张压都有所降低,但由于是对颈总动脉进行的不可回复性结扎,血压恢复稳定后,仍然略高于最初血压,在接下来的实验中,初始值会受到一定程度的影响。
【注意事项】1. 注射时注意:先从耳缘静脉尽可能远心端注射(第一次注射不成功时,可稍向近心一些注射。
注射时速度要缓慢,并随时观察动物情况。
当动物四肢松软、呼吸变深变慢、角膜反应迟钝时,表明动物已被麻醉,即可停止注射。
2. 手术时,注意切口不可偏离气管上方,不可横向剪断肌肉,以免造成血管断裂而出血。
切口也不要过于扩大,以免造成气胸。
3. 气管插管时,切勿损伤甲状腺及其血管,否则会出血不止。
4. 分离神经、颈总动脉时,要小心,避免将神经、血管弄断。